Name: Métodos experimentales para probar los efectos del péptido neurotrófico, ADNF-9, contra la apoptosis inducida por el alcohol durante el embarazo en C57BL / 6 ratones (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-24T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 50 s
Description: Aprende métodos experimentales para evaluar los efectos neuroprotectores del péptido ADNF-9 contra la apoptosis inducida por alcohol en cerebros fetales de ratones C57BL/6.

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Este proyecto de investigación fue apoyada por el premio número R21AA017735 (YS) de los Institutos Nacional de Abuso de Alcohol y Alcoholismo. El contenido es de exclusiva responsabilidad del autor y no representa necesariamente las opiniones oficiales del Instituto Nacional sobre el Abuso de Alcohol y Alcoholismo o los Institutos Nacionales de Salud. El autor también desea agradecer a Charisse Montgomery para la edición de este manuscrito.

1. Los animales de cría y trófico Tratamiento Peptide <ol><li> Raza C57BL/mice mediante la colocación de los ratones hembra (~ 6 semanas de edad, peso promedio 20 g) en jaulas de origen macho durante 2 horas. </li><li> Compruebe si hay un tapón de esperma y / o citología vaginal inmediatamente después. </li><li> Si es positivo, designar este punto en el tiempo como el día embrionario 0 (E0). </li><li> El E7, peso coincidir las mujeres embarazadas a los grupos de control y tratamiento (3 grupos) se asignan como se ha descrito recientemente 4: 1) Alcohol (etanol) grupo de dieta líquida (ALC), 2) par-alimentados grupo control (PF), 3) Péptido grupo de tratamiento, que debe recibir una inyección intraperitoneal (ip) de péptido del ADNF-9 junto con el alcohol dieta líquida exposición (ALC/ADNF-9). Los detalles de la preparación de ALC y las dietas PF y el procedimiento de inyecciones ip se pueden encontrar en nuestra reciente trabajo 4. </li><li> Mida diario dieta líquida alcohol que se puede proporcionar el acceso libre como la única fuente de nutrientes. Dieta líquida PF yugo individualmente to una presa de ALC se puede medir todos los días también. </li><li> El volumen de la dieta de líquidos consumidos durante las 24 horas anteriores puede ser grabado desde graduada de 30 ml tubos con tapa de rosca y la dieta recién preparada debe proporcionar todos los días de E7 a E13. </li></ol> 2. La disección de fetos y Microdisección de cerebros fetales <ol><li> Sacrificar los ratones embarazadas en E13 profundamente por la eutanasia a los ratones con un procedimiento de CO 2 seguido de una dislocación cervical. </li><li> Limpie la zona abdominal de la incisión con etanol al 70%. </li><li> Hacer una incisión abdominal con tijeras y pinzas estériles. </li><li> Una vez que el abdomen está abierto, diseccionar el útero sujetándolo con una pinza y el uso de las otras pinzas para romper el mesometrio fuera del útero. Asegúrese de hacer este procedimiento lentamente para evitar la punción de los embriones. </li><li> Eliminar los embriones del útero y transferirlos a una placa de cultivo celular (60 mm x 15 mm) que contiene solución salina equilibrada de Hanks<html> (HBSS) en agua helada. </li><li> Disecar cerebros fetales de todo los embriones bajo microscopio estereoscópico para microdisección. </li><li> Con unas pinzas ultrafinas de microdisección, salga de la piel de los embriones en la parte superior de la cabeza para exponer el cráneo. </li><li> Una vez que el cráneo y se expone claramente visualizó bajo el microscopio estereoscópico microdisección, a continuación, desprenderse el cráneo a partir de la parte posterior del cerebro en la zonas del tronco cerebral y la médula espinal. </li><li> Asegúrese de quitar el pedazo del cráneo por pieza de posterior a partes anteriores de la cabeza. </li><li> Una vez que los cerebros fetales están expuestos visualmente, proceder a su extracción. </li><li> Diseccionar los cerebros fetales a partir de la base del bulbo olfatorio primordio a la base de la metencéfalo. </li><li> Postfix todo diseca cerebros fetales en paraformaldehído al 4% durante 2-3 días. También se puede congelar otros cerebros fetales de cada presa si se está probando para la transferencia de Western o ensayos enzimáticos. </li></ol>nt &quot;&gt; Nota: Los procedimientos para usos con animales fueron aprobadas por el Cuidado de Animales institucional y el empleo Comisión de la Universidad de Toledo que están en conformidad con las directrices del Cuidado de Animales institucional y el empleo Comisión de los Institutos Nacionales de Salud y la Guía para la Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio. 3. Incorporación de cerebros fetales en gelatina de seccionamiento <ol><li> Preparar 10% de gelatina de grado A. </li><li> Llenar un molde desprendible incrustar hasta la mitad y espere hasta solidificación de gelatina. </li><li> Lugar de control y fetal cerebros de lado a lado prenatalmente tratada en la parte superior de la gelatina solidificada. Esto es para mantener condiciones constantes de inmunodetección de muerte celular entre el control y los grupos experimentales. </li><li> Añadir la gelatina líquida en la parte superior de los cerebros fetales para hacer un molde completo (asegúrese de que la gelatina no es demasiado caliente). </li><li> Refrigerar el molde de gelatina preparada que contiene cerebros fetales durante 15 min. </li><li> Despegarel plástico molde de inclusión y luego transferir los cerebros fetales que contienen gelatina pre-hechos en paraformaldehído al 4% durante dos días. </li><li> Lugar y sección fija cerebros fetales de gelatina que usa la máquina de seccionamiento vibratome (Leica VT 1000S) a 50 m de espesor de seccionamiento coronal. Este espesor se prueba en nuestros estudios, ya que proporciona mejores características anatómicas. Además, los espesores de 25 micras y superior también se puede probar con esta técnica que implica incrustada de cerebros fetales en 10% de gelatina. Tenga en cuenta que las secciones coronal se cortaron utilizando vibratome a nivel eminencia ganglios basales del cerebro anterior </li><li> Recoger las secciones cerebrales fetales en tamponada con fosfato solución salina (PBS). </li><li> Monte las secciones del cerebro del feto en Superfrost Plus diapositivas en el agua. </li><li> Secar las secciones montadas de 15 min. </li><li> Colocar los portaobjetos (montados con las secciones cerebrales fetales) en PBS para el próximo día de pruebas de reacción TUNEL. </li></ol> 4. TUNEL reacción de Deprotección de la muerte celular o apoptosis (TUNEL: TDT mediada por dUTP nick fin de etiquetado; TDT: desoxinucleotidiltransferasa terminal). Este ensayo está dirigido para determinar la muerte celular. <ol><li> Tratar a las secciones del cerebro fetales montados en portaobjetos Superfrost Plus con proteinasa K (20 mg / ml) durante 5 min a 37 ° C (300 l de proteinasa K mixta en 20 ml de PBS). Las diapositivas se reunieron en 5 plend abierto Maile). </li><li> Enjuague secciones cerebrales fetales (montadas en diapositivas) con PBS tres veces durante 5 min bajo agitador orbital. </li><li> Incubar las secciones con 3% de H 2 O 2 en metanol durante 10 min a temperatura ambiente (3 ml de 30% de H 2 O 2 en 27 ml de metanol al 100%) (diapositivas no deben estar en un agitador). </li><li> Enjuague secciones con PBS tres veces durante 5 minutos en un agitador orbital. </li><li> Incubar las secciones en solución de permeabilización (0,1% Triton X-100 en 0,1% de citrato de sodio) durante 2 min en hielo (4 ° C) (100 l Triton X + 0,1 g de citrato de sodio + 99,9 ml destiladaagua d). </li><li> Enjuague secciones en PBS dos veces durante 5 minutos en un agitador orbital. </li><li> Seque el área alrededor de las secciones en las diapositivas. </li><li> Dibuja barrera en Superfrost Plus diapositivas utilizando PAP Pen. Esto está dirigido a evitar cualquier fuga de la solución que se utiliza para el tratamiento de las secciones para la detección de células TUNEL-positivas. </li><li> Se incuban las secciones con mezcla de reacción TUNEL (50 l de la botella 1 y 450 de la botella de 2 l) durante 1 hora a 37 ° C, el control va a ser utilizado por la incubación en solución de la botella 2. </li><li> Enjuagar con PBS tres veces 5 min bajo Orbit agitador. </li><li> Seque el área alrededor del tejido. </li><li> Incubar las secciones con el convertidor-POD durante 30 min a 37 ° C. </li><li> Enjuague las secciones tres veces durante 5 min con Tris HCl (pH 7,5, 0,05 M). </li><li> Incubar las secciones 7 min en 0,05% tetrahidrocloruro 3&#39;-3&#39;-diaminobencidina (DAB) y 0,003% de H 2 O 2 (25 ml Tris HCl, pH 7,5, 0,05 M + 25 l 3% de H 2 0 2 500 + DAB l) Bajo Oribtal agitador a 4 ° C (en hielo) y en la oscuridad (asegúrese de hacer este procedimiento en la nueva 5 plend abierto mailer). </li><li> Enjuague las secciones con PBS tres veces 5 min bajo agitador orbital. </li><li> Mantenga las secciones de diapositivas en PBS durante no más de 24 horas en PBS, y luego procesarlos para la tinción de Nissl como se detalla en la siguiente sección de protocolo. </li></ol> Nota: DAB es un carcinógeno. Use guantes y limpiar todos los platos usados ​​con el cloro, una vez terminado con todos los experimentos. 5. Tinción Nissl para la preparación de las secciones del cerebro del feto para la observación microscópica <ol><li> Procedimiento de tinción de Nissl se debe hacer en una campana de seguridad biológica. </li><li> Enjuague las secciones de deslizamiento con agua desionizada durante 2 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 70% durante 2 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 95% durante 6 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 70% durante 2 min. </li><li> Enjuague las secciones desionizada water durante 2 min. </li><li> Incubar las secciones de cresil violeta Mancha durante 3 min. </li><li> Enjuague las secciones en agua desionizada durante 2 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 70% durante 2 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 95% + 3 ml de ácido acético glacial durante 3 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 95% durante 2 min. </li><li> Incubar las secciones en etanol al 100% durante 2 min tres veces. </li><li> Incubar las secciones en xileno durante 10 minutos tres veces. </li><li> Diapositivas que sostienen las secciones del cerebro del feto se puede montar utilizando Permount y cubierta de láminas de vidrio deslizantes. </li><li> Deja el montaje se desliza durante la noche antes de la observación y análisis microscópico. </li><li> Observación microscópica y fotomicrografías pueden realizarse bajo Leica microscopio vertical. </li></ol>

<ol><li>Sari, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity-dependent+neuroprotective+protein-derived+peptide%2C+NAP%2C+preventing+alcohol-induced+apoptosis+in+fetal+brain+of+C57BL%2F6+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Activity-dependent neuroprotective protein-derived peptide, NAP, preventing alcohol-induced apoptosis in fetal brain of C57BL/6 mouse.</a> Neuroscience. 158 (4), 1426-1435 (2009).</li>
<li>Sari, Y., Chiba, T., Yamada, M., Rebec, G. V., Aiso, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+peptide%2C+colivelin%2C+prevents+alcohol-induced+apoptosis+in+fetal+brain+of+C57BL%2F6+mice%3A+signaling+pathway+investigations%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">A novel peptide, colivelin, prevents alcohol-induced apoptosis in fetal brain of C57BL/6 mice: signaling pathway investigations.</a> Neuroscience. 164 (4), 1653-1664 (2009).</li>
<li>Sari, Y., Hammad, L. A., Saleh, M. M., Rebec, G. V., Mechref, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alteration+of+selective+neurotransmitters+in+fetal+brains+of+prenatally+alcohol-treated+C57BL%2F6+mice%3A+quantitative+analysis+using+liquid+chromatography%2Ftandem+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Alteration of selective neurotransmitters in fetal brains of prenatally alcohol-treated C57BL/6 mice: quantitative analysis using liquid chromatography/tandem mass spectrometry.</a> Int. J. Dev. Neurosci. 28 (3), 263-269 (2010).</li>
<li>Sari, Y., Weedman, J. M., Ge, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity-dependent+neurotrophic+factor-derived+peptide+prevents+alcohol-induced+apoptosis%2C+in+part%2C+through+Bcl2+and+c-Jun+N-terminal+kinase+signaling+pathways+in+fetal+brain+of+C57BL%2F6+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Activity-dependent neurotrophic factor-derived peptide prevents alcohol-induced apoptosis, in part, through Bcl2 and c-Jun N-terminal kinase signaling pathways in fetal brain of C57BL/6 mouse.</a> Neuroscience. 202, 465-473 (2012).</li>
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<li>Brenneman, D. E., Hauser, J., Neale, E., Rubinraut, S., Fridkin, M., Davidson, A., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity-dependent+neurotrophic+factor%3A+structure-activity+relationships+of+femtomolar-acting+peptides%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">Activity-dependent neurotrophic factor: structure-activity relationships of femtomolar-acting peptides.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 285 (2), 619-627 (1998).</li>
<li>Spong, C. Y., Abebe, D. T., Gozes, I., Brenneman, D. E., Hill, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevention+of+fetal+demise+and+growth+restriction+in+a+mouse+model+of+fetal+alcohol+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">Prevention of fetal demise and growth restriction in a mouse model of fetal alcohol syndrome.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 297 (2), 774-779 (2001).</li>
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<li>Zamostiano, R., Pinhasov, A., Gelber, E., Steingart, R. A., Seroussi, E., Giladi, E., Bassan, M., Wollman, Y., Eyre, H. J., Mulley, J. C., Brenneman, D. E., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cloning+and+characterization+of+the+human+activity-dependent+neuroprotective+protein%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Cloning and characterization of the human activity-dependent neuroprotective protein.</a> J. Biol. Chem. 276 (1), 708-714 (2001).</li>
<li>Offen, D., Sherki, Y., Melamed, E., Fridkin, M., Brenneman, D. E., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasoactive+intestinal+peptide+%28VIP%29+prevents+neurotoxicity+in+neuronal+cultures%3A+relevance+to+neuroprotection+in+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Vasoactive intestinal peptide (VIP) prevents neurotoxicity in neuronal cultures: relevance to neuroprotection in Parkinson's disease.</a> Brain Res. 854 (1-2), 257-262 (2000).</li>
<li>Steingart, R. A., Solomon, B., Brenneman, D. E., Fridkin, M., Gozes, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VIP+and+peptides+related+to+activity-dependent+neurotrophic+factor+protect+PC12+cells+against+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">VIP and peptides related to activity-dependent neurotrophic factor protect PC12 cells against oxidative stress.</a> J. Mol. Neurosci. 15 (3), 137-145 (2000).</li>
</ol>

No hay revelaciones que se hicieron.

La metodología y tecnología presentada en este estudio demuestran los efectos de la exposición prenatal al alcohol en los cerebros fetales y el papel de los péptidos tróficos en la prevención de estos efectos. Estos pueden proporcionar información sobre la forma de estudiar otras drogas de abuso u otros productos químicos tóxicos en el cerebro del feto durante las diferentes etapas del embarazo. En lo que respecta a la paradigma de cría, en algunos casos podría no ser observable la detección...

El objetivo de los métodos experimentales descritos aquí es para evaluar los efectos neuroprotectores de los péptidos tróficos en un modelo de exposición de alcoholismo fetal utilizando varias técnicas que incluyen la cría, alimentación, microdissecting, y la detección de la muerte celular. El trabajo de nuestro laboratorio ha supuesto una dieta líquida mezclada con alcohol como un modelo de consumo moderado de alcohol, que puede ser similar a un paradigma de consumo humano en términos de la cantidad de alcohol consumida 1-5. Nosotros y otros han identificado tres derivados de péptidos que son neuroprotector frente a los efectos nocivos de la exposición fetal al alcohol. Estudios de investigación de la exposición al alcohol durante las etapas embrionarias en modelos animales pueden conducir a la identificación de los posibles mecanismos de neuroprotección y permitir el desarrollo de los procedimientos de intervención. Esto puede proporcionar una información amplia sobre los efectos neuroprotectores y de atenuación de los efectos nocivos de la exposición al alcohol durante el embarazo. Posible prevención de los efectos de la exposición prenatal al alcohol puede implicar el tratamiento de ratones hembra embarazadas con péptidos que han demostrado estar involucrados en la neuroprotección in vitro e in vivo 6,7 1,2,4,8,9. Entre estos péptidos, SALLRSIPA, conocido como ADNF-9 o SAL, se deriva de la actividad dependiente de factor neurotrófico (ADNF) 7,10. Otro péptido con la secuencia de péptido NAPVSIPQ, denominado NAP, deriva de la proteína dependiente de la actividad neuroprotectora (ADNP) 6,11, demostrado un potente efecto protector contra el estrés oxidativo asociado con la exposición al alcohol 12,13. Además, recientemente hemos identificado un nuevo péptido sintetizado, colivelin que parece desempeñar un papel clave neuroprotector en el modelo de exposición fetal al alcohol 2. Colivelin se compone de ADNF-9 y AGA-(C8R) HNG17 (PAGASRLLLLTGEIDLP). La importancia de la utilización de estos péptidos es que tienen la capacidad decruzar la barrera sangre-cerebro para prevenir los efectos de la apoptosis inducida por el alcohol y el déficit de crecimiento del cerebro. Los métodos experimentales utilizaron ratones C57BL / 6 para probar los efectos neuroprotectores contra la apoptosis inducida por el alcohol. Hemos adoptado una ventana en lugar de cría durante la noche de 2 horas con el fin de calcular con exactitud el día embrionario 0 (E0), ya que puede ser revelado por la detección de un tapón de esperma y una citología vaginal 1-5. Hemos utilizado una dieta líquida con tubos de alimentación, ya que se considera libre acceso en lugar de la entrega de alcohol por vía sonda, que puede inducir estrés ratonas preñadas. Por otro lado, microdisección puede ser un reto debido a la suavidad del tejido cerebral fetal, que se podría encontrar cuando la disección de los cerebros fetales en las etapas embrionarias tempranas. Aquí, mostramos las técnicas visualizados para hacer frente a todos los desafíos que implican microdisección. Además, como el seccionamiento del cerebro fetal también puede ser un reto, hemos adoptadouna técnica que consiste en incrustar el cerebro del feto en gelatina con desprendimiento incrustar moldes. Hemos tenido éxito en la reducción de los cerebros fetales en las secciones flotantes a 50 m de espesor. Esto nos permite investigar cualquier alteración del contenido de proteínas en las secciones del cerebro fetal, incluida la determinación de la muerte celular.

<table><tbody><tr><td>Correderas Superfrost Plus</td><td>VWR</td><td>48311-703</td><td></td></tr><tr><td>PAP PEN</td><td>Research Products Int. Corp.</td><td></td><td></td>195506</tr><tr><td>Correo abierto de 5 plend </td><td>Heathrow Scientific, LLC</td><td>HS 15983G</td><td></td></tr><tr><td>Moldes de inclusión despegables</td><td>Electrónica Microscopy Sciences</td><td>70182</td><td></td></tr><tr><td>Kit de detección de muerte celular in situ, POD</td><td>Roche Diagnostics, Inc</td><td>11684817910</td><td></td></tr><tr><td>Solución de sal equilibrada de Hanks</td><td>Invitrogen</td><td>14170-120</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina tipo A</td><td>Microscopio</td> estereoscópico <td>FisherScientific G8-500</td><td></td></tr><tr><td></td><td>W. NUHSBAUM, Inc</td><td>Leica M60, KL 200 LED</td><td></td></tr><tr><td>Micro-Vibratomo</td><td>Leica, Inc</td><td>Leica VT 1000S Pinzas</td><td></td></tr> ultrafinas <tr><td>Moria Herramientas </td> de <td>ciencia fina</td><td>11370-40</td><td>2 pares de</td></tr><tr><td>tubos de alimentación Graduate de 30 ml</td><td>Dyets, Inc</td><td>900012</td><td></td></tr><tr><td>Mezcla de vitaminas </td><td>Bio-Serv. Inc.</td><td>F8031</td><td></td></tr><tr><td>Mezcla Mineral</td><td>Bio-Serv. Inc.</td><td>F8598</td><td></td></tr><tr><td>Maltosa Dextrina</td><td>Bio-Serv. Inc.</td><td>3650</td><td></td></tr><tr><td>Alcohol etílico 190 grados, 5 galones</td><td>111000190-SS05</td><td>Pharmco-AAPER</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio vertical</td><td>W. NUHSBAUM, Inc</td><td>LEICA DM 4000</td><td></td></tr></tbody></table>

métodos experimentales para probar los efectos del péptido neurotrófico, adnf-9, contra la apoptosis inducida por el alcohol durante el embarazo en c57bl / 6 ratones

Experimental Methods for Testing the Effects of Neurotrophic Peptide, ADNF-9, Against Alcohol-induced Apoptosis during Pregnancy in C57BL/6 Mice

Diseños experimentales para la investigación de los efectos de la exposición prenatal al alcohol durante las etapas embrionarias tempranas en el desarrollo del cerebro fetal son desafiantes. Esto es debido a la dificultad de microdisección de los cerebros fetales y su corte por secciones Para la determinación de las células apoptóticas causadas por la exposición prenatal al alcohol en su mayoría. Los experimentos descritos aquí proporcionar técnicas visualizados a partir de ratones de cría para la identificación de la muerte celular en el tejido cerebral fetal. Este estudio utilizó ratones C57BL / 6 como el modelo animal para el estudio de la exposición al alcohol fetal y el papel de péptido trófico contra la apoptosis inducida por el alcohol. La cría se compone de una ventana de la estera de 2 horas para determinar el grado exacto de la edad embrionaria. Un modelo de la exposición al alcohol fetal establecido se ha utilizado en este estudio para determinar los efectos de la exposición prenatal al alcohol en el cerebro del feto. Esto implica el libre acceso a las dietas líquidas alcohol o par-alimentados como única fuente de nutrientes para los ratones embarazadas. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Las técnicas que implican la disección de los fetos y de microdisección de los cerebros fetales se describen cuidadosamente, ya que este último puede ser un reto. Microdissection requiere un microscopio estereoscópico y fórceps ultrafinas. Procedimientos paso a paso para la disección de los cerebros fetales se proporcionan visualmente. Los cerebros fetales se disecan a partir de la base del bulbo olfatorio primordio a la base de la metencéfalo. Para investigar la apoptosis, los cerebros fetales están integrados por primera vez en la gelatina con un desprendimiento del molde para facilitar su seccionamiento con un aparato vibratome. Cerebros fetales incrustados y fijados en paraformaldehído son fácilmente seccionada, y las secciones flotantes libres pueden ser montados en portaobjetos Superfrost Plus para la determinación de la apoptosis o muerte celular. TUNEL (TdT-mediada por dUTP nick fin de etiquetado; TdT: desoxinucleotidil transferasa terminal) de ensayo ha sido utilizado para identificar la muerte celular o apoptosis. Es de destacar que apoptosis y la citotoxicidad mediada por células se caracterizan por la fragmentación del ADN. Por lo tanto, las células TUNEL-positivas visualizados son indicativos de la muerte celular o apoptosis. Los diseños experimentales aquí proporcionan información sobre el uso de una dieta líquida establecido para el estudio de los efectos del alcohol y el papel de los péptidos neurotróficos durante el embarazo en los cerebros fetales. Se trata de la cría y la alimentación de los ratones embarazadas, microdissecting cerebros fetales, y la determinación de la apoptosis. En conjunto, estas técnicas visuales y de texto pueden ser una fuente para la investigación de la exposición prenatal de agentes nocivos en el cerebro del feto.

Los métodos experimentales descritos aquí muestran que una ventana de reproducción 2-hr es esencial para estimar la edad gestacional exacta. Hemos demostrado la disección de los embriones a la edad de E13. Se demostró además microdisección de cerebros fetales E13. El procedimiento implica varias etapas (ac), como se describe en la Figura 1. Cerebros fetales se disecan a partir de la base del bulbo olfatorio primordio a la base de la metencéfalo (Figura 1). Cerebros fetales se fijaron a ...

Los diseños experimentales que aquí se proponen centrarse en el estudio de los efectos de la exposición al alcohol en la apoptosis y la aplicación de péptido neurotrófico durante el embarazo en el cerebro fetal. Se describe una descripción detallada de la cría a la colección de cerebros fetales. Las técnicas para la determinación de la apoptosis también se describen en detalle.

Métodos experimentales para probar los efectos del péptido neurotrófico, ADNF-9, contra la apoptosis inducida por el alcohol durante el embarazo en C57BL / 6 ratones

Experimental designs for investigating the effects of prenatal alcohol exposure during early embryonic stages in fetal brain growth are challenging. This ...

El objetivo de este procedimiento es evaluar los efectos neuroprotectores de los péptidos tróficos en un modelo de exposición fetal al alcohol. Esto se logra apareando primero a los animales de experimentación y luego tratando a las hembras embarazadas con péptidos tróficos, como segundo paso, los fetos se diseccionan para aislar los cerebros fetales para usos experimentales. A continuación, los cerebros fetales se sumergen en gelatina para su seccionamiento, seguido de una tinción en túnel para determinar la muerte celular, se obtuvieron los resultados.Esto demuestra que la exposición prenatal al alcohol aumenta el número de células de túnel positivo en la eminencia ganglionar. En comparación con la administración del péptido trófico en el grupo de control, un D y F nueve redujeron significativamente el aumento inducido por el alcohol en las células tunnel positivas en comparación con los animales de control tratados con alcohol. Por lo tanto, la demostración visual de este metal es fundamental, ya que la disección del cerebro fetal y los pasos incrustados son difíciles de aprender porque los cerebros fetales son muy pequeños para diseccionar y procesar la sección de ratones negros de seis negros de primera raza C 57 colocando ratones hembra de seis semanas de edad de alrededor de 20 gramos en jaulas domésticas masculinas durante dos horas inmediatamente después de la extracción.Revise cada hembra para ver si hay un tapón de esperma para confirmar que se ha producido el apareamiento. Si hay un tapón de espermatozoides, designe este día cero embrionario en E siete pesos para que las hembras embarazadas se dividan en cuatro grupos. Un grupo de dieta líquida y alcohólica proporcionó acceso libre como única fuente de nutrientes.Dos grupos de control Perfed grupo de tratamiento de tres péptidos, que deben recibir una inyección intraperitoneal de un péptido DNF nueve junto con la exposición al alcohol. Dieta líquida. Registre el volumen de dieta líquida consumida por los animales en 24 horas a partir de tubos de rosca graduados de 30 mililitros para determinar la cantidad diaria de alcohol, dieta líquida o dieta líquida emparejada que se puede proporcionar a través de un exceso libre como única fuente de nutrientes.Asegúrese de que se le proporcione una dieta líquida recién preparada diariamente desde E 7 hasta E 13 después de sacrificar a la embarazada Myer E 13 mediante eutanasia con dióxido de carbono, seguida de dislocación cervical. Coloque el cadáver en la tabla de disección en posición supina y limpie el abdomen con etanol al 70%. Use tijeras y fórceps estériles para hacer una incisión abdominal.Una vez que el abdomen esté abierto, sostenga el útero con fórceps y use una segunda pinza para separar lenta y suavemente el endometrio del útero sin perforar los embriones. Retire con cuidado los embriones del útero y transfiéralos a la solución de clasificación equilibrada de Hank En un plato de cultivo celular de 60 milímetros por 15 mililitros sobre hielo húmedo, coloque el plato y el recipiente de hielo en el escenario de un microscopio estereoscópico utilizando pinzas ultrafinas para la microdisección. Retira la piel de los embriones en la parte superior de la cabeza para exponer el cráneo.Una vez que el cráneo esté expuesto y claramente visualizado bajo el microscopio estereoscópico, agarre la base del cráneo a nivel de la médula espinal y el tronco encefálico con pinzas y comience a despegar el cráneo. Continúe despegando el cráneo pieza por pieza, desde la parte posterior hasta la anterior de la cabeza. Una vez que el cerebro esté completamente expuesto, use fórceps para extraerlo.A continuación, diseccionar el cerebro fetal desde la base del bulbo primordial o de fábrica hasta la base del Met Postfix, todos los cerebros fetales diseccionados en 4% de paraldehído durante dos o tres días. Los cerebros fetales también se pueden congelar si se analizan para Western blot o ensayos enzimáticos. Después de preparar una solución al 10% de gelatina de grado A preparada en agua destilada, llene un molde de incrustación de cáscara hasta la mitad y espere hasta que la gelatina se solidifique.Coloque los cerebros fetales de control y tratados prenatalmente uno al lado del otro encima de la gelatina solidificada. Esto es para mantener condiciones consistentes entre los grupos de control y experimental. Asegúrese de que la gelatina no esté demasiado caliente y agregue gelatina líquida encima de los cerebros fetales para hacer un molde completo.El molde final debe parecerse a esta imagen, refrigere el molde de gelatina preparado que contiene los cerebros fetales durante 15 minutos. A continuación, retire el plástico del molde de inclusión. El molde final debe verse así y luego transferir la gelatina que contiene cerebros fetales al 4% de paraldehído durante dos días.Al tercer día, coloque un bloque de gelatina que contenga cerebros fetales fijos en la etapa del viome. A continuación, seccione los cerebros con un vioma de 25 a 50 micras de grosor para el corte coronal. Recoja las secciones del cerebro fetal en PBS, luego monte las secciones del cerebro fetal en súper heladas más portaobjetos en agua y déjelas secar durante 15 minutos.Transcurridos 15 minutos. Coloque los portaobjetos en PBS para la prueba de reacción en túnel al día siguiente. Primero, sumerja los portaobjetos en una solución de 20 microgramos por mililitro de proteinasa K y PBS durante cinco minutos a 37 grados centígrados.Luego enjuague tres veces en PBS durante cinco minutos cada una en un agitador orbital. Incubar las secciones con peróxido de hidrógeno al 3% en metanol durante 10 minutos a temperatura ambiente sin agitar. A continuación, lave los portaobjetos como antes.A continuación, incube las secciones en una solución permeable durante dos minutos en hielo. Después de la incubación, lavados dos veces en PBS. Al igual que antes, use un pañuelo de laboratorio para secar el área del portaobjetos alrededor de las secciones.A continuación, utiliza un bolígrafo para dibujar alrededor de las secciones de la diapositiva. Esto evita la fuga de la solución de tinción, lo que permite utilizar un pequeño volumen. Incubar una sección en cada par con una mezcla de reacción en túnel preparada de acuerdo con las instrucciones del fabricante.Añada una solución portadora sin reactivo túnel a la sección de control negativo. A continuación, incubar los portaobjetos durante una hora a 37 grados centígrados. Una vez transcurrido el tiempo de incubación, lavar los portaobjetos tres veces en PBS en un agitador orbital como antes.Luego, seque el área alrededor del tejido con una toallita de laboratorio. A continuación, incubar las secciones con una solución de POD convertidor durante 30 minutos a 37 grados centígrados sin agitar. A continuación, enjuague las secciones tres veces durante cinco minutos cada una con tris HCL.Transfiera los portaobjetos a un soporte y colóquelos en un frasco de coplin que contenga 0,05 % de DAB y 0,003 % de peróxido de hidrógeno. Cubra el frasco con papel de aluminio y colóquelo en un agitador orbital sobre hielo durante siete minutos después de la incubación, lavando PBS como antes si lo desea. Las diapositivas se pueden almacenar en PBS antes de proceder a la tinción del contador de misiles, como se detalla en la parte de texto del protocolo.Las siguientes imágenes muestran los efectos del péptido neurotrófico A DNF nueve contra la apoptosis inducida por el alcohol utilizando un ensayo de túnel en la eminencia ganglionar ya que la exposición prenatal al alcohol en la etapa E 13 indujo aumentos en la muerte celular como lo indican las puntas de flecha en el grupo A LC en comparación con el grupo PF. La administración de A D NF NINE junto con la exposición prenatal al alcohol indujo una disminución de las células túnel positivas. El análisis estadístico demostró que la administración de AD y F nine previno los aumentos inducidos por el alcohol en las células del túnel positivo.Los valores se muestran como medias más menos error estándar de la media. Un solo asterisco indica un valor P inferior a 0,052. El asterisco indica un valor de P inferior a 0,01 mediante la prueba post hoc de Newman Coles.Cada grupo contenía un N de cuatro. Entonces, después de su desarrollo, esta técnica permite a los investigadores y al campo del desarrollo del cerebro explorar los efectos de los medicamentos o compuestos y el desarrollo del cerebro en ratones.

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Métodos experimentales para probar los efectos del péptido neurotrófico, ADNF-9, contra la apoptosis inducida por el alcohol durante el embarazo en C57BL / 6 ratones (Video) | JoVE Journal

Métodos experimentales para probar los efectos del péptido neurotrófico, ADNF-9, contra la apoptosis inducida por el alcohol durante el embarazo en C57BL / 6 ratones

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