Name: La aplicación de un In vitro DNA ensayo de protección de visualizar Estrés Mediación propiedades de la proteína Dps (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-31T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 41 s
Description: Aprende a purificar la proteína Dps de E. coli y evaluar su efecto protector del ADN contra daño oxidativo mediante electroforesis. Este protocolo permite visualizar la reducción de lesiones causadas por especies reactivas de oxígeno.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Estamos muy agradecidos a Michela de Martino, Wilfred R. Hagen y Kourosh Honarmand Ebrahimi útil para los debates. Esta labor fue apoyada con una financiación inicial de la Universidad Tecnológica de Delft.

1. Dps Expresión y purificación La obtención de proteína de alta pureza es un primer paso esencial para el ensayo de protección de ADN. La purificación de la proteína Dps se puede realizar en 4 a 5 días. <ol><li> Transformar una cepa deficiente en proteasa de E. coli (tal como BL21 (DE3) pLysS) con un vector pET (tales como pET17) en el que la secuencia que codifica la proteína Dps ha sido clonado. </li><li> Racha de las células transformadas a cabo en placas de agar Luria Broth (LB) que contienen los antibióticos apropiados (tales como ampicilina y cloranfenicol para los ejemplos proporcionados en 1.1). Las placas se incuban durante la noche a 37 ° C. </li><li> Se inocula una sola colonia de la placa en 30 ml de medio LB que contenía los antibióticos apropiados. Incubar toda la noche a 37 ° C con agitación a 200-250 rpm. </li><li> Inocular 2 x 1 L de medio LB que contiene antibióticos apropiados con 10 ml de cada uno de los cultivo de una noche. Crece a 37 ° C, mientras se agita, a OD 600 </sub&gt; de aproximadamente 0,6. (Cultivo células para producción de proteína aumenta OD más alto, sin comprometer notablemente la pureza del producto final.) Inducir la expresión de la AD mediante la adición de IPTG a una concentración de 0,3 mM, y se incuba a 37 ° C durante 3-4 horas mientras se agita. </li><li> Células de la cosecha por centrifugación a 6000 xg durante 15 min. Resuspender los sedimentos de células en 7,5 ml de DEAE tampón A (50 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, 100 mM de NaCl, 0,1 mM EDTA) por litro de cultivo celular inducida. Las muestras pueden ser congeladas en nitrógeno líquido y se almacenan a -80 ° C, si se desea. El procedimiento puede entonces continuarse por descongelar las muestras en un baño de agua a 4 ° C. </li><li> Añadir una mezcla de inhibidores de la proteasa (Calbiochem, tales como inhibidores de la proteasa conjunto III, en 0.167 l por ml de suspensión de células) a la suspensión celular para impedir la degradación de AD sobreexpresados. </li><li> Preparar extracto libre de células usando una prensa francesa. Cebe la prensa francesa con 20 ml de DEAE Buffer A (si se utiliza un modelo de flujo continuo), entonces disrupciónt de la muestra dos veces en 20 kpsi. Se centrifuga el lisado a 30.000 xg durante 35 min a 4 ° C para aclarar las partículas insolubles, y guardar el sobrenadante. El sobrenadante puede ser entonces congelada utilizando nitrógeno líquido y se almacenó a -80 ° C, si se desea. </li><li> Se equilibra una columna de 30 ml de DEAE Sepharose CL-6B de DEAE con tampón A, usando una FPLC. Ejecutar tampón a través de la columna a 1-2 ml / min con una presión máxima de 0,2 MPa sobre el fondo. Cargar el extracto libre de células en la columna, y comenzar a recoger el flujo a través de-una vez que la señal de OD 280 comienza a aumentar por encima de línea de base. Lavar la columna con DEAE tampón A hasta que el valor de la DO 280 vuelve a la línea de base, mientras que continuamente recoger el flujo a través. El flujo a través deben contener la mayoría de la proteína Dps, libre de ADN unido. Lavar la columna con 100% de tampón B (50 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, 1 M de NaCl, 0,1 mM de EDTA). Este eluido contiene complejos AD-ADN, así como otras proteínas y puede ser desechada. </li><li> Eliminar publicidadcontaminar condicional proteínas a través de precipitación con sulfato amónico. Determinar el volumen combinado de flujo continuo. Lentamente (durante un período de 10-20 min) añadir sulfato de amonio a pequeña grano seco a la saturación de 62% (390 mg por ml de solución) a 4 ° C mientras se agitaba bien. Se agita la mezcla durante un adicional de 20-30 minutos después de la adición de la última porción de sulfato de amonio para asegurar equilibrio completo. Dps permanecerán solubles, mientras que las proteínas contaminantes sin precipitar fuera de la solución. </li><li> Eliminar las proteínas precipitadas por centrifugación a 20.000 xg durante 30 min a 4 ° C y guardar el sobrenadante. </li><li> Poco a poco agregue un sulfato amónico 227 mg adicionales por ml de sobrenadante para alcanzar la saturación del 94% y se agita durante 20 a 30 minutos para asegurar el equilibrio completo. Dps precipitados en esta alta concentración de sal y pueden ser recogidos por centrifugación a 20.000 xg durante 30 min a 4 ° C. AD estarán en el sedimento, el sobrenadante puede ser desechada. El sedimento se puede almacenar a -80 ° C si desired. </li><li> Resuspender el sedimento que contiene AD-resuspensión en tampón (50 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, 150 mM de NaCl, 0,1 mM de EDTA). Ajuste el volumen de la muestra de 2,5 ml. </li><li> El cambio de tampón para eliminar el sulfato de amonio mediante el uso de una columna de filtración en gel PD-10. Equilibrar el lecho de gel con 25 ml de tampón de resuspensión. Aplique el 2,5 ml de AD muestra en la parte superior de la columna de PD-10 y deje que penetre en su interior Deseche el flujo continuo. Recoger AD eluyendo con 3,5 ml de tampón de resuspensión. </li><li> Centrifugar el intercambio de tampón de la muestra a 16.000 xg durante 10 min a 4 ° C para eliminar los componentes insolubles, y diluirlo con 6-10 ml de tampón de dilución (50 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, EDTA 0,1 mM) para asegurar que el concentración de sal es lo suficientemente bajo como para AD para unirse a la columna de Sepharose SP. En particular, las muestras concentradas de AD pueden llegar a ser menos soluble tras la dilución en un tampón de menor contenido de sal, como se evidencia por la nubosidad de líquido, pero pueden ser completamente resolubilizada por la adición de una pequeña amount de solución 5 M de NaCl (un adicional de 10-20 mM). </li><li> Se equilibra una columna de flujo de 30 ml de SP Sepharose Fast SP con tampón A (50 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, 50 mM de NaCl, 0,1 mM de EDTA). Ejecutar tampón a través de la columna a 1,5-2 ml / min con un límite de presión de 0,3 MPa sobre el fondo. Cargar la muestra en la columna. Lavar con SP tampón A hasta que las declaraciones traza OD 280 de línea de base, y desechar el flujo continuo. Ejecutar un gradiente lineal de 150 ml de 0 a 100% de tampón B, mientras que la recogida fracciones de 2 ml. AD se eluyen en un pico agudo en torno al 50% de B, aunque la variación en un 10% es posible. </li><li> Ejecute las fracciones de elución en un gel SDS-PAGE al 15%, y comprobar la contaminación de ADN mediante la medición de los 260/280 OD relación OD usando un espectrofotómetro. El gel sólo debe mostrar una banda de alrededor de 19 kDa, y el OD 260 / OD 280 es típicamente alrededor de 0,7. Piscina para los más puros fracciones de DPS. Utilice una unidad de filtro centrífugo (tal como la unidad de filtración Amicon Ultra) con un10K peso molecular de corte para concentrar las DPS y cambiarlo en un tampón de almacenamiento (50 mM HEPES-KOH, pH 7,5, 50 mM NaCl). Alícuotas de las AD purificados, y congelar en nitrógeno líquido para su almacenamiento a -80 ° C. </li></ol> 2. Ensayo de protección del ADN El ensayo implica múltiples pasos sensibles al tiempo y debe programarse a la segunda para obtener resultados reproducibles. Muchos de los ingredientes y los pasos de pipeteado están involucrados, por lo que una mesa de pipeteado (ver Tabla 1) se recomienda realizar un seguimiento de las medidas y volúmenes. El tiempo total requerido para el ensayo es de no más de 3 horas. <ol><li> Medir 30 ml de agua en un frasco hermético; enjuagar el agua con N2 durante 10 min (utilizando dos agujas de jeringa, una en el fluido, una encima de la misma) para eliminar el oxígeno de la solución. Añadir 0,0168 g FeSO4 • 7H 2 O para el agua para obtener una solución madre 2 mM. Sellar el frasco y enjuague con nitrógeno durante 5 minutos más, luego mezclar. La solución debe serclaro, si cualquier atisbo de amarillo es detectable, preparar una nueva solución de hierro. </li><li> Hacer un 100 mM H 2 O 2 solución (10,87 l de 9.2MH 2 O 2 en 1 ml de agua); mantener en hielo y protegida de la luz, envolviendo en papel de aluminio. Utilice sólo durante 1-2 horas después de la preparación debido a la descomposición espontánea. El stock de peróxido de hidrógeno es similar sujeto a la ruptura, que puede estar parcialmente mejorado por almacenamiento adecuado (en la oscuridad, a 4 º C). Se recomienda la comprobación periódica de la concentración stock de medición de los 240 OD. </li><li> Descongelar una alícuota de AD purificada rápidamente en un baño de agua a temperatura ambiente, y mantener en hielo. Centrifugar durante 10 segundos a 4000 xg en una tapa picocentrifuge mesa para agregados precipitado. Medir la concentración después de la centrifugación usando un espectrofotómetro (DO 280 = 1,547 indica una concentración de 100 AD monómero mu M). </li><li> Diluir el ADN lineal de alta concentración madre usando 12x tampón de reacción (1M MOPS-KOH pH 7,0, NaCl 1 M) a una concentración de 100 ng / l. ADN lineal se utiliza para hacer más fácil cuantificación, pero el ADN plásmido puede ser utilizado también. </li><li> Pipetear 1 l de la mezcla de ADN-tampón en un tubo de PCR. Añadir suficiente agua en la reacción de modo que el volumen final de reacción (menos SDS) será de 12 l. Este importe debe calcularse con antelación utilizando la tabla de pipeteo. Añadir AD a una concentración dodecámero final de 3 mM. Incubar durante 15 min a temperatura ambiente para permitir la AD a se unen al ADN. </li><li> Añadir suficiente mM de solución de FeSO4 2 para llegar a la concentración deseada. Un experimento típico utiliza una gama de concentraciones de 0 a 1 mM FeSO 4. Las concentraciones más altas causarán más extensa degradación del ADN, pero también pueden conducir a la formación de férrico precipita en la mezcla de reacción. Añadir rápidamente 1 l de la solución 2 mM de H 100 O 2 (a concentración final 10 mM), y se incuba a temperatura ambiente durante 5 min para permitir que el FentonMediada por reacción de degradación a tener lugar. </li><li> Añadir 0,8 l de 20% de SDS (dodecil sulfato de sodio). Mezclar e incubar a 85 ° C durante 5 min para alterar los complejos de ADN-AD. El SDS desestabiliza el complejo AD-ADN y previene cambios no deseados de gel para el ADN, lo que mejora la facilidad de cuantificación. Un paso opcional es para detener la reacción por catalíticamente degradar el peróxido de hidrógeno en productos no tóxicos. En las condiciones descritas en este protocolo, no es necesario este paso para obtener una amplia gama de la degradación del ADN. </li><li> Incubar en hielo durante 1 min, añadir colorante de carga, y cargar en un gel de agarosa. Ejecutar el gel, y de la mancha de ADN utilizando bromuro de etidio. El gel debe ser manchado posterior a electroforesis en lugar de antes de la electroforesis, para evitar que el SDS de interferir con la distribución de bromuro de etidio en el gel. </li></ol>

<ol><li>Almiron, M., Link, A. J., Furlong, D., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+DNA-binding+protein+with+regulatory+and+protective+roles+in+starved+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">A novel DNA-binding protein with regulatory and protective roles in starved Escherichia coli.</a> Genes Dev. 6, 2646-2654 (1992).</li>
<li>Chiancone, E., Ceci, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+multifaceted+capacity+of+Dps+proteins+to+combat+bacterial+stress+conditions%3A+Detoxification+of+iron+and+hydrogen+peroxide+and+DNA+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+biophysica+acta%22%5BJournal%5D)">The multifaceted capacity of Dps proteins to combat bacterial stress conditions: Detoxification of iron and hydrogen peroxide and DNA binding.</a> Biochimica et biophysica acta. 1800 (8), 798-805 (2010).</li>
<li>Ali Azam, T., Iwata, A., Nishimura, A., Ueda, S., Ishihama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+phase-dependent+variation+in+protein+composition+of+the+Escherichia+coli+nucleoid%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Growth phase-dependent variation in protein composition of the Escherichia coli nucleoid.</a> J. Bacteriol. 181 (20), 6361-6370 (1999).</li>
<li>Grainger, D. C., Goldberg, M. D., Lee, D. J., Busby, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+repression+by+Fis+and+H-NS+at+the+Escherichia+coli+dps+promoter%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Selective repression by Fis and H-NS at the Escherichia coli dps promoter.</a> Molecular Microbiology. 68 (6), 1366-1377 (2008).</li>
<li>Martinez, A., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+of+DNA+during+oxidative+stress+by+the+nonspecific+DNA-binding+protein+Dps%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Protection of DNA during oxidative stress by the nonspecific DNA-binding protein Dps.</a> J. Bacteriol. 179 (16), 5188-5194 (1997).</li>
<li>Nair, S., Finkel, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dps+protects+cells+against+multiple+stresses+during+stationary+phase%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Dps protects cells against multiple stresses during stationary phase.</a> J. Bacteriol. 186 (13), 4192-4198 (2004).</li>
<li>Grant, R. A., Filman, D. J., Finkel, S. E., Kolter, R., Hogle, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+crystal+structure+of+Dps%2C+a+ferritin+homolog+that+binds+and+protects+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">The crystal structure of Dps, a ferritin homolog that binds and protects DNA.</a> Nat. Struct. Biol. 5 (4), 294-303 (1998).</li>
<li>Zhao, G., Ceci, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron+and+hydrogen+peroxide+detoxification+properties+of+DNA-binding+protein+from+starved+cells.+A+ferritin-like+DNA-binding+protein+of+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Iron and hydrogen peroxide detoxification properties of DNA-binding protein from starved cells. A ferritin-like DNA-binding protein of Escherichia coli.</a> J. Biol. Chem. 277 (31), 27689-27696 (2002).</li>
<li>Ceci, P., Cellai, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+condensation+and+self-aggregation+of+Escherichia+coli+Dps+are+coupled+phenomena+related+to+the+properties+of+the+N-terminus%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">DNA condensation and self-aggregation of Escherichia coli Dps are coupled phenomena related to the properties of the N-terminus.</a> Nucleic Acids Res. 32 (19), 5935-5944 (2004).</li>
<li>Ilari, A., Ceci, P., Ferrari, D., Rossi, G. L., Chiancone, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron+incorporation+into+Escherichia+coli+Dps+gives+rise+to+a+ferritin-like+microcrystalline+core%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Iron incorporation into Escherichia coli Dps gives rise to a ferritin-like microcrystalline core.</a> J. Biol. Chem. 277 (40), 37619-37623 (2002).</li>
<li>Swift, J., Wehbi, W. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+of+functional+ferritin-like+proteins+with+hydrophobic+cavities%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Design of functional ferritin-like proteins with hydrophobic cavities.</a> Journal of the American Chemical Society. 128 (20), 6611-6619 (2006).</li>
<li>Ceci, P., Chiancone, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+iron+oxide+nanoparticles+in+Listeria+innocua+Dps+%28DNA-binding+protein+from+starved+cells%29%3A+a+study+with+the+wild-type+protein+and+a+catalytic+centre+mutant%5BTitle%5D)+AND+%22Chemistry%22%5BJournal%5D)">Synthesis of iron oxide nanoparticles in Listeria innocua Dps (DNA-binding protein from starved cells): a study with the wild-type protein and a catalytic centre mutant.</a> Chemistry. 16 (2), 709-717 (2010).</li>
<li>Ceci, P., Ilari, A., Falvo, E., Chiancone, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Dps+protein+of+Agrobacterium+tumefaciens+does+not+bind+to+DNA+but+protects+it+toward+oxidative+cleavage%3A+x-ray+crystal+structure%2C+iron+binding%2C+and+hydroxyl-radical+scavenging+properties%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">The Dps protein of Agrobacterium tumefaciens does not bind to DNA but protects it toward oxidative cleavage: x-ray crystal structure, iron binding, and hydroxyl-radical scavenging properties.</a> The Journal of Biological Chemistry. 278 (22), 20319-20326 (2003).</li>
<li>Su, M., Cavallo, S., Stefanini, S., Chiancone, E., Chasteen, N. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+so-called+Listeria+innocua+ferritin+is+a+Dps+protein.+Iron+incorporation%2C+detoxification%2C+and+DNA+protection+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">The so-called Listeria innocua ferritin is a Dps protein. Iron incorporation, detoxification, and DNA protection properties.</a> Biochemistry. 44 (15), 5572-5578 (2005).</li>
<li>Kumar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effects+of+Koelreuteria+paniculata+Laxm.+on+oxidative+stress+and+hydrogen+peroxide-induced+DNA+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Phytopharmacology%22%5BJournal%5D)">Protective effects of Koelreuteria paniculata Laxm. on oxidative stress and hydrogen peroxide-induced DNA damage.</a> Phytopharmacology. 1 (5), 177-189 (2011).</li>
<li>Stinefelt, B., Leonard, S. S., Blemings, K. P., Shi, X., Klandorf, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Free+radical+scavenging%2C+DNA+protection%2C+and+inhibition+of+lipid+peroxidation+mediated+by+uric+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Clinical+and+Laboratory+Science%22%5BJournal%5D)">Free radical scavenging, DNA protection, and inhibition of lipid peroxidation mediated by uric acid.</a> Annals of Clinical and Laboratory Science. 35 (1), 37-45 (2005).</li>
<li>Lopez-Gomollon, S., Sevilla, E., Bes, M. T., Peleato, M. L., Fillat, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+insights+into+the+role+of+Fur+proteins%3A+FurB+%28All2473%29+from+Anabaena+protects+DNA+and+increases+cell+survival+under+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22The+Biochemical+Journal%22%5BJournal%5D)">New insights into the role of Fur proteins: FurB (All2473) from Anabaena protects DNA and increases cell survival under oxidative stress.</a> The Biochemical Journal. 418 (1), 201-207 (2009).</li>
<li>Ebrahimi, K. H., Hagedoorn, P. L., Hagen, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+and+stimulation+of+formation+of+the+ferroxidase+center+and+the+iron+core+in+Pyrococcus+furiosus+ferritin%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Inorganic+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Inhibition and stimulation of formation of the ferroxidase center and the iron core in Pyrococcus furiosus ferritin.</a> Journal of Biological Inorganic Chemistry. 15 (8), 1243-1253 (2010).</li>
<li>Smith, F. E., Herbert, J., Gaudin, J., Hennessy, D. J., Reid, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serum+iron+determination+using+ferene+triazine%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Serum iron determination using ferene triazine.</a> Clinical Biochemistry. 17 (5), 306-310 (1984).</li>
</ol>

No tenemos nada que revelar.

El proceso de purificación de la AD que se describe en este artículo es muy robusto. Pureza ha sido consistentemente alto (&gt; 99%), sin otras proteínas aparecen en geles de SDS-PAGE como bandas visibles. A pesar de esto, algunos lotes de AD purificadas parecen tener una actividad nucleasa, como se evidencia por la degradación parcial de ADN cuando se incubó con concentraciones muy altas de AD. Esto podría indicar la presencia de DNases gran actividad a bajas concentraciones que no fuimos capaces de eliminar a través d...

Los organismos aeróbicos deben enfrentarse constantemente con especies reactivas de oxígeno que pueden dañar su ADN, así como otras macromoléculas biológicas cruciales. Una herramienta potente para contrarrestar los efectos tóxicos de daño oxidativo es la proteína de unión al ADN de las células de hambre (DPS). Desde su descubrimiento en 1992 del hambre E. coli cultura 1, AD se ha identificado en más de 300 especies de bacterias y arqueobacterias 2. Regulación al alza masiva de AD durante la fase estacionaria la convierte en la más alta expresión de proteínas nucleoid asociada de E. coli bajo condiciones de hambre 3, 4. Además, DPS ha sido demostrado para preservar tanto la viabilidad bacteriana y la integridad del ADN durante muchas diversas tensiones, entre ellos el hambre, alta concentración de hierro, exposición a la luz UV, choque térmico, y el estrés oxidativo 5, 6. Estructuralmente, DPS libre asociados a un complejo homo-oligómero estable de 12 monómeros, which montar en una cáscara hueco esférico. El ~ 4,5 nm en toda la cavidad interna es accesible para el disolvente a través de poros que permiten el paso de pequeñas moléculas de 7 exterior, y que es capaz de secuestrar metales mineralizados tales como hierro 8. El efecto protector de la AD se deriva de sus varias actividades bioquímicas, que incluyen ADN no específico de unión 1, la actividad ferroxidasa, y almacenamiento de hierro 8. Estudio detallado de las actividades bioquímicas beneficiosos de AD requiere primero su purificación. AD purificación es un procedimiento elaborado, como AD deben estar separados no sólo a partir de otras proteínas, sino también de cualquier ADN unido 7. Nuestro proceso de purificación optimizado utiliza muchas técnicas comunes, que consiste en dos columnas de intercambio iónico y un paso de precipitación con sulfato de amonio. Se necesitan varios cambios de tampón, como AD altamente concentrados pueden precipitar fuera de la solución en condiciones de poca sal. Una vez que la proteína AD ha sido purificada, Que puede aplicarse a ensayos que miden directamente su actividad ferroxidasa 8, la estequiometría de unión a ADN 9, y los mecanismos de fijación de hierro 10. Dps purificada también tiene otras aplicaciones potenciales. La estructura esférica hueca estable de AD se ha utilizado como andamio para el almacenamiento de partículas hidrófobas dentro de la cavidad proteína 11 e incluso como una cámara de reacción para sintetizar nuevas nanopartículas magnéticas 12. La capacidad protectora de AD para mediar los daños debidos a las especies reactivas de oxígeno puede ser clara y demostrada directamente mediante el ensayo de protección de DNA 13, 14. En este procedimiento in vitro, especies de radicales se producen cuando el hierro cataliza H 2 O 2 a través de la degradación química de Fenton. Estos radicales dañan directamente el ADN presente en la reacción y pueden degradar completamente a altas concentraciones. Dos actividades principales Dps pueden tanto contrarrestar directamente los efectos de Fenten la producción de radicales mediada. AD reduce la concentración de hierro catalítico a través de la mineralización, consumiendo el peróxido de hidrógeno disponible en el proceso. Además, AD unión al ADN potencialmente pueden protegerlo físicamente del daño de los radicales y lo condensa en un volumen más pequeño, con menos superficie reactiva. La combinación de estas dos propiedades hace que el ensayo de protección de ADN muy adecuado para el propósito de medir la actividad protectora AD. El ensayo de protección de ADN es muy versátil y se puede utilizar para una variedad de aplicaciones más allá de AD caracterización. Daño de los radicales es una forma común de estrés en las células, y muchas proteínas y productos químicos diferentes se utilizan para contrarrestarlo. El principio general del ensayo, el uso de la integridad del ADN como un marcador para el daño de los radicales, se puede utilizar en combinación con casi cualquier reacción de radicales-productora o agente de contrarresto. Entre otros, el ensayo ha sido utilizado con éxito para determinar las propiedades anti-oxidantesde K. Extracto paniculata para su uso en la industria alimentaria 15, para caracterizar los efectos del ácido úrico en el daño hidroxilo mediación 16, y para obtener nuevos conocimientos sobre la función de la piel de la transcripción proteínas reguladoras 17. A pesar de los numerosos usos del ensayo en los trabajos publicados, se encontró que eran necesarios muchos optimización y solución de problemas, lo que hace que la configuración del ensayo por primera vez un proceso innecesariamente laborioso para muchos investigadores. El protocolo que presentamos en este artículo tiene como objetivo eliminar esta barrera para la entrada.

<table><tbody><tr><td>BL21(DE3)Células competentes pLysS</td><td>Promega</td><td>L1195</td><td></td></tr><tr><td>pET-17b DNA</td><td>EMD-Millipore</td><td>69663-3</td><td></td></tr><tr><td>LB caldo en polvo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3022</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilina sal sódica</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A0166</td><td></td></tr><tr><td>Cloranfenicol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C0378</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I6758</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>BDH</td><td>441476L</td><td></td></tr><tr><td>Hidróxido de potasio</td><td>Merck</td><td>105033</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de sodio</td><td>VWR</td><td>443824T</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9884</td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de proteasa III</td><td>EMD-MILLIPORE</td><td>539134</td><td></td></tr><tr><td>DEAE-Sepharose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DFF100</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de amonio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4418</td><td></td></tr><tr><td>PD-10 Columnas de desalinización</td><td>GE Healthcare LS</td><td>17-0851-01</td><td></td></tr><tr><td>SP-Sepharose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S1799</td><td></td></tr><tr><td>Amicon Ultra Centr. Filtro (10K MWCO)</td><td>Millipore</td><td>UFC901024</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato ferroso heptahidratado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F8048</td><td></td></tr><tr><td>Solución de peróxido de hidrógeno</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>216763</td><td></td></tr><tr><td>MOPS</td><td>Calbiochem Calbiochem</td><td>475898</td><td></td></tr><tr><td>solución SDS</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0418</td><td></td></tr><tr><td>Bromuro de etidio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E1510</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora estática</td><td>Hettich</td><td>INE500</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora de agitación </td><td>New Brunswick Sc.</td><td>Inova 44</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga refrigerada</td><td>Beckman Coulter</td><td>Avanti J-E</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de sobremesa</td><td>Eppendorf</td><td>5424</td><td></td></tr><tr><td>Disruptor de celdas</td><td>Constant Systems Ltd.</td><td>TS2/40/AA/AA</td><td></td></tr><tr><td>Purificador FPLC</td><td>General Electric</td><td>AKTA</td><td></td></tr><tr><td>Viales herméticos</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-08918-85</td><td></td></tr><tr><td>Agujas de jeringa</td><td>BD</td><td>305128</td><td></td></tr><tr><td>Pipetas</td><td>Eppendorf</td><td>Z683779-1EA, Z683795-1EA</td><td></td></tr></tbody></table>

la aplicación de un<em&gt; in vitro</em&gt; dna ensayo de protección de visualizar estrés mediación propiedades de la proteína dps

Application of an In vitro DNA Protection Assay to Visualize Stress Mediation Properties of the Dps Protein

El estrés oxidativo es un subproducto inevitable de la vida aeróbica. El oxígeno molecular es esencial para el metabolismo terrestre, sino que también participa en muchas reacciones perjudiciales dentro de organismos vivos. La combinación de metabolismo aeróbico y el hierro, que es otro compuesto vital para la vida, es suficiente para producir radicales a través de la química de Fenton y degradar los componentes celulares. La degradación del ADN es sin duda el proceso más dañino que implica radicales intracelulares, como la reparación del ADN está lejos de ser trivial. El ensayo presentado en este artículo ofrece una técnica cuantitativa para medir y visualizar el efecto de las moléculas y enzimas en el daño del ADN mediada por radicales. El ensayo de protección de ADN es una herramienta sencilla, rápida y robusta para la caracterización in vitro de las propiedades protectoras de las proteínas o productos químicos. Se supone la exposición de ADN a una reacción oxidativa perjudicial y la adición de concentraciones variables del compuesto de interés. La reducción o el aumento de daño en el ADN como una función de la concentración de compuesto a continuación, se visualizaron mediante electroforesis en gel. En este artículo se demuestra la técnica del ensayo de protección de ADN mediante la medición de las propiedades protectoras de la proteína de unión al ADN de las células de hambre (DPS). DPS es un mini-ferritina que es utilizado por más de 300 especies de bacterias para combatir poderosamente estresores ambientales. Aquí presentamos el protocolo de purificación AD y las condiciones de ensayo optimizados para evaluar la protección del ADN por AD.

El proceso de purificación de AD descritos aquí es muy reproducible. AD purificación de acuerdo con el protocolo descrito, usando 2 l de E. cultura coli como punto de partida, típicamente darán 2,5 ml de proteína que contiene AD 12 a concentraciones entre 5 y 12 mM. Tiempos de inducción más largos (4 horas) parecen reducir esta variabilidad. Pureza proteína es constantemente por encima de 99%, como se evidencia por SDS-PAGE geles (Figura 1). El nivel de contaminación de ADN ...

La proteína de unión al ADN de las células de hambre (DPS) desempeña un papel crucial en la lucha contra el estrés bacteriano. Este artículo aborda la purificación de<em&gt; E. coli</em&gt; AD y el protocolo para un<em&gt; In vitro</em&gt; Ensayo que demuestra la protección AD-mediada de ADN de la degradación por las especies reactivas de oxígeno.

La aplicación de un<em&gt; In vitro</em&gt; DNA ensayo de protección de visualizar Estrés Mediación propiedades de la proteína Dps

Oxidative stress is an unavoidable byproduct of  aerobic life.  Molecular oxygen is  essential for terrestrial metabolism, but it also takes part in many ...

El objetivo general del siguiente experimento consiste en ensayar in vitro el efecto protector de la proteína DPS mediante la visualización de la reducción del daño en el ADN mediado por radicales, resultado de la actividad de DPS. Esto se logra primero purificando DPS a partir de células de e coli, utilizando varias columnas de intercambio iónico y precipitación con sulfato de amonio. Como segundo paso, se añade DPS purificado al ADN, lo que permite la formación de un complejo A-D-P-S-D-N-A debido a las propiedades de unión no específica al ADN de la proteína. A continuación, se añaden al sistema soluciones de hierro férrico y peróxido de hidrógeno con el fin de producir radicales hidroxilo mediante la química de Fenton y, de este modo, dañar el ADN.Los resultados obtenidos muestran una reducción del daño en el ADN debido a la presencia de DPS, basada en la cuantificación de bandas de ADN no dañadas en geles de agarosa tras la electroforesis. Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades con la preparación de los reactivos. Esto provoca reacciones indeseadas, como la formación de precipitados de hierro férrico o la descomposición espontánea del peróxido de hidrógeno.Aunque este método proporciona información sobre la actividad protectora de DPS frente al estrés oxidativo, también puede aplicarse para cuantificar los efectos de otras proteínas y sustancias químicas sobre la degradación del ADN. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la química oxidativa, como determinar las propiedades antioxidantes de extractos celulares para su uso en la industria alimentaria. Un paso esencial inicial para el ensayo de protección del ADN es obtener la proteína DPS con alta pureza.Para comenzar el procedimiento de expresión y purificación de DPS, transforme una cepa de E. coli deficiente en proteasa con un vector pet en el cual se ha clonado la secuencia codificante de la proteína DPS. Inocule dos matraces de un litro de medio LB que contenga antibióticos apropiados con 10 mililitros cada uno de un cultivo nocturno crecido a partir de una colonia aislada de células transformadas, y crezca a 37 grados Celsius con agitación hasta alcanzar una DO 600 de aproximadamente 0,6.Cuando las células hayan alcanzado la densidad óptica deseada, induzca la expresión de DPS añadiendo IPTG hasta una concentración de 0,3 milimolar e incube a 37 grados Celsius durante tres a cuatro horas con agitación. Recoleccione las células por centrifugación a 6.000 G durante 15 minutos. Suspenda los pellets celulares en 7,5 mililitros de tampón DEAE por litro de cultivo celular inducido y añada una mezcla de inhibidores de proteasas a la suspensión celular combinada. Para prevenir la degradación de la TPS sobreexpresada, prepare un extracto libre de células utilizando una prensa de French.La prensa francesa con 20 mililitros de tampón DEAE A y luego se rompe la muestra dos veces a 20 KPSI. Centrifugar el lisado a 30.000 ×g durante 35 minutos a cuatro grados Celsius. Para eliminar partículas insolubles, guardar el sobrenadante y cargar el extracto libre de células en una columna DEAE SRO SEAL seis B de 30 mililitros que se haya equilibrado previamente con tampón DEAE A, comenzando a recoger el flujo de salida. Una vez que la señal de OD a 280 nm comience a aumentar por encima del valor basal, lavar la columna con tampón DEAE A hasta que el valor de OD a 280 nm regrese al basal, mientras se continúa recolectando el flujo de salida.El flujo que atraviesa debe contener la mayor parte de la proteína DPS libre de ADN unido; lave la columna con tampón B al 100 %. Este eluato contiene complejos D-P-S-ADN así como otras proteínas y puede descartarse. El siguiente paso consiste en eliminar proteínas contaminantes adicionales mediante precipitación con sulfato de amonio, lo cual generalmente se lleva a cabo en la cámara fría.Después de determinar el volumen del flujo combinado, agregue lentamente sulfato de amonio en grano fino y seco hasta alcanzar una saturación del 62 % durante un período de 10 a 20 minutos a cuatro grados Celsius, mientras se agita. Elimine adecuadamente las proteínas precipitadas mediante centrifugación a 20.000 ×g durante 30 minutos a cuatro grados Celsius. Guarde cuidadosamente el sobrenadante.Añada 227 miligramos adicionales de sulfato de amonio por mililitro de sobrenadante para alcanzar una saturación del 94 % y agite durante 20 a 30 minutos. Para asegurar una equilibración completa de los precipitados de TPS a esta alta concentración de sal, recoja el DPS mediante centrifugación a 20 000 ×g durante 30 minutos a cuatro grados Celsius. Re_suspenda el botón que contiene el DPS en tampón de suspensión Resus y ajuste el volumen de la muestra a 2,5 mililitros.Elimine el sulfato de amonio mediante intercambio de tampón utilizando una columna de filtración en gel PD 10 cuyo lecho de gel se ha equilibrado con 25 mililitros de tampón de suspensión Resus. Aplique 2,5 mililitros de la muestra DPS en la parte superior de la columna PD 10 y permita que se asiente; deseche el flujo inicial. Recupere el DPS eluyendo con 3,5 mililitros de tampón de suspensión Resus y centrifugue.La muestra intercambiada con tampón se centrifugó a 16.000 ×g durante 10 minutos a cuatro grados Celsius. Para eliminar cualquier componente insoluble, diluya la muestra con seis a 10 mililitros de tampón de dilución para asegurar que la concentración de sal sea lo suficientemente baja para DPS. Para unir la muestra a la columna SP SPHEROS, cárguela sobre una columna de flujo rápido SP spheros de 30 mililitros que haya sido equilibrada con tampón SP.Un lavado con tampón SP A hasta que la traza de OD 280 regrese a la línea base y deseche el flujo que atraviesa. Aplique un gradiente lineal de 150 mililitros desde 0 hasta 100% del tampón B mientras recoge fracciones de dos mililitros. El DPS eluirá en un pico agudo alrededor del 50% B, aunque es posible una variación de 10%. Verifique las fracciones elucianas en busca de contaminación con ADN midiendo la relación de OD 260 a OD 280. Utilizando un espectrofotómetro, la relación generalmente debe ser de aproximadamente 0,7 cuando las fracciones elucianas se separan en un gel SDS-PAGE al 15 %. El gel debe mostrar únicamente una banda a aproximadamente 19 kilodaltons.Mezcle las fracciones de DPS tras concentrar e intercambiar el DPS en un tampón de almacenamiento. Mediante una unidad de filtro centrífugo, alícuote el DPS purificado y congélelo en nitrógeno líquido para su almacenamiento a menos 80 grados Celsius. El ensayo de protección genética consta de múltiples reactivos y esquemas complejos de patógenos.La preparación cuidadosa de los reactivos y el control preciso del tiempo son requisitos absolutos para la reproducibilidad. Se recomienda el uso de una mesa de pipeteo para llevar un registro adecuado de los pasos y volúmenes durante este procedimiento. Mida 30 mililitros de agua en un frasco hermético para eliminar el oxígeno de la solución.Empuje el agua con nitrógeno durante 10 minutos utilizando dos agujas de jeringa, una dentro del líquido y otra por encima. Añada 0,0168 gramos de sulfato ferroso heptahidratado al agua para obtener una solución stock de dos milimoles. Cierre el vial y purifique con nitrógeno durante cinco minutos adicionales.Luego mezcle. La solución debe estar clara; si se detecta cualquier indicio de color amarillo, prepare una nueva solución de hierro. Prepare una solución de peróxido de hidrógeno de 100 milimolares y manténgala en hielo, protegiéndola de la luz debido a su descomposición espontánea.Utilice esta solución de peróxido de hidrógeno solo durante aproximadamente una o dos horas después de su preparación. Siga un eloqua de DPS purificado rápidamente en un baño de agua a temperatura ambiente y mantenga en hielo la centrifugación durante 10 segundos a 4.000 GS en una centrífuga pico de mesa para precipitar los agregados tras la centrifugación. Mida la concentración utilizando un espectrofotómetro, luego diluya el ADN lineal a partir de un stock de alta concentración usando tampón de reacción 12 x para obtener una concentración de 100 nanogramos por microlitro; pipetee suficiente agua en los tubos de PCR para que el volumen final de la reacción sea de 12 microlitros.A continuación, prepare una muestra stock de ADN mezclado con DPS de modo que la concentración final de DPS sea de tres micromoles; pipete la mezcla de ADN-DPS en los tubos de PCR. Los tubos de control solo reciben ADN e incúberelos durante 15 minutos a temperatura ambiente para permitir que el DPS se una al ADN. Añada suficiente solución de sulfato ferroso dos milimolar para alcanzar la concentración deseada, agregue rápidamente un microlitro de la solución de peróxido de hidrógeno cien milimolar hasta alcanzar una concentración final de diez milimoles e incúberelos a temperatura ambiente durante cinco minutos.Para permitir que ocurra la reacción de degradación mediada por Fenton, agregue un microlitro de la mezcla de SDS al 20 % e incube a 85 grados Celsius durante cinco minutos para interrumpir los complejos D-P-S-D-N-A; el SDS desestabiliza el complejo DPS-DNA y evita desplazamientos inesperados en el gel para el ADN, lo que mejora la facilidad de cuantificación. A continuación, incube en hielo durante un minuto y luego agregue el colorante de carga y cargue en un gel de agarosa para electroforesis. Tiña el ADN usando bromuro de atherium después de la electroforesis, en lugar de antes de ella. Esto evita que el SDS interfiera con la distribución del bromuro de atherium en el gel.Los pasos intermedios de la purificación de DPS analizados mediante electroforesis SDS se muestran aquí. La banda uno es el extracto libre de células. La banda dos es el flujo que atravesó la columna DEAE SPHEROS.La banda tres corresponde al EIT de la columna DEAE. La banda cuatro es el sobrenadante de la precipitación con sulfato de amonio al 60 %. La banda cinco es la muestra de DPS tras la precipitación con sulfato de amonio al 90 % y el intercambio de tampón mediante columna PD 10.Y la calle seis es la fracción pura de DPS agrupada. Después de la proteína de la columna de esferosomas SP. Los marcadores de peso molecular están en la calle siete.Los porcentajes en la parte inferior de cada carril indican la pureza de DPS determinada mediante software de cuantificación de imágenes. El proceso de purificación para DPS aquí descrito es muy reproducible y la pureza de la proteína es consistentemente superior al 99 %. No aparecen otras proteínas en geles SDS-PAGE como bandas visibles. El DPS purificado puede utilizarse en un ensayo de protección del ADN en el cual el hierro cataliza la degradación del peróxido de hidrógeno mediante la química de Fenton y produce especies radicales que dañan directamente el ADN presente en la reacción; en esta figura se muestran resultados representativos.Todas las bandas contienen 100 nanogramos de ADN lineal de cinco kilobases; la banda uno contiene solo ADN, la banda dos contiene ADN con un milimolar de peróxido de hidrógeno, y la banda tres contiene ADN con un milimolar de peróxido de hidrógeno y 166 micromolares de sulfato ferroso. Sin embargo, el ADN ha sido degradado. Las bandas cuatro a ocho contienen ADN con tres micromolares de DPSD demer, un milimolar de peróxido de hidrógeno y concentraciones crecientes de hierro de izquierda a derecha.Que DPS media en la protección del ADN frente a la degradación oxidativa es evidente a partir de la comparación entre las bandas tres y cinco. También es evidente un aumento general en la degradación del ADN con concentraciones crecientes de hierro. Los resultados obtenidos mediante el ensayo de protección del ADN pueden cuantificarse mediante el uso de software de procesamiento de imágenes, como ImageQuant.Este gráfico muestra el resultado de esta cuantificación promediado sobre tres ensayos. Las barras de error indican el alto nivel general de reproducibilidad obtenido. Una vez dominado.Esta técnica puede realizarse en aproximadamente cuatro horas para hasta 40 muestras, lo que permite caracterizar muchas condiciones diferentes en paralelo. Al realizar este procedimiento, es importante recordar preparar los reactivos con precisión y cronometrar cada paso tan exactamente como sea posible. Dado que el ensayo es bastante sensible a los tiempos de incubación, después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo producir proteína DPS de alta pureza y caracterizarla en un ensayo in vitro para determinar su actividad en la protección del ADN frente a la degradación por especies reactivas de oxígeno.

application-an-vitro-dna-protection-assay-to-visualize-stress

Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

La célula permeable reticulante DSP [ditiobis (propionato de succinimidilo)] estabiliza interacciones transitoria e...

El aislamiento de lábil Multi-complejos de proteínas por In vivo Control Celular entrecruzamiento y Inmuno-cromatografía de afinidad magnética

Este protocolo describe un método para visualizar un ADN de doble hebra proteína rotura de señalización activada en respuesta al daño del ADN, así como su localización durante la mitosis.

De dos y tres dimensiones imágenes de células vivas de las proteínas de respuesta al daño del ADN

Resistencia al estrés es una de las señas de identidad de la longevidad y es conocido por ser gobernado genéticamente. Aquí, hemos desarrollado un método de alto rendimiento imparcial para la detección de mutaciones que confieren resistencia al estrés en células madre embrionarias con el que desarrollan modelos de ratón para estudios de longevidad.

Enfoque genético adelante para descubrir Estrés Los genes de resistencia en ratones - Una pantalla de alto rendimiento en células madre embrionarias

Presentamos un plan estratégico y un protocolo para identificar variantes genéticas no codificantes que afectan la unión al ADN del factor de transcripción (TF). Se proporciona un protocolo experimental detallado para el análisis del ensayo de cambio de movilidad electroforética (EMSA) y el ensayo de precipitación de afinidad del ADN (DAPA) de la unión al ADN TF dependiente del genotipo.

La detección de funcional no codificante-variantes genéticas Uso de movilidad electroforética Shift ensayo (EMSA) y el ADN afinidad Precipitación Ensayo (DAPA)

Se describe aquí un protocolo optimizado de ensayos fluorescentes cambio de movilidad electroforética (FEMSA) utilizando purificados Sox-2 proteínas, junto con sondas fluorescentes infrarrojos marcado tinte de ADN como un estudio de caso para hacer frente a una importante cuestión biológica.

Un protocolo optimizado para el ensayo de cambio de movilidad electroforética utilizando oligonucleótidos marcados con colorante fluorescente infrarrojo

Los láseres se utilizan con frecuencia en los estudios de la respuesta celular al daño del ADN. Sin embargo, que generan lesiones cuya distancia, la frecuencia y las colisiones con las horquillas de replicación están raramente caracterizado. Aquí se describe un método que permite la determinación de estos parámetros con láser localizado entrecruzamientos entre cadenas.

El análisis de moléculas individuales de láser localizadas psoraleno aductos

El objetivo de este protocolo es cuantificar la reparación de reticulaciones de ADN-proteína definido en ADN plásmido. Plásmidos lesionados son transfectados en líneas celulares mamíferos receptores y bajo peso molecular cosechada en múltiples puntos de tiempo después la transfección. Cinética de reparación del ADN se cuantificó usando extensión primer filamento específico seguido por qPCR.

Una prueba Simple, rápida y cuantitativa a medida reparación de vínculos cruzados de proteínas DNA en plásmidos Transfected en las células de mamífero

Aquí, caracterizamos las respuestas de estrés proteotóxico celular en el nematodo C. elegans midiendo la activación de los reporteros transcripcionales fluorescentes y diciendo sensibilidad al estrés fisiológico.

Mediciones de las respuestas fisiológicas de estrés en C. Elegans

El presente protocolo destaca un método modificado para detectar y cuantificar los enlaces cruzados ADN-proteína (DPCs) y sus modificaciones postraduccionales (PTMs), incluyendo la ubiquitilación, la SUMOilación y la ADP-ribosilación inducida por inhibidores de la topoisomerasa y por formaldehído, permitiendo así el estudio de la formación y reparación de DPCs y sus PTMs.

Detección cuantitativa de enlaces cruzados ADN-proteína y sus modificaciones postraduccionales

MSH2, MSH6 es responsable de iniciar la reparación de errores de replicación del ADN. Aquí se presenta un enfoque cinética transitoria hacia la comprensión de cómo funciona esta proteína crítica. El informe pone de manifiesto de flujo detenido experimentos para medir la unión de ADN, acoplado y la cinética de la ATPasa subyacente MSH2, MSH6 mecanismo de acción de reparación del ADN.

Aplicación de métodos de flujo detenido Cinética para investigar el mecanismo de acción de una proteína de reparación del ADN

Aprende a purificar la proteína Dps de E. coli y evaluar su efecto protector del ADN contra daño oxidativo mediante electroforesis. Este protocolo permite visualizar la reducción de lesiones causadas por especies reactivas de oxígeno.

La aplicación de un

Explorar más videos