Name: Inchworming: A Novel Motor estereotipias en el BTBR T + Itpr3 Tf / J Modelo de ratón de autismo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-05T16:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Aprende a evaluar el comportamiento de inchworming en ratones BTBR mediante una prueba de juego juvenil modificada. Este método permite analizar estereotipias motoras repetitivas relevantes para el estudio del trastorno del espectro autista.

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Los autores agradecen la asistencia y asesoramiento técnico y logístico brindado por Rose Tobias, Younghee Ahn y David N. Ruskin. El trabajo aquí descrito fue financiado por la Fundación de Niños de Alberta el Hospital y el Instituto de Investigación del Hospital de Niños de Alberta.

Todos los procedimientos se llevaron a cabo de acuerdo con el Comité de Cuidado de Animales de Canadá y aprobados por la Universidad de Comité de Cuidado de Animales de Calgary. 1. Preparación de los animales <ol><li> Aislar los ratones durante la noche (12 h) antes de la prueba. Para ello, coloque todo el BTBR y ratones B6 (P35-P40) es necesario para el análisis experimental en jaulas por sí mismos, el día antes de la prueba. </li><li> Coloque los ratones aislados en el comportamiento análisis habitación 30 min antes de la prueba para que los animales se habitúan a la novela medio ambiente. </li></ol> 2. Preparación del equipo <ol><li> Coloque los 30 x 30 cm caja de plexiglás con una tapa extraíble en la sala de pruebas. Coloque la caja sobre una mesa y coloque la cámara de vídeo a un ángulo de 45 ° con respecto a la parte inferior; esta ubicación de la cámara permitir la visualización de todo el piso del recinto y el ratón. Utilice una luz de fondo de infrarrojos para ayudar a minimizar el resplandor de la pared della caja. </li><li> Utilice una cámara de video que posee una función de zoom de alta con capacidades de infrarrojos para optimizar el rodaje en un entorno de bajo lux. Enfoque la cámara en el recinto de la ampliación de la imagen para que los ratones se visualizan a lo largo de toda la caja. </li><li> Cubra todo el piso de la caja con ropa de cama de aserrín (debe ser de aproximadamente 1 pulgada de profundidad). </li></ol> 3 Procedimiento de prueba <ol><li> Coloque un par intra-cepa de ratones (BTBR - BTBR o B6-B6) dentro del recinto de pruebas. </li><li> Apague las luces en la sala de pruebas. </li><li> Inicie la cámara de vídeo para grabar y salir de la habitación. Esto evitará influencia experimentador en el comportamiento de los ratones. Registre la actividad durante 11 minutos. </li><li> Una vez que la grabación haya terminado, vuelva a entrar en la sala de pruebas y volver a los ratones a sus jaulas originales. </li><li> Deseche la ropa de cama de aserrín, lavar el cuadro de la prueba entera con etanol al 70%, y colocar nueva ropa de cama de aserrín en el fondo de la pruebarecinto. </li><li> Repetir todo el procedimiento para el resto de los pares dentro de la mancha y devolver los ratones a sus jaulas originales. </li></ol> Nota: Para verificar la fiabilidad de los datos inchworming, el procedimiento se puede repetir en los días siguientes con diferentes BTBR-BTBR y combinaciones de pares B6-B6. Esto asegurará que el comportamiento observado no depende de la pareja específica en el recinto, pero el individuo inchworming. 4. Análisis de Datos <ol><li> Inchworming se define como el movimiento síncrono hacia adentro y hacia afuera de la de los animales hacia delante y patas traseras, con un mínimo de un co-ocurrencia hacia adentro y luego movimiento hacia el exterior posterior que desplaza efectivamente la ropa de cama. Ver manualmente y marcar cada video dos veces (una para cada ratón) para determinar la duración total, la frecuencia y la latencia para InchWorm en el vídeo 10 min. Manual de puntuación de inchworming duración, la frecuencia y la latencia se debe basar en el seguimientoing definiciones: Duración Inchworming: Se define como el tiempo total de cada ratón gasta dedica a la conducta inchworming. Para puntuar este aspecto de inchworming, utilizar un temporizador que se puede arrancar y parar. Comience a contar cuando el ratón comienza a InchWorm y detener el temporizador cuando el ratón deja de inchworming. Cuando y si el ratón comienza a InchWorm de nuevo, volver a empezar y volver a detener el temporizador. Repetir el arranque y la parada del temporizador para la duración del período de observación de 10 min cada vez los inchworms ratón. Esto generará una duración de la partitura inchworming que es entre las 0:00 y las 10:00 min. Inchworming Frecuencia: se define como el número de veces que el ratón se involucra en el comportamiento inchworming en el período de observación de 10 min. Un conteo solo se entrega cada vez que se inicia el ratón y paradas inchworming. La puntuación de frecuencia inchworming será un número entre 0 y ∞. Latencia para Inchworm: Se define como el tiempo then los pases antes de la primera aparición de inchworming. Inicie el temporizador cuando empieza el video, este será el momento 0:00, y detener el cronómetro cuando los inchworms ratón por primera vez. Si el ratón no muestra el comportamiento inchworming la latencia a InchWorm será 10:00. Al analizar la latencia para InchWorm, se obtendrá una puntuación entre 0:01 y 10:00 min. Los ratones que no logran InchWorm para la duración del período de prueba deben ser retirados de la población de la muestra para asegurar que los resultados son pertinentes para una población de ratones que muestran el comportamiento inchworming. </li> <li> Cálculo de la frecuencia total y la duración de inchworming para cada ratón en el vídeo. Calcular el tiempo requerido para el primer ratón en el par de InchWorm para la latencia a InchWorm para ese par específico de los ratones. Estos parámetros se basan en el trabajo metodológico anterior relacionada con conductas repetitivas de excavación en ratones 6. </li><li> Calcular el promedio de duración, frecuencia,y la latencia para cavar para cada grupo experimental en el análisis (es decir, BTBR vs B6). Utilice un ANOVA o la prueba t para comparar datos entre cepas / grupos experimentales. Nota: Cuando se ha completado el procedimiento en un segundo día, use un ANOVA de medidas repetidas para asegurarse de que no hubo efectos de los ensayos posteriores o efectos de emparejamiento. </li></ol>

<ol><li>McFarlane, H. G., Kusek, G. K., Yan, M., Phoenix, J. L., Bolivar, V. J., Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autism-like+behavioral+phenotypes+in+BTBR+T%2Btf%2FJ+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain%2C+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Autism-like behavioral phenotypes in BTBR T+tf/J mice.</a> Genes, Brain, and Behavior. 7, 152-163 (2008).</li>
<li>Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Designing+mouse+behavioral+tasks+relevant+to+autistic-like+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Mental+Retardation+and+Developmental+Disabilities+Research+Reviews%22%5BJournal%5D)">Designing mouse behavioral tasks relevant to autistic-like behaviors.</a> Mental Retardation and Developmental Disabilities Research Reviews. 10 (4), 248-258 (2004).</li>
<li>Deacon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digging+and+marble+burying+in+mice%3A+simple+methods+for+in+vivo+identification+of+biological+impacts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Digging and marble burying in mice: simple methods for in vivo identification of biological impacts.</a> Nature Protocols. 1 (1), 122-124 (2006).</li>
<li>Thomas, A., Burant, A., Bui, N., Graham, D., Yuva-Paylor, L. A., Paylor, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marble+burying+reflects+a+repetitive+and+perseverative+behavior+more+than+novelty-induced+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Marble burying reflects a repetitive and perseverative behavior more than novelty-induced anxiety.</a> Psychopharmacology. 204, 361-373 (2009).</li>
<li>Dudek, B. C., Adams, N., Boice, R., Abbott, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+influences+on+digging+behaviours+in+mice+%28Mus+musculus%29+in+laboratory+and+seminatural+settings%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Psychology%22%5BJournal%5D)">Genetic influences on digging behaviours in mice (Mus musculus) in laboratory and seminatural settings.</a> Journal of Comparative Psychology. 97 (3), 249-259 (1983).</li>
<li>Webster, D., Williams, M. H., Owens, R., Geiger, V., Dewsbury, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digging+behavior+in+12+taxa+of+muriod+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Learning+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Digging behavior in 12 taxa of muriod rodents.</a> Animal Learning and Behavior. 9 (2), 173-177 (1981).</li>
<li>Pobbe, R. H., Pearson, B. L., Defensor, E., Bolivar, V. J., Blanchard, D. C., Blanchard, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+social+behaviours+of+C57BL%2F6J+versus+BTBR+inbred+mouse+strains+in+the+visible+burrow+system%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Expression of social behaviours of C57BL/6J versus BTBR inbred mouse strains in the visible burrow system.</a> Behavioural Brain Research. 214, 443-449 (2010).</li>
<li>Lewis, M. H., Tanimura, Y., Lee, L., Bodfish, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+restricted+repetitive+behavior+in+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Animal models of restricted repetitive behavior in autism.</a> Behavioural Brain Research. 176, 66-74 (2007).</li>
<li>Silverman, J. L., Yang, M., Lord, C., Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioural+phenotyping+assays+for+mouse+models+of+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews%22%5BJournal%5D)">Behavioural phenotyping assays for mouse models of autism.</a> Nature Reviews. 11, 490-502 (2010).</li>
<li>Deacon, R., Rawlins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+lesions%2C+species-typical+behaviours+and+anxiety+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Hippocampal lesions, species-typical behaviours and anxiety in mice.</a> Behavioural Brain Research. 156, 241-249 (2005).</li>
<li>Pearson, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+and+cognitive+sterotypies+in+the+BTBR+T%2Btf%2FJ+mouse+model+of+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain%2C+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Motor and cognitive sterotypies in the BTBR T+tf/J mouse model of autism.</a> Genes, Brain, and Behavior. 10, 228-235 (2011).</li>
<li>Pobbe, R. H., Defensor, E., Pearson, B. L., Bolivar, V. J., Blanchard, D. C., Blanchard, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((General+and+social+anxiety+in+the+BTBR+T%2B+tf%2FJ+mouse+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">General and social anxiety in the BTBR T+ tf/J mouse strain.</a> Behavioural Brain Research. 216 (1), 446-451 (2011).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Inchworming es una novela medida de comportamiento repetitivo que se puede utilizar para estudiar muchos trastornos que presentan estereotipias tales como TEA. Hay 4 pasos que son de importancia crítica para la generación de datos confiables inchworming del protocolo de interacción social juvenil modificación: 1) el período de aislamiento prolongado es esencial para la prueba inchworming y no debe ser retirado del protocolo o acortar. Este requisito es específico para las pruebas de inchworming en parejas descritas aquí...

Aunque la fisiopatología de los trastornos del espectro autista (TEA) aún no está claro, el diagnóstico depende de la presencia de tres grandes categorías de síntomas: la reciprocidad social anormal, deficiencias en la comunicación y comportamientos repetitivos estereotipados / 1. La mayoría de los modelos de roedores son incapaces de reproducirse de forma simultánea los tres síntomas en un solo animal. Así, los modelos capaces de simular de forma fiable algunos o todos los aspectos de la enfermedad tienen un gran valor para el desarrollo de estrategias preventivas y terapéuticas eficaces. Un modelo que hace mostrar todos los tres aspectos de la CIA es el 1,2 ratón BTBR. En combinación con las vocalizaciones ultrasónicas y ensayos de aproximación social, prueba de la interacción social juvenil se utiliza comúnmente para caracterizar modelos de ratón de ASD pediátrica; estos exámenes miden disminuyó y los comportamientos sociales anormales que representan las características principales de los TEA. Además de la prueba de interacción social juvenil, muchas otraslas pruebas se han utilizado para medir los comportamientos estereotipados en modelos animales de TEA. Por ejemplo, la prueba de enterramiento de esferas, que examina la tendencia de un animal para desplazar material de cama usando el hocico y patas delanteras en el esfuerzo para cubrir un objeto, se pensó para medir comportamientos estereotipados compulsivos que se producen en respuesta a estímulos aversivos 3,4. En consecuencia, las pruebas de excavación se han aplicado para cuantificar este comportamiento repetitivo en modelos animales de ASD y diferentes especies de roedores 3,5-7. Comportamientos de excavación se definen como acciones dirigidas obvias de la hocico o las patas para desplazar materiales de ropa de cama y se han planteado la hipótesis de ser un parámetro sensible de la conducta motora repetitiva 4. Aquí, se presenta un nuevo tipo de excavación, que hemos denominado &quot;inchworming&quot;, en la cepa BTBR de ratones. La caracterización de este nuevo comportamiento puede proporcionar una medida robusta de un comportamiento motor repetitivo que se puede usar para su posterior Vallidación de modelos de roedores tales como TEA, &#39;Enfermedad de Huntington o el comportamiento compulsivo obsesivo 8,9. Definimos &quot;inchworming&quot; como al menos un movimiento síncrono de las partes delanteras y traseras-extremidades hacia el interior seguido por un movimiento síncrono hacia el exterior que conduce al desplazamiento de material de cama. Esto difiere de un comportamiento de excavación típica de muchas maneras. En primer lugar, el comportamiento inchworming se observa por lo general como una combinación de episodios en lugar de un solo evento aislado. En contraste, la excavación puede ocurrir como un solo movimiento coordinado de ya sea la posterior o patas delanteras 3. Además, los movimientos inchworming tienden a ocurrir horizontalmente a través del suelo del recinto en oposición a las posiciones estacionarias que son característicos de la excavación de comportamientos. Por último, el comportamiento inchworming se describe a continuación se presenta con frecuencia en la cepa endogámica BTBR de ratones, pero rara vez se identifica en el control de la cepa B6, mientras que las conductas típicas de excavación son comunes en las cepas B6 y BTBR de ratones <sup&gt; 10. Los procedimientos de ensayo inchworming descritos en este estudio representan modificaciones de un protocolo de interacción social juvenil estándar 1. Habida cuenta de que el enterramiento de mármol, la excavación, y el juego de menores han establecido el valor para medir el comportamiento anormal en modelos de ratón de la CIA, el comportamiento inchworming complementa estas medidas previamente definidas de comportamientos estereotipados. En particular, el comportamiento inchworming proporciona una medida útil de estereotipias de motor de orden inferior que se identifican comúnmente en TEA 8,11. Además, este nuevo procedimiento inchworming puede proporcionar a los investigadores una herramienta adicional de gran valor para el análisis de conductas motoras repetitivas relacionadas con trastornos del desarrollo como TEA.

<table><tbody><tr><td>Caja de plexiglás de 30 cm X 30 cm con tapa</td><td></td><td></td><td>Se puede construir </td></tr><tr><td>Cámara IR </td><td>Survshop (Calgary, Alberta)</td><td>Cámara CCD de Sony DP955V- 30&#8217; Cúpula de blindaje infrarrojo</td><td>Encuentre una cámara con alta resolución y capacidades de zoom</td></tr><tr><td>Supercircuitos DVR</td><td>(Austin, Texas)</td><td>NEGRO DVR de seguridad H.264 de 4 canales de clase empresarial con grabadora de</td><td>DVD Alta capacidad de datos</td></tr><tr><td>Aserrín</td><td></td><td></td><td>Igual que el material de cama </td></tr></tbody></table>

inchworming: a novel motor estereotipias en el btbr<em&gt; t<sup&gt; +</sup&gt; itpr3<sup&gt; tf</sup</em&gt; / j modelo de ratón de autismo

Inchworming: A Novel Motor Stereotypy in the BTBR T+ Itpr3tf/J Mouse Model of Autism

Trastorno del Espectro Autista (TEA) es un trastorno del desarrollo neurológico de comportamiento definido caracterizado por una disminución de la interacción recíproca social, la comunicación anormal, y conductas repetitivas con interés restringido. Como el diagnóstico se basa en criterios clínicos, las modelos de roedores potencialmente relevantes de este trastorno heterogéneo idealmente deben recapitular estos diversos rasgos de comportamiento. El tf BTBR T + Itpr3 / J (BTBR) del ratón es un modelo animal establecido de la ASD, mostrando comportamientos repetitivos como el aumento de la preparación, así como la falta de flexibilidad cognitiva. Con respecto a la interacción social y el interés, la prueba de juego de menores se ha empleado en múltiples modelos de roedores de TEA. Aquí, se muestra que cuando los ratones BTBR son examinados en un recinto de la interacción social juvenil que contiene la ropa de cama de aserrín, muestran un movimiento de excavación sincrónica repetitivo. Este comportamiento motor repetitivo, denominado &quot;inchworming&quot;, fue nombradodebido a la naturaleza de los movimientos estereotipados exhibidos por los ratones mientras se mueve horizontalmente a través de la planta. Ratones Inchworming deben utilizar sus delanteras y traseras-extremidades en sincronía para desplazar a la ropa de cama, la realización de un mínimo de un interior y un movimiento hacia el exterior. Aunque ambos (B6) ratones C56BL/6J BTBR y presentan este comportamiento, los ratones BTBR demuestran una duración significativamente más alta y la frecuencia de inchworming y una disminución de la latencia para iniciar inchworming cuando se coloca en un recinto camas. Llegamos a la conclusión de que este comportamiento recién descrito proporciona una medida de una estereotipia de motor repetitivo que se puede medir fácilmente en modelos animales de TEA.

La versión modificada de la prueba juego juvenil se describe aquí se puede utilizar para observar y analizar el comportamiento de la novela de excavación repetitivo denominado inchworming. Inchworming se exhibe en mucha mayor medida por los ratones BTBR que los controles B6. En una sesión típica de 10 min, los ratones se BTBR mostrar el comportamiento inchworming distinta (sincrónica hacia el interior y hacia el exterior el movimiento de las patas en un esfuerzo para desplazar la ropa de cama de serrín) durante aproxima...

Inchworming es un movimiento sincrónico de excavación muy repetitivas mostrada por BTBR T + ITPR 3TF / J (BTBR) ratones cuando se coloca en una jaula de prueba con suficiente ropa de cama de aserrín. El procedimiento es una modificación del protocolo de interacción social de menores y se utiliza aquí para evaluar estereotipias motoras repetitivas relacionadas con Trastorno del Espectro Autista.

Inchworming: A Novel Motor estereotipias en el BTBR<em&gt; T<sup&gt; +</sup&gt; Itpr3<sup&gt; Tf</sup</em&gt; / J Modelo de ratón de autismo

Autism Spectrum Disorder (ASD) is a behaviorally defined neurodevelopmental disorder characterized by decreased reciprocal social interaction, abnormal ...

El objetivo general de este procedimiento es utilizar una prueba modificada de juego juvenil para observar el comportamiento de desplazamiento tipo oruga, una estereotipia motora novedosa. Esto se logra primero aislado socialmente a cada ratón durante 12 horas antes de que comience la prueba, con alimento y agua independientes. El segundo paso consiste en colocar la cámara de video en un ángulo de 45 grados respecto al recinto de prueba.A continuación, se colocan los ratones aislados en pares dentro del recinto, donde se graban en video durante 11 minutos en la oscuridad. El paso final consiste en analizar el comportamiento de desplazamiento tipo gusano desde el video, para medir la duración, frecuencia y latencia del desplazamiento tipo gusano. En definitiva, este método permite el análisis de neuropatías motoras y puede utilizarse como un indicador para la evaluación de nuevas intervenciones terapéuticas.Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del autismo, como la incidencia y regulación de las estereotipias motoras. La demostración visual de este procedimiento es fundamental para aprender la tarea, ya que el fenotipo conductual es difícil de identificar y el comportamiento de desplazamiento tipo gusano ocurre de forma rápida y repetitiva. Prepare los ratones BTBR y black six para el procedimiento aislándolos en jaulas separadas durante 12 horas durante la noche.Antes de realizar las pruebas, los ratones BTBR utilizados en este estudio muestran todos los aspectos principales de los trastornos del espectro autista presentes en ratones; los ratones black six se utilizan como controles el día del experimento. Coloque los ratones aislados en la sala de análisis conductual durante 30 minutos antes de la prueba para que los animales puedan habituarse al entorno novedoso. Luego, coloque una caja de plexiglás de 30 por 30 centímetros con una tapa extraíble en diagonal sobre la mesa.En la sala de pruebas, ilumine la caja desde atrás utilizando una luz infrarroja para minimizar los reflejos. A continuación, coloque una cámara de video con una función de zoom alta y capacidades infrarrojas en un ángulo de 45 grados, de modo que pueda grabar todo el piso del recinto y al ratón. Enfoque la cámara en el recinto para que los ratones puedan visualizarse en toda la extensión de la caja.Una vez configurada la caja y la cámara, cubra completamente el suelo de la caja con cama de aserrín, de modo que tenga aproximadamente una pulgada de profundidad. Coloque dos ratones BTBR o black six dentro del recinto de prueba al mismo tiempo y apague las luces en la sala de pruebas. Luego, inicie la grabación con la cámara de video y salga de la habitación para evitar experimentar o influir en el comportamiento de los ratones.Registre la actividad durante 11 minutos. Una vez finalizado el registro, vuelva a entrar en la sala de pruebas y devuelva los ratones a sus jaulas originales. Deseche el lecho de aserrín.Lave toda la caja de prueba con etanol al 70%, y luego coloque viruta nueva en el fondo del recinto de prueba, aproximadamente una pulgada de profundidad. Repita todo el procedimiento para los demás pares de cepas de interés y devuelva los ratones a sus jaulas hogar originales. Al finalizar, para verificar la fiabilidad de los datos de inch worming, repita el procedimiento en días posteriores con diferentes combinaciones de pares de cepas de interés BTBR y black six.Esto garantizará que el comportamiento observado no se vea influenciado por un compañero específico en el recinto. Observe y puntúe manualmente cada video dos veces, una vez por cada ratón, para determinar la frecuencia, duración total y latencia al movimiento tipo gusano de seda. En los videos.Analice cada video durante 10 minutos, comenzando en el punto de tres segundos hasta los 10 minutos. Tres segundos. Defina el movimiento tipo gusano como el movimiento sincrónico hacia adentro y hacia afuera de las patas delanteras y traseras del animal, con un mínimo de un movimiento hacia adentro simultáneo y posteriormente uno hacia afuera que desplace efectivamente el material de cama. Puntúe la duración del comportamiento tipo gusano como el tiempo total que cada ratón pasa realizando esta conducta.Para puntuar este aspecto del movimiento de oruga, utilice un cronómetro que pueda iniciarse y detenerse. Comience a contar el tiempo cuando el ratón empiece a moverse como oruga y detenga el cronómetro cuando el ratón se detenga. Si el ratón comienza nuevamente a moverse como oruga, reinicie el cronómetro y continúe hasta que el ratón se detenga otra vez.Esto generará una puntuación de duración del comportamiento de calentamiento en pulgadas que oscila entre cero y 10 minutos. Defina la frecuencia de calentamiento en pulgadas como el número de veces que el ratón realiza el comportamiento de calentamiento en pulgadas. Durante el período de observación de 10 minutos, se otorga un recuento cada vez que el ratón comienza y termina el comportamiento.Desplazamiento tipo gusano. Defina la latencia del desplazamiento tipo gusano como el tiempo que transcurre antes de la primera aparición de este movimiento. Inicie el cronómetro cuando comience el video y deténgalo cuando el ratón se desplace tipo gusano por primera vez.Si el ratón no muestra el comportamiento de desplazamiento tipo gusano, la latencia para el desplazamiento será de 10 minutos. A continuación, calcule la frecuencia total y la duración del desplazamiento tipo gusano para cada ratón en el video. El promedio de los dos ratones se utiliza como la frecuencia total y la duración para ese video.Luego, determine el tiempo requerido para que el primer ratón de la pareja realice el movimiento de oruga de dos pulgadas (latencia de la oruga de dos pulgadas). Para ese par específico de ratones, retire los ratones que no realicen el movimiento de oruga durante todo el período de prueba de la población muestral, para asegurar que los resultados sean pertinentes a una población de ratones que exhiba el comportamiento de desplazamiento en oruga. Calcule la duración promedio, la frecuencia y la latencia para cavar de cada grupo experimental en el análisis, y luego utilice un análisis de varianza (Innova) o pruebas t para comparar los datos entre cepas en los grupos experimentales. Tras el segundo día de pruebas, utilice un análisis de varianza con medidas repetidas (Innova) para asegurar que no hubiera efectos posteriores del ensayo ni efectos del emparejamiento en los datos mostrados.A continuación se muestran la frecuencia promedio, la duración y la latencia para el movimiento de oruga exhibidos por pares de ratones BTBR y black six. La cepa BTBR mostró una frecuencia y duración significativamente mayores de movimiento de oruga, así como una latencia significativamente más corta que la cepa control black six. Cuando estos ensayos se repitieron con combinaciones alternas, no se encontraron diferencias significativas, lo que asegura que los efectos no dependían ni de combinaciones específicas de ratones ni de la repetición de las pruebas. Al realizar este procedimiento, es importante recordar que solo debe puntuarse el movimiento de agrupamiento como el movimiento sincrónico hacia adentro y hacia afuera de las patas delanteras y traseras del animal. Tras dominar este procedimiento.Se pueden añadir otros métodos, como la administración de fármacos, al paradigma para abordar preguntas adicionales, como los objetivos terapéuticos para los comportamientos estereotipados.

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Investigación

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Comportamiento

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Inchworming: A Novel Motor estereotipias en el BTBR

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