Name: La transducción adenoviral de células T CD4 + naïve a estudiar la diferenciación Treg (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 33 s
Description: Aprende a usar la transducción adenoviral para expresar genes en células T CD4 naïve antes de inducir su diferenciación a células T reguladoras. Este método permite manipular la expresión génica sin afectar la viabilidad celular ni el potencial diferenciador.

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Los autores desean agradecer a Lirui Du para construir el vector pCAGAdDU y Oliver Gorka para la prestación del protocolo de fijación.

1. La clonación de un gen de interés en un vector de entrada <ol><li> Clonar el gen de interés en un vector de entrada. Amplificación por PCR del gen seguido por ligación de extremos romos en un vector de la topoisomerasa-acoplado (por ejemplo pENTR / D-TOPO) o la enzima de restricción mediada por clonación puede ser usada para este procedimiento. </li></ol> 2. Transferencia del gen de interés en la pCAGAdDu Destino vectorial <ol><li> La transferencia del gen de interés a partir del vector de entrada en el vector de destino por LR recombinación (por ejemplo, puerta de enlace LR Clonase II mezcla de enzimas). Esto creará el vector de expresión adenoviral (Figura 1). </li><li> Alineado de 10 ug del vector de expresión adenoviral en una digestión de restricción PacI, precipitar el ADN y se resuspende en agua a una concentración de 3 g por 100 l. Linealización libera las repeticiones invertidas virales (ITR), que son necesarios para la replicación y encapsidación de la VDNA iral en partículas virales. </li></ol> 3. Generación del lisado de virus primaria <ol><li> Semilla 1 x 10 5 células HEK293A en 2 ml de medio de cultivo celular (DMEM, FBS al 10%, 5% PenStrep) en un pocillo de una placa de 6 pocillos y se incuban las células durante 6 - 14 horas a 37 ° C en un 10% CO 2 incubadora para permitir que se adhieran. Las células deben ser entonces en aproximadamente 50% de confluencia. </li><li> La lipofección: Transferencia de 6 l de reactivo jetPEI en 94 l de 50 mM de NaCl, agitar brevemente. Añadir la solución mixta a 100 l vector de adenovirus linealizado mientras agitación e incubar esta mezcla de transfección durante 15 - 30 min a temperatura ambiente. </li></ol> Realice todos los pasos siguientes en las condiciones de bioseguridad apropiadas para la infección por adenovirus! <ol start="3"><li> Dispensar la solución gota a gota sobre la célula que contiene así HEK293A y se incuban las células a 37 ° C y CO 2 al 10%. Cuando se utiliza un marcador de fluorescencia, evaluar la transfeeficiencia cción visualmente después de 12 a 36 horas utilizando un microscopio de fluorescencia invertido. Añadir 0,5 ml de medio fresco cada 3 días. </li><li> Compruebe cada 2 - 3 días con un microscopio de luz o fluorescencia para efectos citopáticos (CPE), que son áreas con células alargadas y redondeadas que comienzan a desprenderse. Esto es indicativo de la generación eficiente de virus. Tras la aparición de zonas más amplias de la CPE (Figura 3), que se llevará a 24-72 horas antes de que todas las células están infectadas. </li><li> Cuando todas las células muestran signos de ECP, pero antes de que se produce un desprendimiento total de las células, separar las células por pipeteo suave y de transferencia de las células con el sobrenadante (SN, 3 - 5 ml) a un tubo de poliestireno de 15 ml. </li><li> Congelar las células en el SN en hielo seco durante 15 - 20 min y descongelar rápidamente a 37 ° C después de la ruptura de las células. Repita este-y--ciclo de congelación-descongelación (C / TC) dos veces más. Mantenga el lisado de virus de la primaria en hielo para el uso dentro de un día o congelar a -80 ° C para almacenamiento a largo plazo. Cualquier F adicional/ TC reducirá el título del virus por 30 - 50%. </li></ol> 4. Virus Amplification <ol><li> Semilla y crecer células HEK293A a 90% de confluencia en una placa de cultivo de 14 cm de tejido. </li><li> Infectar las células con medio de lisado de virus de la primaria (1.5 - 2,5 ml) y se incuban las células durante al menos 36 horas. Casi todas las células deben ser infectados a continuación, que puede determinarse por microscopía de fluorescencia. Para la re-amplificación de un stock de virus ya amplificada (es decir, más concentrada), HEK293A infectar a una multiplicidad de infección (MOI) de 50 (véase el apartado 6.3). </li><li> Las células deben ser cosechados cuando todos ellos muestran CPE, pero antes de la separación. Con la producción eficiente del virus este estado se alcanza dentro de las 48 horas después de la infección. (Si se tarda hasta una semana, considerar otra ronda de amplificación mediante el aumento de la cantidad de acciones adenovirus utilizado para la infección se ha descrito en el punto 4.2.) </li><li> Separar las células por pipeteo suave y células de transferencia y SN a un tubo de poliestireno de 50 ml. Girar las células hacia abajo a 300 xg durante 10 min a 4 ° C. </li><li> Retire el SN y resuspender el sedimento en un volumen adecuado de medio o SN (aprox. 1 ml). </li><li> Realizar 3 F / CT para romper las células y centrifugar a 800 xg durante 15 min a 4 ° C. Quítese la SN que contiene las partículas de virus (es decir, el lisado de virus concentrado), y alícuota del lisado de virus para almacenarlo a -80 ° C. </li></ol> 5. El título de virus Determinación <ol><li> Semillas 10 5 A549 células por pocillo en 5 pozos de una placa de 12 pocillos en 1 ml de medio y dejar que las células se adhieran durante 6 horas. </li><li> Usar 1 l de adenovirus concentrada (descongelado en hielo) para realizar una dilución en serie en medio (1:5.000, 1:10.000, 1:50.000, 1:100.000) y añadir 10 l por pocillo. Deja un pozo sin infectar para ajustar la compuerta en la citometría de flujo. </li><li> Después de 36 horas, quite la SN, lavar con PBS y las células de desconexión (por ejemplo, mediante tratamiento con tripsina). Para las precauciones de seguridad, se recomienda fijar cells en 100 l de paraformaldehído al 4% en PBS durante 10 min a temperatura ambiente y lavado con PBS una vez. </li><li> Realizar un análisis FACS de la expresión de marcadores infección. Parcela &#39;l de lisado viral aplica&#39; contra el número absoluto de células infectadas (Figura 4). Determinar el intervalo lineal de la infección y calcular el título por ml de virus de la sin diluir de la curva estándar por encima del intervalo lineal con x = 1000 l. </li></ol> 6. T infección de la célula <ol><li> Aislar las células T CD4 naive / reposo de DO11.10 tg; tg CARΔ1 utilizando MACS (T celda de aislamiento Kit II ingenuo CD4 +) o FACS clasificación (CD4 + CD25-CD62L + CD44-). </li><li> Para los experimentos a pequeña escala, una pipeta un volumen apropiado de lisado viral para alcanzar una MOI de 50 en un pocillo de una placa de 96 pocillos de fondo redondo. </li><li> Añadir hasta 10 5 células T 4 x en un volumen final de la infección de 50 l en medio de células T (RPMI 1640, FBS al 10%, 5% PenStrep, 5% NaPyruvate, NEAA 1x, 1x MEM esencialvitamina, 1x L-glutamina, 1:250.000 mercaptoetanol, 10 mM de HEPES). Ejemplo: El Ministerio del Interior de 50 se utilizará para infectar 3 10 5 células T x; el título viral es 3 x 10 9 ml -1 Volumen Virus MOI = x número de células T / título viral = 50 x (3 x 10 5) / (3 x 10 9 ml -1) = 0.005 ml </li></ol> Nota: para la infección del número de células grandes, escala hasta el uso de una MOI de 50 en un volumen infección de 165 l por 10 6 células T ingenuas en un tubo de poliestireno con la taza floja (hasta tp 3 ml por tubo). <ol start="4"><li> Se incuban las células durante 90 minutos a 37 ° C en el 5% de CO 2 incubadora. </li><li> Centrifugar las células a 300 xg durante 5 minutos a temperatura ambiente, quite SN, resuspender en 200 l de PBS. Se centrifuga de nuevo y quitar SN. </li></ol> (Opcional: las células se pueden lavar de nuevo para eliminar el virus de la manera más eficiente) <ol start="6"><li> Resuspender las célulasen 200 l de medio de células T sin anticuerpos estimulantes y sin IL-2 o de otras citoquinas y descanse durante 40 horas a 37 ° C en un 5% de CO 2 incubadora para permitir la expresión del gen de interés antes de la activación. </li></ol> 7. Activación de las células T y la polarización <ol><li> Pipeta un volumen de anti-CD3 y anti-CD28 bolas acoplados a que es igual al número de células (por ejemplo, 4 x 10 5) en una taza pequeña reactivo, añadir el volumen 10 veces mayor de PBS y ponerlos en un imán durante 2 minutos . Retirar el sobrenadante y resuspender las perlas en 200 medio de polarización l (para células T reguladoras: medio de células T + 1 ng / ml de TGF, 100 U / ml de IL-2). </li></ol> Nota: Las células también se pueden activar utilizando placas de cultivo tisular recubiertas con anti-CD28 y anti-CD3 anticuerpos, o de una manera específica del receptor de células T DO11.10 usando irradiados esplenocitos BALB / c pulsadas con péptido antígeno ovoalbúmina 323-339. <ol start="2"><li> Centrifuge la apoyó las células como antes, quitar la Resuspender las células SN y en 200 l de medio de polarización que contiene anti-CD3 y anti-CD28 de anticuerpos acoplados a perlas. Incubar durante 72 horas a 37 ° C en el 5% de CO 2 incubadora sin cambiar medio. </li></ol> 8. T fijación de células y tinción para citometría de flujo <ol><li> Lavar las células: Centrifugar las células a 300 xg durante 5 minutos a temperatura ambiente, quite SN, resuspender en 200 l de PBS. Se centrifuga de nuevo y quitar SN. Realice todas las siguientes etapas de lavado en consecuencia. </li><li> Resuspender las células en 100 l solución de tinción de células muertas puede arreglar y se incuba durante 30 min a 4 ° C. </li><li> Lavar las células, se resuspenden en 100 l de PBS, añadir 100 ml de paraformaldehído al 4% en PBS, incubar 15 min a TA. </li><li> Lavar las células, resuspender en 200 l de metanol enfriado con hielo 70% en PBS y se incuba durante 30 min en hielo. </li></ol> Nota: Las celdas pueden ser tratados a partir de ahora sin precaución biohazard!<ol start="5"><li> Preparar 60 l master-mix de 60 l de PBS + 10 mg / ml Fc-block (anti-FCR3 para bloquear la unión inespecífica). Lavar las células, resuspender en 40 l de PBS + anti-FCR3 e incubar 15 min a TA. </li><li> Añadir 20 l de PBS + anti-FCR3 que contiene 1 g de PE-junto anticuerpo anti-Foxp3, mezclar bien y se incuba a 4 ° C durante la noche. </li><li> Lavar las células dos veces en PBS y analizar las células en un citómetro de flujo. </li></ol>

<ol><li>Lahl, K., Loddenkemper, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+depletion+of+Foxp3%2B+regulatory+T+cells+induces+a+scurfy-like+disease%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Selective depletion of Foxp3+ regulatory T cells induces a scurfy-like disease.</a> The Journal of Experimental Medicine. 204 (1), 57-63 (2007).</li>
<li>Kretschmer, K., Apostolou, I., Hawiger, D., Khazaie, K., Nussenzweig, M. C., von Boehmer, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducing+and+expanding+regulatory+T+cell+populations+by+foreign+antigen%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Inducing and expanding regulatory T cell populations by foreign antigen.</a> Nature Immunology. 6 (12), 1219-1227 (2005).</li>
<li>Zhang, X., Izikson, L., Liu, L., Weiner, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+CD25%28%2B%29CD4%28%2B%29+regulatory+T+cells+by+oral+antigen+administration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology+%28Baltimore%2C+Md%29%22%5BJournal%5D)">Activation of CD25(+)CD4(+) regulatory T cells by oral antigen administration.</a> Journal of Immunology (Baltimore, Md). 167 (8), 4245-4253 (2001).</li>
<li>Josefowicz, S. Z., Niec, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrathymically+generated+regulatory+T+cells+control+mucosal+TH2+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Extrathymically generated regulatory T cells control mucosal TH2 inflammation.</a> Nature. 482 (7385), 395-399 (2012).</li>
<li>Samstein, R. M., Josefowicz, S. Z., Arvey, A., Treuting, P. M., Rudensky, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrathymic+generation+of+regulatory+T+cells+in+placental+mammals+mitigates+maternal-fetal+conflict%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Extrathymic generation of regulatory T cells in placental mammals mitigates maternal-fetal conflict.</a> Cell. 150 (1), 29-38 (2012).</li>
<li>Laurence, A., Amarnath, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STAT3+Transcription+Factor+Promotes+Instability+of+nTreg+Cells+and+Limits+Generation+of+iTreg+Cells+during+Acute+Murine+Graft-versus-Host+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">STAT3 Transcription Factor Promotes Instability of nTreg Cells and Limits Generation of iTreg Cells during Acute Murine Graft-versus-Host Disease.</a> Immunity. 37 (2), 209-222 (2012).</li>
<li>Terabe, M., Berzofsky, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunoregulatory+T+cells+in+tumor+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Immunoregulatory T cells in tumor immunity.</a> Current Opinion in Immunology. 16 (2), 157-162 (2004).</li>
<li>Li, X., Kostareli, E., Suffner, J., Garbi, N., Hämmerling, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+Treg+depletion+induces+T-cell+infiltration+and+rejection+of+large+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Efficient Treg depletion induces T-cell infiltration and rejection of large tumors.</a> European Journal of Immunology. 40 (12), 3325-3335 (2010).</li>
<li>Fontenot, J. D., Gavin, M. A., Rudensky, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foxp3+programs+the+development+and+function+of+CD4%2BCD25%2B+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Foxp3 programs the development and function of CD4+CD25+ regulatory T cells.</a> Nature Immunology. 4 (4), 330-336 (2003).</li>
<li>Hori, S., Nomura, T., Sakaguchi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+regulatory+T+cell+development+by+the+transcription+factor+Foxp3%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Control of regulatory T cell development by the transcription factor Foxp3.</a> Science. 299 (5609), 1057-1061 (2003).</li>
<li>Chen, W., Jin, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+of+Peripheral+CD4%2BCD25-+Naive+T+Cells+to+CD4%2BCD25%2B+Regulatory+T+Cells+by+TGF-%CE%B2+Induction+of+Transcription+Factor+Foxp3%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Conversion of Peripheral CD4+CD25- Naive T Cells to CD4+CD25+ Regulatory T Cells by TGF-β Induction of Transcription Factor Foxp3.</a> The Journal of Experimental Medicine. 198 (12), 1875-1886 (2003).</li>
<li>Xu, W., Lan, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adoptive+transfer+of+induced-treg+cells+effectively+attenuates+murine+airway+allergic+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+ONE%22%5BJournal%5D)">Adoptive transfer of induced-treg cells effectively attenuates murine airway allergic inflammation.</a> PloS ONE. 7 (7), e40314(2012).</li>
<li>Circosta, P., Granziero, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T+cell+receptor+%28TCR%29+gene+transfer+with+lentiviral+vectors+allows+efficient+redirection+of+tumor+specificity+in+naive+and+memory+T+cells+without+prior+stimulation+of+endogenous+TCR%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">T cell receptor (TCR) gene transfer with lentiviral vectors allows efficient redirection of tumor specificity in naive and memory T cells without prior stimulation of endogenous TCR.</a> Human Gene Therapy. 20 (12), 1576-1588 (2009).</li>
<li>Patel, C., Muthuswamy, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+efficiency%2C+Site-specific+Transfection+of+Adherent+Cells+with+siRNA+Using+Microelectrode+Arrays+%28MEA%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">High efficiency, Site-specific Transfection of Adherent Cells with siRNA Using Microelectrode Arrays (MEA).</a> J. Vis. Exp. (67), e4415(2012).</li>
<li>Zhong, S., Malecek, K., Perez-Garcia, A., Krogsgaard, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retroviral+transduction+of+T-cell+receptors+in+mouse+T-cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Retroviral transduction of T-cell receptors in mouse T-cells.</a> J. Vis. Exp. (44), e2307(2010).</li>
<li>Leon, R. P., Hedlund, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenoviral-mediated+gene+transfer+in+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Adenoviral-mediated gene transfer in lymphocytes.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (22), 13159-13164 (1998).</li>
<li>Wan, Y. Y., Leon, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+expression+of+the+coxsackie%2Fadenovirus+receptor+enables+adenoviral-mediated+gene+delivery+in+naive+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Transgenic expression of the coxsackie/adenovirus receptor enables adenoviral-mediated gene delivery in naive T cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (25), 13784-13789 (2000).</li>
<li>Hurez, V., Dzialo-Hatton, R., Oliver, J., Matthews, R. J., Weaver, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+adenovirus-mediated+gene+transfer+into+primary+T+cells+and+thymocytes+in+a+new+coxsackie%2Fadenovirus+receptor+transgenic+model%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Immunology%22%5BJournal%5D)">Efficient adenovirus-mediated gene transfer into primary T cells and thymocytes in a new coxsackie/adenovirus receptor transgenic model.</a> BMC Immunology. 3, 4(2002).</li>
<li>Eitelhuber, A. C., Warth, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dephosphorylation+of+Carma1+by+PP2A+negatively+regulates+T-cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22The+EMBO+Journal%22%5BJournal%5D)">Dephosphorylation of Carma1 by PP2A negatively regulates T-cell activation.</a> The EMBO Journal. 30 (3), 594-605 (2011).</li>
<li>Glasmacher, E., Hoefig, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roquin+binds+inducible+costimulator+mRNA+and+effectors+of+mRNA+decay+to+induce+microRNA-independent+post-transcriptional+repression%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Roquin binds inducible costimulator mRNA and effectors of mRNA decay to induce microRNA-independent post-transcriptional repression.</a> Nature Immunology. 11 (8), 725-733 (2010).</li>
<li>Russell, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Update+on+adenovirus+and+its+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+General+Virology%22%5BJournal%5D)">Update on adenovirus and its vectors.</a> The Journal of General Virology. 81 (Pt. 11), 2573-2604 (2000).</li>
<li>Graham, F. L., Smiley, J., Russell, W. C., Nairn, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+a+Human+Cell+Line+Transformed+by+DNA+from+Human+Adenovirus+Type+5%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+General+Virology%22%5BJournal%5D)">Characteristics of a Human Cell Line Transformed by DNA from Human Adenovirus Type 5.</a> Journal of General Virology. 36 (1), 59-72 (1977).</li>
<li>Landy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic%2C+structural%2C+and+regulatory+aspects+of+lambda+site-specific+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Dynamic, structural, and regulatory aspects of lambda site-specific recombination.</a> Annual Review of Biochemistry. 58, 913-949 (1989).</li>
<li>Bernard, P., Couturier, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+killing+by+the+F+plasmid+CcdB+protein+involves+poisoning+of+DNA-topoisomerase+II+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Cell killing by the F plasmid CcdB protein involves poisoning of DNA-topoisomerase II complexes.</a> Journal of Molecular Biology. 226 (3), 735-745 (1992).</li>
<li>Thai, T. -H., Calado, D. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+the+Germinal+Center+Response+by+MicroRNA-155%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Regulation of the Germinal Center Response by MicroRNA-155.</a> Science. 316 (5824), 604-608 (2007).</li>
<li>Rodriguez, A., Vigorito, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirement+of+bic%2FmicroRNA-155+for+Normal+Immune+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Requirement of bic/microRNA-155 for Normal Immune Function.</a> Science. 316 (5824), 608-611 (2007).</li>
<li>Cobb, B. S., Hertweck, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+Dicer+in+immune+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">A role for Dicer in immune regulation.</a> The Journal of Experimental Medicine. 203 (11), 2519-2527 (2006).</li>
<li>Steiner, D. F., Thomas, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA-29+Regulates+T-Box+Transcription+Factors+and+Interferon-%CE%B3+Production+in+Helper+T+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">MicroRNA-29 Regulates T-Box Transcription Factors and Interferon-γ Production in Helper T Cells.</a> Immunity. , (2011).</li>
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Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Virus Generación y Titulación Para obtener resultados óptimos de transfección, la calidad y la cantidad de vector linealizado parecen más importantes. No se observaron efectos negativos en la producción primaria de lisado de un crecimiento excesivo inicial del cultivo ya que la infección se procederá rápidamente una vez que se produce la producción de virus eficiente. Sin embargo, la producción de virus por las células HEK293A puede verse afectado por las inserciones largas que disminuyen la ef...

Tregs son cruciales para mantener la tolerancia inmunológica y para amortiguar la respuesta inmune rebasamiento. Treg suprimen la activación de células T espectador. En consecuencia, la ablación de células T reguladoras conduce a la autoinmunidad fatal y la autodestrucción impulsado por las células T activadas 1. Desarrollar células T reguladoras en el timo durante la selección negativa de células CD4-positivas precursores sola, pero también puede diferenciar en la periferia de las células T naive CD4 tras la estimulación de antígeno con dosis baja subóptima 1,2 co-estimulación. Tímico células T reguladoras parece suprimir la autoinmunidad tejido contra antígenos propios, mientras que periférica células T reguladoras han sido implicados en el suministro de la tolerancia en el intestino o el pulmón. Estos inducida por células T reguladoras potentemente prevenir la activación de células T tras el reconocimiento de los antígenos extraños en la mucosa, incluyendo antígenos ambientales de los alimentos y el aire, las bacterias comensales, y los alérgenos 3,4. Además, células T reguladoras son cruciales para establecer la tolerancia materna a la fetal péptidos 5 y preventilación de la enfermedad de injerto contra huésped 6. Al mismo tiempo, células T reguladoras también median efectos no deseados mediante la atenuación de la vigilancia inmune de las células tumorales 7,8. La característica más distintiva de células T reguladoras es la expresión del subconjunto-especificando Foxp3 factor de transcripción, un factor de transcripción que contiene el dominio tenedor-cabeza que es necesario y suficiente para conferir función 9,10 Treg. Se sabe que algunas vías de señalización que pueden inducir la expresión de Foxp3. Sin embargo, los procesos moleculares que controlan, regulan o modulan Treg diferenciación en respuesta a la activación del receptor de células T son menos conocidos. Tregs puede ser inducida de manera muy eficaz in vitro a través de la estimulación de las células T ingenuas CD4 con anticuerpos anti-CD3 y anti-CD28 en la presencia de TGF y la IL-2 11. A medida que el Tregs emergentes son funcionales in vivo, la manipulación de moléculas que promueven la diferenciación Treg lleva un enorme potencial para el futuro therapies, por ejemplo, el tratamiento del asma, la enfermedad de Crohn, y el trasplante 11,12. Por el contrario, la modulación terapéutica de las moléculas para bloquear la diferenciación de Treg puede proporcionar beneficio para futuros enfoques de tratamiento combinado de pacientes con tumores. En ensayos de diferenciación in vitro han sido instrumentales para la descripción de los cambios moleculares que están asociados con T diferenciación subconjunto de células. Por el momento, los intentos experimentales para buscar en pantalla o para los productos de genes que controlan la diferenciación de células T se ve obstaculizada por el hecho de que los métodos más comunes de la expresión génica ectópico no en las células T vírgenes. Por ejemplo, la electroporación y la transducción retroviral sólo son eficaces en las células T activadas. En contraste con las expectativas iniciales, la transducción lentiviral, que es normalmente eficaz en las células en reposo, requiere pre-activación de las células T ingenuas por citocinas 13. Además, la transferencia de ADNc o ARNm durante la electroporaciónimplica la despolarización de la membrana plasmática, que a su vez confiere características de activación de células T e incluso puede movilizar Ca 2 + señalización y activar las proteínas NFAT (observaciones no publicadas y ref. 14). Del mismo modo, para la transducción retroviral, las células T vírgenes tienen que activarse para 18 - 40 horas. Durante este tiempo, la ruptura de la membrana nuclear en el curso de la división celular se produce y permite la integración genómica posterior del vector retroviral 15. Estos métodos por lo tanto no son capaces de hacer frente a la temprana regulación molecular de encuentro de células T con el antígeno inicial, que es la fase decisiva de la diferenciación de células T ayudante. Transducción adenoviral es conocido para conferir expresión génica ectópica transitoria en un número de tipos de células humanas que expresan el receptor de adenovirus Coxsackie humano (CAR). Se procede sin requisito para la activación de las células o la progresión del ciclo celular. La expresión en la superficie de CAR es esencial para la fijación del virus y la internalización eficiente, y la expresión transgénica de la versión truncada CARΔ1 bajo un promotor de células T específica fue encontrado para hacer timocitos de ratón y células T susceptibles a la infección adenoviral 16. Es importante destacar que, el transgén no altera desarrollo de los timocitos o en la diferenciación in vitro de células T CD4 + naïve en diferentes subconjuntos (datos no mostrados; 17 ref.). Adenovirus mediada por la transducción de las células T se utilizó anteriormente para la sobreexpresión 17,18 y knock-down enfoques 19,20. Las células T transgénicas pueden purificarse a partir comercialmente disponible DO11.10 tg; CARΔ1 tg (Taconic, Inc. y 17 ref.). Es importante destacar que, transducción adenoviral permite una alta expresión de un gen de interés en células T vírgenes sin inducir signos evidentes de activación. Las células T permanecen ingenua (CD44 baja, CD62L alta) y descanso (CD25 -, CD69 -) después infectien y se puede activar y diferenciado en Treg similares a las células no infectadas. La producción de adenovirus recombinantes se puede lograr después de la transfección de las células con plásmidos HEK293A adenovirales (Figura 1). Estos plásmidos contienen típicamente el genoma del adenovirus tipo 5 humano con genes E1 y E3 eliminados para hacer que los adenovirus recombinantes de replicación incompetente 21. Células HEK293A complementan la deficiencia de replicación, ya que han sido inmortalizados a través de la integración estable de adenovirus cortado 22. Desde vectores adenovirales son grandes (~ 40 kb) y por lo tanto no es apropiado para la enzima de restricción mediada por clonación tradicional, empleamos el sistema de puerta de enlace. El gen de interés se clonó inicialmente en un vector de entrada más pequeña, de la que se pueden transferir fácilmente en el vector adenoviral de destino a través de reacción de recombinación lambda (LR) 23. Hemos construido el vector pCAGAdDumediante la combinación del promotor CAG (promotor de actina de pollo y el potenciador de CMV) con un casete de expresión que contiene sitios LR que flanquean el marcador de selección ccdB procariota 24. Este casete de expresión está fusionado a un sitio de entrada interna del ribosoma (IRES) elemento que permite la coexpresión de la proteína eucariota infección marcador verde fluorescente mejorada (eGFP), que está fusionado a una secuencia que contiene la hormona de crecimiento bovino poli (A)-señal. Elegimos los CAG cis-secuencias reguladoras, ya que se encontró que el promotor de CMV prototípico para ser altamente dependiente de la activación y por lo tanto, desfavorable para la expresión génica en las células T vírgenes. Aquí, proporcionamos un protocolo para la eficiente en la diferenciación de Treg in vitro y un método para transducir células naive T CD4 sin activación (Figura 2). El método permite la expresión génica ectópico o derribar CD4 precedentes diferenciación de las células T en el estado ingenuo. Se permite probar el efecto de un overexpressed gen de interés durante los primeros eventos de señalización a la estimulación TCR inicial hasta el compromiso de T subconjunto de células. Nuestros experimentos de validación también proporcionan la base para establecer la aplicación de adenovirus similar en la diferenciación de otros subconjuntos de células T tales como Th1, Th2, Th9, Th17, Th22, o células Tfh.

<table><tbody><tr><td>Kit de clonación pENTR/D-TOPO</td><td>Invitrogen</td><td>K240020</td><td></td></tr><tr><td>Gateway LR Clonasa II Mezcla de enzimas</td><td>Invitrogen</td><td>11791020</td><td></td></tr><tr><td>PacI</td><td>New England Biolabs</td><td>R057S</td><td></td></tr><tr><td>jetPEI</td><td>Polyplus-transfection</td><td>101-10N</td><td></td></tr><tr><td>HEK293A línea celular</td><td>Invitrogen</td><td>R705-07</td><td></td></tr><tr><td>A549</td><td>ATCC</td><td>CCL-185</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 6 pocillos</td><td>BD Falcon</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>placa de cultivo de tejidos de 14 cm</td><td>Nunc 168381</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BALB/cJ-Tg(DO11.10)10Dlo Tg(CAR&Delta; 1)1Jdgr</td><td>Taconic Farms</td><td>Modelo Nr. 4285</td><td></td></tr><tr><td>Kit de aislamiento de células T CD4+ ingenuas II</td><td>Miltenyi Biotech</td><td>130-094-131</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>41966-052</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>PAN Biotech</td><td>1502-P110704</td><td></td></tr><tr><td>PenStrep</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Lonza</td><td>BE12-167F</td><td></td></tr><tr><td>NaPyruvate</td><td>Lonza</td><td>BE13-115E</td><td></td></tr><tr><td>NEAA 100x</td><td>Lonza</td><td>BE13-114E</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine</td><td>Invitrogen</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>HEPES Solución tampón (1 M)</td><td>Invitrogen</td><td>15630-056</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Mercaptoethanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-7522</td><td></td></tr><tr><td>MEM Mezcla de vitaminas esenciales (100x)</td><td>Lonza</td><td>13-607C</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads Ratón T-Activador CD3/CD28 para la Expansión y Activación Celular</td><td>Invitrogen</td><td>114-56D</td><td></td></tr><tr><td>Recombinante Humano TGF-beta 1</td><td>R& D Systems</td><td>240B</td><td></td></tr><tr><td>Proleukin S (18 x 106IE)</td><td>Novartis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LIVE/DEAD Kit de tinción de células muertas azules fijables</td><td>Invitrogen</td><td>L-23105</td><td></td></tr><tr><td>Ratón BD Fc BlockT</td><td>BD Pharmingen</td><td>553141</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Ratón/Rata Foxp3 PE</td><td>eBioscience</td><td>12-5773-82</td><td></td></tr><tr><td>Mmu-miR-155 Ensayo de microARN TaqMan</td><td>Roche Applied Biosystems</td><td></td><td></td>4427975</tr><tr><td>LightCycler 480 Probes Master</td><td>Roche Applied Biosystems</td><td>04902343001</td><td></td></tr><tr><td>TaqMan Kit de transcripción inversa de microARN</td> Roche <td>Applied Biosystems</td><td>4366596</td><td></td></tr></tbody></table>

la transducción adenoviral de células t cd4 + naïve a estudiar la diferenciación treg

Adenoviral Transduction of Naive CD4 T Cells to Study Treg Differentiation

Las células T reguladoras (Treg) son esenciales para proporcionar la tolerancia inmune a auto, así como a ciertos antígenos extraños. Tregs puede ser generada a partir ingenuas CD4 en las células T in vitro con TCR-y co-estimulación en presencia de TGF y la IL-2. Esto tiene un enorme potencial para las terapias futuras, sin embargo, las moléculas y vías de señalización que la diferenciación de control son en gran parte desconocidos. Las células T primarias se pueden manipular a través de la expresión del gen ectópico, pero los métodos comunes no atacan el estado ingenua más importante de la célula T antes del reconocimiento al antígeno primario. Aquí, ofrecemos un protocolo para expresar genes ectópicos de células T naive CD4 in vitro antes de inducir la diferenciación de Treg. Se aplica la transducción con el adenovirus de replicación deficiente y explica su generación y producción. El adenovirus puede tardar hasta grandes inserciones (hasta 7 kb) y se puede equipar con los promotores para lograr una alta y transitorios Sobreexpresión en las células T. Se transduce eficazmente las células T de ratones ingenuos si expresan un receptor de adenovirus Coxsackie transgénico (CAR). Es importante destacar que, después de la infección las células T permanecen ingenua (CD44 bajo, CD62L alta) y en reposo (CD25 -, CD69 -) y se pueden activar y diferenciarse en células T reguladoras similares a las células no infectadas. Por lo tanto, este método permite la manipulación de la diferenciación de células T CD4 desde sus inicios. Se asegura de que la expresión del gen ectópico ya está en su lugar cuando los eventos de señalización temprana de la estimulación inicial TCR induce cambios celulares que finalmente conducen a la diferenciación de Treg.

Producción Virus Para la generación de altos títulos de virus, el tiempo de cosecha de células HEK293A en la producción de virus primario o amplificación del virus es crucial. Representativos imágenes de contraste de fase fluorescentes y con signos visuales de la producción de virus se muestran en la Figura 3. El CPE se observaron 10 días después de la transfección de células HEK293A con pCAGAdDu vector de control sin inserto. CPE se caracteriza por la aparición de áreas con cé...

Adenoviral la transferencia génica en células T con la expresión transgénica del receptor de adenovirus Coxsackie ingenuo CD4 permite el análisis molecular de la diferenciación de células T reguladoras<em&gt; In vitro</em&gt;.

La transducción adenoviral de células T CD4 + naïve a estudiar la diferenciación Treg

Regulatory T cells (Tregs) are essential to provide immune tolerance to self as well as to certain foreign antigens. Tregs can be generated from naive CD4 ...

Este protocolo proporciona un flujo de trabajo para la producción de partículas adenovirales infecciosas que se utilizan para transducir un gen de interés en células T vírgenes, las cuales, tras la expresión atópica del transgén, se diferencian en células T reguladoras o tregs. Primero, el gen de interés se clona en el vector adenoviral de destino. Luego, el vector se transfiere a la línea celular productora de adenovirus, HC 2 93 A, y se generan partículas adenovirales infecciosas.Los virus resultantes se utilizan para infectar linfocitos T vírgenes de ratones que expresan un transgén del receptor de adenovirus tras la infección. Luego, las células se mantienen en reposo para asegurar la expresión del gen de interés. En los linfocitos T vírgenes, las células se activan en condiciones polarizantes para inducir la diferenciación hacia linfocitos T reguladores (treg).Luego, las células se fijan y se tiñen para el análisis citométrico de flujo. Finalmente, se pueden obtener resultados que muestran la expresión del marcador de diferenciación de linfocitos T reguladores, Fox P tres, y el marcador de infección GFP, los cuales podrían verse influenciados por el gen de interés sobreexpresado. La ventaja principal de esta técnica frente a métodos existentes como la transducción génica por retrovirus es que permite la sobreexpresión de un gen de interés en linfocitos T naïve.Esto da como resultado un alto nivel de sobrexpresión presente en el momento de la activación de las células T. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de las células T reguladoras. Por ejemplo, acerca de la regulación génica postranscripcional que subyace al establecimiento de la identidad de las células T-Rex.Comience este protocolo clonando el gen de interés en un vector de entrada. El gen de interés amplificado por PCR es empalmado sin extremos cohesivos y se une mediante ligadura al vector acoplado a topoisomerasa P enter D topo. Luego, el gen de interés se transfiere mediante recombinación LR al vector destino P kakadu.Contiene los genes adenovirales y un sitio interno de entrada ribosomal o iris, seguido por el marco de lectura abierta de GFP para crear un vector de expresión adenoviral con un marcador de infección. A continuación, 10 microgramos del vector de expresión adenoviral se linealizan. En un PAC uno, el ADN se digiere con enzima de restricción, luego se precipita y se resuspende en agua a una concentración de tres microgramos por 100 microlitros.La linealización libera los extremos repetidos invertidos virales o ITR, que son necesarios para la replicación y encapsulación del ADN viral en partículas virales. Todos los pasos siguientes deben realizarse bajo las condiciones de bioseguridad adecuadas para la infección por adenovirus. Para preparar el vector linealizado para la transfección en cot, transfiera seis microlitros del reactivo jet PEI a 94 microlitros de cloruro de sodio 50 micromolar y vortex.Brevemente, mientras se agita en vórtex, añada la solución mezclada a 100 microlitros de vector adenoviral linealizado. Incube esta mezcla de transfección durante 15 a 30 minutos a temperatura ambiente. A continuación, retire las células HEC 293A cultivadas hasta una confluencia del 50 % en placas de seis pocillos del incubador.Agregue la solución gota a gota en los pocillos que contienen células HEC 2 9 3 A e incube a 37 grados Celsius y 10% de dióxido de carbono. Añada 0,5 mililitros de medio fresco cada tres días, utilizando la expresión de GFP como marcador de infección. Evalúe la eficiencia de transfección visualmente cada dos o tres días mediante un microscopio de fluorescencia invertido, y observe los efectos citopáticos evidenciados por áreas con células agrandadas y redondeadas que comienzan a desprenderse.Esto indica una generación eficiente del virus. Una vez que aparezcan zonas más extensas de efectos citopáticos, todas las células estarán infectadas dentro de las 24 a 72 horas. Cuando todas las células muestren signos de efectos citopáticos, pero antes de que ocurra una desprendimiento generalizado de las células, recójanse las células mediante pipeteo suave y transfiéranse junto con el sobrenadante a un tubo de poliestireno de 15 mililitros.A continuación, para romper las células, congele las suspensiones en hielo seco durante 15 a 20 minutos y luego descongele rápidamente a 37 grados Celsius. Repita este ciclo de congelación y descongelación dos veces más. La suspensión de células rotas se denomina ahora lisado vírico primario.Mantenga todos los lisados virales sobre hielo. Si se van a utilizar dentro de un día o para almacenamiento a largo plazo, congélelos a 80 grados Celsius negativos. Tenga en cuenta que cualquier ciclo adicional de congelación y descongelación reducirá la potencia viral en un 30 a 50 %. Para amplificar el lisado viral primario, infecte células HC 293A cultivadas hasta el 90 % de confluencia en 15 placas de cultivo tisular con la mitad del lisado viral primario e incube durante al menos 36 horas.Después de 36 horas, verifique la infección mediante microscopía de fluorescencia; casi todas las células deben estar infectadas. Una vez que todas las células muestren efectos citopáticos pero sin desprendimiento, recuélctelas mediante pipeteo suave con producción eficiente de virus. Este estado se alcanza dentro de las 48 horas posteriores a la infección; transfiera las células y el sobrenadante a un tubo de poliestireno de 50 mililitros.Centrifugar las células a 300 G durante 10 minutos a cuatro grados Celsius. Tras la centrifugación, eliminar el sobrenadante y resuspender el botón en un volumen adecuado de medio. Un mililitro debería producir una titulación en el rango de 10 a la 10ª por mililitro.Realice tres ciclos de congelación y descongelación como antes para romper las células. Luego, centrifugue a 900 G durante 20 minutos a cuatro grados Celsius. Después de la centrifugación, transfiera cuidadosamente el sobrenadante, que ahora se denomina lisado del virus concentrado, a un tubo criogénico.Realice alícuotas para múltiples infecciones y almacénelas a menos 80 grados Celsius. Finalmente, determine la titulación del virus mediante análisis de fax de la expresión del marcador de infección en células 5 4 9. De acuerdo con las instrucciones del documento adjunto, esta parte del protocolo se realiza utilizando linfocitos T CD cuatro naïve aislados de ratones transgénicos D 1110 car delta uno transgénicos para experimentos a pequeña escala.Agregue un volumen adecuado de lisado viral para alcanzar una MOI de 50 en un pocillo de una placa de fondo redondo de 96 pocillos. Añada hasta cuatro veces 10 a la quinta células T en un volumen final de infección de 50 microlitros por célula T.Medio medio. Este montaje permite enfoques experimentales paralelos. Incubar las células durante 90 minutos a 37 grados Celsius en un incubador con 5% de dióxido de carbono.Tras la incubación, centrifugar las células a 300 G durante cinco minutos a temperatura ambiente; después de la centrifugación, resuspenderlas en 200 microlitros de PBS, centrifugar nuevamente y eliminar el sobrenadante. Resuspender las células en 200 microlitros de medio para linfocitos T sin anticuerpos estimulantes y sin IL-2 u otras citocinas. A continuación, dejar reposar las células durante 40 horas a 37 grados Celsius en un incubador con 5% de dióxido de carbono para permitir la expresión del gen de interés antes de la activación. Para activar y polarizar los linfocitos T, pipetear perlas acopladas a anti-CD3 y anti-CD28 en un vaso pequeño para reactivo. La cantidad de perlas debe ser igual a la cantidad de células, luego diez veces el volumen de PBS, y colocarlas en un imán durante dos minutos.A continuación, retire el sobrenadante y resuspenda. Suspenda las perlas en 200 microlitros de medio polarizante, centrifugue las células reposadas a 300 G durante cinco minutos a temperatura ambiente; tras la centrifugación, retire el sobrenadante y resuspenda las células en 200 microlitros de medio polarizante que contenga perlas conjugadas con anticuerpos. Incube durante 72 horas a 37 grados Celsius en un incubador con 5% de dióxido de carbono, sin cambiar el medio. El protocolo de tinción y fijación se describe brevemente aquí.Primero, las células se lavan con PBS e incubarán con solución fijable para la tinción de células muertas. Tras otro paso de lavado, las células se fijan con paraformaldehído; después de la fijación, las células pueden manipularse sin precauciones de bioseguridad para adenovirus. Luego, las células se lavan nuevamente y se permeabilizan con metanol. Tras otro paso de lavado, las células se incubarán con anti-FCR tres para bloquear la unión no específica.Finalmente, las células se incuban con los anticuerpos anti FCR tres y anti fox P tres acoplado a PE. Existe el riesgo de perder muchas células durante el procedimiento de fijación y tinción debido a los múltiples pasos de lavado para evitar pérdidas. Asegúrese de retirar el sobrenadante inmediatamente después de la centrifugación sin perturbar el botón celular utilizando la punta de una pipeta. Después de que las células hayan sido marcadas, lávese dos veces en PBS y analícese en un citómetro de flujo.Un lector de placas de 96 pocillos en el citómetro de flujo permite realizar la infección, diferenciación, fijación y tinción de linfocitos T en la misma placa de 96 pocillos, proporcionando un flujo de trabajo eficiente para el análisis paralelo de múltiples condiciones, aunque el análisis también puede realizarse en tubos estándar para evaluar el efecto de la infección por adenovirus sobre la viabilidad de los linfocitos T y la diferenciación de linfocitos T reguladores. Linfocitos T naïve purificados de ratones transgénicos DO11.10 y transgénicos para el receptor de células T delta uno fueron infectados con adenovirus de control a diferentes MOI y activados en condiciones que favorecen la polarización hacia linfocitos T reguladores. Las células fijadas y marcadas se analizaron mediante citometría de flujo para evaluar la expresión del marcador de infección.La incorporación de GFP de células muertas y del marcador de diferenciación. FOX P tres, como se muestra aquí. Aumentar la MOI de uno a 50 da como resultado un mayor porcentaje de células infectadas.Aunque ni la viabilidad ni la diferenciación de linfocitos T reguladores se ven afectadas, se determinó si la infección por adenovirus afecta el estado de activación de los linfocitos T. Se analizó mediante citometría de flujo la expresión de marcadores de activación y de reposo en células infectadas y no infectadas, como se observa aquí. La expresión de estos marcadores fue indistinguible entre células infectadas y no infectadas cuando las células se activaron posteriormente en condiciones que favorecen la polarización hacia linfocitos T reguladores.La sobreexpresión de marcadores de activación y la subexpresión de marcadores de linfocitos T naïve fue muy similar en células infectadas y no infectadas consideradas conjuntamente. Estos datos indican que una infección de linfocitos T en estado naïve no interfiere con la activación subsiguiente de los linfocitos T. Para evaluar el nivel de sobreexpresión alcanzado con el protocolo descrito de transducción adenoviral, los linfocitos T naïve fueron infectados con adenovirus que codifican microARN 1 55 o adenovirus de control a una MOI de 50. Las células se mantuvieron en reposo durante 40 horas, se activaron durante 40 horas, o se mantuvieron en reposo durante 40 horas seguido de una activación de 40 horas. Se generó ADNc y la expresión del microARN 1 55 se determinó en relación con ARN sno 202.Mediante PCR cuantitativa, los niveles de sobreexpresión de microARN 1 55 en células T naïve reposadas durante 40 horas coinciden con los niveles de expresión endógenos de microARN 1 55. Tras 40 horas de activación de las células T, la activación de dichas células aún induce la regulación positiva dependiente de la activación del microARN 1 55.Esto demuestra el alto nivel de sobrexpresión en linfocitos T vírgenes mediante adenovirus, además de la expresión inducida de microARN por activación endógena. Una vez dominado, el procedimiento de clonación, generación del virus e infección de linfocitos T puede completarse en cuatro semanas. El virus, una vez generado, puede almacenarse a largo plazo o reamplificarse en tres días.Al realizar este procedimiento, es importante recordar controlar cuidadosamente todos los experimentos con un vector vacío y establecer primero el efecto de la infección por adenovirus en sí sobre el proceso estudiado. Tenga en cuenta que la infección por adenovirus y la sobreexpresión son transitorias y duran aproximadamente entre cinco y siete días.

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Investigación

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Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Se presenta un protocolo para producir antígenos específicos de células T de ratón usando la transducción...

Transducción retroviral de receptores de células T en ratones las células T

Se describe un método para la generación de regulación, la memoria y el ingenuo células T de un donante de sangre humana única. Polarizada Tregs puede ser entonces en comparación con otros subconjuntos en una variedad de aplicaciones genéticas y funcionales con homogeneidad genética, incluyendo un ensayo de supresión también detallan aquí.

La generación de células T reguladoras inducidas de células humanas primarias T vírgenes y de memoria

Con funciones efectoras diferenciadas de otros subconjuntos de células T, las células Th17 se han implicado en el centro de la autoinmunidad inflamatoria. Este protocolo de diferenciación in vitro de Th17 en proporciona un medio para determinar si ingenuas linfocitos T CD4 + pueden diferenciarse en células Th17, y para examinar aún más su papel en la autoinmunidad y la respuesta del huésped.

Aislamiento y diferenciación de Th17 Naïve linfocitos T CD4

+ &gt; 'jove_content'Naïve se polarizan en varios subconjuntos dependiendo del entorno en el momento de la activación.  La diferenciación de los linfocitos T CD4+ naïve a varios subconjuntos efectores se puede lograr in vitro mediante la adición de estímulos del receptor de linfocitos T y señales específicas de citocinas.

Ratón Naïve CD4<sup&gt; +</sup&gt; Aislamiento de células T y<em&gt; In vitro</em&gt; Diferenciación en subconjuntos de células T

Aquí, describimos un protocolo para analizar el fenotipo de células T reguladoras (Treg) aisladas de ratones infectados por el virus de la coriomeningitis linfocítica crónica e ingenua. Además, proporcionamos un proceso para evaluar la actividad supresora de las células Treg.

El análisis fenotípico y funcional de las células reguladoras T activadas Aislado de la coriomeningitis linfocítica crónica por el virus ratones infectados

Muchos sistemas experimentales se han utilizado para entender los mecanismos que regulan el desarrollo de células T y la función en una respuesta inmune. Aquí se describe un enfoque genético usando la transducción retroviral, que es económico, eficiente en tiempo, y lo más importante, muy informativos en la identificación de las vías de regulación.

Retroviral transducción de células T colaboradoras como un enfoque genético para estudiar mecanismos que controlan su diferenciación y función

Este protocolo describe la generación reproducible y el fenotipo de las células T reguladoras inducidas por el hombre (iTregs) a partir de células T CD4 + vírgenes in vitro. Diferentes protocolos de inducción FOXP3 permiten el estudio de los fenotipos iTreg específicos obtenidos con los protocolos respectivos.

Diferenciación in vitro de las células CD4 + humano FOXP3 + células T reguladoras (Induced iTregs) de T naive CD4 + células utilizando un protocolo de TGF-β que contienen

Este protocolo describe la diferenciación de linfocitos T CD4+ naïve en linfocitos Th17 patógenos in vitro. Específicamente, cuando se combina con un enfoque basado en citometría de flujo multiparamétrica, se puede obtener una pureza del 90% de las células Th17 patógenas a partir de células T CD4+ naïve utilizando este método de diferenciación.

Diferenciación in vitro de linfocitos T CD4+ naive en linfocitos Th17 patógenos en ratón

El estudio actual muestra protocolos para evaluar el compromiso del destino temprano de las células TFH específicas del virus y manipular la expresión génica en estas células.

Acceso a la diferenciación temprana de células T CD4+ auxiliares foliculares específicas del virus en ratones infectados con LCMV agudo

Presentamos un protocolo para la transducción retroviral de ARN guía en células T primarias de ratones transgénicos Cas9, proporcionando una alternativa eficiente para la edición de genes en el estudio de la diferenciación Th17.

Segmentación génica retroviral mediada por CRISPR/Cas9 para el estudio de la diferenciación de Th17 in vitro

Aprende a usar la transducción adenoviral para expresar genes en células T CD4 naïve antes de inducir su diferenciación a células T reguladoras. Este método permite manipular la expresión génica sin afectar la viabilidad celular ni el potencial diferenciador.

La transducción adenoviral de células T CD4 + naïve a estudiar la diferenciación Treg

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