Name: Picoinjection de microfluidos gotas sin electrodos metálicos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-18T18:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 20 s
Description: Aprende picoinyección en microfluidos sin electrodos metálicos para inyectar reactivos con precisión en gotas de agua en aceite. Este método simplifica la fabricación de dispositivos y permite controlar volúmenes a resoluciones de picolitros.

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Este trabajo fue apoyado por el Departamento de Bioingeniería y Ciencias Terapéuticas de la UCSF, el Instituto de California para la cuantitativos Biosciences (QB3), y la Reducción de la Brecha Premio de la Fundación de la familia de Rogers.

1. Diseño Dimensiones del dispositivo y topologías Basado en Experimental necesidades mediante diseño asistido por ordenador (CAD) Software Nota: Selección de diámetros del canal de emulsión más pequeñas que las de las gotitas esféricas. Esto obliga a las gotitas en una forma cilíndrica o &quot;salchicha&quot; y permite picoinjection más eficaz. Para nuestros propósitos, hemos diseñado 30 x 30 micras canales de gotas que eran 50 m de diámetro. <ol><li> Sitio picoinjection Modelo (s) después de los descritos por Abate et al. 3 con la excepción de que se eliminan los canales para los electrodos de metal, ya que son innecesarias. </li><li> Añadir canales para servir como el Faraday Foso (Figura 1) que se ejecutan entre el sitio (s) picoinjection y la emulsión de aguas arriba de tal manera que sirvan para proteger las pequeñas gotas del campo eléctrico. Nota: Esto evita la fusión accidental. </li></ol> 2. Dispositivos Fabricar Uso Soft fotolitoTécnicas radiográficos <ol><li> Generar una máscara de fotolitografía transparencia basado en el archivo CAD utilizando los servicios comerciales existentes. </li><li> Con la fotomáscara, curar fotoprotector en obleas de silicio para producir un dispositivo maestro, como se describió anteriormente 4. </li><li> Pour PDMS mezcla con el agente endurecedor (11:1) sobre el maestro del equipo contenido en un 5 cm de poliestireno caja de Petri. </li><li> Coloque el principal con PDMS en un desecador de vacío durante aproximadamente 15 minutos para eliminar cualquier burbuja de aire. </li><li> Curar el dispositivo de PDMS colocándolo en un horno de 95 ° C durante 1 hora. Alternativamente, el PDMS curarán a TA después de 24 horas. </li><li> Retire el dispositivo de corte en todo el perímetro con una hoja de bisturí y pelar cuidadosamente el dispositivo desde el maestro. </li><li> Perforar orificios de entrada y salida en el PDMS usando un punzón de biopsia de 0,5 mm. </li><li> Una el dispositivo a un portaobjetos de microscopio de vidrio usando un dispositivo de unión de plasma 4. </li></ol> 3. Preparar una presión de aireControl de bombas para presurizar un depósito que contiene el fluido <ol><li> Modificar la salida de la bomba de tal manera que las salidas de aire a presión a través de una longitud de 2,7 mm de tubo de polietileno de diámetro interior. </li><li> Construirla de tal manera que el tubo termina en una punta de la jeringa luer-lock mediante el ajuste de la luz sobre el pezón en la parte posterior del luer-lock. </li><li> Sellar rellenando el espacio entre las roscas luer-lock y el tubo con epoxi. </li><li> Coloque una aguja 27,5 g. </li></ol> 4. Preparar una monodisperso Emulsión acuosa de las gotitas (agua-en-aceite) suspendidos en un aceite inerte fluorado portador con 2% (peso / peso) disuelto biocompatible Surfactante 7 Los reactivos específicos contenidos en estas gotitas dependen de la aplicación <ol><li> En preparación para la reinyección, cargue la emulsión en una jeringa de 1 ml con una aguja de 27,5. </li><li> Fije la jeringa en una bomba de jeringa y orientar la bomba verticalmente (la aguja hacia arriba). Nota: Esta orientación hace que las gotas para empacar en una capa por encima del aceite del portador. Cuando se pone en marcha la bomba, las gotas serán empujados fuera de la jeringa en la fracción de alto volumen de la capa de aceite por debajo de ellos. </li></ol> 5. Preparar Reactivos para Introducción al chip de microfluidos <ol><li> Perforar tres agujeros de 0,5 mm en la tapa de un tubo de centrífuga de 15 ml (cualquier recipiente con un tapón de rosca será suficiente) usando un punzón de biopsia, la aguja, o de perforación. </li><li> Insertar un diámetro de electrodo de alambre de 0,5 mm y una longitud de ~ 20 cm de PE-2 tubería a través de dos de los agujeros para que lleguen a la parte inferior del tubo. </li><li> En el agujero restante, hilo de ~ 2,5 cm de un cm de longitud ~ 20 de la tubería de PE de forma que éste descanse sobre el nivel del fluido. </li><li> Selle todos los espacios en la parte superior de la tapa con epoxi curado UV. </li><li> Llene el tubo con el líquido picoinjection y el tornillo de la tapa. </li><li> Conectar la salida de la bomba de control de presión de aire a la longitud más corta de la tubería por insertoing la aguja en el lumen. La aguja debe quedar ajustado. </li><li> Llene una jeringa de 1 ml con 1 M de NaCl para servir como la de Faraday Foso. </li><li> Conecte una aguja de 27,5 y asegure la jeringa en una bomba de jeringa. </li><li> Llene otra jeringa de 1 ml con aceite del portador / espaciador, conecte una aguja de 27,5, y fijarlo en una bomba de jeringa. </li></ol> 6. Prepare el dispositivo de microfluidos para Picoinjection <ol><li> Conectar el tubo de salida (longitud más larga) desde el recipiente de fluido de inyección al puerto de entrada del fluido picoinjection en el chip microfluídico. </li><li> Conectar la jeringa que contiene el NaCl 1 M a la lumbrera de entrada para el Foso de Faraday en el chip de microfluidos con una longitud de tubo de PE. </li><li> Conectar la jeringa que contiene el aceite portador al puerto de entrada del chip de microfluidos con una longitud de tubo de PE. </li><li> Introduzca el tubo de PE en el orificio de salida de la emulsión en el chip microfluídico. El tubo debe terminar en un recipiente de recogida de emulsión, ninormalmente un tubo de centrífuga de 1,5 ml. </li><li> Introduzca el tubo de PE en el puerto de salida para el Foso de Faraday en el chip microfluídico. El tubo debe terminar en un material no conductor y el recipiente aislado eléctricamente para evitar un cortocircuito. </li><li> Conectar la salida del amplificador de alta tensión (HV) a través de pinza de cocodrilo para el electrodo de metal sumergido en el fluido picoinjection. </li><li> Conectar el electrodo de tierra del amplificador de alta tensión a través de pinza de cocodrilo para el metal de la aguja de la jeringa que contiene el NaCl 1 M. </li></ol> 7. Infuse Reactivos en microfluidos chip <ol><li> Introducir el NaCl 1 M (Foso de Faraday) para el dispositivo a una velocidad de 100 l / hr. </li><li> Introducir la emulsión de gotas de aceite del portador y con tasas adecuadas a las dimensiones del dispositivo. Para nuestro equipo de demostración, introducimos las gotas y el aceite a 200 y 400 l / h, respectivamente. Los caudales deben permitir que las gotas pasen la picoinjector a intervalos regulares separadospor un hueco de aceite portador. </li><li> Ajustar la presión aplicada al fluido picoinjection de tal manera que la presión del fluido en el orificio de picoinjection está en equilibrio mecánico con el canal de gota. Nota: En esta presión (la presión de Laplace), el fluido de inyección debe sobresalir en el canal de gotita sin gemación y la formación de sus propias gotas (Figura 2). A estas velocidades de flujo descritos anteriormente, se aplica una presión de ~ 13 psi para el fluido de inyección para alcanzar el equilibrio en el sitio de la inyección. </li></ol> 8. Comience Picoinjection <ol><li> Como gotas de pasar el orificio de inyección, aplique un 0-10 V, 10 kHz, la señal amplificada AC 1000 x por el amplificador de HV (Figura 3). </li><li> Modular el volumen de inyección cambiando la amplitud de la tensión aplicada. Nota: Los voltajes más altos deberían permitir más fluido que se presentó a las gotas. En nuestras pruebas, observamos inyección estable y consistente con tensiones serentre 100 y 3000 V utilizando soluciones de inyección de NaCl que van desde 10 hasta 500 mM (Figura 4). </li></ol>

<ol><li>Kritikou, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((It%27s+cheaper+in+the+Picolab%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">It's cheaper in the Picolab.</a> Nat. Rev. Genet. 6 (9), (2005).</li>
<li>Ahn, K., Agresti, J., Chong, H., Marquez, M., Weitz, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrocoalescence+of+drops+synchronized+by+size-dependent+flow+in+microfluidic+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Lett%22%5BJournal%5D)">Electrocoalescence of drops synchronized by size-dependent flow in microfluidic channels.</a> Appl. Phys. Lett. 88 (26), (2006).</li>
<li>Abate, A. R., Hung, T., Mary, P., Agresti, J. J., Weitz, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+injection+with+microfluidics+using+picoinjectors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">High-throughput injection with microfluidics using picoinjectors.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 107, 19163-19166 (2010).</li>
<li>Harris, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+a+microfluidic+device+for+the+compartmentalization+of+neuron+soma+and+axons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Fabrication of a microfluidic device for the compartmentalization of neuron soma and axons.</a> J. Vis. Exp. (7), (2007).</li>
<li>Duffy, D. C., McDonald, J. C., Schueller, O. J., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+prototyping+of+microfluidic+systems+in+poly%28dimethylsiloxane%29%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Rapid prototyping of microfluidic systems in poly(dimethylsiloxane).</a> Anal. Chem. 70 (23), 4974-4984 (1998).</li>
<li>O'Donovan, B., Eastburn, D. J., Abate, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrode-free+picoinjection+of+microfluidic+drops%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Electrode-free picoinjection of microfluidic drops.</a> Lab on a Chip. 12 (20), 4029-4032 (2012).</li>
<li>Holtze, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biocompatible+surfactants+for+water-in-fluorocarbon+emulsions%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions.</a> Lab on a Chip. 8 (10), 1632-1639 (2008).</li>
<li>Chung, C., Lee, M., Char, K., Ahn, K., Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Droplet+dynamics+passing+through+obstructions+in+confined+microchannel+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluid.+Nanofluid%22%5BJournal%5D)">Droplet dynamics passing through obstructions in confined microchannel flow.</a> Microfluid. Nanofluid. 9, 1151-1163 (2010).</li>
<li>Herminghaus, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamical+instability+of+thin+liquid+films+between+conducting+media%5BTitle%5D)+AND+%22Phys.+Rev.+Lett%22%5BJournal%5D)">Dynamical instability of thin liquid films between conducting media.</a> Phys. Rev. Lett. 83 (12), 2359-2361 (1999).</li>
<li>Priest, C., Herminghaus, S., Seemann, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+electrocoalescence+in+microfluidics%3A+Targeting+a+single+lamella%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Lett%22%5BJournal%5D)">Controlled electrocoalescence in microfluidics: Targeting a single lamella.</a> Appl. Phys. Lett. 89 (13), 134101-134103 (2006).</li>
<li>Florent, M., Siva, A. V., Hao, G., Dirk, E., Frieder, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrowetting-controlled+droplet+generation+in+a+microfluidic+flow-focusing+device%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys%3A+Condens.+Matter%22%5BJournal%5D)">Electrowetting-controlled droplet generation in a microfluidic flow-focusing device.</a> J. Phys: Condens. Matter. 19 (46), (2007).</li>
<li>Eastburn, D. J., Sciambi, A., Abate, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Picoinjection+enables+digital+detection+of+RNA+with+droplet+rt-PCR%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Picoinjection enables digital detection of RNA with droplet rt-PCR.</a> PLoS ONE. 8 (4), (2013).</li>
</ol>

No entendemos plenamente mecanismo físico exacto detrás de la relación entre la tensión aplicada y el volumen de inyección observado en nuestros experimentos. Los intereses del laboratorio y áreas de especialización pertinentes no son muy adecuados para la consecución de esta pregunta persistente. Animamos a los que tienen más de la física y la perspicacia de ingeniería para explorar este fenómeno.

La relación entre el volumen de inyección y la tensión aplicada depende de muchos factores incluyendo las dimensiones del dispositivo, la longitud del tubo que lleva el fluido picoinjection al dispositivo, molaridad de fluido picoinjection, y la velocidad de las gotitas a medida que pasan que inyector. Por este motivo, se recomienda que la relación volumen / tensión caracterizarse antes de cada ejecución de picoinjection midiendo volúmenes de inyección en los bordes de los rangos de trabajo de la tensión y la molaridad....

En la microfluídica basada en gotitas, gotitas acuosas escala de micras se utilizan como &quot;tubos de ensayo&quot; para reacciones biológicas. La ventaja de llevar a cabo reacciones en las pequeñas gotas es que cada gota utiliza sólo unos pl de reactivo y, con la microfluídica, las gotas se puede formar y procesada a tasas kilohercios 1. En combinación, estas propiedades permiten a millones de reacciones con las células individuales, moléculas de ácido nucleico, o compuestos que se deben realizar en cuestión de minutos con l de total de material. Para usar las gotas para aplicaciones de este tipo, se necesitan técnicas para la adición de volúmenes controlados de reactivos a las gotas; tales operaciones son análogos a pipeteando en tubos de ensayo. Un método para lograr esto es electrocoalescence, en el que una gota de reactivo se combina con la caída de destino mediante la aplicación de un campo eléctrico. El campo eléctrico altera la disposición de las moléculas de tensioactivo en las interfaces de las gotas, INDucing una inestabilidad de película delgada y desencadenando coalescencia en emulsiones que son por lo demás estable 2. Fusión inducida eléctricamente también es explotada en el diseño de la picoinjector, un dispositivo que inyecta reactivos en gotas a medida que fluyen más allá de un canal de presión 3. Para aplicar el campo eléctrico, los dispositivos picoinjector utilizan electrodos de metal, pero la integración de electrodos de metal en los chips de microfluidos es a menudo un proceso complejo y propenso a errores que los alambres de líquido de soldadura son fácilmente comprometidos por burbujas de aire o polvo y otros desechos en el canal , así como de las fracturas de estrés o doblarse durante la configuración del dispositivo. Aquí presentamos un método para llevar a cabo picoinjection sin el uso de electrodos de metal, por lo que la fabricación más simple y más robusta. Para activar picoinjection, nosotros en cambio utilizamos el propio fluido de inyección como un electrodo, ya que la mayoría de los reactivos biológicos contienen electrolitos disueltos y son conductores. También vamos a añadir un &quot;Faraday Moat &quot;para proteger a regiones sensibles del dispositivo y actuar como un suelo universales (Figura 1). El foso aísla eléctricamente las gotas de aguas arriba del sitio picoinjection proporcionando un suelo, la prevención de fusión gotita no deseado. Un beneficio adicional de nuestra técnica es que el volumen inyectado en las gotas depende de la magnitud de la tensión aplicada, permitiendo que se ajusta mediante la regulación de la señal aplicada. Fabricamos nuestros dispositivos en poli (dimetilsiloxano) (PDMS) usando técnicas fotolitográficas suaves 4,5. Nuestro enfoque es compatible con dispositivos fabricados en otros materiales, como resinas, plásticos y resinas epoxi. Los canales tienen alturas y anchuras de 30 micras, que son óptimas para trabajar con gotitas de 50 m de diámetro (65 pl). Introducimos los reactivos a través de tubos de polietileno (0.3/1.09 mm de diámetro interior / exterior) insertado en los puertos creados durante la fabricación del dispositivo de 0,50 mm punzones de biopsia, de forma similar a los métodos described previamente 5. La composición exacta del fluido de inyección depende de la aplicación específica. El fluido sólo necesita contener electrolitos disueltos en concentraciones lo suficientemente altas para producir la suficiente conductividad para la señal eléctrica que se transmite a la picoinjector. En pruebas de banco, hemos encontrado que las concentraciones iónicas superiores a 10 mM deberían bastar 6, aunque este valor y conductividades de fluido dependen de las dimensiones específicas del dispositivo y la magnitud de la tensión aplicada.

<table><tbody><tr><td>1 ml Luer-Lok&trade; jeringas</td><td>BD Medical</td><td>309628</td><td></td></tr><tr><td>LocTite Adhesivo curado con UV</td><td>Henkel</td><td>35241</td><td></td></tr><tr><td>Tubo PE-2</td><td>Scientific Commodities</td><td>BB31695-PE/2</td><td></td></tr><tr><td>Novec HFE-7500</td><td>3M</td><td>98-0212-2928-5</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga de</td> <td>1,5 mlEppendorf</td><td>22363531</td><td></td></tr><tr><td>BD Falcon Tubo de 15 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>Bomba de control de presión de aire</td><td>Control Air Inc.</td><td></td><td>Recomendamos uno bajo el control de DAQ y software de control</td></tr><tr><td>Las bombas de jeringa</td><td>New Era</td><td></td><td>deben ser capaces de contener jeringas de 1 ml y fluir a velocidades tan bajas como 100 &#956; l/hr</td></tr><tr>Amplificador <td></td><td></td><td>de alta tensión</td><td>Debe ser capaz de amplificar 1.000x de señales entre 0,01 y 10 V</td></tr><tr><td>Bonder/limpiador de plasma</td><td>Harrick Plasma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Obleas de silicio de 3"</td><td>Sigma Aldrich</td><td>647535</td><td></td></tr><tr><td>PDMS</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>Sylgard 184 con agente de curado debe incluirse</td></tr><tr><td>SU-8 fotorresistente</td><td>MicroChem</td><td></td><td>La viscosidad depende de las dimensiones del dispositivo</td></tr></tbody></table>

picoinjection de microfluidos gotas sin electrodos metálicos

Picoinjection of Microfluidic Drops Without Metal Electrodes

Los métodos existentes para picoinjecting reactivos en gotas de microfluidos requieren electrodos de metal integradas en el chip de microfluidos. La integración de estos electrodos añade pasos engorrosos y propensos a errores en el proceso de fabricación del dispositivo. Hemos desarrollado una técnica que obvia las necesidades de electrodos de metal durante picoinjection. En lugar de ello, se utiliza el propio fluido de inyección como un electrodo, ya que la mayoría de los reactivos biológicos contienen electrolitos disueltos y son conductores. Mediante la eliminación de los electrodos, se reduce el tiempo de fabricación del dispositivo y la complejidad, y hacer los dispositivos más robustos. Además, con nuestro enfoque, el volumen de inyección depende de la tensión aplicada a la solución picoinjection; esto nos permite ajustar rápidamente el volumen inyectado mediante la modulación de la tensión aplicada. Se demuestra que nuestra técnica es compatible con los reactivos que incorporan compuestos biológicos comunes, incluyendo tampones, enzimas y ácidos nucleicos.

Imágenes microscópicas tomadas en el lugar muestran picoinjection que la electrificación del fluido picoinjection es suficiente para desencadenar la inyección (Figura 2). El volumen inyectado se puede controlar mediante la modulación de la amplitud de la tensión aplicada, con tensiones más elevadas que permiten volúmenes de inyección más altas. Trazamos el volumen de inyección en comparación con la magnitud de la tensión aplicada durante tres molaridades representativas de fluido de inyección en <strong...

Hemos desarrollado una técnica para picoinjecting gotas de microfluidos que no requieren electrodos de metal. Como tales, los dispositivos que incorporan nuestra técnica son más simples de fabricar y de usar.

Picoinjection de microfluidos gotas sin electrodos metálicos

Existing methods for picoinjecting reagents into microfluidic drops require metal electrodes integrated into the microfluidic chip. The integration of ...

El objetivo general de este procedimiento es diseñar, fabricar y utilizar chips microfluídicos capaces de inyectar con precisión y control reactivos en gotas de agua en aceite, un proceso conocido como picoinyección. Esto se logra primero diseñando un dispositivo con un canal de emulsión que se estrecha hasta un diámetro menor que el de las gotas esféricas y las espacia uniformemente dentro de aceite inerte portador. Como segundo paso, las gotas de agua y aceite se introducen en el dispositivo y fluyen hacia el sitio de inyección.Un canal perpendicular que contiene los reactivos que se inyectarán. A continuación, se aplica un alto voltaje al fluido de inyección mientras las gotas pasan por el sitio de inyección, con el fin de provocar la fusión entre las gotas y el fluido de inyección. Los resultados obtenidos muestran que, al ajustar la magnitud del voltaje aplicado, el volumen del reactivo inyectado puede controlarse con precisión a resoluciones del orden de picolitros. Esta técnica surgió de la necesidad de simplificar la fabricación de nuestros dispositivos, eliminando la necesidad de electrodos metálicos.Las ventajas frente a las técnicas existentes son la facilidad y simplici

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Gota de plataformas basadas en microfluidos son candidatos prometedores para la experimentación de alto rendimiento, ya que son capaces de generar picolitros, la auto-compartimentado barcos bajo costo en las tasas de kHz. Mediante la integración con rápido, sensible y de alta resolución espectroscópica métodos de fluorescencia, la gran cantidad de información generada dentro de estos sistemas se puede extraer de manera eficiente, aprovechar y utilizar.

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Fuente: Vanegas, M. I., et al. Sistema Microinjectrode para infusión combinada de fármacos y electrofisiología. J. Vis. Exp. (2019)Este video muestra un dispositivo microfluídico basado en microelectrodos que administra una solución farmacológica a través de un tubo capilar, utilizando una solución marcadora a base de aceite para un seguimiento preciso del volumen y permitiendo el registro neuronal simultáneo y la infusión de fármacos.

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Presentamos un método para controlar la energía interfacial de un metal líquido en un electrolito a través de la deposición (o eliminación) electroquímica de una capa superficial de óxido. Este método simple puede controlar el comportamiento capilar de los metales líquidos a base de galio ajustando la energía interfacial de manera rápida, significativa y reversible utilizando voltajes modestos.

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Demostramos una plataforma de microfluidos con una red de electrodo de superficie integrado que combina detección de pulso resistivo (RPS) con división de código de acceso múltiple (CDMA), para multiplexar la detección y el tamaño de las partículas en múltiples canales de microfluidos.

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Sistema de Microinyección para Infusión Combinada de Drogas y Electrofisiología

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Aquí, se presenta un protocolo para fabricar dispositivos microfluídicos a base de vidrio utilizados para generar emulsiones altamente monodispersas con tamaño de gota controlado.

Dispositivos a base de vidrio para generar gotas y emulsiones

Aquí se presenta la fabricación de un dispositivo bicapa basado en polidimetilsiloxano (PDMS) para la producción de bibliotecas combinatorias en emulsiones de agua en aceite (tapones). El hardware y el software necesarios para automatizar la producción de enchufes se detallan en el protocolo, y también se demuestra la producción de una biblioteca cuantitativa de enchufes fluorescentes.

Dispositivo microfluídico bicapa para la producción de tapones combinatorios

El protocolo describe una plataforma microfluídica avanzada para medir cuantitativamente la dinámica de secreción de citocinas de células mononucleares individuales de sangre periférica humana. La plataforma mide hasta tres citocinas en paralelo (IL-6, TNFα e IL-1β) para cada célula individual estimulada con lipopolisacárido como ejemplo.

Enfoque microfluídico para resolver la secreción simultánea y secuencial de citocinas de células polifuncionales individuales 

Aprende picoinyección en microfluidos sin electrodos metálicos para inyectar reactivos con precisión en gotas de agua en aceite. Este método simplifica la fabricación de dispositivos y permite controlar volúmenes a resoluciones de picolitros.

Picoinjection de microfluidos gotas sin electrodos metálicos

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