Name: Derribo Gene a gran escala en C. elegans Utilizar bibliotecas de alimentación de dsRNA para generar sólidas fenotipos de pérdida de función (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-25T19:00:00.000+00:00
Duration: 18 min 38 s
Description: Aprende a realizar cribados de ARN de interferencia a gran escala en C. elegans utilizando bibliotecas de alimentación bacterianas de dsRNA. Este protocolo mejora la eficiencia y reproducibilidad del silenciamiento génico para estudios funcionales.

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Este trabajo fue apoyado por fondos de los Institutos Nacionales de Salud MH097163. Algunas cepas fueron proporcionados por la CGC, que es financiado por la Oficina de NIH de los programas de infraestructuras de investigación (P40-OD010440).

<ol><li>Mello, C. C., Conte, D. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revealing+the+world+of+RNA+interference%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Revealing the world of RNA interference.</a> Nature. 431 (7006), 338-342 (2004).</li>
<li>Fire, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+and+specific+genetic+interference+by+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 391 (6669), 806-811 (1998).</li>
<li>Tabara, H., Grishok, A., Mello, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNAi+in+C.+elegans%3A+soaking+in+the+genome+sequence%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RNAi in C. elegans: soaking in the genome sequence.</a> Science. 282 (5388), 430-431 (1998).</li>
<li>Timmons, L., Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+interference+by+ingested+dsRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Specific interference by ingested dsRNA.</a> Nature. 395, 854(1998).</li>
<li>Jose, A. M., Smith, J. J., Hunter, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Export+of+RNA+silencing+from+C.+elegans+tissues+does+not+require+the+RNA+channel+SID-1%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Export of RNA silencing from C. elegans tissues does not require the RNA channel SID-1.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 106, 2283-2288 (2009).</li>
<li>Kamath, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+functional+analysis+of+the+Caenorhabditis+elegans+genome+using+RNAi%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi.</a> Nature. 421 (6920), 231-237 (2003).</li>
<li>Rual, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+improving+Caenorhabditis+elegans+phenome+mapping+with+an+ORFeome-based+RNAi+library%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Toward improving Caenorhabditis elegans phenome mapping with an ORFeome-based RNAi library.</a> Genome Res. 14, 2162-2168 (2004).</li>
<li>Simmer, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+RNAi+of+C.+elegans+using+the+hypersensitive+rrf-3+strain+reveals+novel+gene+functions%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Genome-wide RNAi of C. elegans using the hypersensitive rrf-3 strain reveals novel gene functions.</a> PLoS Biol. 1, 77-84 (2003).</li>
<li>Lee, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+systematic+RNAi+screen+identifies+a+critical+role+for+mitochondria+in+C.+elegans+longevity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">A systematic RNAi screen identifies a critical role for mitochondria in C. elegans longevity.</a> Nat. Genet. 33 (1), 40-48 (2003).</li>
<li>Sieburth, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+analysis+of+genes+required+for+synapse+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Systematic analysis of genes required for synapse structure and function.</a> Nature. 436 (7050), 510-517 (2005).</li>
<li>Kamath, R. S., Martinez-Campos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+specific+RNA-mediated+interference+through+ingested+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Genome Biol. 2 (1), (2001).</li>
<li>Hodgkin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Karyotype%2C+ploidy%2C+and+gene+dosage%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">Karyotype, ploidy, and gene dosage.</a> WormBook. , 1-9 (2005).</li>
<li>Kennedy, S., Wang, D., Ruvkun, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+conserved+siRNA-degrading+RNase+negatively+regulates+RNA+interference+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A conserved siRNA-degrading RNase negatively regulates RNA interference in C. elegans.</a> Nature. 427 (6975), 645-649 (2004).</li>
<li>Wang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+misexpression+of+germline+P+granules+and+enhanced+RNA+interference+in+retinoblastoma+pathway+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Somatic misexpression of germline P granules and enhanced RNA interference in retinoblastoma pathway mutants.</a> Nature. 436 (7050), 593-597 (2005).</li>
<li>Lackner, M. R., Nurrish, S. J., Kaplan, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Facilitation+of+synaptic+transmission+by+EGL-30+Gqalpha+and+EGL-8+PLCbeta%3A+DAG+binding+to+UNC-13+is+required+to+stimulate+acetylcholine+release%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Facilitation of synaptic transmission by EGL-30 Gqalpha and EGL-8 PLCbeta: DAG binding to UNC-13 is required to stimulate acetylcholine release.</a> Neuron. 24 (2), 335-346 (1999).</li>
<li>Bastiani, C. A., Gharib, S., Simon, M. I., Sternberg, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caenorhabditis+elegans+Galphaq+regulates+egg-laying+behavior+via+a+PLCbeta-independent+and+serotonin-dependent+signaling+pathway+and+likely+functions+both+in+the+nervous+system+and+in+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Caenorhabditis elegans Galphaq regulates egg-laying behavior via a PLCbeta-independent and serotonin-dependent signaling pathway and likely functions both in the nervous system and in muscle.</a> Genetics. 165 (4), 1805-1822 (2003).</li>
<li>Lickteig, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+neurotransmitter+vesicles+by+the+homeodomain+protein+UNC-4+and+its+transcriptional+corepressor+UNC-37%2Fgroucho+in+Caenorhabditis+elegans+cholinergic+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Regulation of neurotransmitter vesicles by the homeodomain protein UNC-4 and its transcriptional corepressor UNC-37/groucho in Caenorhabditis elegans cholinergic motor neurons.</a> J. Neurosci. 21 (6), 2001-2014 (2001).</li>
<li>Terami, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+organization%2C+expression%2C+and+analysis+of+the+troponin+C+gene+pat-10+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Genomic organization, expression, and analysis of the troponin C gene pat-10 of Caenorhabditis elegans.</a> J Cell Biol. 146 (1), 193-202 (1999).</li>
<li>Novelli, J., Page, A. P., Hodgkin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+C+terminus+of+collagen+SQT-3+has+complex+and+essential+functions+in+nematode+collagen+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The C terminus of collagen SQT-3 has complex and essential functions in nematode collagen assembly.</a> Genetics. 172 (4), 2253-2267 (2006).</li>
<li>Brundage, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+a+C.+elegans+Gqalpha+gene+disrupt+movement%2C+egg+laying%2C+and+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Mutations in a C. elegans Gqalpha gene disrupt movement, egg laying, and viability.</a> Neuron. 16 (5), 999-1009 (1996).</li>
<li>Gönczy, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+genomic+analysis+of+cell+division+in+C.+elegans+using+RNAi+of+genes+on+chromosome+III%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Functional genomic analysis of cell division in C. elegans using RNAi of genes on chromosome III.</a> Nature. 408 (6810), 331-336 (2000).</li>
<li>Miller, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((elegans+unc-4+gene+encodes+a+homeodomain+protein+that+determines+the+pattern+of+synaptic+input+to+specific+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">elegans unc-4 gene encodes a homeodomain protein that determines the pattern of synaptic input to specific motor neurons.</a> Nature. 355, 841-845 (1992).</li>
<li>White, J. G., Southgate, E., Thomson, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+the+Caenorhabditis+elegans+unc-4+gene+alter+the+synaptic+input+to+ventral+cord+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mutations in the Caenorhabditis elegans unc-4 gene alter the synaptic input to ventral cord motor neurons.</a> Nature. 355, 838-841 (1992).</li>
<li>Johnson, N. M., Behm, C. A., Trowell, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heritable+and+inducible+gene+knockdown+in+C.+elegans+using+Wormgate+and+the+ORFeome%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Heritable and inducible gene knockdown in C. elegans using Wormgate and the ORFeome.</a> Gene. 359, 26-34 (2005).</li>
<li>Wani, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((D1+dopamine+receptor+signaling+is+modulated+by+the+R7+RGS+protein+EAT-16+and+the+R7+binding+protein+RSBP-1+in+Caenoerhabditis+elegans+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">D1 dopamine receptor signaling is modulated by the R7 RGS protein EAT-16 and the R7 binding protein RSBP-1 in Caenoerhabditis elegans motor neurons.</a> PLoS One. 7 (5), e37831(2012).</li>
<li>Beifuss, K. K., Gumienny, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNAi+screening+to+identify+postembryonic+phenotypes+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">RNAi screening to identify postembryonic phenotypes in C. elegans.</a> J. Vis. Exp. (60), e3442(2012).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Hemos descrito un protocolo que utiliza una biblioteca de alimentación dsRNA disponible en el mercado para realizar pantallas de gran escala en C. elegans. Proporcionamos todas las instrucciones para duplicar la biblioteca y para utilizar de manera eficaz. Se demuestra que este enfoque es capaz de identificar genes implicados en diferentes procesos biológicos en diferentes tejidos del animal. Mientras que los fenotipos que describimos aquí son fácilmente observables (UNC, Egl, y Dpy), este protocolo se puede ad...

Históricamente, las pantallas de genética en C. elegans se han realizado mediante el tratamiento de los animales con un mutágeno químico tal como metanosulfonato de etilo para crear mutaciones aleatorias dentro del DNA. Progenie o grandprogeny de animales mutados son entonces aislados que presentan un fenotipo anormal deseado. La mutación responsable de causar el fenotipo se identifica a continuación a través de un procedimiento de asignación de mano de obra intensiva o mediante la secuenciación de todo el genoma del gusano mutante. Hay muchas ventajas a la realización de este tipo de pantallas de mutagénesis química, ya que crean lesiones permanentes en el genoma del gusano que pueden resultar en ambos fenotipos con ganancia de función y la pérdida de la función, pero el procedimiento de asignación es lento y costoso. La interferencia de ARN de doble cadena (dsRNAi) proporciona un medio alternativo para identificar genes implicados en procesos biológicos importantes. En este método, dsRNA a juego la secuencia de codificación de un gen endógeno se introduce en el gusano.El dsRNA se procesa en vivo para generar pequeños RNAs (21-22 nucleótidos) que sirven como guías para encontrar y se unen los ARNm endógenos a juego, la orientación para su destrucción 1. Este procedimiento es relativamente rápido, sino porque dsRNA mRNA objetivos en lugar de ADN, sólo los fenotipos de reducción de la función, cuando se utilice este enfoque. Introducción de ARNbc en un animal se puede lograr mediante la inyección directa de dsRNA 2, empapando animales en dsRNA 3, o por la alimentación de animales bacterias que expresan dsRNA 4. Cada uno de estos métodos de entrega causan efectos sistémicos desmontables como la mayoría de las células del animal expresan SID-1, un canal transmembrana capaz de importar dsRNA 5. Originalmente utilizado como un enfoque de genética inversa para derribar la expresión de genes individuales uno a la vez, el desarrollo de dos bibliotecas de alimentación permite ahora pantallas genéticos a gran escala. Las bibliotecas de dsRNA comercialmente disponibles contienen baclones cterial que representan ya sea el 55% o el 87% de toda la C. elegans genes 6, 7. Por desgracia, las pantallas de alimentación dsRNAi gran escala a menudo resultan en eficiencias desmontables variables 8-10. Mientras que el nivel absoluto de la caída de RNAi no se mide fácilmente, la eficiencia reducida caída observada en pantallas de gran escala debe ser causado por residuales ARNm de genes específicos que escapan a la degradación por RNAi. Esto, a su vez, podría ser un resultado directo de dsRNA pérdida de plásmido a partir de bacterias alimentados a los animales en estas pantallas. Apoyando esta idea, los animales alimentados con mezclas de bacterias, en el que sólo el 50% de las bacterias expresan dsRNA contra un gen diana, muestran reducido dramáticamente (en su caso) efectos desmontables en comparación con los animales de control alimentados con 11. La extensión de la caída de genes se convierte en una preocupación fundamental al realizar pantallas dsRNAi como la mayoría de los genes en C. elegans son haplosufficient y por lo tanto la expresión de genes que deben reducirse en al menos un 50% to causar la pérdida de la función de los fenotipos 12. Hemos utilizado los protocolos de alimentación previamente publicados para realizar pantallas de gran escala y ha encontrado los mismos efectos derribo variables reportadas por otros 8-10. En la búsqueda de las posibles causas, se encontró que casi el 60% de las bacterias alimentadas a animales en la pantalla había perdido el plásmido dsRNA. Hemos desarrollado un protocolo de la duplicación y el cribado de la biblioteca que reduce drásticamente o elimina la pérdida de plásmido y mejora en gran medida la eficiencia desmontables. Este protocolo es adecuado para la realización de pantallas de gran escala en C. elegans y se puede utilizar para detectar ya sea una de las bibliotecas de dsRNA disponibles comercialmente. Usando este protocolo, nos encontramos con que esencialmente el 100% de las bacterias a los animales alimentados durante la pantalla de retener el plásmido dsRNA-codificación y causa la pérdida robusto y altamente penetrante de fenotipos de función en todos los tejidos examinados.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><fuerte>Reactivo/Material</fuerte></td></tr><tr><td>96 pocillos Placa de fondo plano Falcon </td><td>Fisher Scientific</td><td>353072</td><td></td></tr><tr><td>lámina adhesiva</td> estéril <td>USA Scientific</td><td>2923-0100</td><td></td></tr><tr><td>Nunc omniplate</td><td>Fisher Scientific</td><td>267060</td><td></td></tr><tr><td>2.0 ml de profundidad Polipropileno de 96 pocillos Masterblock</td><td>USA Scientific</td><td>5678-0285</td><td>Tapas esterilizables en autoclave</td></tr><tr><td>para placas de pocillos profundos</td><td>USA Scientific</td><td>5665-6101</td><td></td></tr><tr><td>50 ml combitips</td><td>USA Scientific</td><td>4796-5000</td><td>envueltos individualmente</td></tr><tr><td>Depósito</td><td>USA Scientific</td><td>2977-8500</td><td>autoclavable</td></tr><tr><td>placas de 12 pocillos</td><td>USA Scientific</td><td>CC7682-7512</td><td>envueltos individualmente</td></tr><tr><td>biblioteca de alimentación de dsRNA</td><td>OpenBiosystems</td><td>RCE1181</td><td>tienda -80 &deg; C</td></tr><tr><td>Ampicilina</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1760-5</td><td></td></tr><tr><td>Tetraciclina</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP912-100</td><td></td></tr><tr><td>Carbenicillina</td><td></td><td></td><td>Espere de 2 a 4 semanas para la entrega <a href="http://www.biochemicaldirect.com" target="_blank">www.biochemicaldirect.com</a></td></tr><tr><td>Agar bacteriológico Ultrapuro grado A </td><td>Affymetrix</td><td>10906</td><td>para placas helicoidales</td></tr><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>Rodillo Brayer</td><td>USA Scientific</td><td>9127-2940</td><td></td></tr><tr><td>B&#8211; Replicador KEL de 96 pines</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-450-9</td><td>microagitador esterilizable en autoclave</td></tr><tr><td></td><td>Thomas Scientific</td><td>1231A93</td><td>3 mm orbit</td></tr><tr><td>12 canales pipeta multicanal (0.5-10 &mu; l)</td> <td>Pipeta</td> multicanal de 12 canales USA Scientific <td>7112-0510</td><td></td></tr><tr><td>(30-300 &mu; l)</td> <td>Pipeta manual USA Scientific</td><td>7112-3300</td><td></td></tr><tr><td>Repeater Plus USA</td><td>Scientific</td><td>4026-0201</td><td></td></tr></tbody></table>

derribo gene a gran escala en<em&gt; c. elegans</em&gt; utilizar bibliotecas de alimentación de dsrna para generar sólidas fenotipos de pérdida de función

Large-scale Gene Knockdown in C. elegans Using dsRNA Feeding Libraries to Generate Robust Loss-of-function Phenotypes

ARN de interferencia alimentando gusanos bacterias que expresan dsRNAs ha sido una herramienta útil para evaluar la función de genes en C. elegans. Si bien esta estrategia funciona bien cuando un pequeño número de genes están dirigidos por caída, pantallas de alimentación a gran escala muestran eficiencias variables desmontables, lo que limita su utilidad. Hemos deconstruido protocolos desmontables de RNAi publicados previamente y se encontró que la fuente primaria de la caída reducida puede atribuirse a la pérdida de plásmidos que codifican dsRNA de las bacterias alimentados a los animales. Basándose en estas observaciones, hemos desarrollado un protocolo de alimentación de dsRNA que reduce en gran medida o elimina la pérdida de plásmido para lograr eficiente, de alto rendimiento de la precipitación. Se demuestra que este protocolo producirá robusto, reproducible golpe abajo de C. elegans genes en múltiples tipos de tejidos, incluyendo las neuronas, y permitirán caída eficiente en pantallas de gran escala. Este protocolo utiliza una alimentación de dsRNA disponible comercialmentebiblioteca y describe todos los pasos necesarios para duplicar la biblioteca y realizar pantallas de ARN de doble cadena. El protocolo no requiere el uso de cualquier equipo sofisticado, y por lo tanto puede ser realizada por cualquier C. elegans laboratorio.

Fenotipos desmontables P0 comenzarán a aparecer después de 2-3 días de alimentación de los animales dsRNA expresando bacterias. Algunos fenotipos tempranos incluyen la detención y la letalidad de las larvas y se deben observar en el 2-3% de todos los pozos que alimentan. Estos mismos fenotipos también se observaron en los animales de la generación F1. La presencia de huevos de F1 que no logran salir del cascarón es otro fenotipo F1 común, y juntos, se observará estos tres fenotipos en casi el 10% de todos los pozos en l...

Mientras dsRNA alimentación en C. elegans es una poderosa herramienta para evaluar la función de los genes, los protocolos actuales para pantallas de alimentación a gran escala resultan en eficiencias desmontables variables. Se describe un protocolo mejorado para realizar a gran escala pantallas de alimentación de RNAi que se traduce en caída altamente eficaz y reproducible de la expresión génica.

Derribo Gene a gran escala en<em&gt; C. elegans</em&gt; Utilizar bibliotecas de alimentación de dsRNA para generar sólidas fenotipos de pérdida de función

RNA interference by feeding worms bacteria expressing dsRNAs has been a useful tool to assess gene function in C. elegans. While this strategy works well ...

El objetivo general de este procedimiento es realizar cribados a gran escala de interferencia de ARN en C. elegans utilizando una biblioteca bacteriana de alimentación con ARNds para silenciar la expresión génica. Esto se logra primero cultivando clones bacterianos a partir de una biblioteca de ARNds. Bajo condiciones de crecimiento que eviten la pérdida del plásmido, comience por duplicar cada placa primaria de la biblioteca y luego utilice la placa duplicada de 96 pocillos para generar temporalmente cepas bacterianas en placas de agar omni.Las bacterias de estas placas omni se cultivan durante la noche en cultivo líquido y posteriormente se transfieren a la superficie de las placas de alimentación para gusanos. Cada clon bacteriano de la biblioteca porta un plásmido de codificación D-S-R-N-A único que dirige el silenciamiento de un gen C elgan. El segundo paso consiste en colocar gusanos sincronizados sobre las placas de alimentación.A continuación, los gusanos se cultivan durante varios días en una cámara humedecida a 20 grados Celsius. A medida que los gusanos se alimentan de las bacterias, los ARN de doble cadena inducidos se liberan en el intestino del animal, desde donde se

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Se describe un método sensible para identificar a los reguladores postembrionario de expresión de la proteína y su localización...

RNAi de detección para identificar fenotipos postembrionarios en C. elegans</em

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RNAi es una poderosa herramienta genética disponible para los investigadores de C. elegans. Este video presenta un método para tratar más gusanos con ARNi que la alimentación en placa mediante el uso de condiciones de cultivo líquido.

Alimentación de ARNi en cultivo líquido: un método de alto rendimiento para reducir la expresión génica en C. elegans

Fuente: Anderson, Q. L. et al. Un patosistema de C. elegans de alto rendimiento, alto contenido y base líquida. J. Vis. Exp. (2018)Este video demuestra un método de detección de alto rendimiento que utiliza Caenorhabditis elegans para estudiar las eliminaciones de genes durante las interacciones huésped-patógeno. Describe el procedimiento para preparar gusanos derribados y transferirlos a placas de ensayo para evaluar los efectos de la muerte de gusanos inducida por patógenos.

Un ensayo multipocillo basado en líquido para la detección de derribos de C. elegans

A continuación, presentamos los protocolos para la crianza de un escarabajo intermedia de gérmenes, Dermestes maculatus (D. maculatus) en el laboratorio. También compartimos protocolos para RNAi embrionario y de los padres y los métodos para el análisis de los fenotipos de embriones para estudiar la función de genes en esta especie.

La cría y el doble-stranded RNA mediada gen desmontables en el Hide Escarabajo, Dermestes maculatus

Para estudiar las interacciones chaperona-chaperona y chaperona-sustrato, realizamos pantallas de interacción sintética en Caenorhabditis elegans utilizando interferencia de ARN en combinación con mutaciones leves o sobreexpresión de chaperonas y monitoreamos la disfunción proteica específica del tejido a nivel del organismo.

Uso de Caenorhabditis elegans para detectar interacciones de chaperonas específicas del tejido

La interferencia de ARN es una técnica ampliamente aplicable y poderosa para manipular la expresión génica en etapas específicas del desarrollo. Aquí, describimos los pasos necesarios para implementar esta técnica en el escarabajo de buceo acuático Thermonectus marmoratus,desde la adquisición de secuencias genéticas hasta el derribo de genes que afectan la estructura o el comportamiento.

Interferencia de ARN en los escarabajos acuáticos como una poderosa herramienta para manipular la expresión génica en puntos de tiempo de desarrollo específicos

Caenorhabditis elegans sirve como un excelente sistema modelo con métodos robustos y de bajo costo para estudiar la duración de la salud, la vida útil y la resistencia al estrés.

Encuesta de métodos de bajo costo para medir la esperanza de vida y la salud en Caenorhabditis elegans

A gran escala de pantallas de bibliotecas metagenómicas

Aprende a realizar cribados de ARN de interferencia a gran escala en C. elegans utilizando bibliotecas de alimentación bacterianas de dsRNA. Este protocolo mejora la eficiencia y reproducibilidad del silenciamiento génico para estudios funcionales.

Derribo Gene a gran escala en C. elegans Utilizar bibliotecas de alimentación de dsRNA para generar sólidas fenotipos de pérdida de función (Video) | JoVE Journal

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