Name: Diferencias Evaluación de Capacidad Competitiva de espermatozoides en Drosophila (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: Aprende a evaluar la capacidad competitiva de espermatozoides en Drosophila melanogaster mediante experimentos de doble apareamiento. Este método permite comparar genotipos distintos analizando marcadores genéticos visibles en la progenie.

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Los autores agradecen a NSF (MCB-1157876) para su financiación. También queremos agradecer a Alberto Civetta, John Roote y dos árbitros anónimos por sus comentarios.

Experimentos a pequeña escala se debe realizar para familiarizarse con todo el procedimiento. 1. Recopilación de hembras vírgenes y hombres de Naïve La versión más simple del experimento descrito consta de cuatro tipos de cruces iniciales, que implican la combinación de los adultos: a) w particulares 1118 con el fin de recoger las hembras vírgenes, b) Oregon-R individuos con el fin de recoger los varones referencia ingenuos, c ) P {sw} machos homocigotos y hembras vírgenes de una línea de control que lleva a la organización de tipo salvaje de SDIC el fin de recoger los machos experimentales tratados previamente (tipo I), y d) P {sw} machos homocigotos y SDIC-sw-supresión -llevar a hembras vírgenes con el fin de recoger los machos experimentales no tratados previamente que llevan la deficiencia de NaDCC-sw (Tipo II). <ol><li> Configurar múltiples viales que contienen 8-10 mujeres y 5 hombres cada una. Permitir que las hembras ponenhuevos y transferir los adultos a los nuevos viales cada 3-5 días. Utilice botellas en lugar de viales si es necesario y utilizar siempre los alimentos frescos. El número de viales necesarios dependerá del número de tipos de machos experimentales en estudio y el número de individuos que se estima necesario para detectar diferencias (Tabla 1). Más de 10 hembras por vial podrían resultar en el hacinamiento durante el crecimiento de las larvas, que pueden causar variaciones en la fertilidad de la progenie. Guarde los viales a 25 ° C en una cámara de temperatura controlada. </li><li> Comience a recoger hembras vírgenes y machos ingenuos en los días 11 y 12 de noviembre después de la creación de los cruces iniciales. El período de espera varía en función de la temperatura; inferior resultado temperaturas en el tiempo de desarrollo más largo retraso de la colección de individuos. Otro factor que afecta el tiempo de eclosión es el tipo de medio. Alimentos nutritivos, como medio de harina de maíz, la levadura 29, asegura el correcto desarrollo del adultosistema reproductivo, lo que facilita el apareamiento. Recoger unmated vuela cada 4-6 horas. Al recoger, anestesiar moscas mediante la introducción de CO 2 en el vial, toque las moscas hacia abajo, y el sexo a bajo microscopio estereoscópico (Figura 2). Coloque las moscas deseadas en diferentes viales por sexo y fenotipo y la etiqueta de los viales adecuadamente. </li></ol> Nota 1. Colección rutina comienza en la mañana descartando los adultos que emergieron durante la noche anterior. Recoger las hembras vírgenes y machos ingenuos una o dos veces durante el día. Típicamente, D. los machos alcanzan la madurez sexual melanogaster 8 horas después de la eclosión a 25 ° C 30. Si las moscas se mantuvieron en ciclos de luz / oscuridad 12:12 h, se espera que dos picos de eclosión: durante la primera 1-2 horas después de que la luz se enciende, y durante la 2 horas antes de la luz se apaga. Eclosión ocurre dentro de 24 horas después de la pupa se oscurece. Nota 2. No más de 10 mujeres shía ser puesto en el mismo vial para evitar el hacinamiento. Esto limita también la pérdida de las hembras en el caso de que tengan que ser descartado, porque al menos uno de ellos no es virgen. Nota 3. Con el fin de recoger la cantidad apropiada de hembras vírgenes y machos ingenuos en un corto período de tiempo, las siguientes medidas pueden adoptarse. Configure 15-20 frascos de 1118 w de experimentos con dos tipos de machos experimentales (Tabla 1). Espolvorear ligeramente la superficie de los medios de comunicación y añadir unas pastillas de levadura seca activa para facilitar la oviposición. Traslado padres por lo menos 4 veces en días consecutivos. Para aumentar la superficie disponible para la fase de pupa en cada vial, inserte el papel multi-plegada (7 x 5 cm) durante el 4 º o 5 º día después de que los padres se transfieren a otro vial (Figura 3). Si el número de adultos emergidos de las cruces inicial no es suficiente, esperar unos días más y cobrar individualmenteALS de viales establecidos en diferentes fechas. Plan para llevar a cabo los experimentos durante varios días consecutivos para igualar la carga de trabajo. 2. Experimentos doble de apareamiento La figura 4 muestra las principales etapas implicadas en experimentos de doble acoplamiento realizadas en 14. <ol><li> En la mañana del día 1, creó el primer apareamiento. Los machos Oregon-R son el primero para acoplarse en el ensayo de delito. <ol><li> Usando el aspirador, creado viales conteniendo 10 4 a 5 días de edad, de ojos blancos w hembras vírgenes 1118 y 10 de ojos rojos Oregon-R machos ingenuos cada uno. Dos a tres viales se configuran al día durante 5 días consecutivos. El número de viales necesarios para la creación puede variar en función del número de personas disponibles. Permita que las moscas para aparearse durante 2 horas. </li><li> Descartar Oregon-R machos y colocar cada hembra en un nuevo vial utilizando un aspirador (Figura 5). La identificación del sexo se puede lograr mediante la inspección visual de unos pocosdiferencias morfológicas (Figura 2). Marque cada vial adecuada y dejar a la hembra en el vial durante 2 días (en adelante &quot;v1&quot;). </li></ol></li><li> El día 3, configure el segundo acoplamiento. Selección de los varones y transversales establecidos se debe realizar al azar con el fin de minimizar cualquier sesgo potencial hacia cualquiera de los tipos masculinos experimentales. <ol><li> Dos horas antes de que la luz está apagada, vuelva a transferir a la mujer a un nuevo vial con un aspirador. Marque el nuevo vial adecuada (en lo sucesivo &quot;v2&quot;). </li><li> Introducir tres 5-6-días de edad, machos experimentales del mismo genotipo en v2. </li><li> Repita 2.2.1 y 2.2.2 para cada mujer. </li><li> El día 4, a dos horas justo antes de la luz se activa (es decir, no más de 12 horas después de la 2.2.1), desechar los hombres mediante el aspirador. </li></ol></li><li> En el Día 6, transferir cada hembra de nuevo en otro frasco nuevo. Etiquetar los nuevos viales debidamente (en adelante &quot;v3&quot;). </li><li> El día 10, deseche el 1118 w </sup&gt; hembras. </li><li> Examine las progenies en v2 y v3. La primera inspección se lleva a cabo después de 13-15 días después de que se introdujo la hembra en v2 (o V3), por ejemplo, en el día 17 después de la primera hembra oviposición se inició en v2. La segunda inspección se realiza exactamente después de 17 días. Este período de tiempo representa un límite temporal máximo de seguridad que garantiza que no habrá segunda generación en el mismo vial. Dos inspecciones evitar el hacinamiento, facilitando conteo progenie. <ol><li> El día 17, inspeccione v1 y asegurar que hay descendencia de ojos rojos presentes, si no marcar el vial en consecuencia. Presencia de la progenie de ojos blancos indica que la hembra no era virgen en el momento de apareamiento inicial mientras que ninguna progenie indica que el apareamiento con la referencia o los machos experimentales no ocurrir. </li><li> El día 17, lleve a cabo la primera inspección de la v2. Anesthetize surgió progenie en v2 con CO 2 y ordenarlos por color de los ojos y el sexo. Números de progenie Registro engendrados por el primer y segundomachos ond. Figura 6 muestra los fenotipos esperados en la progenie de cada esquema de apareamiento. En este experimento en particular 14, sólo progenie femenina se puede asignar de forma inequívoca como engendrado por la referencia o los machos experimentales y por lo tanto sólo la información de las hijas se puede utilizar para calcular P 2. Si con otros marcadores de la paternidad de la descendencia masculina se puede asignar de forma inequívoca, los recuentos de progenie de ambos sexos pueden ser utilizados en los cálculos posteriores. Deseche la progenie, pero mantener v2 de segunda inspección. </li><li> El día 20, proceder como en 2.5.2 con la progenie de reciente creación en v2 y luego desechar el vial. </li><li> En el Día 20, inspeccionar la progenie surgido en v3 por primera vez y siga el paso 2.5.2. </li><li> El día 23, proceder como en 2.5.3 con la progenie de reciente creación en v3. </li></ol></li></ol> Nota 1: Debido al potencial efecto de inflar las puntuaciones de P que el apareamiento múltiple podría tener (2.2.2 y 2.2.3), el apareamientopuede ser limitado a un lapso de tiempo determinado. El marco de tiempo dependerá de la frecuencia de aparearse de nuevo asociado con el genotipo de la hembra y machos usados. La probabilidad de apareamiento múltiple es especialmente reducido durante la noche 11. Nota 2: No añadir pastillas de levadura vivas, ya que esto podría causar problemas debido al potencial de crecimiento excesivo de la levadura cuando el número de moscas adultas es baja. 3. Análisis de Datos <ol><li> Cuenta progenie grabados deben organizarse adecuadamente para facilitar la inspección visual y análisis eficiente con un paquete estadístico adecuado (por ejemplo JMP de SAS Institute) o herramientas gratuitas basadas en la Web (por ejemplo <a href="http://www.vassarstats.net/" target="_blank">http://vassarstats.net/</a> ). </li><li> Capacidad competitiva de esperma. Añadir cuenta de v2 y v3. Las moscas hembras que han dado lugar a ninguna o muy limitada progenie (por ejemplo, &lt;10), fallecido durante el procedimiento, o sólo de éxito inseminaciónted por uno de los dos hombres se consideran como no-informativo y están excluidos de cualquier análisis estadístico posterior (2.5.1 y Tabla 2). Calcular la puntuación P 2 para cada mujer informativo. </li><li> Probar si existen diferencias estadísticamente significativas en los valores de P 2 entre los machos experimentales comparados. Esto puede hacerse usando pruebas no paramétricas (por ejemplo de acero-Dwass) dependiendo de varios factores, incluyendo la asimetría de la distribución de los valores de P 2 y la dependencia entre la varianza y la media paramétrica (HSD de Tukey por ejemplo) o. La transformación angular se aplica comúnmente a proporciones tales como P 2 antes de que el uso de pruebas no paramétricas 31. </li><li> Diferencias de acoplamiento (opcional). Para cada tipo macho experimental, calcular el número de las hembras apareadas por partida doble y los que sólo se apareó con el primer macho (el macho de referencia en el ensayo de ataque y el macho experimental en el densayo efense). Uso de una prueba exacta de Fisher de dos colas (disponible en <a href="http://www.langsrud.com/fisher.htm" target="_blank">http://www.langsrud.com/fisher.htm</a> ), determinar si existen diferencias estadísticamente significativas entre los dos tipos de machos experimentales. </li><li> Tasa de masculinidad (opcional). Para cada hombre experimental, utilice la prueba de chi-cuadrado para determinar si la proporción de sexos en la descendencia de cada hembra se desvía de la proporción esperada de 1:1. </li></ol>

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</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Hemos descrito el diseño experimental para evaluar las diferencias en la contribución relativa de genéticamente distinta D. melanogaster hombres a la progenie en los experimentos de doble acoplamiento controlados 7,8. Esto se ha hecho en el contexto de un factor genético planteado la hipótesis de influir en la capacidad competitiva de esperma y se ha ilustrado en el ensayo de delito aunque se aplica un procedimiento similar al ensayo de defensa (Figura 1). Este diseño experimental pu...

Desde Geoff Parker señaló que la prevalencia de la competencia espermática en los insectos y sus implicaciones evolutivas 2, una oleada de estudios en Drosophila y otras especies han tratado de arrojar algo de luz sobre este fenómeno en muchos niveles diferentes. Algunos ejemplos de las áreas de interés han sido el estudio de la variación de las poblaciones naturales de 9,10, su arquitectura genética subyacente y la relevancia de los factores genéticos 11-14, y su papel en la coevolución entre los sexos 15,16 conducción. En D. hembras melanogaster, la capacidad limitada de los órganos de esperma de almacenamiento especializados, un par de espermateca y el receptáculo seminal 6,17, contribuye a la competencia de los espermatozoides de diferentes machos. Aproximadamente 1.500 espermatozoides se transfieren durante el apareamiento de la hembra, pero sólo ~ 500 pueden alojarse en los órganos mencionados 18,19. En el laboratorio, controlado, doble acoplamiento experimentalciones que implican un hombre de referencia y uno o más machos de interés se han utilizado ampliamente para evaluar la capacidad competitiva de espermatozoides 7,8. Capacidad competitiva de esperma se calcula como la proporción de la progenie engendrado por el macho experimental en los experimentos de doble acoplamiento sobre la progenie total, es decir que a partir de tanto el grupo experimental y los machos de referencia. Capacidad competitiva de esperma comprende dos componentes, cada uno de ellos evaluado en un ensayo separado. En el ensayo de infracción, la capacidad del esperma masculino experimental para desplazar el esperma desde el primer macho, es decir, el macho de referencia, se evalúa. Por el contrario, en el ensayo de defensa, la capacidad del esperma masculino experimental para resistir el desplazamiento o para reducir el éxito de la fertilización de la esperma masculino referencia se evalúa. Dependiendo del tipo de ensayo, la defensa o ataque, la capacidad competitiva de espermatozoides se calcula a través de las puntuaciones de P1 o P2, respectivamente. P1 y P 2 sólo puede tomar valores entre 0 y 1. Los valores intermedios suelen interpretarse como evidencia indirecta de semen mezclado, lo que sugiere una situación fisiológica que implica la competencia de esperma directa. Siguiendo el mismo razonamiento, valores extremos pueden ser interpretados como evidencia de la fuerte diferencial de esperma capacidad competitiva. Los primeros estudios mostraron que P 2 en D. melanogaster es más de 0.8 aumentando a medida que el tiempo transcurrido entre los dos apareamientos alarga 7. Este mismo diseño experimental se ha utilizado en otras especies de Drosophila, P 2 siendo la estadística comúnmente utilizado en los estudios para evaluar la capacidad competitiva de esperma 20. Para la mayoría de las especies, los valores de P 2 de las cepas ensayadas es mayor que 0,6 21. Sin embargo, otros mecanismos no relacionados con la competencia directa entre los espermatozoides de diferentes machos pueden producir resultados idénticos (ver Discusión). Dprogenie istinguishing engendrado por los primeros o segundos machos es posible mediante el uso de marcadores fácilmente identificables. En los primeros estudios, uno de los machos se irradió a dosis subletales de, por ejemplo, rayos-X de tal manera que prácticamente todos los óvulos fertilizados por el esperma irradiado no eclosionó 7. Posteriormente, las mutaciones que alteran la pigmentación de los ojos o la forma del ala han sido los marcadores más utilizados. Ejemplos de los primeros son las mutaciones de peso corporal (marrón) 9, cn (cinabrio) y 22 W (blanco) 23, mientras que la mutación Cy (rizado) 24 se corresponde con el segundo tipo de fenotipos; algunas de estas mutaciones se han combinado en el mismo individuo, por ejemplo, cn peso corporal. En menor medida, alozimas 25 y microsatélites 26,27 con patrones de herencia conocidos también se han utilizado. El diseño experimental para probar las diferencias encapacidad competitiva de esperma se describe aquí sigue esencialmente el de Clark et al. 9. Los resultados derivados de estos experimentos dan información únicamente acerca de la paternidad diferencial de los tipos masculinos experimentales bajo escrutinio. Los ensayos, que también tienen en cuenta las diferencias después de la fertilización en la aptitud 14,28 y técnicas de visualización de esperma 24 permiten a las diferencias en P 1 o P (2) resultados sean interpretados como diferencias en la competencia espermática. La figura 1 resume los fundamentos tanto de la infracción y los ensayos de defensa. Para ilustrar la logística del proceso, un experimento delito lleva a cabo en D. melanogaster 14 se explicará en detalle. Este ensayo delito en particular se utilizó para la prueba de un efecto mensurable de la familia de cadena intermedia dynein esperma específico multigénica (SDIC) de la capacidad competitiva de esperma. Todo el miembros de esta familia multigénica residen en tándem en el cromosoma X. Machos Knockout se generaron mediante la supresión de la agrupación NaDCC. Debido a que el segmento eliminado también incluye el gen esencial ala corta (SW) y el propósito del estudio fue evaluar la relevancia de NaDCC, los machos que llevan la deleción NaDCC-sw fueron rescatados por una copia transgénica de sw (simbolizado como P {sw} , que también llevó a un gen reportero mini-blanco) en el cromosoma 2. Mis ojos se utilizó como un marcador visible para la identificación de paternidad. Todas las moscas estaban en un mutante de fondo blanco con la excepción de los de la cepa Oregon-R, que se utilizaron como referencia los machos.

<table><tbody><tr><td>Tubo de látex ámbar</td><td>VWR</td><td>62996-473</td><td>1/4 pulgada ID, 1/6 pulgada Pared</td></tr><tr><td>1 ml puntas de filtro XL graduadas</td><td>USA Scientific</td><td>1126-7810</td><td>Se puede utilizar cualquier punta de pipeta de 1 ml, pero las puntas semitransparentes y largas son mejores como receptor de moscas. Si se utilizan puntas de filtro, saque y deseche el filtro con una aguja después de recortar el extremo de la punta</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Sigma</td><td>P-7793</td><td></td></tr><tr><td>Tejido</td><td></td><td></td> de malla <td>Fino y liso</td></tr><tr><td>Microscopio estereoscópico</td><td>Leica</td><td>S6D</td><td></td></tr><tr><td>CO2 Tanque</td> de <td>gas aéreo</td><td>CD-50</td><td>Utilice FlyNap (Carolina Biological Supply Company) como alternativa si no se dispone de CO2</td></tr><tr><td>Válvula de pie FlyStuff, sistema completo</td><td>Genesee Scientific</td><td>59-121C</td><td>No es necesario si se utiliza FlyNap</td></tr><tr><td>Viales de plástico</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-109</td><td>Vienen con bandejas de cartón que se pueden reutilizar para contener viales</td></tr><tr><td>Bolas de algodón</td><td>Fisher Scientific</td><td>AS-212</td><td></td></tr><tr><td>Levadura seca activa</td><td>Estrella</td><td></td><td>Roja Se encuentra en la tienda de comestibles</td></tr><tr><td>general Marcadores Sharpie</td><td></td><td></td><td>Se pueden usar diferentes colores para marcar diferentes genotipos</td></tr></tbody></table>

diferencias evaluación de capacidad competitiva de espermatozoides en<em&gt; drosophila</em

Assessing Differences in Sperm Competitive Ability in Drosophila

La competencia entre los machos conespecíficos para fertilizar los óvulos es uno de los mecanismos de selección sexual, es decir, selección que opera en maximizar el número de eventos de apareamiento con éxito en lugar de sobre la supervivencia y la maximización de la viabilidad 1. La competencia de esperma representa la competencia entre los machos después de copular con la misma hembra 2, en el que sus espermatozoides son coincidentes en el tiempo y el espacio. Este fenómeno se ha informado en varias especies de plantas y animales 3. Por ejemplo, silvestres D. hembras melanogaster por lo general contienen esperma 2-3 machos 4. Los espermatozoides se almacenan en órganos especializados con limitada capacidad de almacenamiento, lo que podría dar lugar a la competencia directa de los espermatozoides de diferentes machos 2,5. Comparando los espermatozoides capacidad competitiva de los diferentes machos de interés (tipos masculinos experimentales) se ha realizado a través de la experimentación de doble acoplamiento controladots en el laboratorio 6,7. En pocas palabras, una sola hembra está expuesto a dos machos diferentes consecutivamente, uno masculino experimental y un macho de referencia cruzada de apareamiento. El mismo esquema de apareamiento es seguido utilizando otros tipos masculinos experimentales, facilitando así la comparación indirecta de la capacidad competitiva de su esperma a través de una referencia común. La fracción de individuos engendrados por los machos experimentales y de referencia se identifica usando marcadores, que permite estimar la capacidad competitiva de espermatozoides usando expresiones matemáticas simples 7,8. Además, la capacidad competitiva de esperma puede ser estimado en dos escenarios diferentes dependiendo de si el macho experimental es segundo o primero para aparearse (delito y ensayo de defensa, respectivamente) 9, que se supone que ser el reflejo de diferentes atributos de competencia. Aquí se describe un método que ayuda a interrogar al papel de los diferentes factores genéticos que supuestamente subyacen tque fenómeno de la capacidad competitiva de esperma en D. melanogaster.

La tabla 2 resume algunas de las características más destacadas de dos experimentos delito (ensayos 1 y 2) en el que D. melanogaster machos experimentales con y sin (Tipo I y II, respectivamente) un grupo funcional NaDCC se comparan 14. Después de tomar en cuenta las diferentes incidencias encontradas con algunas repeticiones, 58-83% de las mujeres resultaron ser de carácter informativo, por lo que los recuentos de paternidad de su progenie se podrían utilizar para el cálcul...

Diferencial espermatozoides capacidad competitiva entre<em&gt; Drosophila</em&gt; Machos con genotipos distintos se pueden determinar a través de experimentos de doble contacto. Cada uno de estos experimentos consiste en uno de los machos de interés y un macho de referencia. Marcadores fácilmente identificables en la progenie permiten la inferencia de la fracción de individuos engendrados por cada macho.

Diferencias Evaluación de Capacidad Competitiva de espermatozoides en<em&gt; Drosophila</em

Competition among conspecific males for fertilizing the ova is one of the mechanisms of sexual selection, i.e. selection that operates on maximizing the ...

El objetivo general del siguiente experimento es evaluar las diferencias en la capacidad competitiva del esperma entre machos de Drosophila melanogaster con genotipos distintos. Esto se logra mediante el seguimiento de marcadores genéticos visibles que identifican la paternidad de la descendencia de una hembra apareada con dos machos diferentes. En el ensayo, primero se permite que las hembras se apareen con un macho de referencia y luego con un macho experimental. La fracción de descendencia originada por el macho experimental se determina mediante el análisis del color de los ojos de la progenie.Los resultados comparan indirectamente la capacidad competitiva del esperma de los machos experimentales mediante su rendimiento relativo frente al esperma de los machos de referencia. Estos métodos pueden ayudar a responder preguntas clave en genética y evolución dentro del campo de la biología, como evaluar el impacto de un factor genético sobre la capacidad competitiva del SPR, demostrando que este procedimiento será realizado por S. y estudiantes de pregrado de nuestro laboratorio. El siguiente protocolo ilustra el análisis de un factor genético denominado sic, que presumiblemente codifica una proteína implicada en la motilidad espermática.Comience preparando de 15 a 20 viales, agregando a cada uno. Espolvoree ligeramente el medio con algunos gránulos secos de levadura activa. Para facilitar la posición.Siempre utilice medios nutritivos frescos, como un medio de maíz y levadura. Luego, agregue de ocho a 10 hembras, pero no más, y cinco machos a cada vial. La identificación del sexo se puede lograr mediante la inspección visual de algunas diferencias morfológicas.Almacene los viales a 25 grados Celsius y transfiera los adultos a nuevos viales al menos cada tres a cinco días. Transfiera los adultos cada dos días para obtener el mejor resultado. Mantenga los viales que contienen huevos para cosechar la descendencia.La cantidad de viales necesarios dependerá del número de tipos masculinos experimentales en el estudio y de la cantidad estimada de individuos necesarios para obtener potencia estadística. Cuatro o cinco días después de que los padres sean transferidos fuera de un vial, aumente la superficie disponible para la pupación en el vial insertando un papel plegado varias veces en el medio. Examine los viales en busca de pupas oscurecidas cuando sean visibles.Esas moscas emergerán dentro de las 24 horas, entre 11 y 12 días después de que se estableció por primera vez el cruce. Comience a recolectar hembras vírgenes y machos ingenuos de estos frascos. Por la mañana, deseche las moscas que emergieron durante la noche.Luego, una o dos veces al día con intervalos de cuatro a seis horas, recolecte moscas de los viales, anestesie las moscas introduciendo dióxido de carbono en el vial. A continuación, golpee suavemente el vial para hacer que las moscas bajen y sepárelas por sexo bajo el microscopio estereoscópico. Coloque las moscas deseadas en viales diferentes según su sexo y fenotipo, y etiquete los viales adecuadamente.No cargue los viales con más de 10 individuos potencialmente. Mantenga hembras vírgenes en un ciclo de luz oscuridad de 12 a 12 para regular su momento de oclusión a su favor. Los momentos pico de oclusión ocurren una a dos horas después del amanecer subjetivo, y dos horas antes de que se apaguen las luces.Existen dos versiones de este experimento. Se denominan ensayo de ataque y ensayo de defensa. Esta sección describe cómo realizar el ensayo de ataque en la mañana del primer día, y cómo preparar la primera apareamiento utilizando un aspirador.Un aspirador consiste en un trozo de tubo conectado a la punta de una pipeta con una barrera que mantiene las moscas aspiradas dentro de la punta. El orificio de la punta se ensancha. Para las moscas, prepare viales que contengan diez hembras vírgenes de cuatro o cinco días de edad.Con 10 machos de referencia naïve, prepare dos o tres frascos de este tipo diariamente durante cinco días consecutivos. Para cada frasco, permita que las moscas se apareen durante dos horas, luego deseche los machos de referencia y transfiera cada hembra a un nuevo frasco utilizando un aspirador; etiquete cada frasco como V1 y deje a la hembra en el frasco durante dos días. Al tercer día, realice el segundo apareamiento con machos naïve del otro genotipo para cada hembra.Dos horas antes del anochecer subjetivo, utilice un aspirador para transferir a la hembra a un nuevo frasco con machos experimentales del mismo genotipo, de tres, cinco o seis días de edad. Etiquete los frascos con el genotipo de los machos y etiquete el nuevo frasco como V dos. La mañana siguiente es el día cuatro.Dos horas antes del amanecer subjetivo de las moscas, deseche los machos utilizando el aspirador. En el sexto día, transfiera cada hembra a otro vial nuevo etiquetado como V tres. En el décimo día, deseche las hembras el día 17.Inspeccione los frascos V uno de la descendencia. Determine si la hembra era vírgen o no en el momento del apareamiento con el macho de referencia y si se apareó con el macho de referencia. El mismo día, inspeccione la descendencia de los frascos V dos golpeando a las moscas con dióxido de carbono.Clasifíquelos según el color de los ojos y el sexo. Luego registre el número de descendencia engendrada por el primer y segundo macho. En este experimento, solo la descendencia hembra puede asignarse inequívocamente a los machos de referencia o experimentales.En otros experimentos, se podrían utilizar diferentes marcadores genéticos para determinar también la paternidad de la descendencia macho. Descarte la descendencia inspeccionada, pero conserve los frascos V2 durante un momento. En el control del día 20, registre la paternidad de la descendencia de los frascos V2 por segunda vez y realice la primera inspección de la descendencia emergida de los frascos V3.Luego, tres días después, el día 23, inspeccione la descendencia emergida en V tres. Nuevamente, las cuentas de descendencia registradas deben organizarse adecuadamente para facilitar la inspección visual y permitir un análisis eficiente con un paquete estadístico para cada hembra, así como las cuentas provenientes de V dos y V tres. Para calcular el número total de descendencia fecundada por el macho de referencia y el macho experimental, calcule la puntuación P dos para cada hembra como la proporción de descendencia fecundada por el macho experimental respecto a la descendencia de ambos machos, el experimental y el de referencia.Algunas hembras deben excluirse del análisis. Primero, aquellas sin descendencia o con descendencia muy limitada; segundo, las hembras que murieron durante el procedimiento; y tercero, las hembras que solo fueron inseminadas con éxito por uno de los dos machos. Busque diferencias estadísticas en los valores P dos. Entre los tipos experimentales de machos, utilice pruebas paramétricas o no paramétricas según la asimetría de la distribución del valor P dos y la dependencia entre la varianza y la proporción media. Por lo general, los datos no se distribuyen de forma normal. Puede aplicarse la transformación arcoseno, también conocida como transformación angular, a los valores originales de P dos antes de realizar una prueba T de Student o una prueba ANOVA, o simplemente utilice pruebas no paramétricas como la de Wilcoxon en experimentos de dosis-respuesta con *Drosophila melanogaster*.Se utilizaron machos experimentales, uno con y otro sin un grupo ESIC funcional. En total, entre el 58 % y el 83 % de las hembras fueron informativas. Los machos sin un grupo ESIC funcional mostraron puntuaciones P2 significativamente más bajas en comparación con los machos que tenían el grupo esic intacto.Esto indica que el grupo SIC mejora la capacidad competitiva del esperma. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo realizar experimentos de apareamiento doble, para que pueda detectar las diferencias en la capacidad competitiva del esperma entre machos mutantes y machos control.

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