Name: Inmunohistoquímicos y métodos de imagen de calcio en Wholemount Rata Retina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: Aprende a marcar células ganglionares de la retina mediante inyección de indicador de calcio en el muñón del nervio óptico. Este método permite estudiar la dinámica del calcio en neuronas intactas.

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Agradecemos al Dr. S. Stella y Helen Vuong de contribuciones para el protocolo de imágenes de calcio. Agradecemos Hojas Dr. K. para el rodaje de las escenas de la entrevista. Agradecemos al Dr. Arlene Hirano por sus comentarios sobre el manuscrito. Este proyecto de investigación y desarrollo se llevó a cabo por los autores en la Escuela David Geffen de Medicina en UCLA y es posible gracias a un acuerdo de contrato que se adjudicó y administrado por el Comando de Investigación y Material Médico del Ejército de EE.UU. (USAMRMC) y la tecnología de la telemedicina y Avanzado Centro de Investigación (TATRC), en Fort Detrick, MD con el Número de Contrato: W81XWH-10-2-0077. El apoyo a estos estudios también provino de NIH EY04067 y opiniones de Mérito VA (NB). BCN es un VA Carrera del Investigador Científico.

Todos los experimentos se llevaron a cabo de conformidad con las directrices para el bienestar de los animales de laboratorio emitidos por la Política de Servicio de Salud Pública en Cuidado Humano y Uso de Animales de Laboratorio y la Universidad de California-Los Ángeles (UCLA) Comité de Investigación Animal. Se utilizaron masculino y femenino adulto ratas Sprague-Dawley (Charles River Lab, Wilmington, MA) entre la edad de 3-5 semanas. 1. Animal y Tejidos Preparación para Wholemount Retina y Protocolo de inmunohistoquímica <ol><li> Prepare los siguientes materiales y herramientas: un microscopio de disección, 2 pinzas con puntas muy finas, tijeras, papel de filtro de celulosa, pipeta de plástico y un portaobjetos de microscopio. </li><li> La eutanasia a la rata en una cámara cerrada por profundamente anestesiar al animal con 1-3% de isoflurano seguido por decapitación con una guillotina. Quitar los ojos con un par de tijeras de iris y el lugar en una placa de Petri que contiene la solución extracelular. Hibernate A, Ames míSe recomiendan Dium o soluciones fisiológicas. </li><li> [Si se desea el relleno de la CGR con Fluo-4 Paso opcional]. Realizar el etiquetado Fluo-4 como se describe en el 2.3 a 2.4 pasos. </li><li> Usando el microscopio de disección (intensidad de la luz: 1,6 x 10 8 fotones / mm 2 ⋅sec), retire la córnea mediante la reducción de la parte frontal del globo ocular. Retire el objetivo y el vítreo de la superficie de la retina interna con fórceps. Para quitar el vítreo, estabilizar el globo ocular sosteniendo firmemente la esclerótica con una pinza. Tienes que despegar la base del vítreo hacia el centro de la retina con la otra pinza. La preparación en esta etapa se llama el ocular, que se utiliza para cryosections. Más detalles sobre cryosections se pueden encontrar en las referencias 14,15. </li><li> Retire la retina de la ojera. Luego, hacen cuatro cortes para permitir la retina para establecer planos. Montar suavemente la retina en un portaobjetos de microscopio con la capa de fotorreceptores arriba. Añadir una gota de solución a la retina y poner cepapel de filtro llulose en la retina. Una vez que la retina se adhiere al papel de filtro, colocar la retina en solución. Si es necesario, aplanar la retina con un cepillo o fórceps. </li><li> Coloque las retinas wholemounted en PFA al 4% durante 10-15 minutos para la fijación. </li><li> Lavar las retinas wholemounted tres veces durante 30 min en tampón fosfato 0,1 M (PB), pH 7,4. Bloquear las retinas con 5% de suero de cabra normal o suero de burro en PB 0,1 que contiene 0,3% de Triton X-100 y 0,1% NaN 3 a 4 ° C durante la noche. Se recomienda un volumen final de 500 l para todos los pasos para guardar las soluciones de bloqueo y anticuerpos. </li><li> Al día siguiente, se incuban los wholemounts retinae con los anticuerpos primarios 5-7 días a 4 ° C. Las diluciones óptimas deben ser determinadas por el usuario. </li><li> Lavar el retinas 3 x 30 min en PB 0,1 M y se incuba durante la noche a 4 ° C en el anticuerpo secundario conjugado con fluoróforo correspondiente que se dirige contra la especie de anticuerpo primario (concentración 1: 1000). </li><li> Después de tres lavados finales de 30 min cada uno con PB, montar las retinas en medio de montaje. Sellar el cubreobjetos con esmalte de uñas para el almacenamiento prolongado. Guardar las muestras a 4 ° C y proteger de la luz. </li></ol> 2. Etiquetado de las células ganglionares y axones en Rata Wholemount retinas con un calcio Indicador Tinte <ol><li> Preparar 1000 ml de mamíferos de Ringer que contenía (en mM) 125 NaCl, KCl 3, 2 CaCl2, 1,25 NaH 2 PO 4, 1 MgCl 2, 25 NaHCO 3 y 10 de la glucosa burbujeado con 95% O 2/5% de CO &#173; 2. </li><li> Realizar la disección como se describe en el 1.2 hasta 1.4 pasos. </li><li> Para cargar las células ganglionares de la retina (CGR) y sus axones con un colorante indicador de calcio, inyectar 0,5 l de Fluo-4 sal pentapotásico (de stock 40 mM en H 2 O) en el muñón del nervio óptico de aproximadamente 1 mm posterior al globo ocular usando una jeringa . Para medir los aumentos dinámicos en células ganglionares de la [Ca 2 + </sup&gt;] i un indicador con alta afinidad, tales como Fluo-4 con su Kd de 345 nM, es óptima. Fluo-4 ofrece el beneficio adicional de tener una muy alta eficiencia cuántica que resulta en un incremento de las emisiones de&gt; 100 veces cuando se une a calcio. </li><li> Coloque el ocular en mamíferos de Ringer burbujeaba con 95% O 2/5% de CO &#173; 2 durante 1 hora a temperatura ambiente en la oscuridad. </li></ol> 3. Calcio Protocolo Imaging para células ganglionares de la retina y los axones. <ol><li> Retire el ojo, cristalino y humor vítreo como se describe en los pasos 1.1 hasta 1.4. Aislar la retina de la ojera y se dividen en cuadrantes. Mount lado de células ganglionares de un cuadrante sobre un portaobjetos de vidrio y utilizar una rejilla rebanada arpa para estabilizarlo. Mantenga las otras piezas oscuro-adaptado de mamíferos de Ringer burbujeaba con 95% O 2/5% de CO &#173; 2 en el hielo para un uso posterior. </li><li> Superfuse la cámara de grabación con solución de Ringer y mamíferosmantener la solución burbujeando continuamente con 95% O2 / 5% de CO 2. </li><li> Image el tejido bajo el microscopio. Realizar experimentos a temperatura ambiente (~ 23 ° C) o alcanzar temperaturas fisiológicas por el calentamiento de la etapa, calentar el baño de agua debajo de la muestra o la aplicación de aire caliente a la superficie de la muestra. Nota: Es importante tener en cuenta que muchas funciones celulares están regulados por la temperatura, que desempeña un papel clave en el mantenimiento de la homeostasis intracelular 16. Sin embargo, la introducción de medidas de calentamiento puede aumentar la tasa de photobleaching, la evaporación del medio y el enfoque deriva causada por la expansión térmica 17. El uso de la temperatura ambiente disminuye intracelular compartimentación de Fluo-4 18. </li><li> Realizar un control de dos de K + impulsos de alta pareadas en ausencia de fármacos. Despolarizar CGR axones de CGR y elevando la [K +] o de 3 mM a 60 mM durante 33 segundos durante cada pulso para activarVGCCs con un sistema de superfusión impulsado ocho gravedad canal. Reducir Na + por 57 mM de mantener isosmolarity en la solución elevada K +. </li><li> Evaluar la contribución de las diferentes VGCCs a la señal de calcio con el uso de bloqueadores de los canales generales o específicas Ca. Por ejemplo, la reducción de la señal de calcio tras la administración de un bloqueador no específica del canal de calcio, cobalto, proporcionó una medida semi-cuantitativa de la contribución de los VGCCs a la alta K + señal de calcio -evoked. </li><li> Adquirir valores de intensidad de fluorescencia mediante la colocación de una región de interés (ROI) en torno a la CGR de interés (Figura 2). </li><li> Normalizar el cambio en la intensidad de fluorescencia producida por el segundo K + pico alto con el cambio producido por la primera alta K + pico. Entonces, para las pruebas de los bloqueadores de canales de calcio específicos, aplicar medicamentos sólo durante el segundo pulso de alta K + de un par y normalizar este pico contrael primer valor pico. Para medir el efecto del fármaco sobre el alto K + pico, dividir la amplitud de la segunda K + pico por el de la primera. El análisis debe ser realizado en estos valores con respecto a sus controles coincidentes derivados de alta emparejado K + picos medida en ausencia de fármaco. </li><li> Adquirir imágenes a intervalos de 5 seg. Para evitar la foto-blanqueo, mantener la excitación láser tan bajo como sea posible. Proporcionar la excitación por la línea de 488 nm del láser de argón, mientras que el tubo fotomultiplicador recoge la emisión fluorescente a través de un filtro LP 505 nm. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen revelaciones.

En este artículo, hemos descrito dos técnicas diferentes: 1) La inmunohistoquímica para mostrar Fluo-4 a la localización de las células ganglionares de la retina en wholemounts, y 2) El calcio de imágenes para analizar la dinámica de calcio en las células ganglionares de la retina y sus axones. La inmunohistoquímica utilizando wholemounts se ha usado para revelar la localización de las proteínas en el roedor retina 20-23. Sin embargo, hay algunas limitaciones. La calidad de la tin...

Las células ganglionares de la retina (CGR) expresan L, N, P / Q y de tipo T VGCC como se determina a través del bloqueo farmacológico de estos componentes de la célula entera Ca canal actual 1,2. VGCC son proteínas multiméricas transmembrana que están implicados en la liberación del transmisor, la transcripción de genes, la regulación celular y 3,4,5 plasticidad sináptica. VGCCs funcionales se componen de al menos tres clases distintas de subunidades: grandes, transmembrana α 1 formador de poros subunidades que establecen propiedades biofísicas y farmacológicas del canal, principalmente extracelular auxiliar α 2 δ subunidades y las subunidades β intracelulares. Los dos últimos complejos heteroméricos forma con diferentes subunidades α 1 y alterar la cinética de activación periódica y el tráfico de los canales a la membrana plasmática 6. En las últimas décadas, muchas técnicas se han empleado para estudiar la proteína expresión, como la inmunohistoquímica, ensayo inmunoenzimático, el análisis occidental y citometría de flujo. Estas técnicas requieren el uso de anticuerpos específicos para la detección de una proteína dada de interés y proporcionan potentes herramientas para la localización y distribución de proteínas específicas en diferentes tejidos. Las técnicas utilizadas para detectar y cuantificar los niveles de expresión de ARNm de una proteína en particular, como el norte de blot, RT-PCR en tiempo real cuantitativa RT-PCR, hibridación in situ, microarrays de ADNc y ensayo de protección de ribonucleasa proporcionan un enfoque alternativo cuando los anticuerpos no son fácilmente los niveles de expresión disponible o si de una proteína particular son bajos 7. Sin embargo, una limitación al uso de tales técnicas moleculares es la identificación requerido de la secuencia del gen. Para localizar proteínas en la retina, inmunohistoquímica se puede realizar en retinas wholemount. Debido a la accesibilidad de la CGR, la wholemountpreparación proporciona una excelente plataforma para el estudio de la localización de las proteínas específicas del somata RGC y sus axones. Además de su localización, algunas propiedades funcionales de los VGCCs en CGR se pueden demostrar mediante el uso de técnicas de imagen de calcio. Se describe un protocolo de imágenes de calcio para etiquetar selectivamente CGR con un colorante indicador de calcio para medir la dinámica del calcio intracelular. La contribución de las diferentes VGCCs a la señal de calcio en diferentes compartimentos celulares se puede aislar con el uso de bloqueadores de los canales de Ca subtipo específico. Quizás uno de los aspectos más beneficiosos de la técnica de imagen de calcio descrito aquí es la capacidad de grabar simultáneamente y de forma independiente a partir de múltiples CGR y sus axones. Aunque muchas técnicas fisiológicas, como la grabación de patch clamp de célula entera, proporcionan altos grabaciones resolución temporal de las corrientes de membrana, la somática o fuente axonal de thescorrientes e grabados no pueden ser discriminados y grabaciones sólo se pueden hacer de una sola neurona a la vez. Arrays multielectrodo (AAM) son capaces de registrar simultáneamente picos de muchas células, pero tampoco pueden detectar ni discriminar la activación de, por ejemplo, los diferentes subtipos de canales de calcio. Meas preferentemente grabar a partir de células que se encuentran en las proximidades de un electrodo 8 y registro de las células que generan grandes picos 9. Métodos de imagen ópticos proporcionan una estrategia alternativa para que las grabaciones simultáneas e independientes de toda la población de células que se pueden integrar con la información obtenida a partir de una sola célula de microelectrodos y grabación de patch clamp y grabación MEA. Aunque se emplearon las técnicas de imagen de calcio descritos aquí para estudiar la dinámica de calcio de CGR, patch clamp y AAM también se pueden utilizar en paralelo a aclarar aún más las corrientes iónicas y propiedades enriquecidas de CGR. <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; Dado que las células amacrinas desplazadas constituyen aproximadamente el 60% de la población neuronal en la capa de células ganglionares de la retina en el ratón 10, nuestro objetivo era utilizar una técnica de carga que etiqueta selectivamente CGR con un colorante indicador de calcio sintético en una preparación wholemount. Aunque colorantes indicadores de calcio sintéticos proporcionan una excelente plataforma para el estudio de la dinámica de calcio intracelular, su uso generalizado se ha visto obstaculizado por la incapacidad para cargar eficazmente poblaciones específicas de neuronas dentro de una red dada. Se han realizado muchas técnicas, tales como carga a granel 11 y 8,12 electroporación para cargar poblaciones enteras de células, sin embargo, estas técnicas no discriminan entre tipos de células específicos. Genéticamente codificados indicadores de calcio proporcionan la capacidad de etiquetar selectivamente poblaciones específicas de células, sin embargo, tales métodos requieren la generación de animales transgénicos 13. Nuestra técnica describe un method etiquetar selectivamente CGR en la preparación wholemount vía óptica inyección muñón del nervio de un colorante indicador de calcio. En conjunto, las técnicas estructurales y fisiológicos descritos en este artículo proporcionan una plataforma para estudiar la localización y la contribución de los VGCCs a la señal de calcio en la CGR y sus axones.

<table><tbody><tr><td>Tijeras rectas</td><td>WPI</td><td>14124-G</td><td>Herramientas de disección</td></tr><tr><td>Pinzas rectas</td><td>WPI</td><td>501985</td><td>herramientas de disección</td></tr><tr><td>tijeras de iris curvo</td><td>WPI</td><td>504487</td><td>herramientas de disección</td></tr><tr><td>Papel de filtro de celulosa</td><td>Millipore</td><td>HABP04700</td><td></td></tr><tr><td>Hibernate A</td><td>Invitrogen</td><td><a href="http://products.invitrogen.com/ivgn/en/US/adirect/invitrogen?cmd=catProductDetail&amp; productID=A1247501">A12475-01</a></td><td>Media</td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Vector</td><td>H-1000</td><td><a href="https://www.google.com/url?sa=t&amp; rct=j& q=& esrc=s& fuente=web& cd=1& cad=rja& sqi=2& ved=0CC0QFjAA& url=http%3A%2F%2Fwww.vectorlabs.com%2Fcatalog.aspx%3FcatID%3D279& ei=VAHbUb_fBceeiQLK2IHIDw& usg=AFQjCNHijFTTB8p19FMPQ5hg_qTawXU9mA& sig2=FJCfB9fzKR_TmjxoGvhLcg& bvm=bv.48705608,d.cGE">Medios de montaje para fluorescencia</a></td></tr><tr><td>Fluo-4 pentapotásico</td><td>Invitrogen</td><td>F-14200</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Abbott Laboratories</td><td>05260-05</td><td>anestesia Portaobjetos</td></tr> de <tr><td>microscopio</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-178-277</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio Zeiss LSM 5 Pascal</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Axioplan 40X (NA 0.8) objetivo lente</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 Cabra Anti-Conejo Anticuerpo IgG (H + L)</td><td>Sondas moleculares</td><td>A-11034</td><td>Anticuerpo secundario</td></tr><tr><td>RBPMS</td><td>ProSci, Poway, CA</td><td></td><td>Un anticuerpo policlonal de conejo&nbsp; se generó contra el N-terminal de la RBPMS&nbsp; polipéptido (RBPMS4-24), GGKAEKENTPSEANLQEEEVR, por un proveedor comercial (ProSci, Poway, CA).</td></tr></tbody></table>

inmunohistoquímicos y métodos de imagen de calcio en wholemount rata retina

Immunohistochemical and Calcium Imaging Methods in Wholemount Rat Retina

En este trabajo se describen las herramientas, los reactivos y las medidas prácticas que se necesitan para: 1) preparación exitosa de retinas wholemount para inmunohistoquímica y, 2) imágenes de calcio para el estudio de los canales de calcio dependientes de voltaje (VGCC) mediada por la señalización de calcio en la retina células ganglionares. El método de imagen de calcio describimos elude cuestiones relativas a la carga no específico de células amacrinas desplazadas en la capa de células ganglionares.

Inmunomarcaje con anticuerpos específicos proporciona una plataforma para estudiar la localización de proteínas particulares de interés en la retina y la técnica de imagen de calcio permite el estudio de la contribución de los VGCCs a la dinámica de calcio en las células ganglionares de la retina y sus axones. Mediante el uso de un anticuerpo contra las células ganglionares RBPMS proteína (proteína de unión de ARN con múltiples empalme) que etiqueta selectivamente CGR 19, hemos si...

Protocolos de inmunohistoquímica se utilizan para estudiar la localización de una proteína específica en la retina. Se emplean técnicas de imagen de calcio para estudiar la dinámica del calcio en las células ganglionares de la retina y sus axones.

Inmunohistoquímicos y métodos de imagen de calcio en Wholemount Rata Retina

In this paper we describe the tools, reagents, and the practical steps that are needed for: 1) successful preparation of wholemount retinas for ...

El objetivo general de este procedimiento es etiquetar selectivamente las células ganglionares de la retina en una preparación de montaje completo mediante la inyección en el muñón del nervio óptico de un colorante indicador de calcio. Esto se logra primero inyectando un colorante indicador de calcio de muy alta afinidad, como fluo-4, en el muñón del nervio óptico. A continuación, se aísla la retina del copa ocular y se divide en cuadrantes para montarla sobre un portaobjetos. En una cámara de registro configurada para imitar condiciones fisiológicas, se analizan las contribuciones de los canales de calcio activados por voltaje a la señal de calcio.En las células ganglionares de la retina se pueden medir en células despolarizadas utilizando bloqueadores de canales. En última instancia, los resultados pueden proporcionar mediciones semicuantitativas de la contribución de los canales de calcio regulados por voltaje a una señal como una señal de calcio inducida por alto potasio. La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes, como la electroporación y la carga masiva, es la capacidad de etiquetar selectivamente las células ganglionares de la retina y sus axones en una preparación de montaje completo, almacenar ojos disecados y mantenerlos en un medio de hibernación o solución similar.Ahora, si tiene la intención de realizar experimentos de imagen de calcio, rellene las células ganglionares de la retina con fluo-4. Inyecte 0,5 µL de sal penta potásica de fluo-4 40 milimolar, reconstituida en agua, en el nervio óptico, aproximadamente un milímetro por detrás del globo ocular. Transfiera el globo ocular a solución de Ringer para mamíferos.Se burbujeó con 95 % de oxígeno y 5 % de dióxido de carbono, o durante una hora a temperatura ambiente. Mantenga la preparación en la oscuridad. Deseccione los ojos bajo un microscopio con intensidad de luz controlada.Con una hoja de bisturí, haga suavemente una pequeña incisión en la parte frontal del globo ocular y retire la córnea. Luego, retire el cristalino de la superficie retiniana interna utilizando pinzas. Sujete firmemente la esclerótica.Al retirar el vítreo con la otra pinza, desprenda suavemente la base del vítreo hacia el centro de la retina. La preparación resultante, denominada copa I, puede procesarse para una preparación inmunohistoquímica de montaje completo, para una preparación de imagen de calcio, o prepararse para secciones transversales de la retina con el fin de realizar una preparación inmunohistoquímica de montaje completo. En primer lugar, realice cuatro cortes en la retina para que quede plana.Coloque la retina sobre la lámina de vidrio con la capa de células ganglionares hacia abajo. En segundo lugar, agregue una gota de solución sobre la retina y cúbrala con papel filtro de celulosa si es necesario; aplane la retina con un pincel o pinzas. En tercer lugar, cuando la retina esté completamente plana y se haya adherido al papel filtro, colóquela nuevamente en la solución.Para procesar primero la preparación, transfiérala a paraformaldehído al 4% durante 10 a 15 minutos. Luego, lave las retinas tres veces en tampón fosfato 0,1 molar a pH 7,4 durante 30 minutos por lavado, para un total de 90 minutos. A continuación, incube las retinas en 500 microlitros de solución bloqueadora durante la noche a cuatro grados Celsius.Esta solución es suero normal de cabra o suero de asno al 5 % en tampón fosfato con 0,3 % de Triton y 0,1 % de azida sódica. Durante los próximos cinco a siete días, incubar las retinas en la solución de anticuerpo primario a cuatro grados Celsius. La composición de esta solución debe determinarse empíricamente. Lavar la solución de anticuerpo primario de la misma manera en que se lavó el fijador.Luego, incubar las retinas en anticuerpo secundario a una concentración de uno a 1000 durante la noche a cuatro grados Celsius. Eliminar el anticuerpo secundario con tres lavados adicionales y tampón fosfato. A continuación, montar las retinas para su visualización y sellar con esmalte de uñas.Estas láminas deben almacenarse en la oscuridad a cuatro grados Celsius. Comience preparando una preparación de montaje completo para imágenes de calcio a partir de la copa I en solución de Ringer. Primero, corte el tejido retiniano en cuadrantes.Coloque un cuadrante plano en la cámara de registro con la capa ganglionar hacia arriba, y por lo tanto, la capa de fotorreceptores hacia abajo. Seque cuidadosamente el área circundante con una toallita Kim y coloque suavemente la rejilla engrasada sobre el tejido. A continuación, cargue la preparación retiniana en el equipo y termine de configurar el sistema de superfusión por gravedad de ocho canales.Si la retina montada se mueve después de colocar el arpa, retire y limpie cuidadosamente el arpa. Seque el área que rodea la retina y vuelva a montar el arpa. Llene la cámara de registro con solución de Ringer para mamíferos y mantenga la solución burbujeando continuamente con 95%oxígeno, 5%dióxido de carbono.Primero, como control sin fármacos, realice dos pulsos apareados de potasio alto, desde tres milimolares hasta 60 milimolares durante 33 segundos. Al desencadenarse la despolarización, la CRR debe activar los canales de calcio regulados por voltaje si el preparado está funcionando. Ahora continúe con los experimentos.El nifedipino, un bloqueador del canal de calcio dependiente del voltaje de tipo L, se utiliza comúnmente para evaluar la contribución de los canales de calcio dependientes del voltaje de tipo L a la señal de calcio evocada por despolarización con cobalto. Puede utilizarse un bloqueador no específico de canales de calcio para bloquear de forma no selectiva los canales de calcio dependientes del voltaje. Escanee la preparación cada cinco segundos para visualizar y adquirir imágenes de las células ganglionares retinianas fluorescentes.Utilice una potencia láser lo más baja posible. La excitación debe establecerse a 488 nanómetros y la emisión debe recogerse con un filtro LP de 505 nanómetros. Mediante los protocolos descritos, se realizó una marcación inmunológica contra la proteína de células ganglionares R-B-P-M-S, que es una proteína de unión al ARN con múltiples empalmes flow.Four.La tinción estuvo efectivamente limitada a las células ganglionares según la especificación del anticuerpo. A continuación, se estudió la contribución de los canales de calcio activados por voltaje a la señal de calcio en las RGC utilizando los valores de intensidad fluorescente obtenidos del rgc. En niveles basales, se pueden observar las RGC y sus axones marcados con flujo cuatro.Con el fin de obtener valores de intensidad fluorescente, se colocaron regiones de interés (ROI) sobre las células ganglionares, somas y/o axones. Después de aplicar potasio elevado a la preparación en montaje completo, la señal fluorescente de las CCR aumentó. Esto fue seguido por una reducción subsiguiente en los valores de intensidad de fluorescencia en presencia de cobalto durante el segundo pulso de potasio elevado.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo cargar selectivamente las células ganglionares de la retina con un colorante sintético indicador de calcio en una preparación de montaje completo.

immunohistochemical-calcium-imaging-methods-wholemount-rat

Research

Investigación

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociencia

La retina murino neonatal proporciona un modelo bien caracterizado fisiológica de la angiogénesis, que permite que las investigaciones de las funciones de los diferentes genes o fármacos que modulan la angiogénesis en...

Todo el montaje de la tinción de inmunofluorescencia del Neonatal ratón Retina de investigar Angiogénesis<em&gt; En vivo</em

El protocolo descrito aquí es para la evaluación estructural de una preparación de retina de montaje completo. Esto incluye descripciones de la disección de tejidos, el montaje en un inserto de membrana de politetrafluoroetileno (PTFE) hidrofilizado, la carga en bolo con marcadores fluorescentes y una comparación de la fijación con carbodiimida y paraformaldehído para el análisis inmunohistoquímico de componentes celulares y sinápticos.

Protocolo optimizado para Retina Preparación Wholemount de la Imagen y la inmunohistoquímica

Se describe un protocolo para supervisar Ca 2+ dinámica en los terminales de los axones de los conos utilizando una preparación rebanada ex-vivo de la retina del ratón. Este protocolo permite estudios completos sobre los conos de señalización de Ca2 + en un importante sistema modelo de mamífero, el ratón.

Imagen Ca<sup&gt; 2 +</sup&gt; Dinámica de Terminales cono fotorreceptor axón de la retina del ratón

Demostrar técnicas de preparación de tres tejidos diferentes para la visualización de immunohistochemical del pericitos microvasculares retina de rata, es decir, cryo-secciones, todo-montajes e hipotónica aislamiento de la red vascular.

Retinales crio-secciones, montajes de todo y vasculatura aislado hipotónica preparados para la visualización de Immunohistochemical del pericitos microvasculares

La imagen in vivo es una herramienta poderosa para el estudio de la biología en la salud y la enfermedad. Este protocolo describe imágenes transpupilares de la retina del ratón con un microscopio estándar de dos fotones. También demuestra diferentes métodos de imagen in vivo para etiquetar fluorescentemente múltiples cohortes celulares de la retina.

Imágenes transpupilares de dos fotones in vivo de la retina del ratón

Presentamos un protocolo para exponer el médula oblonga del ratón adulto del lado ventral. Mediante el uso de una lente de índice de refracción de gradiente con un microscopio en miniatura, las imágenes de calcio se pueden utilizar para examinar la actividad de los somatas neuronales oliva inferiores in vivo.

In vivo Imágenes de calcio en la aceituna inferior de ratón

El presente protocolo describe la fabricación de una ventana craneal grande (6 x 3 mm2) utilizando envoltura de alimentos, silicona transparente y vidrio de cubierta. Esta ventana craneal permite experimentos in vivo de imágenes de calcio de campo amplio y dos fotones en el mismo ratón.

In vivo Imágenes de calcio de campo amplio y dos fotones de un ratón usando una ventana craneal grande

Este protocolo detalla el procedimiento para obtener imágenes de las respuestas de calcio en el colículo superior (SC) de ratones despiertos, incluida la obtención de imágenes de la actividad de una sola neurona con microscopía de dos fotones mientras se deja la corteza intacta en ratones de tipo salvaje, y la obtención de imágenes de todo el SC con microscopía de campo amplio en ratones mutantes de corteza parcial.

Imágenes de calcio en el colículo superior de ratón

Las prótesis de retina tienen la capacidad de generar percepciones visuales. Para avanzar en el desarrollo de nuevas prótesis, se necesitan métodos ex vivo para probar los dispositivos antes de su implantación. Este artículo proporciona un protocolo completo para estudiar la actividad del calcio en la capa de células ganglionares de la retina cuando se somete a estimulación eléctrica.

Imágenes de calcio en retinas planas estimuladas eléctricamente

Los indicadores de calcio codificados genéticamente (GECI, por sus siglas en inglés) permiten un análisis robusto a nivel poblacional de la señalización de las neuronas sensoriales. Aquí, hemos desarrollado un enfoque novedoso que permite la visualización in vivo de GECI de la actividad de las neuronas de los ganglios trigéminos de rata.

En vivo Imágenes de calcio de las neuronas sensoriales en el ganglio trigémino de la rata

Este protocolo describe el procedimiento para aislar la retina de ratón de montaje completo y realizar inmunotinción para marcar todas las células ganglionares de la retina (RGC). Al proceso le siguen las imágenes y el recuento automático de las RGC mediante un software basado en IA, lo que proporciona un método sencillo, rápido y preciso para cuantificar las RGC en toda la retina del ratón.

Inmunotinción de montaje completo y recuento automático de células ganglionares de la retina de ratón

Aprende a marcar células ganglionares de la retina mediante inyección de indicador de calcio en el muñón del nervio óptico. Este método permite estudiar la dinámica del calcio en neuronas intactas.

Inmunohistoquímicos y métodos de imagen de calcio en Wholemount Rata Retina

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