Name: El método de cultivo de la rebanada por Siguiendo desarrollo de gérmenes de dientes en Explante Cultura (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-13T20:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: Aprende el cultivo de rebanadas de mandíbula fetal de ratón para estudiar el desarrollo dental in vitro usando rastreadores de linaje. Este método permite observar la dinámica de los tejidos dentales en tiempo real.

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Sarah A. Alfaqeeh es financiado por Kind Saud University College de Odontología, Ministerio de Educación Superior, Reino de Arabia Saudita.

1. Establecer <ol><li> Enfocar los instrumentos de disección (con una piedra de afilar lubricado con aceite mineral) y esterilizar antes de su uso para el cultivo de órganos utilizando un spray de etanol al 70% y la esterilización de calor seco. Afilar las agujas de disección utilizando la electrólisis en 2 M de hidróxido de sodio utilizando un suministro de 12 V. </li><li> Preparar el medio de cultivo utilizado para la disección y la cultura de órganos embrionarios, que consta de modificación F12 Medio Eagle de avanzada Dulbecco (DMEM F12), complementado con 1% GlutaMAX y 1% de penicilina-estreptomicina. </li></ol> 2. La disección de embriones <ol><li> Cull una cronometrada acoplado hembra embarazada que usa un método de programación uno aprobado por el Ministerio del Interior o de otro órgano de gobierno. Diseccionar la piel que rodea el abdomen inferior, y cortar el abdomen con unas tijeras. Localice los dos cuernos uterinos, que se conectan entre sí en la línea media inferior. </li><li> Diseccionar útero y colocar en un tubo lleno con el medio en el hielo. When en hielo, el tejido se puede dejar durante varias horas. </li><li> Extirpar el útero y colocar en una placa de Petri en un medio en el microscopio. Cuando sea posible, las disecciones de embriones se deben realizar en una campana de flujo laminar para minimizar la contaminación. </li><li> Diseccionar los embriones del útero y liberarlos de sus tejidos extraembryonic. </li><li> Decapita a los embriones utilizando una aguja de tungsteno y transferir las cabezas en un plato fresco de medio. </li><li> Aislar las mandíbulas de las cabezas mediante la colocación de una aguja en la cavidad oral y cortar a través hacia la parte posterior de la cabeza (Figuras 1A y 1B). Mandíbulas aisladas pueden ser almacenados temporalmente en un medio en el hielo mientras se espera para picar. </li><li> Para rebanadas mandíbula enteros etapas E11.5-E15.5 son ideales para el cultivo de gérmenes de los dientes. Después E15.5 el hueso en desarrollo en la mandíbula es demasiado difícil para cortar. Rebanadas de dientes todavía se pueden hacer, pero el hueso (hueso alveolar dentario y la formación) primero se debe quitarla disección antes de cortar 9. Retire con cuidado el hueso utilizando agujas de tungsteno y fórceps. </li></ol> 3. Rebanar Embryo <ol><li> Preparar los cortes de tejido mandíbula utilizando un helicóptero estándar tejido tabla (Figura 1C). Utilice una hoja fresca después de aproximadamente 200 mandíbulas, y asegúrese de que se encuentra al ras con el disco de montaje cuando se cae. </li><li> Limpie el disco de montaje y la cuchilla con etanol al 70% antes de su uso. Se debe tener cuidado al usar la máquina, cuando la hoja está muy afilada. </li><li> Ajuste el interruptor a una distancia de corte de entre 200-400 micras, de conformidad con la edad de la muestra, y dependiendo de si se requiere todo el germen del diente. Ajuste la fuerza de la cuchilla en el máximo. </li><li> Transferir una mandíbula con el disco de montaje de plástico con una pipeta o fórceps. Organizar la mandíbula en el disco haciendo que la orientación está aún clara. La lengua en desarrollo puede ser utilizado como un punto de referencia útil para la determinación de la orientación. Para molares uso afRontal / orientación transversal (ver plano de cortar en la Figura 1B), mientras que para los incisivos usar un corte sagital a través de la mandíbula para reflejar la diferente orientación de estos dientes a medida que crecen (ver plano de cortar en la Figura 2A). </li><li> Eliminar el exceso de medio de todo el tejido usando papel de filtro con el fin de secar ligeramente la mandíbula en el disco de montaje. </li><li> Inmediatamente después del secado, coloque el disco en la mesa circular de acero inoxidable del helicóptero. Encienda la máquina y pulse Iniciar. La tabla atraviesa automáticamente de izquierda a derecha, mientras que al mismo tiempo el brazo de cortar llevar la cuchilla se eleva y se dejó en hasta 200 golpes / min. </li><li> Apague la máquina una vez que el tejido ha sido completamente cortado. Asegúrese de que el brazo de la cuchilla está en la posición elevada y extraiga el disco. No ponga los dedos debajo del brazo cuchilla o dejar la máquina desatendida cuando cortar. </li><li> Tome el disco de montaje y añade inmediatamente medio to las rebanadas en el disco con el fin de evitar el secado excesivo. Desplazar cuidadosamente el tejido en rodajas de la parte inferior del disco mediante una aguja de tungsteno y luego pipeta en una pequeña placa de Petri de medio (Figura 2A). </li><li> Separe las rebanadas con una aguja y luego seleccionar los cortes de tejidos que contienen el tejido de interés bajo un microscopio estereoscópico (Figuras 1D, 1E, y 2B). Coloque las rebanadas seleccionados en placas de cultivo con medio fresco. </li></ol> 4. Slice Cultura <ol><li> Preparar platos de órganos-centrales pocillo de cultivo listos para el cultivo mediante la adición de aproximadamente 2 ml de agua en autoclave para el pocillo exterior para prevenir la deshidratación, y mediante la colocación de una rejilla de metal a través del centro del plato (Figuras 3A y 3B). </li><li> Preparar rejillas de metal cortando tiras de aproximadamente 4 cm x 1,5 cm a partir de láminas de malla de acero inoxidable. Use una perforadora para hacer un agujero en el centro y doblarlos lados para crear un extremo escalonada. La rejilla debe encajar plana a través de la pozo central, situada paralela a la parte inferior del plato (Figuras 3A y 3B). Autoclave las rejillas para esterilizar antes de su uso. </li><li> Cortar una pieza de tereftalato de polietileno transparente (PET) de la membrana (tamaño de poro 0,4 micras) suficientemente grande para cubrir el orificio de la rejilla. Coloque la membrana cortada en el plato con el sector seleccionado. </li><li> Coloque la rebanada en la parte superior de la membrana y luego levante con cuidado la membrana de la media, con una rodaja de aplanado en el centro. </li><li> Coloque el filtro en la rejilla sobre el agujero circular en el centro, y añadir aproximadamente 1 ml de medio de cultivo para el pozo, hasta el nivel de la membrana. </li><li> Para manipulaciones agregan proteínas o inhibidores de molécula pequeña para el medio (por ejemplo 8). </li><li> Fotografiar la rebanada por un récord de la morfología en el día 0 de la cultura. </li><li> Colocar las cápsulas en una atmósfera húmeda de 5% de CO <sUB&gt; 2 a 37 ° C en una incubadora. </li><li> Fotografía las culturas, a intervalos regulares durante un promedio de 7 días. Cambie el medio de cultivo cada 48 a 72 horas. Para la fotografía ver las rebanadas con una fuente de luz desde abajo (Figuras 2C-E). </li></ol> 5. Tracing Lineage Si se necesita el rastreo linaje, colorantes lipófilos tales como Dil o DiO pueden ser inyectados en el germen del diente antes de la etapa 4, cultivo de cortes. <ol><li> Tire de agujas capilares de vidrio utilizando un extractor de aguja. </li><li> Rompa la punta de la aguja con las pinzas y coloque la punta hacia abajo en la solución de colorante. Dejar reposar unos minutos, mientras que el medio de contraste llena la punta por acción capilar. </li><li> Coloque la aguja se introduce en un soporte y conectar mediante un tubo a un inyector o la boca de aspiración. </li><li> Coloque la punta de la aguja en el medio de cultivo tocar el área de la rebanada debido a etiquetar. Aplicar presión de aire para desplazar una pequeña cantidad de colorante fuera de la una agujad sobre el tejido. </li><li> Retire la aguja y comprobar si el etiquetado en virtud de la fluorescencia. </li><li> Rebanadas con éxito etiquetados pueden ser transferidos a filtros y se cultivaron como se describe en el paso 4. </li></ol>

<ol><li>Rothova, M., Peterkova, R., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fate+map+of+the+dental+mesenchyme%3A+dynamic+development+of+the+dental+papilla+and+follicle%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Fate map of the dental mesenchyme: dynamic development of the dental papilla and follicle.</a> Developmental biology. 366, 244-254 (2012).</li>
<li>Ferguson, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activin+is+an+essential+early+mesenchymal+signal+in+tooth+development+that+is+required+for+patterning+of+the+murine+dentition%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+%26+development%22%5BJournal%5D)">Activin is an essential early mesenchymal signal in tooth development that is required for patterning of the murine dentition.</a> Genes & development. 12, 2636-2649 (1998).</li>
<li>Trowell, O. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+culture+of+mature+organs+in+a+synthetic+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+cell+research%22%5BJournal%5D)">The culture of mature organs in a synthetic medium.</a> Experimental cell research. 16, 118-147 (1959).</li>
<li>Matalova, E., Antonarakis, G. S., Sharpe, P. T., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+of+primary+and+secondary+enamel+knots%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+%3A+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">Cell lineage of primary and secondary enamel knots.</a> Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 233, 754-759 (2005).</li>
<li>Mitsiadis, T. A., Tucker, A. S., De Bari, C., Cobourne, M. T., Rice, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+regulatory+relationship+between+Tbx1+and+FGF+signaling+during+tooth+morphogenesis+and+ameloblast+lineage+determination%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">A regulatory relationship between Tbx1 and FGF signaling during tooth morphogenesis and ameloblast lineage determination.</a> Developmental biology. 320, 39-48 (2008).</li>
<li>Diep, L., Matalova, E., Mitsiadis, T. A., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+the+tooth+bud+mesenchyme+to+alveolar+bone%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+experimental+zoology.+Part+B%2C+Molecular%22%5BJournal%5D)">Contribution of the tooth bud mesenchyme to alveolar bone.</a> Journal of experimental zoology. Part B, Molecular. 312B, 510-517 (2009).</li>
<li>Rothova, M., Feng, J., Sharpe, P. T., Peterkova, R., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+mesoderm+to+the+developing+dental+papilla%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+journal+of+developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Contribution of mesoderm to the developing dental papilla.</a> The International journal of developmental biology. 55, 59-64 (2011).</li>
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<li>Buchtova, M., Stembirek, J., Glocova, K., Matalova, E., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+regression+of+the+dental+lamina+underlies+the+development+of+diphyodont+dentitions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+dental+research%22%5BJournal%5D)">Early regression of the dental lamina underlies the development of diphyodont dentitions.</a> Journal of dental research. 91, 491-498 (2012).</li>
<li>Cho, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+primary+enamel+knot+determines+the+position+of+the+first+buccal+cusp+in+developing+mice+molars%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%3B+research+in+biological+diversity%22%5BJournal%5D)">The primary enamel knot determines the position of the first buccal cusp in developing mice molars.</a> Differentiation; research in biological diversity. 75, 441-451 (2007).</li>
<li>Sakano, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+dynamics+in+cervical+loop+epithelium+during+transition+from+crown+to+root%3A+implications+for+Hertwig%27s+epithelial+root+sheath+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+periodontal+research%22%5BJournal%5D)">Cell dynamics in cervical loop epithelium during transition from crown to root: implications for Hertwig's epithelial root sheath formation.</a> Journal of periodontal research. , (2012).</li>
<li>Fisher, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+development+in+vitro+of+the+whole+and+halved+lower+molar+tooth+germ+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+oral+biology%22%5BJournal%5D)">Morphological development in vitro of the whole and halved lower molar tooth germ of the mouse.</a> Archives of oral biology. 16, 1481-1496 (1971).</li>
<li>Coin, R., Schmitt, R., Lesot, H., Vonesch, J. L., Ruch, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+halved+embryonic+lower+first+mouse+molars%3A+correlation+with+the+distribution+pattern+of+non+dividing+IDE+cells%2C+the+putative+organizers+of+morphogenetic+units%2C+the+cusps%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+journal+of+developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Regeneration of halved embryonic lower first mouse molars: correlation with the distribution pattern of non dividing IDE cells, the putative organizers of morphogenetic units, the cusps.</a> The International journal of developmental biology. 44, 289-295 (2000).</li>
<li>Kavanagh, K. D., Evans, A. R., Jernvall, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predicting+evolutionary+patterns+of+mammalian+teeth+from+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Predicting evolutionary patterns of mammalian teeth from development.</a> Nature. 449, 427-432 (2007).</li>
<li>Munne, P. M., Tummers, M., Jarvinen, E., Thesleff, I., Jernvall, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tinkering+with+the+inductive+mesenchyme%3A+Sostdc1+uncovers+the+role+of+dental+mesenchyme+in+limiting+tooth+induction%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Tinkering with the inductive mesenchyme: Sostdc1 uncovers the role of dental mesenchyme in limiting tooth induction.</a> Development. 136, 393-402 (2009).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Este método de la cultura de los dientes tiene la ventaja de que el acceso a la germen del diente es excelente, lo que permite linaje precisa la localización y la colocación de los granos en el epitelio o el mesénquima. Por lo tanto, las regiones definidas del germen dentario en desarrollo pueden ser dirigidos específicamente. Durante el cultivo de la morfología cambiante de la germen del diente se puede seguir, y el efecto de las manipulaciones evaluarse rápidamente. El método, sin embargo,...

Para un número de experimentos es importante ser capaz de cultivo de tejidos ex vivo para seguir el desarrollo. Cultura de desarrollar tejido proporciona acceso a determinados períodos de desarrollo y permite la manipulación de los genes por la adición de factores al medio de cultivo, o en perlas cargadas, y por el uso de la transfección y la electroporación 1. Para muchos experimentos es importante ser capaz de visualizar el tejido a medida que crece, por ejemplo, para seguir el destino de las células de linaje etiquetado como el tejido se somete a la morfogénesis. Esto puede ser particularmente problemático para los tejidos que se desarrollan profunda dentro del embrión, que no son evidentes cuando un bloque de tejido del embrión se cultiva. Los dientes son buenos ejemplos de esto, a medida que se desarrollan dentro del proceso nasal mandíbula, maxilar y frontal. Cuando se cultiva toda la mandíbula las estructuras superficiales de los dientes se pueden ver pero los cambios en la morfología sólo pueden ser analizados después de la sección de tejido fijado <shasta&gt; 2. Hemos adaptado una técnica de cultivo de cortes en directo lo que nos permite seguir el desarrollo de gérmenes del diente y el acceso a las diferentes partes del diente durante el desarrollo. Las culturas técnica de las rodajas de germen del diente en la interfase gas-líquido, utilizando un método modificado Trowell 3. Estos cultivos de cortes han sido muy útiles en directamente después de la morfogénesis del diente, y permitiendo linaje rastreo de componentes distintos, tales como el nudo del esmalte y la papila dental y el folículo 1,4-7. La técnica no se limita a los embriones de ratón y con éxito se ha utilizado para la cultura en vivo rebanadas de cerdo y la serpiente 8,9 tejido dental. Además de la ventaja de ser capaces de visualizar el desarrollo del diente, el método rebanada también tiene la ventaja de que las rodajas delgadas de tejido han aumentado el acceso a los nutrientes del medio y el aire de la incubadora. Esto se traduce en un mejor crecimiento de los gérmenes de los dientes, que coinciden con el desarrollo in vivo y espectáculo La invasión masde iones de las células endoteliales en la papila 7. En contraste, los gérmenes de los dientes en la mandíbula culturas enteros desarrollan más lento que los in vivo y el centro de la cultura es a menudo necrótico en cultivos a largo plazo. En la cultura rebanada, el diente se desarrolla dentro de un trozo de la mandíbula, y su interacción con el hueso circundante y el desarrollo de otros tejidos puede ser monitoreado. En nuestro método, el tejido se corta recta después de la disección sin necesidad de integrar en un medio de soporte 10,11 y no hay necesidad para cualquier sistema para sujetar el tejido a la guillotina. El método es, por tanto, no invasiva y rápida, permitiendo que muchos mandíbulas que se seccionaron en una sesión.

<table><tbody><tr><td>Etanol</td><td>VWR</td><td>101077Y</td><td>El etanol al 100% se diluyó en H2O destilado al 70%.</td></tr><tr><td>DMEM F12</td><td>Gibco</td><td>12634-010</td><td>Advanced Dulbecco's Modified Eagle Medium F12</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina</td><td>Sigma</td><td>P0781</td><td></td></tr><tr><td>DiI (Sondas moleculares)</td><td>Vybrant</td><td>V-22885</td><td>Solución</td></tr><tr><td></td> de marcaje celular <td>Invitrogen</td><td></td><td>Cell tracker CM-DiI, C-7000</td></tr><tr><td>DiO ( Sondas moleculares)</td><td>Vybrant</td><td>V22886</td><td></td></tr><tr><td>Geminator 500</td><td>Thomas</td><td>Thomas No. 3885A20</td><td>Esterilización por calor seco</td></tr><tr><td>Picadora de tejidos McIlwain</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>10180</td><td>Mesa estándar</td></tr><tr><td>Placa de cultivo de órganos (placa de cultivo de órganos Center-Well)</td><td></td>Membranas de 353037 <td></td>de <td>halcón</td></tr><tr><td>(insertos de cultivo celular, 0,4 &mu; m tamaño de poro)</td><td>BD Falcon</td><td>353090</td><td>Membrana de PET grabada con rieles, formato de 6 pocillos</td></tr><tr><td>Rejillas metálicas (Acero inoxidable - AISI 304 - Malla)</td><td>Goodfellow</td><td>FE228710</td><td>(Fe/Cr18/Ni10)</td></tr><tr><td>AutoFlow Calor directo CO2 Incubadora</td><td>Nuaire</td><td>NU-5500</td><td></td></tr><tr><td>Picospritzer III</td><td>Intracel Ltd</td><td>051-0500-900 0-100 psi</td><td>Picospritzer III</td></tr> <tr><td>monocanalCapilar de vidrio con filamento de 1 mm</td><td>WPI</td><td>TW100F-4</td><td></td></tr><tr><td>Alambre de tungsteno de 0,1 mm</td><td>Goodfellow</td><td>W005138</td><td></td></tr><tr><td>Alambre de tungsteno de 0,38 mm</td><td>Goodfellow</td><td>W005155</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de aspiración</td><td>Sigma</td><td>A5177</td><td>Utilizado para trazadores de linaje de aspiración bucal</td></tr></tbody></table>

el método de cultivo de la rebanada por siguiendo desarrollo de gérmenes de dientes en explante cultura

The Slice Culture Method for Following Development of Tooth Germs In Explant Culture

Cultura explante permite, por tanto, la manipulación de desarrollar órganos en puntos específicos de tiempo y es un método importante para el biólogo del desarrollo. Para muchos órganos es difícil acceder a los tejidos en desarrollo para permitir el monitoreo durante el cultivo ex vivo. El método de cultivo de cortes permite el acceso a los tejidos para que los movimientos morfogenéticos pueden ser seguidos y poblaciones específicas de células pueden ser objeto de manipulación o rastreo de linaje. En este trabajo se describe un método de cultivo de cortes que ha sido muy exitoso para el cultivo de los gérmenes de los dientes en una amplia gama de especies. El método proporciona un excelente acceso a los gérmenes de los dientes, que se desarrollan a un ritmo similar al observado in vivo, rodeado de los otros tejidos de la mandíbula. Esto permite interacciones de tejido entre el diente y el tejido circundante a controlar. Aunque este documento se concentra en los gérmenes de los dientes, el mismo protocolo se puede aplicar a seguir el desarrollo de un númerode otros órganos, como las glándulas salivales, el cartílago de Meckel, glándulas nasales, lengua y orejas.

Con el fin de seguir el movimiento de la primera folículo dental molar, 250 micras rodajas frontales fueron tomadas a través de una mandíbula utilizando el método descrito anteriormente. El folículo dental es la capa de mesénquima que rodea el epitelio del esmalte exterior (OEE) del diente en desarrollo, y se ha mostrado previamente para tomar parte en la formación de tejido del periodonto 6. Mandíbulas fueron disecados en E14.5, la etapa de desarrollo de los dientes cap. En la rebanada el contorno del epitel...

Aquí detallamos un método de cultivo de gérmenes dentales en rodajas mandíbula usando un cortador de tejidos. Este método permite un acceso único a los dientes durante el desarrollo, que proporciona una excelente oportunidad para la manipulación y el linaje de rastreo, no está disponible utilizando métodos de cultivo más tradicionales.

El método de cultivo de la rebanada por Siguiendo desarrollo de gérmenes de dientes en Explante Cultura

Explant culture allows manipulation of developing organs at specific time points&#160;and is therefore an important method for the developmental ...

El objetivo general del siguiente experimento es seguir el desarrollo de los dientes durante varios días. El cultivo in vitro explan, esto se logra diseccionando la mandíbula en desarrollo de ratones fetales en cortes vivos para exponer los gérmenes dentales en desarrollo como un segundo paso. Las rodajas se seleccionan, se colocan en filtros sobre un medio de cultivo y se incuban para permitir el desarrollo.A continuación, las rodajas se marcan con un trazador de linaje con el fin de rastrear el movimiento celular durante el período de cultivo, se obtienen resultados que muestran la naturaleza dinámica de los tejidos dentales a medida que se desarrollan durante el cultivo explan. La principal ventaja de esta técnica sobre el cultivo convencional de explantes es que los órganos que se desarrollan internamente, como las gemas dentales, se pueden observar a lo largo de su desarrollo dentro del contexto del tejido circundante. La demostración visual de este método es fundamental, ya que los pasos de corte y selección pueden ser difíciles si la configuración de la máquina o la orientación del tejido son inexactas.En primer lugar, se prepare el medio de disección y cultivo de los órgano

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Cultura Cortar organotípicos de los cerebros de ratas E18

Los cultivos organotípicos de explantes de tejido primario, que incluyen cortes de precisión, representan la arquitectura tridimensional (3-D) del tejido, así como las interacciones multicelulares del tejido nativo. Este video describe el cultivo de cortes de tejido derivado de tumores de pulmón murinos utilizando una unidad de incubación rotativa, un sistema que permite la exposición intermitente de los tejidos al oxígeno y los nutrientes. El protocolo describe la metodología para generar y...

Cultivo de explantes de tejido tumoral de pulmón: un procedimiento para generar y cultivar cortes de tumores de pulmón cortados con precisión

El video muestra la generación y el mantenimiento de cultivos de cortes organotípicos a partir de tejido de glioblastoma. El tejido aislado se incrusta en una matriz de agarosa y se obtienen secciones delgadas utilizando un vibrátomo. A continuación, estas secciones se colocan en insertos de membrana permeable dentro de una microplaca y se cultivan en un medio de mantenimiento de cultivo en rodajas para el mantenimiento a largo plazo.

Generación y mantenimiento de cultivos de cortes a partir de tejido de glioblastoma humano

Este video muestra la utilización de un dispositivo microfluídico para estudiar las interacciones entre la pulpa germinal dental y los ganglios del trigémino. Muestra la ubicación de los tejidos dentro del dispositivo microfluídico y proporciona una visualización detallada del crecimiento de la neurita trigémino hacia el germen dental a través de las microranuras del dispositivo. Además, destaca el papel de los factores moleculares derivados del diente en la promoción o inhibición de la...

Análisis de las interacciones entre el germen dental y los ganglios del trigémino mediante un sistema de cocultivo microfluídico

Los cocultivos representan un método valioso para estudiar las interacciones entre los nervios y los tejidos y órganos diana. Los sistemas microfluídicos permiten el cocultivo de ganglios y órganos o tejidos enteros en desarrollo en diferentes medios de cultivo, lo que representa una valiosa herramienta para el estudio in vitro de la diafonía entre las neuronas y sus dianas.

Análisis de Desarrollo del diente Germ Inervación Uso de dispositivos de microfluidos Co-cultura

Los modelos ex vivo actuales de glioblastoma (GBM) no están optimizados para el estudio fisiológicamente relevante de la invasión tumoral humana. Aquí, presentamos un protocolo para la generación y mantenimiento de cultivos de corte organotípico de tejido humano GBM fresco. Se proporciona una descripción de microscopía de lapso de tiempo y técnicas de análisis de migración celular cuantitativa.

Un Modelo de Cultura de Rebanadas Organotípicas de Glioblastoma Humano para el Estudio de la Migración de las Células Tumorales y los Efectos Específicos para el Paciente de los Medicamentos Anti-Invasivos

Nos proporcionan un método para la generación, cultivo y análisis sistemático de rebanadas organotypic derivadas de tumores de pulmón murino. También se describe cómo optimizar el grosor de corte y cómo seleccionar las concentraciones de la droga para el tratamiento de rodajas de tumor.

Establecimiento y análisis de segmento de Tumor explantes como prerrequisito para la prueba de diagnóstico

Se presenta un protocolo para preparar cultivos de rebanadas flotantes a partir del cerebro humano adulto. El protocolo es una variación del método de cultivo de rebanadas ampliamente utilizado utilizando inserciones de membrana. Es simple, rentable y recomendado para ejecutar ensayos a corto plazo destinados a desentrañar mecanismos de neurodegeneración detrás de las enfermedades cerebrales asociadas a la edad.

Cultivos de rebanadas flotantes a corto plazo del cerebro humano adulto

El método de cultivo de órganos tipo Trowell se ha utilizado para desentrañar redes de señalización complejas que gobiernan el desarrollo de los dientes y, más recientemente, para estudiar la regulación involucrada en las células madre del incisivo de ratón en continuo crecimiento. Los modelos animales de reporteros fluorescentes y los métodos de imágenes en vivo facilitan los análisis en profundidad de las células madre dentales y su microambiente de nicho específico.

Uso del cultivo de órganos tipo Trowell para estudiar la regulación de las células madre dentales

La imagen en vivo ex vivo es una técnica poderosa para estudiar los procesos dinámicos de los movimientos e interacciones celulares en los tejidos vivos. Aquí, presentamos un protocolo que implementa la microscopía de dos fotones para rastrear en vivo las células epiteliales dentales en incisivos de ratones adultos enteros cultivados.

Uso de imágenes en vivo ex vivo para investigar las divisiones celulares y los movimientos durante la renovación dental del ratón

Aprende el cultivo de rebanadas de mandíbula fetal de ratón para estudiar el desarrollo dental in vitro usando rastreadores de linaje. Este método permite observar la dinámica de los tejidos dentales en tiempo real.

El método de cultivo de la rebanada por Siguiendo desarrollo de gérmenes de dientes en Explante Cultura

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