Name: Métodos para caracterizar espontánea y de sobresalto-inducida Locomotion en un modelo de enfermedad de Parkinson inducida por rotenona-de Drosophila (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Aprende a caracterizar la locomoción espontánea y por sobresalto en Drosophila usando un modelo de enfermedad de Parkinson inducido por rotenona. Este método permite evaluar defectos locomotores en neurodegeneración.

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Los autores desean agradecer a Qiuli Wang, Centro de Recursos de Idiomas, Colby College, para la asistencia técnica con el procesamiento de vídeo y Eric Thomas, departamento de música, Colby College, para proporcionar la música de fondo. Este proyecto fue apoyado por subvenciones del Centro Nacional para Recursos de Investigación, INBRE (P20RR016463-12), el Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales (GM103423-12 P20), los nacionales de los Institutos de la Salud y la división de ciencia de Grant, Colby College (STA). JL y LWM fueron apoyados por becas de Fondo Académico de Verano, Colby College.

1.-Ensayo de locomoción inducida sobresalto Drosophila <ol><li> Tratamiento de Drogas <ol><li> Sedate para inmovilizar el número deseado (aproximadamente 8-12) de 1-3 días de edad moscas macho usando CO 2 y transportarlos a los viales que contengan el alimento suplementado con las drogas. Nota: Otro anestésico por ejemplo, el éter o el hielo puede ser utilizado para sedar a las moscas para permitir el recuento y la manipulación. </li><li> Permitir que las moscas para recuperarse de la sedación durante 20 minutos (o hasta que la recuperación) con el vial en posición horizontal (para evitar que las moscas se queda pegada en la comida) y luego coloque el vial en posición vertical en una oscuridad de 12 h, 12 h luz incubadora a 25 ° C para el resto del experimento. </li></ol></li><li> Experimental Set Up <ol><li> Divida esta configuración doble vial en tres secciones iguales de 6,33 cm, marcando círculos alrededor de los viales con un marcador permanente. </li><li> Después de 3 días de exposición al fármaco, transferencia vuela sin anestesiar en el vial inferior y colocar rápidamente el vial superiorsobre la abertura. Pegue las dos viales junto con cinta adhesiva transparente. </li><li> Permitir que las moscas se aclimaten al nuevo ambiente durante 15 min. </li><li> Coloque los viales en un fondo blanco y establecieron una cámara digital a una distancia apropiada del aparato vial doble con un contador de tiempo en la vista. Asegúrese de que el conjunto quede visible en un único marco de imagen y que todas las moscas están en foco. Para mantener marcos consistentes entre los ensayos, marque la ubicación de la cámara y el vial. </li></ol></li><li> Ensayo de Movilidad <ol><li> Claramente mostrar el número de prueba, el tratamiento farmacológico y el cronómetro en vista de la cámara. </li><li> Pulse firmemente el aparato vial doble contra la encimera 3 veces y asegurarse de que todas las moscas caen al fondo del vial. Simultáneamente iniciar el temporizador. </li><li> Cada 5 segundos durante 1 minuto, toma una foto del aparato. Nota: Como alternativa, un video podría ser capturado y se detuvo a intervalos apropiados para las mediciones. </li><li> Permitir que las moscas se recuperen en reposo durante 1 min. </li><li&gt; Repetir 2 veces más con el tiempo de recuperación de 1 minuto entre cada ensayo. Nota: Cada aparato debe tomar 5 minutos para completar la recopilación de datos. Mantener fuerza similar de tapping entre los ensayos. Múltiple (al menos 3) aparato puede ser manejado fácilmente de forma simultánea. </li></ol></li><li> Análisis de Datos <ol><li> Revise las imágenes y grabar el número de moscas en cada sección a través del tiempo. Calcular el porcentaje de moscas en cada sección con el tiempo. Notas: repetir todo este procedimiento con las mismas moscas a los 2 o 3 puntos de tiempo de interés, por ejemplo, los días 3, 5, y 7 Si demasiadas moscas mueren durante el experimento es posible ampliar el número juicio original para compensar para la mortalidad. Utilice el análisis estadístico apropiado para comparar los datos. </li></ol></li></ol> Ensayo 2. Drosophila espontánea Locomotion <ol><li> Preparación de Alimentos <ol><li> Reconstituir 3 g de medio Drosophila instantánea con 15 ml de agua desionizada y rotenona deseada(U otro fármaco de interés) dosis. </li><li> Una vez que la mezcla de los alimentos se ha convertido en firme (aproximadamente 5 minutos), cargue con cuidado la comida que es de aproximadamente 1 cm de alto en fabricante suministra tubos transparentes (5 mm x 65 mm). Añadir el fármaco infundido alimentos a los tubos colocando cuidadosamente los tubos verticalmente en la comida y torcer hasta que puedan ser retirados con la comida en el interior del tubo. Nota: Es útil colocar un dedo en la abertura del tubo para crear un vacío. Los alimentos no deben contener burbujas de aire o tienen una superficie irregular como las moscas se pueden atascar. </li></ol></li><li> Configuración Experimental <ol><li> Colocar una tapa de plástico sobre el extremo del tubo más próximo a la comida. Empuje la tapa de plástico en el tubo de tan poco como sea posible, ya que puede crear una burbuja de aire en el vial, si se empuja a la fuerza. </li><li> Sedate 1 días de edad moscas macho usando CO 2 e inserte con cuidado 1 macho vuela en cada tubo con un pincel. Repita dependiendo del número de ensayos deseados. </li><li> Enchufe elfinal del tubo más alejado de la comida con una pequeña bola de algodón, que se puede enrollar la mano más grande comprados en la tienda de bolas de algodón. </li><li> Permitir que las moscas se recuperen con los tubos en posición horizontal durante 15 minutos y asegurarse de que todas las moscas están vivos y activos. Inserte los tubos en DAM y asegúrese de que todos los tubos están en la misma posición respecto a la represa. Nota: Es posible colocar con el área de vigilancia en el centro del vial, o para empujar todos los viales a un lado, de manera que se está supervisando el extremo del tubo. Nota: Véase la discusión para variantes de este método. </li></ol></li><li> Recogida de datos <ol><li> Coloque el DAM en una oscuridad de 12 h, 12 h incubadora luz ajustado a 25 ° C. Conecte el DAM al sistema de recolección de datos. Abra el software DAM y en las preferencias de selección de longitud bin a 10 min. Comienza la recogida de datos y permitir que el programa para recoger datos durante 7 días. Nota: la longitud Bin se puede ajustar si es necesario. </li><li> Análisis de Datos Nota: Procesolos datos para obtener recuentos por min como una medida para la locomoción espontánea a largo plazo. <ol><li> Abrir archivos DAM programar y supervisar el acceso de exploración de datos haciendo clic en Seleccionar datos de entrada. </li><li> Seleccionar rango apropiado de monitor y seleccione la longitud bin a intervalos de 10 min. </li><li> En salida de tipo de archivo, elija Archivos de canal. Deje el resto de opciones por defecto. </li><li> Haga clic en los datos de exploración y guardar en una carpeta designada. </li><li> Importar datos en un circadiano software de análisis de datos para obtener los recuentos por min. Nota: Para el análisis de datos de software Clocklab es de uso general. Otras opciones están también disponibles. </li></ol></li></ol></li></ol>

<ol><li>Olanow, C. W., Tatton, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Etiology+and+pathogenesis+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+review+of+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Etiology and pathogenesis of Parkinson's disease.</a> Annual review of neuroscience. 22, 123-144 (1999).</li>
<li>Coulom, H., Birman, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+exposure+to+rotenone+models+sporadic+Parkinson%27s+disease+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Chronic exposure to rotenone models sporadic Parkinson's disease in Drosophila melanogaster.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 24, 10993-10998 (2004).</li>
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<li>Chaudhuri, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+genetic+and+environmental+factors+in+a+Drosophila+parkinsonism+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Interaction of genetic and environmental factors in a Drosophila parkinsonism model.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 2457-2467 (2007).</li>
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<li>Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assaying+locomotor%2C+learning%2C+and+memory+deficits+in+Drosophila+models+of+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Assaying locomotor, learning, and memory deficits in Drosophila models of neurodegeneration.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2011).</li>
<li>Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+iterative+negative+geotaxis+%28RING%29%3A+a+new+method+for+assessing+age-related+locomotor+decline+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+gerontology%22%5BJournal%5D)">Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila.</a> Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).</li>
<li>Nichols, C. D., Becnel, J., Pandey, U. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+assay+Drosophila+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Methods to assay Drosophila behavior.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).</li>
<li>Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+video+tracking+of+locomotion+in+adult+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">High-resolution video tracking of locomotion in adult Drosophila melanogaster.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2009).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

En este estudio, se describen dos procedimientos para medir tanto la locomoción espontánea a largo plazo y la locomoción inducida de sobresalto-a corto plazo en un modelo de Drosophila inducida por rotenona de la enfermedad de Parkinson. También se puede medir estas características de locomoción en las moscas expuestas a otros agentes farmacológicos conocidos para modelar la enfermedad de Parkinson, por ejemplo, paraquat 14, modelos genéticos de la enfermedad de Parkinson, por ejemplo,</...

Deficiencias de locomoción son el principal síntoma de la enfermedad de Parkinson y son causadas en gran parte por el deterioro de las neuronas dopaminérgicas de la sustancia negra 1. Rotenona es un insecticida cetónico que se ha estudiado ampliamente para modelar los déficits motores de Parkinson en Drosophila 2-6. Rotenona causa daño oxidativo mediante el bloqueo de la vía de la fosforilación oxidativa, lo que provoca en última instancia, la muerte celular 7. Las neuronas dopaminérgicas son más propensos a la toxicidad rotenona, por lo que los efectos de la sustancia química principalmente motor basa 2,7. Mediante la inducción de síntomas de la enfermedad de Parkinson en las moscas, podemos comprender mejor la enfermedad y remediar sus síntomas 6,8-11. Drosophila proporciona un buen modelo para el estudio de este efecto, ya que son genéticamente manejable, fácil de mantener, y tienen un ciclo de vida rápido. Varios estudios han demostrado que la rotenona causa inducida por sobresalto corto plazodefectos de locomoción en la mosca Drosophila -cuando se mantienen en los alimentos suplementados con rotenona, que muestran una respuesta más lenta geotáctico negativo después de sobresalto 2-6. Su incapacidad para subir hacia arriba en un aparato vial lo más rápidamente pruebas de control es indicativo de defectos de locomoción inducida de sobresalto-. El efecto de la rotenona en a largo plazo, movimiento espontáneo no está bien descrita. Monitores de actividad Drosophila (presas) se han utilizado con éxito para controlar el movimiento en el ritmo circadiano de Drosophila estudia 12,13. Las moscas se colocan en tubos individuales, que se cargan en el DAM. Este aparato está equipado con un sensor de infrarrojos, que cuenta el número de veces que una mosca rompe el haz de luz infrarroja. Estos recuentos se pueden utilizar como una medida de la locomoción y la actividad 12,13 sin molestias. Mediante la colocación de las moscas en un DAM, el efecto de la rotenona en su locomoción a largo plazo puede ser caracterizado. Este estudio describe los métodos de medición alocomoción y la locomoción espontánea a largo plazo ure corto plazo de sobresalto inducida con el fin de comprender mejor los efectos de la rotenona mediada por deficiencias motoras. Caracterización de las deficiencias de locomoción que imitan la enfermedad de Parkinson son importantes porque permiten el estudio de otros compuestos que pueden revertir estos defectos de locomoción.

<table><tbody><tr><td>Viales estrechos estándar</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-120</td><td></td></tr><tr><td>Rotenone</td><td>Sigma</td><td>R8875</td><td>Almacenar en el congelador, hacer fresco para cada experimento</td></tr><tr><td>Dimethyl Sulfoxide (DMSO)</td><td>Sigma</td><td>D8418</td><td>Solvente para rotenona</td></tr><tr>Medio instantáneo de<td>Drosophila</td><td>Carolina Biological&nbsp;</td><td>Fórmula 4-24</td><td></td></tr><tr><td>Monitor de actividad de Drosophila (DAM)</td><td>Tubos Trikinetics</td><td>DAM2</td><td>trikinetics.com</td></tr><tr><td>DAM Tubos</td><td>Trikinetics</td><td>5 X 65 mm</td><td></td></tr><tr><td>Receta de Rotenona + alimento (dosis de 125 mM)</td><td></td><td></td><td>Prepare 62,5 mM de solución madre de rotenona en DMSO disolviendo 25 mg de rotenona en 1 ml de DMSO; Para una dosis de 125 mM, añadir 10 mM de caldo de rotenona en DMSO a 5 ml de agua.</td></tr></tbody></table>

métodos para caracterizar espontánea y de sobresalto-inducida locomotion en un modelo de enfermedad de parkinson inducida por rotenona-de<em&gt; drosophila</em

Methods to Characterize Spontaneous and Startle-induced Locomotion in a Rotenone-induced Parkinson's Disease Model of Drosophila

La enfermedad de Parkinson es un trastorno neurodegenerativo que resulta de la degeneración de las neuronas dopaminérgicas en el sistema nervioso central, principalmente en la sustancia negra. La enfermedad provoca deficiencias motoras, que presentan como rigidez, temblores y la demencia en los seres humanos. Rotenona es un insecticida que causa el daño oxidativo mediante la inhibición de la función de la cadena de transporte de electrones en la mitocondria. También se utiliza para modelar la enfermedad de Parkinson en la Drosophila. Las moscas tienen una respuesta geotáctico negativo inherente, que los obliga a subir hacia arriba al ser sorprendido. Se ha establecido que la rotenona causa defectos de mortalidad y de locomoción principios que alteran la capacidad de las moscas para subir después de haber sido golpeado ligeramente hacia abajo. Sin embargo, el efecto de la rotenona en movimiento espontáneo no está bien documentada. Este estudio describe dos ensayos de rendimiento sensibles, reproducibles y de alta para caracterizar deficiencias inducida rotenona-inlocomoción y la locomoción espontánea a largo plazo a corto plazo de sobresalto-inducida en Drosophila. Estos ensayos pueden ser convenientemente adaptados para caracterizar otros modelos de Drosophila de defectos de la locomoción y la eficacia de los agentes terapéuticos.

Ensayo de locomoción inducida por sobresalto Drosophila Wildtype, Cantón-S, las moscas mostraron una respuesta negativa geotáctico robusto con sólo aproximadamente el 88% y el 5% de las moscas en las secciones superior e inferior, respectivamente, del aparato de doble vial después de 30 segundos (Figura 1). Las moscas expuestas a 125 M y 250 M rotenona durante 3 días mostraron una ligera disminución en el número de moscas en la sección supe...

La enfermedad de Parkinson es un trastorno neurodegenerativo que resulta de la degeneración de las neuronas dopaminérgicas en el sistema nervioso central, causando defectos de locomoción. Rotenona modelos de la enfermedad de Parkinson en Drosophila. Este documento describe dos ensayos que caracterizan a las deficiencias de locomoción tanto espontáneos como inducidos por el sobresalto causado por la rotenona.

Métodos para caracterizar espontánea y de sobresalto-inducida Locomotion en un modelo de enfermedad de Parkinson inducida por rotenona-de<em&gt; Drosophila</em

Parkinson&#8217;s disease is a neurodegenerative disorder that results from the degeneration of dopaminergic neurons in the central nervous system, ...

El objetivo general del siguiente experimento es determinar la locomoción inducida por el sobresalto y la locomoción espontánea a largo plazo en un modelo de enfermedad de Parkinson inducido por rotenona en drosófila, lo cual se logra criando a la drosófila en alimento suplementado con rotenona para inducir el fenotipo. Como segundo paso, las moscas se someten a un ensayo de respuesta al sobresalto y a un ensayo de locomoción espontánea a largo plazo utilizando un aparato de dos viales. En un monitor de actividad de drosófila, los resultados muestran que la exposición a la rotenona provoca defectos en la locomoción en drosófila, basados en la cuantificación de la respuesta al sobresalto y de la locomoción espontánea a largo plazo.Estos métodos pueden ayudar a responder preguntas clave en el campo de la drosófila, modelos de trastornos neurodegenerativos y de locomoción, como los defectos en la locomoción inducida por susto y la locomoción espontánea a largo plazo. Para comenzar, agregue 1.5 gramos de medio instantáneo para drosófila. En un vial estándar para moscas, prepare el medio con cinco mililitros de agua desionizada que contenga la dosis adecuada de rotenona.A continuación, sede ocho a doce moscas macho de uno a tres días de edad utilizando dióxido de carbono y transpórtelas a viales que contienen la droga. Deje que las moscas se recuperen de la sedación durante 20 minutos con el vial en posición horizontal, con alimento suplementado. Luego coloque el vial en posición vertical en un incubador con ciclo de 12 horas de luz y 12 horas de oscuridad a 25 grados Celsius para el resto del experimento.A continuación, invierta un vial estándar para moscas encima de otro vial y selle la junta con cinta adhesiva para crear un aparato de doble vial. Luego, divida el doble vial en tres secciones iguales de 6,33 centímetros marcando círculos alrededor de los viales con un rotulador permanente. Después de tres días de exposición al fármaco, transfiera las moscas al aparato de doble vial.Sustituir la cinta sobre la costura permite que las moscas se aclimaten al nuevo ambiente durante 15 minutos. Luego, coloque los viales sobre un fondo blanco y prepare la cámara digital. Asegúrese de que todo el aparato sea visible en un solo encuadre y que el dispositivo de doble vial y el temporizador estén a la vista, y de que todas las moscas estén enfocadas.Marque la ubicación de la cámara y del vial para mantener cuadros consistentes entre los ensayos; muestre claramente en la vista de la cámara el número del ensayo y el tratamiento farmacológico. A continuación, golpee firmemente el aparato con doble vial contra la superficie de trabajo tres veces y asegúrese de que todas las moscas caigan al fondo del vial, iniciando inmediatamente el cronómetro. Tome una fotografía del aparato cada cinco segundos durante un minuto.Luego, permita que las moscas se recuperen sin perturbaciones durante un minuto. Repita el ensayo otras dos veces con tiempos de recuperación de un minuto entre cada prueba. Revise las imágenes y registre el número de moscas en cada sección a lo largo del tiempo para realizar los cálculos: reconstituya tres gramos de oph instantáneo, un medio con 15 mililitros de agua desionizada y la dosis adecuada de rotenona.Después de cinco minutos, coloque cuidadosamente los tubos verticalmente en viales transparentes y cargue el alimento sólido hasta una altura de un centímetro girando el tubo. A continuación, empuje suavemente la tapa de plástico en el extremo del tubo, evitando la formación de burbujas de aire. Sedar moscas macho de un día de edad con dióxido de carbono e inserte cuidadosamente una mosca en cada tubo utilizando un pincel.Luego, tape el extremo del tubo con una pequeña bola de algodón. Deje que las moscas se recuperen del dióxido de carbono con los tubos en posición horizontal durante 15 minutos y asegúrese de que todas las moscas estén vivas y activas. Inserte los tubos en el monitor de actividad de Drosophila o DAM, y verifique que todos los tubos estén en la misma posición con respecto al DAM.Coloque el DAM en un incubador con un ciclo de 12 horas de luz y 12 horas de oscuridad a 25 grados Celsius. A continuación, conecte el DAM al sistema de recolección de datos. Luego, abra el software del DAM en las preferencias.Seleccione una duración de intervalo de 10 minutos para comenzar la recolección de datos y permita que el programa recolecte datos durante siete días. A continuación, abra el programa de escaneo de archivos DAM y acceda a los datos del monitor haciendo clic en seleccionar datos de entrada. Luego, seleccione el rango de monitor adecuado y configure la duración del intervalo en intervalos de 10 minutos.A continuación, en el tipo de archivo de salida, seleccione los archivos de canal y deje todas las demás opciones en sus valores predeterminados. Luego, haga clic en escanear datos y guarde los archivos en una carpeta designada. Finalmente, importe los datos al software de análisis de datos circadianos para obtener las cuentas por minuto.Después de tres días de exposición a diferentes dosis de roone, las moscas tipo silvestre Canton s expuestas a dosis crecientes mostraron una deficiencia en la respuesta de sobresalto. Un porcentaje menor de moscas se encontraba en la sección superior y un porcentaje mayor en la sección inferior del aparato después de 30 segundos, lo que indica una deficiencia en la respuesta saral; una tendencia similar se observó en las moscas del ensayo de locomoción espontánea. Se midieron los conteos por minuto en el monitor de actividad de Drosophila o DAM.En el cuarto día después de la exposición, las moscas expuestas a 250 micromolares y 500 micromolares de rotenona muestran una reducción significativa en las cuentas por minuto. Estos ensayos pueden adaptarse fácilmente para caracterizar defectos en la locomoción en otros modelos esofágicos de enfermedad y la eficacia de agentes terapéuticos.

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Investigación

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Neurociencia

El estudio del comportamiento complejo en el aparato...

Vídeo de alta resolución de Seguimiento de la locomoción en adultos de Drosophila melanogaster

Este video describe cómo rastrear moscas que caminan libremente para evaluar su capacidad general de locomoción. El protocolo presentado demuestra la configuración del ensayo y el análisis de datos mediante software de seguimiento de vídeo.

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Drosophila melanogaster, son útiles en el estudio de las manipulaciones genéticas o ambientales que afectan a comportamientos como la actividad locomotora espontánea. Aquí se describe un protocolo que utiliza monitores con rayos infrarrojos y software de análisis de datos para cuantificar la actividad locomotora espontánea.

Determinación de la actividad locomotora espontánea en<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Con una webcam y una combinación de programas de software libre y de bajo costo, los patrones locomotores en Drosophila melanogaster se pueden analizar para detectar diferencias en la velocidad, la distancia y el tiempo de las distintas actividades de motor.

Un método de bajo costo para el Análisis convulsiva actividad y movimiento en<em&gt; Drosophila</em

Presentamos un ensayo de geotaxis negativo optimizado, barato y fiable en Drosophila melanogaster como modelo para trastornos neurodegenerativos. Al ser más sensible a los defectos locomotores leves, este ensayo ayudará a detectar posibles interacciones genéticas y objetivos farmacológicos.

Análisis cuantitativo de los Defectos de escalada en un modelo de Drosophila de enfermedades neurodegenerativas

Este protocolo paso a paso analiza el comportamiento de geotaxis negativa de Drosophila mediante un sistema automatizado de varios cilindro que aloja cientos de moscas y sincroniza su acción por un motor eléctrico. Sobre sincronización, es analizar comportamiento mosca geotaxis negativa, grabados digitalmente y analizados usando el software RflyDetection diseñado.

Un ensayo Geotaxis negativa iterativo rápido automatizado para analizar comportamiento escalar adulto en un modelo de Drosophila de la neurodegeneración

Describimos protocolos detallados para el uso de FLLIT, un método de aprendizaje automático totalmente automatizado para el seguimiento del movimiento de las garras de las piernas en el movimiento libre de Drosophila melanogaster y otros insectos. Estos protocolos se pueden utilizar para medir cuantitativamente los movimientos sutiles de la marcha caminando en moscas de tipo salvaje, moscas mutantes y modelos de mosca de neurodegeneración.

Seguimiento de piernas totalmente automatizado en insectos en movimiento libre mediante la segmentación y el seguimiento de las piernas de aprendizaje de funciones (FLLIT)

El presente protocolo evalúa la actividad locomotora de Drosophila mediante el seguimiento y análisis del movimiento de las moscas en una arena hecha a mano utilizando el software de código abierto Fiji, compatible con plugins para segmentar píxeles de cada fotograma basado en grabación de vídeo de alta definición para calcular parámetros de velocidad, distancia, etc.

Una técnica simple para evaluar la actividad locomotora en Drosophila

Este protocolo presenta un ensayo para modelar el estreñimiento en un modelo de Drosophila basado en alfa-sinucleína de la enfermedad de Parkinson.

Medición del estreñimiento en un modelo de Drosophila de la enfermedad de Parkinson

El protocolo presenta un método rentable y de alto rendimiento para evaluar la neurotoxicidad en la mosca de la fruta a través de la cuantificación de la disfunción locomotora como alternativa a los modelos tradicionales de mamíferos. Su objetivo es evaluar los efectos neurotóxicos de compuestos farmacéuticos, agentes ambientales o modificaciones genéticas utilizando un modelo sensible, reproducible y éticamente favorable.

Análisis conductual de la disfunción locomotora en Drosophila melanogaster como lectura de la neurotoxicidad

Aprende a caracterizar la locomoción espontánea y por sobresalto en Drosophila usando un modelo de enfermedad de Parkinson inducido por rotenona. Este método permite evaluar defectos locomotores en neurodegeneración.

Métodos para caracterizar espontánea y de sobresalto-inducida Locomotion en un modelo de enfermedad de Parkinson inducida por rotenona-de Drosophila (Video) | JoVE Journal

Métodos para caracterizar espontánea y de sobresalto-inducida Locomotion en un modelo de enfermedad de Parkinson inducida por rotenona-de

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