18 de marzo de 2013
Los vectores virales permiten la manipulación dirigida de genes. Se demuestra un método para la expresión génica condicional o ablación en la médula espinal de ratón, usando inyección estereotáxica de un vector viral en el asta dorsal, un sitio prominente de contacto sináptico entre las vías aferentes somatosensoriales y las neuronas del sistema nervioso central.
El objetivo general de este procedimiento es lograr una expresión génica espacialmente restringida en la médula espinal del ratón mediante la inyección estereotáctica de un vector viral en el asta dorsal lumbar. El primer paso del procedimiento es localizar y exponer la vértebra lumbar. El segundo paso es extirpar la porción dorsal de la vértebra para revelar la médula espinal.
Procedimiento que se denomina laminectomía. A continuación, se coloca una pipeta de vidrio conectada a una microbomba de jeringa sobre el asta dorsal y se baja hasta la médula espinal. El paso final es inyectar lentamente la suspensión vectorial.
Dos semanas después, se demuestra la transfección de las neuronas del asta dorsal mediante la expresión de la proteína fluorescente verde, que permite rastrear la distribución del virus. Este método ayuda a dilucidar la función de las neuronas en algunas de las vías sensoriales. Lo utilizamos en estudios que se centran específicamente en el desarrollo de dolor inflamatorio o neuropático.
La demostración visual es fundamental para aprender a colocar el ratón en el marco estereotáctico. Es esencial para el éxito del procedimiento que la columna vertebral se fije correctamente porque la laminectomía es una técnica muy delicada. Martin Mole, un estudiante graduado de mi laboratorio, hará una demostración del procedimiento.
John Wang, un asistente de investigación, lo ayudará uno o dos días antes del procedimiento. Pipetas de vidrio Pul para obtener un diámetro de punta de 40 micrómetros y biselar la punta en un ángulo de 20 grados el día de la cirugía. Comience el procedimiento desinfectando el equipo quirúrgico y preparando las herramientas quirúrgicas estériles para configurar el marco estereotáxico.
Monte el inyector de microjeringa en el manipulador y conecte el dispositivo. Fije una de las pipetas de vidrio a la microjeringa mediante el accesorio de compresión. Ahora retire el émbolo de la micro jeringa.
Llene la jeringa con el aceite mineral, luego vuelva a insertar el émbolo y empújelo hasta la punta. Con cuidado: Evite crear burbujas de aire. A continuación, inserte la microjeringa en el soporte del inyector.
A continuación, retire el virus del congelador y prepare la suspensión de partículas de virus justo antes de usarla diluyéndola con solución salina estéril tamponada con fosfato hasta la concentración de partículas deseada. Pipetear cinco microlitros de la suspensión del virus en un pequeño trozo de parámetro. A continuación, baje la punta de la pipeta de vidrio en la gota y tire del émbolo para llenar la microjeringa.
Al final. Cree una pequeña burbuja de aire en la punta de la pipeta para evitar que se obstruya. En este paso, prepare el área de la cirugía limpiando el banco en la almohadilla térmica con desinfectante.
A continuación, anestesiar al ratón mediante la inhalación de flúor. A continuación, aplique lubricante en cada ojo para protegerlos del secado durante la operación Después, afeite el pelaje desde la parte inferior de la espalda hasta el cuello del ratón. Desinfectar la piel con toallitas alternas de un antiséptico tópico, como clorhexidina o povidona yodada, y etanol al 70%.
A continuación, infiltrar el sitio de la incisión con bupivacaína al 0,25% diluido de uno a 10 con solución salina fisiológica. Posteriormente se incide la piel en el extremo de la caja torácica, de dos a tres centímetros a lo largo de la línea media y se separa la fascia que cubre la columna vertebral. Identifique la vértebra L uno, que se encuentra mimada a la vértebra, sosteniendo el último par de costillas y expóngala eliminando los pequeños músculos y ligamentos espinales unidos a su superficie dorsal.
A continuación, levante ligeramente y sujete la vértebra L uno con un par de aditivos y pinzas. A continuación, utilice una pinza de laminectomía específica para extirpar la parte dorsal de la vértebra, incluida la apófisis espinosa y la lámina para exponer la médula espinal. Evite dañar la duramadre o la médula espinal durante este procedimiento.
A continuación, transfiera el ratón a una placa calefactora en el marco estereotáxico y controle la temperatura del ratón durante la operación posterior. Ahora use los picos de la muesca en V para estabilizar la columna vertebral para que la vértebra no se mueva durante la respiración. A continuación, acerque la microjeringa de modo que la punta de la pipeta quede por encima del sitio de la laminectomía.
Baje el émbolo hasta que vea que la suspensión del virus sale de la pipeta. Retire la gota con una gasa estéril. A continuación, coloque la punta de la pipeta en la porción más rostral de la médula espinal expuesta.
Centre la pipeta por encima del surco mediano posterior y mueva la punta 500 micrómetros lateralmente. Después de eso, baje la punta a la superficie del cordón y perfore la duramadre. Posteriormente, baje la punta del vaso, pipetee 300 micrómetros en la médula espinal.
Inyecte un microlitro de suspensión de virus a una velocidad de 200 nanolitros por minuto. Al final de la inyección, espere al menos dos minutos antes de retraer lentamente la pipeta. Repita el procedimiento de inyección en la porción más mimada de la médula espinal expuesta para lograr la distribución completa del vector viral en el segmento espinal L cuatro.
Los dos sitios de inyección están ubicados en el segmento rostral y en el segmento L cuatro. Para evitar daños en los tejidos en la región diana después de la liberación de la inyección, la vértebra L uno de la muesca en V se sujeta y retira el ratón del marco estereotáxico. A continuación, sutura la fascia con cinco oh Vicryl.
La fascia cerrada proporciona cobertura para el sitio de la laminectomía. A continuación, cierre la piel con suturas de nailon o grapas quirúrgicas. Proporcionar analgesia postquirúrgica durante 72 horas con inyecciones subcutáneas diarias de carprofeno a cinco miligramos por kilogramo.
Transfiera el mouse a una jaula de recuperación con ropa de cama suave y no particular. Coloque el mouse a un lado para respirar cómodamente. A continuación, vigile al animal hasta que esté completamente alerta.
Ambulancia y empieza a beber. Monitorizar la recuperación postquirúrgica mediante inspección diaria durante los tres primeros días. Luego, cada dos días o tres días a la semana hasta que se complete el experimento.
De siete a 10 días después de la operación, cuando se completa la cicatrización de la herida. Retire las suturas o grapas de la piel. Esta figura muestra la expresión de la proteína reportera fluorescente verde mejorada o EGFP en el asta dorsal izquierda de la médula espinal L cuatro.
Dos semanas después de la inyección estereotáxica de las neuronas R-A-A-V-E-G-F-P se inmunotinción para los núcleos neuronales de la proteína que se muestra en punta de flecha roja. Señale las células gliales transfectadas dispersas en la columna dorsal. Aproximadamente el 80% de las neuronas del asta dorsal medial estaban infectadas con la práctica.
El procedimiento se puede completar en 30 a 40 minutos, y recuerde mantener las condiciones estériles durante el procedimiento. Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo realizar inyecciones de chimal intra pino en la dosis de la médula espinal del ratón. Estamos utilizando la técnica para la manipulación de genes, pero puede adaptarla para otros fines, como la aplicación intraespinal de fármacos.
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Este estudio demuestra un método para lograr una expresión génica restringida espacialmente en la médula espinal de ratón mediante la inyección estereotáxica de un vector viral en el asta dorsal lumbar. Esta técnica permite la manipulación génica dirigida, particularmente en áreas de contacto sináptico entre aferentes somatosensoriales primarios y neuronas del sistema nervioso central.
La administración estereotáxica de vectores virales permite una manipulación génica precisa y espacialmente restringida en el asta dorsal de la médula espinal del ratón, una región clave para la investigación del procesamiento sensorial y de las vías del dolor. Este enfoque apoya la validación de dianas y la reducción mecanicista de riesgos en el descubrimiento en neurociencia, al permitir la expresión o silenciamiento génico condicional en poblaciones neuronales definidas. El método proporciona una plataforma reproducible para vincular dianas genéticas con fenotipos funcionales en modelos preclínicos del dolor, lo que orienta las decisiones de avance o abandono en la selección de dianas.
El método se integra en el continuo de descubrimiento, desde la prueba de hipótesis sobre un blanco hasta la identificación de compuestos prometedores y la validación preclínica, especialmente para blancos del sistema nervioso central implicados en el procesamiento sensorial.