Name: Aplicación de descubierto en dos de Spider Mite Tetranychus urticae Estudios interacción planta-plaga (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 53 s
Description: Aprende a recolectar y aplicar ácaros araña en plantas experimentales usando métodos de lavado y cuantificación con cuadrícula. Esta técnica mejora los estudios de interacciones planta-plaga con análisis estadístico.

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Este proyecto fue financiado por el Gobierno de Canadá a través de Genome Canada y el Instituto de Genómica de Ontario (OGI-046), y el Fondo de Investigación de Ontario-Liderazgo Global en Genómica y Ciencias de la Vida GL2-01-035 (a M.G. y V.G.). T.V.L. es becario postdoctoral del Fondo para la Investigación Científica de Flandes (FWO).

1. El mantenimiento de la araña roja Población NOTA: Los ácaros son criados en California frijoles rojos (Phaseolus vulgaris). <ol><li> Cultiva plantas de frijol de semillas durante 2-3 semanas antes de la infestación. </li><li> Intermix estas plantas con las plantas infestadas; ácaros adultos se colonizar rápidamente el material vegetal fresco. </li><li> Retire las plantas de frijol infestados cada 7-10 días, reemplazándolos con plantas frescas. </li></ol> 2. Recopilación de la hembra adulta ácaros <ol><li> Mite colección utilizando el método de lavado <ol><li> Para recoger los ácaros, coloque una planta de frijol fresco en contacto con las plantas infestadas 1 a 2 días antes del experimento. </li><li> Utilice 20 a 30 plantas de soja frescos para recoger entre 1.000 y 2.000 ácaros hembra adulta. </li><li> Preparar una solución de Tween 20 al 0,001% con agua del grifo a temperatura ambiente. </li><li> Lavar las plantas de frijol infestadas en la solución de Tween 20, utilizando de 2 a 3 plantas en un momento. </li><li&gt; Cada planta se lava 2-3x para recoger todos los ácaros de las hojas. </li><li> Realice desde el paso 2.1.4 dentro de los 10 min para evitar la mortalidad de ácaros. </li></ol></li><li> Aislamiento de ácaros hembras adultas por filtración de la suspensión a través de tamices de Mite Definido Tamaño de la malla <ol><li> Preparar tamices de los siguientes tamaños de malla: 500 m (para eliminar los desechos) y 300 m (para recoger los ácaros adultos femeninos) (Figura 1A). </li><li> Se filtra la suspensión a través del tamiz de 500 micras. </li><li> Filtrar de nuevo la suspensión a través del tamiz de 300 micras. Se conservarán los ácaros hembras adultas. </li><li> Sumerja un tamiz de 300 micras con los ácaros hembras adultas en el agua limpia del grifo para eliminar el Tween 20. </li><li> Spread ácaros en una sola capa en la parte inferior del tamiz. </li><li> Use una toalla de papel para eliminar el exceso de agua de la malla y los lados del tamiz. NOTA: Esto se hace porque los ácaros necesitan secarse rápidamente con el fin de recuperarse. </li><li> Preparar un conjunto como se muestra en la Figura 1B; esto permitirá que los ácaros se muevan libremente, pero evitará que se escape. </li><li> Coloque el tamiz con ácaros en la parte superior de la criba que se utiliza como soporte. </li><li> Surround tamiz de fondo con agua para evitar que los ácaros de la dispersión. NOTA: Los ácaros se iniciará la recuperación después de aproximadamente 5 min. Después de aproximadamente 30 min, el número de ácaros en movimiento es suficiente para iniciar la recogida de (Figura 1D). Los ácaros deben ser cobrados en un plazo de 1 hora, ya que producen la seda que interfiera con la colección. </li></ol></li></ol> 3. Planta de la infestación con ácaros NOTA: Una vez ácaros hembra adultos se han recuperado, que se pueden utilizar para la infestación de la planta. Existen 2 métodos utilizados para infectar plantas experimentales con ácaros hembras adultas: a) utilizando un pincel fino (servicio de protocolo 3.1) y b) utilizando una bomba de vacío o una línea (servicio de protocolo 3.2). <ol><li> Infestación de ácaros usando un cepillo de NOTA: Araña infestación de ácaroscon un cepillo se utiliza para la aplicación de hasta 30 ácaros por planta. <ol><li> Use un cepillo de arte suave pelo ronda de tamaño 00 o más fino. </li><li> Humedecer el cepillo con agua del grifo RT. </li><li> Recoger suavemente hasta los ácaros del tamiz utilizando la punta del pincel y transferirlos a la planta. </li></ol></li><li> Infestación de ácaros usando una bomba NOTA: la infestación de plantas con ácaros recolectados por una línea de bomba / vacío se utiliza cuando se aplican más de 30 ácaros. Para este método, una bomba de vacío para componentes microelectrónicos de recogida o una línea de vacío se puede utilizar. Es importante mantener la constante de flujo de aire y de resistencia suficiente (2-4 psi). <ol><li> Coloque una punta de pipeta de 1 ml al tubo que se conecta a la línea de la bomba de vacío o mediante el uso de un corte de 1,5 ml tubo de centrífuga en la parte inferior como un adaptador entre el tubo de la bomba / vacío y la punta. </li><li> Coloque un pedazo de toalla de papel entre la punta de la pipeta y el adaptador (tubo de centrífuga de 1,5 ml). Nota: El propósito de esto es para atrapar los ácaros dentro de tél pipeta de punta durante el proceso de aspiración y también para reducir el flujo de aire (Figura 1C). </li><li> Recoger ácaros directamente desde el tamiz con la punta de la pipeta. </li><li> Alternativamente, recoger los ácaros uno por uno a partir de hojas infestadas utilizando un estereoscopio. </li><li> Cuando se ha recogido el número requerido de los ácaros, quite la punta de la pipeta del tubo, asegurándose de que el pedazo de toalla de papel en la parte posterior de la punta de la pipeta se ve alterado. </li><li> Recoger ácaros tocando la punta de la pipeta y se peguen los ácaros juntos. A continuación, colocarlos en la hoja; en cuestión de segundos, los ácaros comenzarán a dispersar en la hoja. </li></ol></li></ol> 4. Registro y Evaluación de Daños Plant <ol><li> Daños a las plantas de grabación NOTA: Para A. thaliana, daños a las plantas se evalúa después de 4 días de alimentación del ácaro. El daño se registró como la superficie total de manchas cloróticas. Para la medición de daño, toda la roseta se corta y se escanea.Parámetros de análisis descritos son para un escáner Epson V30 pero actuará como un buen punto de partida para cualquier escáner plano similar. Mantener los parámetros de exploración constantes para todos los experimentos que permite la comparación entre las corridas experimentales individuales. <ol><li> Cubra escáner con hoja de transparencia para evitar la contaminación de la superficie del escáner con material vegetal. </li><li> Cortar toda una roseta y el lugar en el escáner de modo lado adaxial (superior) de las hojas se enfrentan a la fuente de luz del escáner y elemento de captura. Alternativamente, si los rosetones son demasiado densos para capturar las hojas individuales sin solapamiento, diseccionar el rosetón en hojas o grupos de hojas que no se superponen con tijeras finas individuales antes de colocar en el escáner. Múltiples rosetas se pueden escanear simultáneamente. </li><li> Cubra rosetas o las hojas con una hoja de papel blanco para evitar la adhesión y la contaminación de la cubierta del escáner. </li><li> Cierre la tapa del escáner y haga una búsqueda con los siguientes parámetros: Resolución: 1,200 dpi; Modo de color: Adobe RGB; Brillo: 25; Tipo de archivo: JPEG de máxima calidad. </li><li> Guarde archivos de imágenes para análisis de daños posteriores. </li></ol></li><li> Cuantificación de daños Plant NOTA: El área de daño se calcula manualmente usando Photoshop. Debido a las grandes diferencias en la forma de la hoja y la intensidad de color de los síntomas como resultado de la alimentación de ácaros, métodos automáticos no eran fiables. Por lo tanto, un método de la cuadrícula se utiliza para evaluar los daños planta: <ol><li> Abra la imagen de la planta con Photoshop. </li><li> Crear una nueva capa, a continuación, superponer la imagen escaneada con una cuadrícula de 0,25 mm x 0,25 mm divisiones (Ver o Display - Show - Cuadrícula, atajo de teclado Ctrl + &#39;). </li><li> En una capa superpuesta, marcar las áreas dañadas de la hoja utilizando un punto (usar la &quot;Herramienta Lápiz&quot;, atajo de teclado B). Utilice un único punto para cada cuadrado de la cuadrícula debajo de la cual hay un daño que cubren más de la mitad de la unidad de red. El tamaño del punto se define en píxeles (es decir, </em&gt; 52 píxeles por punto). </li><li> Cuando todos los cuadrados de la cuadrícula que muestran daños a las plantas que cubren al menos la mitad de la unidad de la cuadrícula están marcados con un punto, utilice la herramienta histograma (Ventana - Histograma) para determinar el número total de píxeles de la capa. La herramienta permite que un histograma para medir el número de píxeles. Dado que cada punto está representado por un número constante y conocida de píxeles, la herramienta histograma medirá el número total de píxeles, que representa el número total de puntos, y, por extensión, el número total de cuadrados marcados. </li><li> Calcular el número de &quot;puntos&quot; marcados con la siguiente fórmula: Número de puntos = número total de píxeles / número de píxeles por punto. </li><li> Calcular el área total de daño de multiplicar el número de puntos marcados en la imagen por el área de 1 cuadrado de la cuadrícula, como un punto corresponde a un cuadrado de la cuadrícula. </li></ol></li></ol>

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<li>Goodspeed, D., Chehab, E. W., Min-Venditti, A., Braam, J., Covington, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+synchronizes+jasmonate-mediated+defense+with+insect+circadian+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis synchronizes jasmonate-mediated defense with insect circadian behavior.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 4674-4677 (2012).</li>
<li>Kim, J. H., Lee, B. W., Schroeder, F. C., Jander, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+indole+glucosinolate+breakdown+products+with+antifeedant+effects+on+Myzus+persicae+%28green+peach+aphid%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+journal+%3A+for+cell+and+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Identification of indole glucosinolate breakdown products with antifeedant effects on Myzus persicae (green peach aphid).</a> The Plant journal : for cell and molecular biology. 54, 1015-1026 (2008).</li>
<li>Adio, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biosynthesis+and+defensive+function+of+Ndelta-acetylornithine%2C+a+jasmonate-induced+Arabidopsis+metabolite%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Biosynthesis and defensive function of Ndelta-acetylornithine, a jasmonate-induced Arabidopsis metabolite.</a> Plant Cell. 23, 3303-3318 (2011).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+tomato+homolog+of+CORONATINE-INSENSITIVE1+is+required+for+the+maternal+control+of+seed+maturation%2C+jasmonate-signaled+defense+responses%2C+and+glandular+trichome+development%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">The tomato homolog of CORONATINE-INSENSITIVE1 is required for the maternal control of seed maturation, jasmonate-signaled defense responses, and glandular trichome development.</a> Plant Cell. 16, 126-143 (2004).</li>
<li>Kant, M. R., Ament, K., Sabelis, M. W., Haring, M. A., Schuurink, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+timing+of+spider+mite-induced+direct+and+indirect+defenses+in+tomato+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Differential timing of spider mite-induced direct and indirect defenses in tomato plants.</a> Plant Physiol. 135, 483-495 (2004).</li>
<li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Image+to+ImageJ%3A+25+years+of+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nat Methods. 9, 671-675 (2012).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este video muestra los protocolos que se utilizan para aislar y para infestar las plantas con un gran número de ácaros hembras adultas. Aunque hemos presentado este protocolo utilizando A. thaliana, que puede ser utilizado para cualquier sistema de interacción ácaro araña planta-y en la actualidad se está aplicando con éxito también en plantas de tomate y de vid (Vitis vinifera). Los rendimientos de protocolo resultados reproducibles, lo que indica que los ácaros son recogidos de estado fisiológico com...

Interacción planta-plaga es un tema de gran importancia científica y económica. Se estudió históricamente el uso de ambas plantas de cultivo (tales como el tomate) y el modelo de planta, A. thaliana. En ambos casos, la susceptibilidad de las plantas a los herbívoros se podía medir de forma directa a través de la evaluación del fenotipo de la planta después de un ataque de herbívoros o indirectamente a través de la evaluación del desempeño de plagas. Las mediciones directas de susceptibilidad de las plantas se utilizaron previamente para un número de especies de plagas de insectos usando una gama de métodos. Por ejemplo, la herbivoría de larvas de lepidópteros se mide como una estimación de la porción de tejido de la planta consumida por cualquiera de Plutella xylostella (palomilla dorso de diamante) o Trichoplusia ni (gusano falso medidor) por el ojo desnudo con la ayuda de una rejilla 12. Además, existen métodos que utilizan la imagen digital de daño de la hoja con el posterior análisis de imagen cuantitativo. Tales métodos se utilizaron enestudios de A. interacción con Frankliniella occidentalis thaliana (trips occidental de las flores) 13, Scaptomyza flava (drosophila hoja-minería) 14, y T. NI 15. Mediciones indirectas de la susceptibilidad de las plantas son ampliamente utilizados en los estudios de interacción planta-plaga. Por ejemplo, la susceptibilidad de A. thaliana a melocotón áfido Myzus persicae herbivoría se evalúa típicamente a través de análisis de la fecundidad de las plagas y descripción de la morfología bruto de una planta después de la interacción 16,17. Otro indicador indirecto típico de A. thaliana susceptibilidad a una plaga es una evaluación de peso seco o húmedo del herbívoro. Este parámetro se utiliza para caracterizar la herbivoría de lepidoterans, tales como Pieris rapae (pequeño blanco), P. xylostella, o T. ni a su larvas o pupal etapas 15,17. Los ácaros son células contenido de FeEders. Daño inducido Mite-es reconocida como una colección de manchas cloróticas que varían en color de blanco a verde pálido. La susceptibilidad de una planta huésped a la herbivoría araña roja se evaluó previamente, ya sea indirectamente a través del análisis de los días de función araña después de la infestación de 18,19, o directamente a través de la morfología bruto de plantas semanas después de la infestación de 18 o usando una imagen digital de las hojas expuestas a los ácaros por día con el posterior análisis automatizado de imágenes 19. Estos métodos se están desarrollando y utilizando para el estudio de las interacciones entre las plantas de tomate y T. urticae, y por lo general se utiliza un pequeño número de ácaros de la araña (5-15 por tratamiento) que se recogieron a partir de la población de ácaros mixta y se colocaron en la superficie de las hojas usando un cepillo de cerdas suaves. Sin embargo, estos métodos no son adecuados para estudios en los que un mayor número de ácaros se deben aplicar. Además, mientras que el procesamiento directo de las imágenes de la hoja en el software de análisis de imágenestales como Adobe Photoshop (San José, CA) o ImageJ 20 se pueden utilizar para el análisis de daño de tomate, estos protocolos requieren una modificación con el fin de ser aplicado a las hojas que tienen una mayor reflectividad de la superficie o están ligeramente coloreados y tienen tricomas altamente visibles ( por ejemplo, A. thaliana) que interfieren con la selección automatizada de manchas cloróticas que marcan daños a las plantas. Además, la etapa de desarrollo de los ácaros araña que se pueden utilizar fácilmente con los métodos anteriores se limita a las hembras adultas más prevalentes y fácilmente identificables y se opone a la utilización de otras etapas de desarrollo. El primer paso crítico para análisis de alto rendimiento de la interacción planta-ácaro araña es establecer protocolos reproducibles, simples y robustas para desafiar a las plantas con la araña roja y fiable evaluar los resultados de la interacción. En este vídeo, un método eficiente para la recogida rápida y sencilla de un gran númeromero de ácaros hembras adultas, su aplicación en un host de planta experimental, y la evaluación de los daños a las plantas debido a la alimentación del ácaro araña se describen. El protocolo presentado permite la recolección rápido y eficiente de los cientos de personas en cualquier etapa de desarrollo (huevos, larvas, ninfas, adultos machos, y las hembras) que se puede utilizar para la aplicación experimental posterior. Además, estos protocolos se pueden aplicar a cualquier planta huésped ácaros, pero se demuestran específicamente en el caso de A. thaliana.

<table><tbody><tr><td>Material vegetal:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Frijol rojo de California</td><td>Stokes, Thorold, ON, Canadá</td><td></td><td>de 2 semanas de edad, bien infestado de ácaros 2 o 3 días antes de su uso. Se pueden utilizar otros cultivares de Phaseolus vulgaris.</td></tr><tr><td>Productos químicos:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td>1% solución madre está preparada para simplificar la alícuota</td></tr><tr><td>Agua</td><td></td><td></td> del grifo <td>A temperatura ambiente, el choque térmico y frío afecta la tasa de supervivencia y el rendimiento de los ácaros</td></tr><tr><td>Otros materiales y equipos:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bandeja de plástico</td> Juego <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>de tijeras</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vasos de precipitados</td><td></td><td></td><td></td>de 2</tr><tr><td>L Toallas de</td><td></td><td></td><td></td>papel</tr><tr><td>Juegos de tamices</td><td>Fabricación propia</td><td></td><td>Instrucciones detalladas disponibles</td></tr><tr><td>Cepillo</td><td></td><td></td><td></td>fino</tr><tr><td>Pipetas Puntas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td> de<td>pipeta</td><td>de 0,2 y 1 ml</td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga de 1,5 ml</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bomba de</td><td></td><td></td> aire <td>Bomba tipo acuario con caudal de aire invertido. Se puede utilizar una línea de vacío. La caída de presión requerida es de aprox. 2-4 psi</td></tr><tr><td>Escáner estereoscópico</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Epson</td><td>V30</td><td>Cualquier escáner de superficie plana que permita el grado necesario de control sobre la calidad del escaneo. Usamos Epson V30 para nuestros experimentos.</td></tr><tr><td>Computadora</td><td></td><td></td><td>con Windows o OS X PC que sea compatible con el hardware del escáner y el software Adobe Photoshop.</td></tr><tr><td>Software de Adobe Photoshop</td><td>Adobe Systems Inc., San José, CA, EE. UU</td><td></td><td>. Varios Cualquier versión con la herramienta de histograma incluida.</td></tr></tbody></table>

aplicación de descubierto en dos de spider mite<em&gt; tetranychus urticae</em&gt; estudios interacción planta-plaga

Application of Two-spotted Spider Mite Tetranychus urticae for Plant-pest Interaction Studies

El ácaro de la araña de dos manchas, Tetranychus urticae, es un herbívoro artrópodos polífagas ubicuo que se alimenta de una notable amplia gama de especies, con más de 150 de valor económico. Es una de las principales plagas de los cultivos de invernadero, especialmente en las Solanáceas y Cucurbitáceas (por ejemplo, tomates, berenjenas, pimientos, pepinos, calabacín) y plantas ornamentales de invernadero (por ejemplo, rosas, crisantemos, claveles), cultivos extensivos anuales (como el maíz, el algodón, soja y remolacha azucarera), y en cultivos perennes (alfalfa, fresas, uvas, cítricos y ciruelas) 1,2. Además de la polifagia extrema que hace que sea una plaga agrícola importante, T. urticae tiene una tendencia a desarrollar resistencia a una amplia variedad de insecticidas y acaricidas que se utilizan para su control 3-7. T. urticae es un organismo experimental excelente, ya que tiene un ciclo de vida rápido (7 días a 27 ° C)y puede ser fácilmente mantenido a alta densidad en el laboratorio. Métodos de ensayo de la expresión génica (incluyendo la hibridación in situ y tinción de anticuerpos) y para inactivar la expresión de genes endógenos de ácaros araña utilizando la interferencia de ARN se han desarrollado 8-10. Recientemente, toda la secuencia del genoma de T. urticae ha informado, creando una oportunidad para el desarrollo de este herbívoro plaga como organismo modelo con recursos genómicos equivalentes que ya existen en algunas de sus plantas hospederas (Arabidopsis thaliana y el Solanum lycopersicum tomate) 11. Juntos, estos organismos modelo podría ayudar a comprender las bases moleculares de las interacciones planta-plaga. Aquí, un método eficiente para la recogida rápida y sencilla de un gran número de ácaros hembras adultas, su aplicación en un host de planta experimental, y la evaluación de los daños a las plantas debido a la alimentación del ácaro araña se describen. El protocolo presentado enables colección rápido y eficiente de los cientos de personas en cualquier etapa de desarrollo (huevos, larvas, ninfas, adultos machos, y las hembras) que se puede utilizar para la aplicación experimental posterior.

El uso de 20 a 30 plantas de frijol infestadas, se puede recolectar alrededor de 2.000 ácaros hembra adulta utilizando tamices. El tiempo requerido para infestar 10 plantas con 20 ácaros por planta es de aproximadamente 15 minutos si se utiliza un cepillo para transferir los ácaros. Las combinaciones de los métodos de recolección y de la aplicación se muestran en la Figura 2. Este protocolo genera resultados reproducibles de daños en las plantas, lo que demuestra que los áca...

Los protocolos para la preparación eficaz de las muestras homogéneas de la araña roja, la infestación de plantas experimentales y la evaluación de daños en las plantas, como se requiere para los estudios de interacción planta-plaga se desarrollaron.

Aplicación de descubierto en dos de Spider Mite<em&gt; Tetranychus urticae</em&gt; Estudios interacción planta-plaga

The two-spotted spider mite, Tetranychus urticae, is a ubiquitous polyphagous arthropod herbivore that feeds on a remarkably broad array of species, with ...

El objetivo general de este procedimiento es recolectar rápidamente ácaros araña y de manera confiable en una etapa de desarrollo determinada. Esto se logra primero criando ácaros en plantas de frijol. A continuación, la planta experimental se infesta con ácaros hembra utilizando un pincel o una bomba, dependiendo del número de ácaros que deban aplicarse a una sola planta.El paso final es la cuantificación manual del daño en la planta mediante el método de cuadrícula en un programa de edición gráfica. Finalmente, se utiliza un análisis estadístico para mostrar la susceptibilidad diferencial de líneas o ecotipos vegetales al ataque de arañitas rojas. La ventaja principal de esta técnica frente a los métodos existentes es que proporciona un método eficiente para la recolección rápida y sencilla de un gran número de ácaros hembra adultos, su aplicación a un hospedador vegetal experimental y la evaluación del daño en la planta causado por la alimentación de los ácaros.El protocolo presentado permite la recolección rápida y eficiente de cientos de individuos en cualquier estadio de desarrollo, los cuales pueden utilizarse para aplicaciones experimentales posteriores. Para comenzar, cultive plantas de frijol rojo de California a partir de semillas durante dos o tres semanas antes de la infestación; mezcle estas plantas con plantas ya infestadas. Los ácaros adultos colonizarán rápidamente el material vegetal fresco.Retire las plantas de frijol anteriores infestadas cada siete a diez días y sustitúyalas por plantas frescas para recolectar ácaros mediante el método de lavado. Coloque una planta de frijol fresca en contacto con las plantas infestadas uno o dos días antes del experimento. Utilice de 20 a 30 plantas de frijol frescas para recolectar de 1000 a 2000 hembras adultas de ácaros.El día del experimento, corte el ácaro. Inocule las plantas de frijol en la base, luego lave las plantas infestadas de frijol, dos o tres plantas a la vez, en una solución de tween 20 al 0,001%. Cada planta se lava dos o tres veces para recolectar todos los ácaros de las hojas.Trabaje dentro de un período de 10 minutos para evitar la mortalidad de los ácaros. A continuación, prepare un tamiz de 500 micrómetros para eliminar los restos y un tamiz de 300 micrómetros para recolectar las hembras adultas. Filtre la suspensión a través del tamiz de 500 micrómetros y luego vuelva a llenar la suspensión a través del tamiz de 300 micrómetros.Las ácaras hembra adultas se retienen si se acumula demasiada espuma en el tamiz. Con las ácaras, se puede lavar suavemente bajo agua corriente a temperatura ambiente. Sumerja un tamiz de 300 micrómetros con ácaras hembra adultas en agua corriente limpia para eliminar el Tween 20; distribuya las ácaras en una sola capa en el fondo del tamiz.Utilice una toalla de papel para eliminar el exceso de agua de la malla y los lados del tamiz, de modo que los ácaros puedan secarse rápidamente y recuperarse. A continuación, coloque un tamiz con ácaros encima del tamiz que se utiliza como soporte. Rodee el tamiz inferior con agua para evitar que los ácaros se dispersen.Esto permitirá que los ácaros se muevan libremente, pero evitará que escapen. La infestación con ácaros araña mediante un pincel se utiliza para aplicar hasta 30 ácaros por planta. Utilice un pincel redondo de pelo suave, tamaño cero, doble cero o más fino.Humedezca el pincel con agua del grifo a temperatura ambiente. Recoja suavemente los ácaros del tamiz utilizando la punta del pincel y transfiéralos a la planta. Cuando se aplican más de 30 ácaros, se logra la infestación de la planta con ácaros recolectados mediante una línea de vacío con bomba.Para este método, sujete la punta de pipeta de un mililitro al tubo que se conecta a la bomba o línea de vacío utilizando un tubo de centrífuga de 1,5 mililitros. Corte la base para usarla como adaptador entre el tubo de vacío de la bomba y la punta; coloque un trozo de toalla de papel entre la punta de la pipeta y el adaptador. El propósito de esto es atrapar ácaros dentro de la punta de la pipeta durante el proceso de aspiración, así como reducir el flujo de aire, recolectando los ácaros directamente del tamiz mediante la punta de la pipeta.Alternativamente, recolecte ácaros uno por uno de hojas infestadas utilizando un estereoscopio. Cuando se haya recolectado el número requerido de ácaros, retire la punta de pipeta del tubo, asegurándose de que el trozo de toalla de papel en la parte posterior de la punta de pipeta permanezca intacto.Recolecte los ácaros golpeando suavemente la punta de la pipeta para agruparlos. Luego colóquelos sobre la hoja. En cuestión de segundos, los ácaros comenzarán a dispersarse por la hoja.Para registrar el daño en la planta, cubra el cristal del escáner con una hoja de transparencia para evitar contaminar la superficie del escáner con material vegetal. Corte toda la roseta y colóquela sobre el cristal del escáner.De modo que la cara adaxial de las hojas queda orientada hacia el escáner. Fuente de luz y elemento de captura, se pueden escanear múltiples rosetas simultáneamente. Alternativamente, si las rosetas son demasiado densas y no permite capturar hojas individuales sin superposición, separe la roseta en hojas individuales o grupos de hojas sin superposición utilizando tijeras finas antes de colocarlas sobre el escáner.Cubra las rosetas o hojas con un trozo de papel blanco para evitar que se adhieran y contaminen la tapa del escáner. Cierre la tapa del escáner y realice un escaneo con una resolución de 1.200 DPI, brillo ajustado a +25 y tipo de archivo en jpeg de calidad máxima. Guarde los archivos de imagen para su posterior análisis de daños.Para cuantificar el daño en la planta, abra la imagen de la planta con Photoshop. Cree una nueva capa. Luego, superponga la imagen escaneada con la cuadrícula de puntos de 25 milímetros por punto.Divisiones de 25 milímetros en una capa superpuesta. Marque las áreas dañadas de la hoja utilizando un punto con la herramienta de lápiz. Utilice un solo punto para cada cuadrado de la cuadrícula inferior donde haya daño que cubra más de la mitad de la unidad de la cuadrícula.El tamaño del punto se define en píxeles. Cuando todos los cuadrados de la cuadrícula que muestran daño en la planta que cubre al menos la mitad de la unidad de cuadrícula están marcados con un punto, se utiliza una herramienta de histograma para determinar el número de píxeles en la capa que representa el número de puntos, y por extensión, el número total de cuadrados marcados.Calcule el número de puntos marcados dividiendo el número total de píxeles entre el número de píxeles por punto. Calcule el área total de daño multiplicando el número de puntos marcados en la imagen por el área de un cuadrado de la cuadrícula, ya que un punto corresponde a un cuadrado de la cuadrícula. Este gráfico muestra el área de daño medida en plantas de AANA de tres semanas de edad.Cuatro días después de la aplicación de 20 ácaros araña hembras. Los resultados del daño en la planta son reproducibles, lo que demuestra que los ácaros recolectados se encuentran en un estado fisiológico similar y son adecuados para estudios de interacción planta-ácaro araña. Este gráfico muestra el área de daño medida en plantas AANA de tres semanas de edad cuatro días después de la aplicación de 20 ácaros araña hembras.Como ejemplo de aplicación experimental, se evaluó la variación natural y la susceptibilidad a la araña roja, o aory, en tres sesiones de aana mediante la aplicación de 20 hembras de araña roja por planta utilizando un pincel húmedo y registrando el daño cuatro días después de la infestación. La cuantificación de los datos de daño puede presentarse como un gráfico de barras o un diagrama de caja, y analizarse mediante el método estadístico adecuado. En este ejemplo, la susceptibilidad a la araña roja o bry varía significativamente entre las sesiones.Los pasos de aislamiento e infestación pueden completarse en menos de 30 minutos, dependiendo del número de muestras y de la elección del flujo de trabajo. Es importante recordar que los ácaros no deben permanecer sumergidos en la solución al 20 % durante más de 10 minutos. El sistema de aislamiento mediante semillas puede utilizarse para obtener fracciones de ácaros en distintas etapas de desarrollo, las cuales pueden emplearse en una variedad de experimentos, no solo en el campo de la interacción plaga-planta, sino también en fisiología del desarrollo y biología molecular.

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Aprende a recolectar y aplicar ácaros araña en plantas experimentales usando métodos de lavado y cuantificación con cuadrícula. Esta técnica mejora los estudios de interacciones planta-plaga con análisis estadístico.

Aplicación de descubierto en dos de Spider Mite

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