Name: Ensayo Proteasomal degradación en un sistema libre de células en las plantas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-26T17:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: Aprende a analizar la degradación proteasomal en un sistema libre de células en plantas. Este método permite estudiar la estabilidad de proteínas mediante extracción de hojas y análisis por western blot.

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El trabajo que lleva a esta publicación ha recibido financiación del programa Marie Curie COFUND &quot;U-Mobility&quot;, cofinanciado por la Universidad de Málaga y el Programa de la Unión Europea el 7 º Programa Marco (FP7/2007-2013) bajo anestesia general N º 246550. El trabajo en nuestro laboratorio es apoyado por subvenciones del NIH, USDA / NIFA, NSF, BARD y BSF a VC

1. La expresión de proteínas <ol><li> Elección del sistema de expresión Seleccione el sistema, es decir, los vectores y el método de entrega de vectores, el más adecuado para la expresión de la proteína de interés en el modelo de organismo / celda específica. Tenga en cuenta que nuestro ensayo requiere la expresión de las proteínas de la prueba en cantidades fácilmente detectables, lo que se consigue mejor mediante la transformación transitoria de un gran número de células. En las plantas, por ejemplo, esto se realiza mejor usando plásmidos binarios como vectores de expresión y de Agrobacterium como sistema de entrega. </li><li> Construcción de vectores de expresión binarios Clonar la secuencia codificante (s) de la proteína (s) de interés en un vector de expresión, ya sea solo o en fusión traduccional a una etiqueta de epítopo. Uso vectores adecuados para el sistema de expresión elegido y procedimientos estándar de biología molecular para la clonación de genes. Para la entrega de genes mediada por Agrobacterium, emplear vectores binarios y introducirlos, también utilizando Standaprotocolos Rd, en una cepa de Agrobacterium, tales como EHA105, para la posterior inoculación de tejidos de plantas. </li><li> Elección de las especies de plantas Seleccionar las especies de plantas en el que se expresa la proteína (s) de interés. Tenga en cuenta que, mientras que cualquiera de las especies de plantas susceptibles a la transformación genética mediada por Agrobacterium se pueden utilizar, nuestros especies de plantas de elección es Nicotiana benthamiana, que se cultiva fácilmente, altamente susceptibles a Agrobacterium, y tiene grandes hojas que se inoculan fácilmente. </li><li> Crecimiento de las plantas Haga crecer una planta de 4 a 6 semanas en una olla con Pro-Mix BX en una olla (20 cm x 20 cm x 20 cm) en condiciones de ambiente controlado-(por ejemplo, la cámara de crecimiento) de día largo (es decir, 16 h de 130 -150 E · m-2 s-1 la luz a 23 º C y 8 ​​h oscuridad a 20 ° C) y una humedad relativa del 40-65%. 1.5.2 Abono de vez en cuando con los productos disponibles en el mercado según las instrucciones del fabricante. Una vez que la planta se cultiva, seleccionehojas con el tamaño de 50 mm x 70 mm o mayor (estas mediciones de longitud no incluyen el pecíolo) para la inoculación de Agrobacterium. </li><li> La inoculación con Agrobacterium Crecer la cepa de Agrobacterium que alberga la construcción binaria que expresa la proteína (s) de prueba de la etapa 1.3 durante la noche a 28 ° C en medio YEP (1% de peptona, extracto de levadura 1%, y 0,5% de NaCl) suplementado con los antibióticos apropiados (por ejemplo, 100 mg / l de estreptomicina y 10 mg / L de rifampicina para los vectores basados ​​en pPZP-RSC2 24-25). 1.6.2 Centrifugar las células, se resuspendieron a OD 600 = 0,5 en tampón de infiltración [10 mM de MgCl 2, Mes 10 mM (pH 5,6), acetosiringona 100 mM], y se incuba durante 2 h a temperatura ambiente. Infíltrate en la cultura en la cara abaxial de una hoja, utilizando una jeringa sin aguja 1-ml; en cuenta que las hojas se inoculan in situ, mientras que está unido a la planta. 1.6.3 Después de la infiltración, cultivar la planta durante 72 h bajo el régimen de luz de 16 h 130-150 y# 181; E m-2 s-1 la luz a 23 ° C / 8 h oscuridad a 20 ° C antes de la cosecha. </li><li> La aplicación de inhibidores de proteasomal Para apoyar la idea de que la proteína (s) prueba es degradada por una vía proteasoma, usar inhibidores de proteasomal MG132 específicos y lactacistina 28-29, lo que debería reducir o incluso bloquear la degradación. Cuatro horas antes de la cosecha (ver Paso 2.1), infiltrarse en las áreas de la hoja inoculado con Agrobacterium con 10 M de MG132 (EMD Millipore) o 10 mM lactacistina (Sigma-Aldrich) o maqueta tratar la hoja con los respectivos disolventes, es decir, 0,1% de DMSO o agua destilada. </li></ol> 2. Preparación de extractos libres de células <ol><li> La cosecha de la hoja Recoger las áreas inoculadas de la hoja, por lo general aprox. 200-400 mg de peso fresco, y se muelen en un polvo fino en nitrógeno líquido. Alternativamente, bead-vencer a los tejidos, el uso de cualquier grano-batidor (por ejemplo, Biospec) o un amalgamador dental (por ejemplo, TPC Advanced<html> Technologies) directamente en el búfer de degradación (véase el paso 2.2). </li><li> La extracción de proteínas Preparar el extracto de proteína total mediante la colocación del tejido molido en 500 l de tampón de degradación de [50 mM Tris-HCl (pH 7,5), 100 mM de NaCl, 10 mM de MgCl 2, DTT 5 mM, adenosina 5 mM 5&#39;-trifosfato, y el inhibidor de la proteasa 1x cóctel (Sigma-Aldrich)]. Tenga en cuenta que el cóctel inhibidor de la proteasa afecta principalmente serina, cisteína, aspártico, y metaloproteasas y no interfiere con la proteasa 26S. Aclarar el extracto mediante dos centrifugaciones secuenciales a 12.000 xg durante 5 min. </li><li> Reacción de degradación de proteínas Transferencia de volúmenes iguales de extractos de, por lo general 20 l, para microcentrífuga tubos e incubar a temperatura ambiente para aumentar los períodos de tiempo. Típicamente, tiempo de la muestra cero, y 5, 10, 15, 20, y 30 puntos de tiempo min. Deje de reacciones por ebullición en SDS-gel tampón de la muestra, y analizarlos por el Western Blot. </li></ol>jove_title &quot;&gt; 3. Detección de la degradación de proteínas por inmunotransferencia <ol><li> La electroforesis en gel 3.1.1 resolver el muestras de proteína mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida y electrotransferencia las proteínas resueltas a una membrana de nitrocelulosa de acuerdo con el protocolo estándar 30. 3.1.2 Determinar la concentración de proteína por el método de Bradford (Bio-Rad), y la carga de 50 a 80 g de proteína total por carril. Asegúrese de que todas las muestras se cargan por igual. Para los controles de carga, comparar las intensidades de una especie de proteína ubicua, tales como putativo Rubisco grandes cadenas que migran como una banda principal con una movilidad electroforética relativa de alrededor de 50 kDa, ya que pueden ser detectados en geles teñidos de azul de Coomassie o en Ponceau S-o fluorescente SYPRO Rubí teñido con membranas de nitrocelulosa. </li><li> Bloqueo Bloquear la membrana con 5% de leche descremada en TBST (Tris-HCl 10, NaCl 140 mM, 0,05% de Tween 20, pH 7,4) durante 1 h a temperatura ambiente. </li&gt; <li> El anticuerpo primario Diluir anticuerpo anti-epítopo principal en 1% de leche descremada en TBST a la concentración recomendada por el fabricante y se incuba con la membrana se bloquearon durante 1 h a temperatura ambiente o durante la noche a 4 º C con agitación suave. </li><li> Enjuague Enjuague la membrana se enjuagó en 20 ml de TBST durante 15 min una vez, y dos veces durante 5 min a temperatura ambiente con agitación suave. </li><li> El anticuerpo secundario Diluir anticuerpo secundario (por ejemplo, anti-IgG de conejo) conjugado con peroxidasa de rábano picante (HRP) en 1% de leche descremada en TBST como se recomienda por el fabricante y se incuba con la membrana durante 1 h a temperatura ambiente con agitación suave. </li><li> Detección Enjuague la membrana de nuevo como se describe en el Paso 3.4. Después del enjuague final en TBST, visualizar las proteínas de interés con un sustrato quimioluminiscente de HRP, más comúnmente usando un kit ECL. </li></ol>

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<li>Magori, S., Citovsky, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Agrobacterium+counteracts+host-induced+degradation+of+its+F-box+protein+effector%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Signal%22%5BJournal%5D)">Agrobacterium counteracts host-induced degradation of its F-box protein effector.</a> Sci. Signal. 4, (2011).</li>
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</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

Este ensayo se basa en la expresión de las proteínas de la prueba en tejidos de la planta, por lo tanto, el potencial proceso de degradación proteasomal, obviamente, se produce ya dentro de los tejidos vivos. Nosotros ensayamos la desestabilización de proteínas, sin embargo, sólo en los extractos, con el tiempo de la muestra cero que sirve como el punto de referencia inicial. Por lo tanto, se define como un ensayo libre de células. Un aspecto importante para el éxito de este ensayo es la ele...

La vía del proteasoma ubiquitin/26S está emergiendo como un mecanismo generalizado para el control de diversas reacciones biológicas, incluyendo la regulación transcripcional, la progresión del ciclo celular y la transducción de la señal, el receptor de baja regulación o endocitosis, entre otros procesos de 1-4. En esta vía, la proteína diana se marca por ubiquitina residuos que se unen primero a través de un enlace tioléster de enzima ubiquitina-activación de E1 y luego trasladadas a un residuo de aminoácido cisteína de la enzima ubiquitina-conjugación E2; finalmente, E2 interactúa con ubiquitina ligasa E3 , lo que resulta en polyubiquitination del sustrato proteína. En última instancia, las proteínas polyubiquitinated son reconocidos y degradados por el proteasoma 26S. En este mecanismo, la enzima E3 especifica el sustrato y actúa como el componente regulador clave del sistema de proteasoma ubiquitin/26S (UPS). Ligasas E3 pueden actuar independientemente, tales como ligasas de dominio ANILLO, o como parte de un SCF de múltiples subunidades (Skp1/Cullin/F-box proteína) compleja, como ligasas de dominio F-box. Vías de degradación proteasomal mediadas por SCF están involucrados en la regulación de la transcripción, el ciclo celular, la transducción de señal de 5-10 y muchas otras funciones celulares importantes. Además de estos papeles críticos en la regulación de procesos celulares, UPS toma el escenario central en muchas de las interacciones planta-patógeno. Por ejemplo, el aumento de la evidencia sugiere que varios patógenos de plantas, incluyendo Agrobacterium tumefaciens, se basan en la acogida de UPS para facilitar el proceso de infección 11. Agrobacterium provoca crecimientos neoplásicos en las plantas, que representan sus huéspedes naturales, y también puede transformar una amplia gama de otros eucariotas, a partir de hongos 1,2 a las células humanas 12,13. Durante su infección, de Agrobacterium exporta un elemento de ADN (ADN-T) y varios virulencia (Vir) las proteínas en la célula huésped 12-13. Una de estas proteínas es VirF, la primera proteína F-box encontradopara ser codificada por un genoma procariota 14. Como parte del complejo SCF ubiquitina ligasa, VirF, y su homólogo anfitrión funcional VBF 15, facilitar la infección de Agrobacterium a través de la degradación de proteínas mediada por la UPS, que presumiblemente facilita uncoating de la T-ADN bacteriano invasor de sus acompañan proteínas bacterianas y de acogida, VirE2 y VIP1, respectivamente 16,17. Curiosamente, muchas proteínas F-box, incluyendo VirF, son intrínsecamente inestables debido a su propia proteólisis, que está mediada por la actividad autoubiquitination 18,19 o por otras ligasas E3 para el que F-box proteínas pueden servir como sustratos 20-23. Al estudiar las actividades bioquímicas de las proteínas F-box, otras ligasas de ubiquitina, y / o sus sustratos, sería muy útil emplear un ensayo sencillo y fiable para la degradación proteasomal. Aquí se describe un protocolo de este tipo para el análisis de estabilidad de la proteína en una célulaSin sistema. En este ensayo, la estabilidad del sustrato de UPS se analiza en la presencia o ausencia de uno de los componentes esenciales de la vía de degradación proteasomal, tales como una proteína de la caja F, en un sistema libre de células. En general, expresamos la proteína (s) ensayados en los tejidos vegetales, preparar los extractos libres de células de estos tejidos y controlar las cantidades de la proteína (s) de interés por el Western Blot. El mecanismo de la UPS dependientes de la degradación de proteínas se demostró mediante la inclusión de inhibidores de proteasomal específicos y / o el uso de co-expresión de la forma dominante negativa de un componente de SCF, Cullin. Considerando que ilustramos este ensayo usando la degradación proteasomal de la proteína de Arabidopsis VIP1 17 por la proteína F-box VBF 15, que se puede emplear para investigar la estabilidad de los otros sustratos proteasomal.

<table><tbody><tr><td>Kit de ensayo de proteínas</td><td>Bio-Rad</td><td>500-0001</td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de proteinasa&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8820</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Sistema proteico</td><td>Bio-Rad</td><td>165-8000</td><td></td></tr><tr><td>Western blot semiseco SD sistema de electrotransferencia</td><td>Bio-Rad</td><td>170-3940</td><td></td></tr><tr><td>Conejo purificado por afinidad Anti-Ha</td><td>ICL Lab</td><td>RHGT-45A-Z</td><td></td></tr><tr><td>Cabra anti-conejo IgG Peroxidasa Conjugado</td><td>Thermo Scientific</td><td>31460</td><td></td></tr><tr><td>BioTrace, NT membrana de transferencia de nitrocelulosa</td><td>Pall Corporation</td><td>27377-000</td><td></td></tr><tr><td>Immobilon sustrato HRP quimioluminiscente occidental</td><td>EMD Millipore</td><td>WBKL S0 050</td><td></td></tr><tr><td>MG132</td><td>EMD Millipore</td><td>474790-1MG</td><td></td></tr><tr><td>Lactacistina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L6785</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific Pierce Fast Western Blot Kit, ECL Substrate</td><td>Pierce</td><td>35055</td><td></td></tr></tbody></table>

ensayo proteasomal degradación en un sistema libre de células en las plantas

Assaying Proteasomal Degradation in a Cell-free System in Plants

La vía de la ubiquitina-proteasoma para la degradación de proteínas se ha convertido en uno de los mecanismos más importantes para la regulación de una amplia gama de funciones celulares en prácticamente todos los organismos eucariotas. Específicamente, en las plantas, el sistema de proteasoma ubiquitin/26S (UPS) regula la degradación de proteínas y contribuye significativamente al desarrollo de una amplia gama de procesos, incluyendo la respuesta inmune, desarrollo y muerte celular programada. Por otra parte, cada vez más evidencia sugiere que numerosos patógenos de las plantas, tales como Agrobacterium, explotan la acogida de UPS para la infección eficiente, haciendo hincapié en la importancia de la UPS en las interacciones planta-patógeno. La especificidad de sustrato de la UPS se consigue mediante la ubiquitina ligasa E3 que actúa en concierto con la E1 y E2 ligasas para reconocer y marcar moléculas de proteínas específicas destinadas a la degradación por unir a ellos cadenas de moléculas de ubiquitina. Una clase de las ligasas E3 es el SCF (Skp1 / Cproteína ullin / F-box) compleja, que reconoce específicamente los sustratos de UPS y los dirige a través de su componente de ubiquitinación de proteínas F-box. Para investigar un posible papel de la UPS en un proceso biológico de interés, es importante para idear un ensayo simple y fiable para la degradación de proteínas mediada por UPS. Aquí, se describe uno de tales ensayo utilizando un sistema libre de células de la planta. Este ensayo se puede adaptar para el estudio de las funciones de la degradación de proteínas regulado en diversos procesos celulares, con un enfoque especial en los F-box interacciones proteína-sustrato.

La Figura 1, adaptado de Zaltsman et al. 17, ilustra experimentos representativos para la detección de la degradación proteasomal en un sistema libre de células. En concreto, se demuestra la desestabilización de una planta relacionada con la defensa de proteínas VIP1 por la proteína F-box VBF través de la vía SCF VBF en N. benthamiana. VBF Arabidopsis y HA-etiquetados VIP1 (HA-VIP1) proteínas se coexpresan transitoriamente, y la proteína de conte...

Degradación de la proteína dirigida representa un mecanismo de regulación importante para la función celular. Se produce a través de una vía ubiquitina-proteasoma conservada, que se conecta polyubiquitin cadenas a la proteína diana que luego sirven &quot;etiquetas&quot; como moleculares para el proteasoma 26S. Aquí se describe un ensayo libre de células simple y confiable para la degradación proteasomal de proteínas.

Ensayo Proteasomal degradación en un sistema libre de células en las plantas

The ubiquitin-proteasome pathway for protein degradation has emerged as one of the most important mechanisms for regulation of a wide spectrum of cellular ...

El objetivo general del siguiente experimento es analizar la estabilidad de proteínas en un sistema libre de células. Esto se logra inoculando Oceana Biana con diferentes cepas de agrobacterium que portan la proteína de interés, la cual contiene un constructo binario.La proteína total se extrae entonces de las hojas de la planta. Las hojas se transfieren a tubos microfuga y se incuban a temperatura ambiente durante períodos de tiempo crecientes. A continuación, las muestras de proteína se separan mediante electroforesis en gel de acrilamida SDS y se transfieren electroforéticamente a una membrana de nitrocelulosa.Con el fin de detectar la proteína de interés utilizando un anticuerpo específico, se obtienen resultados que muestran la estabilidad de la proteína en presencia o ausencia de un inhibidor proteasomal específico, basados en el análisis mediante inmunotransferencia (western blotting). Aquí describimos una metodología sencilla para estudiar la estabilidad del sustrato cistólico del protosoma INE en presencia o ausencia de uno de los componentes esenciales de la vía de degradación proteasomal en un sistema libre de células. Así, estos métodos pueden proporcionar información sobre una degradación proteasomal más segura.También puede aplicarse a otros sistemas, como estudios sobre los roles de la degradación regulada de proteínas en diversos procesos celulares. En esta demostración, se utiliza NCOA hamana. La planta es de fácil cultivo, altamente susceptible a Agrobacterium y posee hojas grandes que se pueden inocular fácilmente.Cultive una planta durante cuatro a seis semanas en una maceta con promix B bajo condiciones ambientales controladas de día largo y 40 a 65 % de humedad relativa. Fertilice la planta ocasionalmente con productos comercialmente disponibles siguiendo las instrucciones del fabricante. Una vez que la planta haya crecido, seleccione hojas con un tamaño de 50 milímetros por 70 milímetros o mayor.Para la inoculación con agrobacterium, cultive la cepa de Agrobacterium que porta el constructo binario y expresa la proteína en estudio durante la noche a 28 grados Celsius en medio YEP suplementado con los antibióticos adecuados. Tras la centrifugación de las células, re suspenda hasta una densidad óptica a 600 nanómetros de 0,5 en tampón de infiltración e incube durante dos horas a temperatura ambiente. Infiltra la cultura en el lado AAL de una hoja utilizando una jeringa de un mililitro sin aguja. Después de la infiltración, cultive la planta durante 72 horas bajo el mismo régimen de luz. Antes de la cosecha, cuatro horas antes de cosechar, infiltre las áreas de la hoja inoculadas con agrobacterium con un inhibidor de 10 micromolar o con control simulado (mock).Trate la hoja con los disolventes respectivos, recolecte las áreas inoculadas de la hoja, generalmente entre 200 y 400 miligramos de peso fresco, y muélelas hasta obtener un polvo fino en nitrógeno líquido. Luego, prepare el extracto total de proteínas colocando el tejido molido en 500 microlitros de tampón de degradación. Clarifique el extracto mediante dos centrifugaciones sucesivas a 12.000 ×g durante cinco minutos para realizar la reacción de degradación de proteínas.Transfiera volúmenes iguales de extractos, generalmente 20 microlitros, a tubos microcentrífugos e incúbelos a temperatura ambiente durante períodos de tiempo crecientes. Típicamente, se utilizan puntos temporales de muestra cero, así como a los 5, 10, 15, 20 y 30 minutos. Detenga las reacciones hirviendo un tampón muestral para geles SDS antes de analizarlas mediante inmunotransferencia western.Resuelva las muestras de proteínas mediante electroforesis en gel de poliacrilamida-SDS determinando primero la concentración de proteína utilizando el método de Bradford y cargando entre 50 y 80 microgramos de proteína total por carril. Asegúrese de que todas las muestras se carguen por igual para los controles de carga. Compare las intensidades de especies proteicas ubicuas, como las cadenas grandes putativas de rubis, que migran como una banda principal con una movilidad electroforética relativa de aproximadamente 50 kilodaltons.Después de la transferencia electroforética de las proteínas resueltas a una membrana de nitrocelulosa según protocolos estándar, bloquee la membrana con leche descremada al 5 % en TBST durante una hora a temperatura ambiente. A continuación, diluya el anticuerpo primario anti-epítopo en leche descremada al 1 % en TBST hasta la concentración recomendada por el fabricante. Incube el anticuerpo con la membrana bloqueada durante una hora a temperatura ambiente o durante la noche a cuatro grados Celsius con agitación suave.Luego, lave la membrana con 20 mililitros de TBST durante 15 minutos una vez y después dos veces durante cinco minutos a temperatura ambiente con agitación suave. A continuación, diluya el anticuerpo secundario conjugado con peroxidasa de rábano picante en 1 % de leche descremada en TBST según lo recomiende el fabricante. Incube el anticuerpo secundario con la membrana durante una hora a temperatura ambiente con agitación suave tras otro lavado en TBST, y visualice las proteínas de interés con una peroxidasa de rábano picante en experimentos representativos que muestran la desestabilización de una proteína relacionada con la defensa vegetal.Se demostró que la degradación de Veep uno mediante la proteína VBFF a través de la vía SCF en N hamana. El análisis de sangre por Western mostró que las cantidades de Veep uno se redujeron significativamente al coexpresarse con VBF, pero permanecieron relativamente estables en ausencia de coexpresión de VBF. Se infirió que el mecanismo de degradación proteasomal en la inestabilidad de Veep uno por VBF se inhibió mediante el inhibidor del proteasoma MG 132.La cuantificación de estos resultados demostró una inhibición casi completa de V one por VBF, la cual fue prácticamente bloqueada por MG 1 32. Los niveles ligeramente más altos de V one en presencia de MG 1 32 se explican muy probablemente por la inhibición de la actividad del homólogo endógeno de VBF. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo estudiar la degradación de proteínas mediante la vía del proteasoma inicial.El mismo diseño experimental podría utilizarse para cualquier otro organismo y puede realizarse para responder preguntas adicionales, como los roles de la degradación regulada de proteínas en diversos procesos celulares.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

Un método para supervisar la actividad de ubiquitina-proteasoma en células vivas se describe. Un degron-GFP desestabilizado-(GFP-dgn) y una estable GFP-dgnFS proteína de fusión se generan y se transduce en la célula usando un vector de expresión lentiviral. Esta técnica permite generar un GFP-dgn/GFP-dgnFS estable línea celular que expresa en la que se puede ubiquitina-proteasoma actividad fácilmente evaluada utilizando epifluorescencia o citometría de flujo.

Control de la ubiquitina-proteasoma actividad en las células vivas utilizando un degron (dgn)-desestabilizado la proteína verde fluorescente (GFP)-basada en proteína indicadora

En este video, demostramos un ensayo de agregación de proteínas basado en células utilizando inhibidores del proteasoma, que bloquean la actividad del proteasoma, evitando que las proteínas mutantes mal plegadas, fusionadas a una etiqueta fluorescente, sufran una degradación proteasómica dependiente de ubiquitina, lo que lleva a su acumulación dentro del citoplasma celular. A continuación, los agregados de proteínas se visualizan y cuantifican mediante microscopía de fluorescencia.

Ensayo de formación de agregados de proteínas: un método para detectar y cuantificar la agregación de proteínas en células cultivadas tras la inducción por inhibidor del proteasoma

Este video describe un ensayo de degradación para proteínas mal plegadas utilizando el tratamiento con cicloheximida junto con el fraccionamiento de detergente. Este método ayuda a estudiar la dinámica de las proteínas mal plegadas y a descubrir en profundidad los mecanismos del recambio de proteínas.

Ensayo de degradación de proteínas propensas a plegamientos incorrectos: una técnica para monitorear la degradación de proteínas mal plegadas mediante tratamiento con cicloheximida y fraccionamiento de detergentes

Se describe aquí un protocolo para la purificación y caracterización de complejos de proteínas vegetales. Demostramos que por immunoprecipitating una sola proteína dentro de un complejo, para que podamos identificar sus modificaciones posteriores a la traducción y sus socios que interactúan.

Identificación de modificaciones post-traduccionales de la proteína vegetal Complejos

Aquí describimos un ensayo biológico robusto para cuantificar la tasa relativa de proteólisis por el sistema ubiquitina-proteasoma. La lectura del ensayo es la tasa de crecimiento de la levadura en cultivo líquido, que depende de los niveles celulares de una proteína reportera que comprende una señal de degradación fusionada con un marcador metabólico esencial.

Ensayo de crecimiento basado en reportero para el Análisis Sistemático de la degradación de proteínas

Este artículo describe un ensayo basado en el crecimiento de levaduras para la determinación de los requisitos genéticos para la degradación de proteínas. También demuestra un método para la extracción rápida de proteínas de levadura, adecuado para la transferencia de Western para confirmar bioquímicamente los requisitos de degradación. Estas técnicas se pueden adaptar para monitorear la degradación de una variedad de proteínas.

Determinación basada en el crecimiento y en la confirmación bioquímica de Requisitos Genéticos para la degradación de proteínas en<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Este informe describe protocolos para medir las tasas de degradación de proteínas mal plegadas mediante Western blot o ensayos basados en fluorescencia. Los métodos se pueden aplicar al análisis de otras proteínas mal plegadas y para el cribado de alto rendimiento.

Los ensayos para la degradación de proteínas en células de mal plegadas

Aquí, presentamos un protocolo de captura interactome aplicado a Arabidopsis thaliana protoplastos hoja mesófilo. Este método depende crıticamente de la reticulación UV in vivo y permite el aislamiento e identificación de proteınas de unión a mRNA de plantas desde un entorno fisiológico.

ARNm Interactome Captura de Planta Protoplastos

Las interacciones proteína-proteína y proteína-metabolito son cruciales para todas las funciones celulares. Adjunto, describimos un protocolo que permite el análisis paralelo de estas interacciones con una proteína de elección. Nuestro protocolo fue optimizado para cultivos de células vegetales y combina la purificación de la afinidad con la proteína basada en espectrometría de masa y detección de metabolitos.

2 en 1: purificación de la afinidad para el análisis paralelo de proteínas y complejos de proteína-metabolito de un solo paso

Aquí se presenta un enfoque fosfoproteómico, a saber, detener e ir extracción a base de punta fosfoproteómica, que proporciona alto rendimiento y cobertura profunda de arabidopsis fosfoproteoma. Este enfoque delinea la visión general de la señalización de estrés osmótico en Arabidopsis.

Estrategia fosfoproteómica para perfilar la señalización de estrés osmótico en Arabidopsis

Este protocolo describe el flujo de trabajo para el etiquetado metabólico de células senescentes y no en división con SILAC pulsado, análisis de espectrometría de masas no dirigido y un cálculo simplificado de las vidas medias de las proteínas.

Medición de las tasas de recambio de proteínas en células cultivadas senescentes y no divisorias con etiquetado metabólico y espectrometría de masas

Aprende a analizar la degradación proteasomal en un sistema libre de células en plantas. Este método permite estudiar la estabilidad de proteínas mediante extracción de hojas y análisis por western blot.

Ensayo Proteasomal degradación en un sistema libre de células en las plantas

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