Name: El estiramiento células micropatterned en una membrana de PDMS (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-22T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Aprende a estirar células micropatterned sobre membrana de PDMS para estudiar biología celular y biomecánica. Este método permite aplicar fuerzas mecánicas controladas en células adherentes durante la mitosis.

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Este trabajo fue fundada por el Institut Curie, París, Francia. La camilla mecánica fue diseñada por Damien Cuvelier (Institut Curie) y es fabricado por GREM (mecanique-grem.com). El patrón de PDMS fue desarrollado por Ammar Azioune (Universidad de Burdeos II).

1. La pasivación de la PDMS <ol><li> Corte un pedazo de PDMS aproximadamente 35 mm x 20 mm a partir de una hoja de pre-hechos (por ejemplo, GelPak, que se enumeran en la tabla de materias). </li><li> Quite la parte superior y las capas protectoras inferiores de plástico (si es necesario) y utilizar pinzas para colocar el PDMS en un plástico (no celular cultivo tratado) placa de Petri. </li><li> Lavar el PDMS con etanol al 70% durante 5 minutos en un rotador a 30 oscilaciones / min. </li><li> Seque la superficie por las corrientes de aire en él. </li><li> Iluminar con profunda UV (λ = 180 nm) durante 5 minutos a una distancia de las bombillas UV de unos 5 cm (ver hoja de Materiales para referencia lámpara; parámetros variarán para diferentes lámparas). </li><li> Preparar 200 l de solución de EDC / NHS para cada PDMS pieza (este debe estar preparado justo antes de su uso debido a que la reactividad de la solución se desintegra en cuestión de horas). Para 1 ml de 0,05 M MES + 0,5 M de tampón NaCl a pH 6,0, agregar 11,5 mg de sulfo-NHS y 19,2 mg de EDC. </li><li> Transferir elPDMS hojas de la placa de Petri a la tapa de la placa de Petri, que no ha sido iluminado. Esto asegurará que el entorno de los PDMS son muy hidrófobo y facilitar el siguiente paso. </li><li> Añadir la solución de EDC / NHS y se incuba durante 15 min a temperatura ambiente. </li><li> Enjuague EDC / NHS con agua. </li><li> Añadir la solución de PLL-g-PEG (0,5 mg / ml en HEPES 10 mM pH 8,6) y se incuba a partir de 3 horas a toda la noche a temperatura ambiente. </li><li> Enjuague el PLL-g-PEG con agua. PDMS pasivados (funcionalizadas con PLL-g-PEG) se pueden almacenar durante varios días a 4 ° C. </li></ol> 2. Patrones de la PDMS <ol><li> Tome una hoja de PDMS y colocarlo en una fotomáscara de cuarzo sintético que lleva las microfeatures para modelar (ver Figura 1). Coloque el lado de PDMS que lleva el PLL-g-PEG hacia el lado del cromo de la fotomáscara. </li><li> Iluminar durante 7 min a través de la fotomáscara a una distancia de las lámparas UV de aproximadamente 5 cm.</li><li> Añadir agua en la máscara + PDMS y pelar las PDMS lentamente fuera de la máscara. </li><li> Incubar con solución de fibronectina a 50 mg / ml en tampón de HEPES a pH 8,6 durante 1 hora a temperatura ambiente. Es posible utilizar otras proteínas ECM, pero éstos no se han probado con este protocolo. </li><li> Lavar con PBS. </li></ol> 3. Montaje del dispositivo <ol><li> Monte los PDMS previamente pasivado en el dispositivo de estiramiento (ver Discusión para solución de problemas). <ol><li> Una un lado del PDMS a la parte fija de la camilla. </li><li> Fijar el otro lado a la parte móvil de la camilla sin sujeción demasiado de la hoja de PDMS. </li></ol></li><li> Cortar un rectángulo de PDMS (22 mm x 19 mm) en una puñalada PDMS de espesor y cortar otro rectángulo interior con el fin de tener una piscina (o marco) que retendrá las células y los medios de comunicación (ver Figura 2). </li><li> Agregue grasa de silicona bajo este PDMS piscina y colóquelo en la parte superior de la hoja de PDMS para crear un medium retener piscina. La grasa permitirá que el deslizamiento de la piscina sobre la hoja de PDMS durante el estiramiento. </li></ol> 4. Modelar las celdas <ol><li> Separar las células de un 50% de confluencia matraz de cultivo con Versene. </li><li> Contar las células y resuspender en una concentración de 200.000 células / ml. </li><li> Añadir 1 ml de la suspensión celular en la piscina (ver la discusión para más detalles). </li><li> Deje que las células se unen a los patrones durante 10-30 min (dependiendo del tipo de célula, las células de RPE-1 se llevará a 10 min y las células HeLa 20 min). </li><li> Enjuague suavemente las células flotantes con medio equilibrada (equilibre medio en incubadora). </li><li> Deje que las células se extienden por unos pocos horas en los patrones (necesitará RPE-1 por lo menos 2 horas, las células HeLa necesitarán 3 h). </li><li> Añadir un cubreobjetos en la parte superior de la piscina para evitar la evaporación y medio de fuga en caso de que el PDMS se rompe. </li><li> Coloque el dispositivo en un microscopio invertido y empezar de imágenes. Evite el uso de ob inmersión en aceitetivos, ya que no va a funcionar debido a problemas de enfoque. </li></ol> 5. Extensión <ol><li> Gire el tornillo micrométrico, mientras que la corrección de la posición de etapa en el x-, y-, y el eje z (principalmente x). La posición de fase debe ser corregido para contrarrestar la ampliación de los PDMS y la pérdida de enfoque. (Consulte la sección &quot;Durante el tramo&quot; párrafo de la discusión). </li></ol>

<ol><li>Vogel, V., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+force+and+geometry+sensing+regulate+cell+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Local force and geometry sensing regulate cell functions.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 7, 265-275 (2006).</li>
<li>Terenna, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+mechanisms+redirecting+cell+polarity+and+cell+shape+in+fission+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Physical mechanisms redirecting cell polarity and cell shape in fission yeast.</a> Curr. Biol. 18 (22), 1748-1753 (2008).</li>
<li>Guillot, C., Lecuit, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics+of+epithelial+tissue+homeostasis+and+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanics of epithelial tissue homeostasis and morphogenesis.</a> Science. 340 (6137), 1185-1189 (2013).</li>
<li>Bosveld, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+control+of+morphogenesis+by+Fat%2FDachsous%2FFour-jointed+planar+cell+polarity+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanical control of morphogenesis by Fat/Dachsous/Four-jointed planar cell polarity pathway.</a> Science. 336 (6082), 724-727 (2012).</li>
<li>Farhadifar, R., Roper, J. C., Aigouy, B., Eaton, S., Julicher, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+cell+mechanics%2C+cell-cell+interactions%2C+and+proliferation+on+epithelial+packing%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">The influence of cell mechanics, cell-cell interactions, and proliferation on epithelial packing.</a> Curr. Biol. 17, 2095-2104 (2007).</li>
<li>Rauzi, M., Verant, P., Lecuit, T., Lenne, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nature+and+anisotropy+of+cortical+forces+orienting+Drosophila+tissue+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Nature and anisotropy of cortical forces orienting Drosophila tissue morphogenesis.</a> Nat. Cell Biol. 10, 1401-1410 (2008).</li>
<li>Mitrossilis, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+single-cell+response+to+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Real-time single-cell response to stiffness.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (38), 16518-16523 (2010).</li>
<li>Irimia, D., Charras, G., Agrawal, N., Mitchison, T., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polar+stimulation+and+constrained+cell+migration+in+microfluidic+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Polar stimulation and constrained cell migration in microfluidic channels.</a> Lab Chip. 12, 1783-1790 (2007).</li>
<li>Fink, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((External+forces+control+mitotic+spindle+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">External forces control mitotic spindle positioning.</a> Nat. Cell. Biol. 13 (7), 771-778 (2011).</li>
<li>Azioune, A., Storch, M., Bornens, M., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+rapid+process+for+single+cell+micro-patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Simple and rapid process for single cell micro-patterning.</a> Lab Chip. 9 (11), 1640-1642 (2009).</li>
<li>Azioune, A., Carpi, N., Tseng, Q., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+micropatterns%3A+A+direct+printing+protocol+using+deep+Uvs%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Protein micropatterns: A direct printing protocol using deep Uvs.</a> Methods Cell Biol. 97, 133-146 (2010).</li>
<li>Azioune, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+method+for+high-throughput+surface+patterning+of+deformable+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Robust method for high-throughput surface patterning of deformable substrates.</a> Langmuir. 27 (12), 7349-7352 (2011).</li>
<li>Carpi, N., Piel, M., Azioun, A., Cuvelier, D., Fink, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+on+silicon+elastomer+%28PDMS%29+with+deep+UVs%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Exch%22%5BJournal%5D)">Micropatterning on silicon elastomer (PDMS) with deep UVs.</a> Protoc. Exch. , (2011).</li>
<li>Sinha, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+respond+to+mechanical+stress+by+rapid+disassembly+of+caveolae%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cells respond to mechanical stress by rapid disassembly of caveolae.</a> Cell. 144 (3), 402-413 (2011).</li>
</ol>

Los autores declaran no tener intereses financieros en competencia.

Aunque esta técnica ha sido utilizada en numerosas ocasiones y es sometido a pruebas exhaustivas, hay varios pasos críticos que pueden llevar a un experimento fallido. Acerca de los PDMS: Para este trabajo, GelPak, una hoja de PDMS delgada disponible en el mercado, se utilizó. Alternativamente hojas PDMS se puede lanzar directamente desde la mezcla de PDMS. Le recomendamos que utilice GelPak porque es más reproducible, y es menos probable que se rompa en comparación...

Las células que componen un tejido en organismos superiores están sujetos a tensiones mecánicas y fuerzas de estiramiento próximos ya sea desde el ambiente externo o a partir de células que rodean 1,2. Las células deben adaptarse y resistir estas fuerzas a fin de mantener la integridad de los tejidos. Tales fuerzas son también importantes para tejidos morfogénesis durante el desarrollo 3,4. La aplicación de fuerzas mecánicas sobre las células cultivadas es una manera de imitar lo que podría suceder en un tejido, pero con un control cuantitativo e independiente de la forma celular y 5,6 deformación celular. Para ello, pueden utilizarse varias técnicas. Uno puede pulsar sobre las células (la célula entera o parte de ella), por ejemplo usando AFM o derivados de 7,8 o estirar el sustrato las células están creciendo en. El método descrito en este documento se demuestra cómo estirar un sustrato plano plateado con células. Esta técnica se desarrolló originalmente para evaluar el papel de las fuerzas ejercida sobre mcélulas de mamíferos itotic 9. Las células mitóticas mantenerse conectados al sustrato a través de fibras de retracción y estiramiento de la membrana ejercen una fuerza sobre las fibras, que a su vez provocaron la rotación del huso mitótico. El interés de la combinación de micropatrones adhesivas y estiramiento es para lograr un control independiente de las fuerzas y forma de las células individuales. Por ejemplo, es posible estirar una célula ovoide en una forma redonda perfectamente isotrópico, mientras que se aplica estiramiento uniaxial. Si las células no se entretejieron en micropatrones, estirado uniaxial resultados en la elongación celular, con la mayoría de células que tiene un eje largo alineado con el eje de estiramiento. Es entonces difícil separar el efecto de la alineación del eje largo y el efecto de la estiramiento aplicado a las células. El dispositivo es adecuado para cualquier imagen de células vivas, incluyendo la microscopía fluorescente lapso largo de tiempo, y las drogas se puede añadir durante el experimento. La profunda método micropatterning UVs 10se describe en detalles en Azioune et al. 11 Patrones de PDMS se describe en Azioune et al. 12 El presente estiramiento protocolo es una versión de vídeo de Carpi et al. 13

<table><tbody><tr><td>GelPak</td><td>GelPak</td><td>PF-60-X4</td><td>Diferentes espesores/pegajosidad están disponibles. Una alternativa podría ser lanzar su PDMS&nbsp; Tú mismo.</td></tr><tr><td>Grasa de silicona</td><td>GE Bayer Siliconas</td><td>Baysilone-Paste</td><td>Esta es biocompatible</td></tr><tr><td>Dispositivo de estiramiento</td><td>GREM m&eacute; Camilla canique</td><td>2011</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>EDC (N-(3-dimetilaminopropilo)-N&prime;-clorhidrato de etilcarbodiimida)</td><td>Sigma</td><td>3450</td><td>Estable 6 meses a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>NHS (SAL SÓDICA DE N-Hidroxisulfosuccinimida)</td><td>Sigma</td><td>56485</td><td>Proteger de la humedad</td></tr><tr><td>Pll-g-peg (PLL(20)-g[3.5]-PEG(2) 20 mg)</td><td>SurfaceSolutions (Zurich)</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Fotomáscara de cuarzo sintético</td><td>Toppan</td><td></td><td>Take fotomáscara binaria estándar en</td></tr><tr><td>fibronectina de cuarzo de plasma bovino</td><td>Sigma</td><td>F1141</td><td>&nbsp;</td></tr></tbody></table>

el estiramiento células micropatterned en una membrana de pdms

Stretching Micropatterned Cells on a PDMS Membrane

Las fuerzas mecánicas ejercidas sobre las células y / o tejidos juegan un papel importante en numerosos procesos. Hemos desarrollado un dispositivo para estirar las células sembradas en placas sobre un polidimetilsiloxano (PDMS) de membrana, compatible con formación de imágenes. Esta técnica es reproducible y versátil. La membrana de PDMS se puede microestructurada con el fin de confinar las células o tejidos a una geometría específica. El primer paso es imprimir micropatrones en la membrana de PDMS con una técnica de UV profunda. La membrana de PDMS se monta entonces en una camilla mecánica. Una cámara está enlazado en la parte superior de la membrana con grasa biocompatible para permitir el deslizamiento durante el estiramiento. Las células se siembran y permitir que se extienda por varias horas en los micropatrones. La muestra puede ser estirada y no estirada varias veces con el uso de un tornillo micrométrico. Se tarda menos de un minuto para aplicar la recta en toda su extensión (en torno al 30%). La técnica presentada aquí no incluye un dispositivo motorizado, que es necesaria para unapplying ciclos repetidos de estiramiento de forma rápida y / o estiramiento controlado ordenador, pero esto puede ser implementado. El estiramiento de las células o el tejido puede ser de interés para las cuestiones relacionadas con las fuerzas de células, la respuesta celular al estrés mecánico o la morfogénesis de tejidos. Esta presentación en video le mostrará cómo evitar los problemas típicos que pueden surgir cuando se hace este tipo de aparentemente sencillo experimento.

<html> La técnica presentada en este protocolo de vídeo permite la aplicación de fuerzas sobre las fibras de retracción de las células de mamíferos de la mitosis. De hecho, durante la división celular, en la etapa mitótica, células de mamífero se retraen para tomar la forma de una esfera y dejar atrás los cables de actina delgadas rodeadas por una membrana que se unen al sustrato. Estos cables (fibras de retracción), son la memoria de la geometría de la célula antes de entrar en división. Haciendo micropatrones con UV pr...

Este manuscrito presenta una técnica para aplicar o liberar las fuerzas sobre las células o los tejidos adherentes utilizando estiramiento unidireccional.

El estiramiento células micropatterned en una membrana de PDMS

Mechanical forces exerted on cells and/or tissues  play a major role in numerous processes. We have developed a device to stretch  cells plated on a ...

El objetivo general de este procedimiento es estirar células dispuestas en patrones sobre una membrana elástica de poli(dimetilsiloxano) o PDMS. Esto se logra mediante la preparación de una lámina de PDMS, seguida por la aplicación de un micro patrón sobre el PDMS. La lámina de PDMS con micro patrón se monta luego en el dispositivo de estiramiento y se coloca una cámara de retención de medio encima.A continuación, las células se siembran sobre la superficie de la lámina de PDMS con microdiseño y se dejan adherir al patrón antes de lavar para eliminar las células no adheridas. El paso final consiste en aplicar una elongación a la lámina de PDMS que contiene células, con el fin de estirarlas. En última instancia, se utiliza microscopía de video para demostrar que la aplicación de fuerzas sobre las fibras de retracción de células mitóticas de mamífero durante el estiramiento celular provoca la deformación de la célula.Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la biomecánica, como ¿cuáles son los efectos de las fuerzas externas sobre procesos celulares como la división? Tuvimos la idea original de este método cuando deseábamos aplicar fuerzas sobre una célula

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Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

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