Name: Cell Analyzer basados en impedancia Real-Time como una herramienta para delinear vías moleculares implicadas en la neurotoxicidad y neuroprotección en una línea celular neuronal (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 23 s
Description: Aprende a utilizar un analizador celular basado en impedancia para monitorear en tiempo real la citoprotección en líneas celulares neuronales. Este método permite evaluar la participación de vías de segundos mensajeros en neuroprotección.

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El apoyo financiero para los experimentos presentados en el estudio fue proporcionado por el programa Marie Heim-Vögtlin de la Fundación Nacional Suiza para la Ciencia.
Agradecemos a la Sra. Johanna Nyffeler por desarrollar un conjunto de programas modificados de MATLAB para el cribado de diferencias estadísticamente significativas en los datos del analizador de células en tiempo real y al Dr. Yama Abassi por su útil debate.

1. Preparación <ol><li> Coloque la estación del analizador de células en tiempo real en un incubador de cultivo de tejido fijado en 37 ° C y con 5% de CO 2. Llevar a cabo todas las manipulaciones de cultivo de células y tratamientos farmacológicos en una campana de cultivo de tejidos en condiciones estériles. </li><li> NOTA: Neuronal líneas celulares que requieren diferentes ajustes de temperatura en comparación con las condiciones estándar para la cultura, deben ajustarse en consecuencia. Para las líneas de células débilmente adherentes, utilizar agentes de revestimiento para facilitar la interacción de las células con los microelectrodos de oro en el fondo de los pocillos de la placa de E-96. </li><li> Preparar soluciones 1,000x de stock de los compuestos farmacológicos para el tratamiento del cultivo celular (agentes neuroprotectores o inhibidores de la segunda vías mensajeras en el disolvente apropiado - dimetilsulfóxido o agua estéril) y almacenarlos a -20 ° C. Utilice el disolvente como vehículo en los siguientes tratamientos. </li><li> Células de cultivo de neuroblastoma humano SK-N-SH en DMEM / F12 medio suplementado con 10% de suero bovino fetal (FBS) (medio de proliferación) en matraces de cultivo celular con 175 cm 2 de superficie a una densidad de aproximadamente 75%. Mantenga el número de pases celulares dentro de un rango (de aproximadamente 10 pasajes) para determinar la coherencia entre los experimentos en términos de tasa de proliferación celular y la respuesta a la citotoxicidad. Se prefieren los números de pases bajos. </li><li> Se lava la capa de células SK-N-SH adherente con PBS, y trypsinize con solución de tripsina-EDTA al 0,05% durante 5 min a 37 ° C. Centrifugar las células a 170 × g durante 5 min para eliminar la tripsina. Resuspender las células en 10 ml de medio de proliferación. Contar las células con contador de células Cetro y ajustar el número de células a 300.000 células / ml diluyendo las células con medio de proliferación. </li></ol> 2. Plating y proliferación de las células SK-N-SH <ol><li> Añadir medio de proliferación 100 l a cada pocillo de la placa de E-96 y se deja durante 30 minutos en la campana de cultivo de tejidos a RT se equilibre. Inserte el E-PlaTE 96 en el tiempo real estación analizador de células en el incubador de CO2 a 37 ° C. </li><li> Iniciar el software analizador de células en tiempo real. En la página Layout seleccionar los pozos incluidos en el experimento y entran en los cuadros de edición de la información sobre el tipo de células, el número de células, los nombres y las concentraciones de los compuestos químicos utilizados para el tratamiento de células. NOTA: Para los fines de este protocolo se recomiendan al menos 4 réplicas para cada tratamiento. </li><li> En la página de software Horario determinar &quot;Pasos&quot; incluida en el experimento, seleccionando el número de barridos de medición Índice de Células y el intervalo entre barridos para cada paso. Desde el paso 1 está predeterminado para la medida de fondo, seleccione &quot;Agregar un paso&quot; y establecer el paso 2 para medir el Índice de Células cada 15 minutos durante 96 horas. NOTA: Para los tratamientos, en los que se espera que los efectos con cinética rápida, establecen barridos a intervalos más cortos. </li><li> Haga clic en Iniciar para iniciar el paso predeterminado de forma automática 1y medir la impedancia de fondo de los medios de comunicación. Este valor se resta automáticamente por el software en cada punto de datos una vez que se añadieron las células a los pocillos. </li><li> Utilice el previamente preparado en el paso 1.5) suspensión celular de 300.000 células / ml en medio de proliferación. 30.000 células / pocillo para la toxicidad celular / estudios de neuroprotección y 15.000 células / pocillo para estudios de proliferación celular. Saque el E-Plate y añadir 100 l de suspensión celular por pocillo durante toxicidad celular / estudios de neuroprotección y añadir 50 l de suspensión celular y medio de proliferación de 50 l por pocillo de estudios de proliferación celular. El número de células sembradas por pocillo debe ser optimizado para cada línea celular empíricamente. </li><li> Remover con suavidad la E-Plate 96, incluso para chapado de las células. Deje el E-Plate 96 durante 30 min en la campana de cultivo de tejido a temperatura ambiente para permitir que las células se asientan de manera uniforme a la parte inferior de los pocillos. </li><li> Inserte el E-Plate 96 en la estación de analizador de células en tiempo real y comenzar el paso 2 de la Lista pla edad. Monitorear los valores del Índice Cell largo del experimento al ver las curvas de células en la página Terreno y los datos del índice de la célula primas en la página Índice de Células del software. </li></ol> 3. Suero privación <ol><li> 24 horas después de la siembra de las células, una pausa en el experimento, y quitar la E-96 Placa de la estación de analizador de células en tiempo real. Diluir inhibidores de segundo mensajero de las existencias 1,000x con medio libre de suero / DMEM F12 - a 200 veces la concentración final. Tratar las células con 1 mu l inhibidores de las vías de segundos mensajeros que se realizarán las pruebas de su participación en la neurotoxicidad / neuroprotección 30 minutos antes de iniciar la citotoxicidad, de inhibir las respectivas vías. Devuelva el E-Placa 96 a la estación y reanudar mediciones experimentales Índice Cell. </li><li> Después de 30 minutos en pausa el experimento de nuevo. Retire con cuidado medio de proliferación plenamente de la E-Placa 96 pocillos con una pipeta (o una pipeta multicanal), teniendo cuidado de no perturbar la capa de células adherentesdirigiendo el borde de la punta de la pipeta a la esquina del pozo. Añadir 200 l / pocillo de DMEM libre de suero / F12 (medio de privación de suero). Asegúrese de intercambio rápido de medio de cultivo celular para reducir al mínimo la agitación mecánica de las células. </li><li> Diluir compuestos a ensayar por sus efectos neuroprotectores de 1.000X de stock con medio DMEM / F12 libre de suero a 200 veces la concentración final. Añadir 1 mu l compuestos a ensayar por sus efectos neuroprotectores y 1 mu l inhibidores de las vías de segundos mensajeros en los pocillos individuales de acuerdo con el plan experimental. </li><li> En las células para estudios de proliferación no cambie medio. Diluir compuestos a ensayar desde 1,000X de stock a 200 veces la concentración final en el medio de proliferación, el tratamiento con 1 l por pocillo y continuar a la cultura en medio de proliferación. </li><li> Reanudar el experimento para continuar con Cell mediciones de índice cada 15 minutos durante 96 horas según lo establecido previamente. </li></ol> 4. datos Análisis <ol><li> Para neurotoxicidad / datos neuroprotección normalizan Índice de Células hasta el último punto de tiempo antes del tratamiento farmacológico o cambio de medio para reducir la variación entre los experimentos seleccionando &quot;normalizado Índice de Células&quot; y &quot;normalizar la hora&quot; en la página Mapa. </li><li> Destacar los pozos en la página Parcela en las condiciones experimentales de interés y haga clic en &quot;Añadir&quot; para trazar las curvas de índice de células normalizadas. Observar la cinética del efecto neurotóxico / neuroprotector, o la inhibición de segundo mensajeros como curvas de índice de células normalizado como una función del tiempo. </li><li> Tenga en cuenta las curvas de índice de la célula para los tratamientos con fármacos ensayados en medio de proliferación como una función de tiempo para evaluar si un efecto sobre la proliferación está implicado en el efecto neuroprotector / neurotóxico. </li><li> Exportar la información experimental para todos los puntos de la célula de tiempo Índice de la página de software Índice de Células en un archivo de Excel para iniciar la evaluación estadística de los resultados <br/&gt; NOTA: Como primer paso en el análisis estadístico de un conjunto de programas de MATLAB modificados que utilizan la prueba t de Welch, con el valor p representa semilogarithmically, utilizar eje invertida contra la escala de tiempo (incluidos como archivos de código suplementarios). Estos programas permiten la detección de los valores de p en el tiempo-luego de todo un experimento en tiempo real analizador de células, y por lo tanto ayudan a la selección de los puntos de tiempo para el análisis estadístico más detallado. Ver el material complementario para obtener información detallada sobre los programas. </li><li> Para el análisis estadístico de las diferencias en los valores de índice de células en diferentes condiciones de tratamiento en puntos específicos de tiempo, seleccione los valores de índice de la célula en respectivos puntos de tiempo desde el archivo exportado Excel. Analizar los valores del índice de la célula de los puntos de tiempo seleccionados con una sola vía o de dos vías de análisis de varianza (ANOVA) seguido de una prueba post-hoc utilizando el software estadístico. </li></ol>

<ol><li>Cavallucci, V., D'Amelio, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matter+of+life+and+death%3A+the+pharmacological+approaches+targeting+apoptosis+in+brain+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Pharm.+Des%22%5BJournal%5D)">Matter of life and death: the pharmacological approaches targeting apoptosis in brain diseases.</a> Curr. Pharm. Des. 17 (3), 215-229 (2011).</li>
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<li>Diemert, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impedance+measurement+for+real-time+detection+of+neuronal+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Impedance measurement for real-time detection of neuronal cell death.</a> J. Neurosci. Methods. 203 (1), 69-77 (2012).</li>
<li>Kustermann, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+label-free%2C+impedance-based+real+time+assay+to+identify+drug-induced+toxicities+and+differentiate+cytostatic+from+cytotoxic+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+In+Vitro%22%5BJournal%5D)">A label-free, impedance-based real time assay to identify drug-induced toxicities and differentiate cytostatic from cytotoxic effects.</a> Toxicol In Vitro. 27 (5), 1589-1595 (2013).</li>
<li>Marinova, Z., Walitza, S., Grünblatt, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5-HT2A+serotonin+receptor+agonist+DOI+alleviates+cytotoxicity+in+neuroblastoma+cells%3A+role+of+the+ERK+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Neuropsychopharmacol.+Biol.+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">5-HT2A serotonin receptor agonist DOI alleviates cytotoxicity in neuroblastoma cells: role of the ERK pathway.</a> Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 44, 64-72 (2013).</li>
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<li>Galante, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+toxicity%2C+conformation+and+morphology+of+typical+initial+aggregation+states+of+A%CE%B21-42+and+A%CE%B2py3-42+beta-amyloids%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Biochem.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Differential toxicity, conformation and morphology of typical initial aggregation states of Aβ1-42 and Aβpy3-42 beta-amyloids.</a> Int. J. Biochem. Cell. Biol. 44 (11), 2085-2093 (2012).</li>
<li>Sheline, C. T., Cai, A. L., Zhu, J., Shi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serum+or+target+deprivation-induced+neuronal+death+causes+oxidative+neuronal+accumulation+of+Zn2%2Band+loss+of+NAD%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Serum or target deprivation-induced neuronal death causes oxidative neuronal accumulation of Zn2+and loss of NAD.</a> Eur. J. Neurosci. 32, 894-904 (2010).</li>
</ol>

Costos de publicación para el video-artículo actual fueron patrocinados por &quot;ACEA Biosciences&quot;.

El protocolo actual presenta la utilidad de un analizador de células en tiempo real para evaluar de manera continua y en condiciones de etiqueta libre de los efectos neuroprotectores / neurotóxicos de compuestos en líneas de células neuronales y para profundizar en los segundos mensajeros vías implicadas en el efecto. A pesar de que la utilidad del analizador de células en tiempo real para estudiar la citotoxicidad y efectos de las drogas sobre la proliferación celular es generalmente recono...

La muerte celular neuronal desempeña un papel fundamental en la fisiopatología de muchos trastornos relacionados con el cerebro 1. La disponibilidad de información confiable y de alto rendimiento en los ensayos de toxicidad in vitro es fundamental para tener un mejor conocimiento de los mecanismos de neurotoxicidad y para ayudar a seleccionar moléculas neuroprotectoras como candidatos terapéuticos en el desarrollo de fármacos 2. Sin embargo, hay muchas limitaciones a la mayoría ampliamente utilizado en assays.They neurotoxicidad vitro evaluar la neurotoxicidad / neuroprotección en un solo punto de tiempo no permitir la resolución cinética; a menudo utilizan etiquetas o sonda que puede interferir con las vías de señalización y limitar los estudios adicionales en la misma población de células, y son a menudo mano de obra, y en muchos casos no proporcionan una visión mecanicista. En el presente estudio se demuestra la utilidad de un tiempo real basados ​​en la impedancia analizador de células para determinar la neurotoxicidad y neuroprotección en una línea celular neuronal en tiempo real y bajo libre de etiquetascondiciones y para proporcionar información sobre los mecanismos descendentes a través del análisis de las vías de segundos mensajeros involucrados en el efecto. Estudios previos han confirmado la validez del analizador de células en tiempo real para determinar la citotoxicidad así como los efectos sobre la proliferación celular en líneas celulares en comparación con las técnicas estándar 3,4,5,6. Por ejemplo, se observó una buena correlación entre las lecturas de la viabilidad celular WST-1 ensayo estándar y los valores de índice de células en varios puntos de tiempo bajo condiciones de proliferación basal y después de dos paradigmas diferentes tóxicos en células HeLa 3. En las células A549 y MDA-MB-231 proliferación y citotoxicidad provocado con el estabilizador de microtúbulos paclitaxel mostraron valores muy similares cuando evaluada por mediciones del índice de la célula y de la forma estándar utilizado sulforrodamina B (SRB) de ensayo 4. En la línea celular neuronal de las neuronas del hipocampo inmortalizadas HT-22 Cell mediciones de índice fueron validados por su capacidad to detectar la proliferación celular, la citotoxicidad glutamato y citoprotección contra el ampliamente utilizado de 3 (4,5-dimetiltiazol-2-il) 2,5-difeniltetrazolio bromuro (MTT) 5. En el mismo estudio, los resultados del ensayo de MTT y las mediciones de índice de la célula también una buena correlación en la medición de la proliferación de las células progenitoras neuronales, citotoxicidad después de la privación de factores de crecimiento y de rescate de la citotoxicidad por el pan-caspasa inhibidor QVD 5. Inducida en células NIH 3T3 por vandetanib (receptor del factor de crecimiento endotelial vascular y el inhibidor del receptor del factor de crecimiento epidérmico) Citotoxicidad mostró resultados similares medidos con los valores de índice de la célula o ensayo de captación de rojo neutro 6. Recientemente, hemos utilizado el sistema analizador de células en tiempo real para evaluar los efectos neuroprotectores de la serotonina 2A (5-HT 2A) agonista del receptor de clorhidrato de (±) -2,5-dimetoxi-4-iodoamphetamine (DOI) en una línea celular neuronal ( células SK-N-SH) y se seleccionaron para la participación de second vías de mensajería a través de monitorizar el efecto de la inhibición química de la neuroprotección observada 7. Curiosamente, el receptor 5-HT 2A tiene agonistas tanto alucinógenas y no alucinógeno (como DOI y lisurida, respectivamente), que pueden activar las dos vías de segundos mensajeros comunes y distintas 8. Las ventajas de la técnica presentada son que permite recoger información en tiempo real sobre la supervivencia celular en el transcurso de días, para delinear las vías de segundos mensajeros implicados, para evaluar la posible contribución de los efectos de proliferación a la neuroprotección, y para seleccionar un tiempo óptimo para estudios de punto final adicionales en la misma población de células. Un diagrama esquemático del flujo de trabajo en el protocolo actual se presenta en la Figura 1.

<table><tbody><tr><td>xCELLigence&nbsp; Paquete de sistema RTCA SP</td><td>ACEA Biosciences</td><td>No: 00380601030</td><td>Consta de analizador RTCA, estación RTCA SP y unidad de control RTCA</td></tr> placa <tr><td>E 96</td><td>ACEA Biosciences</td><td>No: 05232368001</td><td>Para el cultivo de las células, insertado en la estación RTCA SP</td></tr><tr><td>SK-N-SH células</td><td>ATCC (en asociación con LGC Standards)</td><td>HTB-11</td><td>Puede ser reemplazado por otra línea celular neuronal adherente de interés</td></tr><tr><td>DMEM/F12&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8437</td><td>Medio de cultivo celular</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Life Technologies</td><td>16140-063</td><td>Suplementos para la proliferación, pero no para la privación sérica</td></tr><tr><td>Matraz para cultivo de tejidos T175</td><td>Sarstedt</td><td>83.1812.302</td><td>Para el cultivo de células, que posteriormente se colocarán en la placa E 96</td></tr><tr><td>0,05% Tripsina-EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>25300-054</td><td>Para la tripsinización de células cultivadas en matraces de cultivo de tejidos</td></tr><tr><td>Contador de células Scepter 2.0</td><td>Merck Millipore</td><td>PHCC20060</td><td>Contador de células automatizado</td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato</td><td>Life Technologies</td><td>10010-015</td><td>Para el lavado de las células</td></tr><tr><td>(&plusmn;)-Clorhidrato DOI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D101</td><td>5-HT2A agonista para el tratamiento de cultivos celulares</td></tr><tr><td>Clorhidrato LY-294002</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L9908</td><td>Inhibidor de PI3-K para el tratamiento de cultivos celulares&nbsp;</td></tr><tr><td>Maleato de lisuro</td><td>Tocris Bioscience</td><td>4052</td><td>Compuesto con actividad agonística 5-HT2A para el tratamiento de cultivos celulares</td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D4540</td><td>Para disolver LY-294002 y maleato de lisuria</td></tr></tbody></table>

cell analyzer basados ​​en impedancia real-time como una herramienta para delinear vías moleculares implicadas en la neurotoxicidad y neuroprotección en una línea celular neuronal

Real-Time Impedance-based Cell Analyzer as a Tool to Delineate Molecular Pathways Involved in Neurotoxicity and Neuroprotection in a Neuronal Cell Line

Muchos trastornos relacionados con el cerebro tienen la muerte celular neuronal implicado en su fisiopatología. Mejora en modelos in vitro para estudiar los efectos neuroprotectores o neurotóxicos de las drogas y las vías descendentes involucradas ayudaría a aumentar el conocimiento sobre los mecanismos moleculares de neuroprotección / neurotoxicidad y potencialmente podría facilitar el desarrollo de fármacos. Sin embargo, muchos ensayos de toxicidad in vitro existentes tienen limitaciones importantes - más evaluar la neurotoxicidad y neuroprotección en un solo punto de tiempo, no permitiendo observar la evolución temporal y la cinética del efecto. Además, la oportunidad de recoger información sobre las vías de señalización corriente abajo implicados en la neuroprotección en tiempo real sería de gran importancia. En el protocolo actual se describe el uso de un tiempo real basados ​​en la impedancia analizador de células para determinar los efectos neuroprotectores de la serotonina 2A (5-HT 2A) agonistas del receptor en una línea celular neuronal menores de etiqueta libre y en tiempo real Conditiones utilizando mediciones de impedancia. Además, se demuestra que los inhibidores de las vías de segundo mensajero se pueden utilizar para delinear las moléculas de aguas abajo implicadas en el efecto neuroprotector. También se describe la utilidad de esta técnica para determinar si un efecto sobre la proliferación celular contribuye a un efecto neuroprotector observado. El sistema utiliza placas microelectrónicos especiales denominados E-planchas que contienen alternando microelectrodos de oro en la superficie inferior de los pozos, que sirven como sensores celulares. La lectura de impedancia se modifica por el número de células adherentes, la viabilidad celular, la morfología y la adhesión. Un parámetro adimensional llamado Índice de Células se deriva de las mediciones de impedancia eléctrica y se utiliza para representar el estado celular. En general, el tiempo real basados ​​en la impedancia analizador de células permite en tiempo real, la evaluación de la etiqueta libre de la neuroprotección y la neurotoxicidad, y la evaluación de la implicación de las rutas segundo mensajero, contribuyendo a másevaluación detallada y de alto rendimiento de potenciales compuestos neuroprotectores in vitro, para la selección de candidatos terapéuticos.

<html> Suero privación conduce a una disminución en los valores de índice de células, que pueden ser monitoreados continuamente con el analizador de células en tiempo real Estímulos neurotóxicos a las células conducen a una disminución en los valores de índice de células, que puede ser monitoreado en tiempo real con la técnica presentada y la dinámica de los cuales depende de los estímulos neurotóxicos específico y el tipo de célula estudiado. Figura 2 demues...

Los ensayos de neurotoxicidad in vitro mejorados ayudarían a la identificación de nuevos compuestos neuroprotectores. Se presenta la utilidad de un analizador celular basado en impedancia en tiempo real para determinar la citotoxicidad y la citoprotección en líneas celulares neuronales y para delinear la participación de las vías de segundo mensajero, obteniendo así información sobre el mecanismo de la neuroprotección.

Cell Analyzer basados ​​en impedancia Real-Time como una herramienta para delinear vías moleculares implicadas en la neurotoxicidad y neuroprotección en una línea celular neuronal

Many brain-related disorders have neuronal cell death involved in their pathophysiology. Improved in vitro models to study neuroprotective or neurotoxic ...

El objetivo general de este procedimiento es utilizar una técnica basada en la impedancia para seguir en tiempo real la citoprotección de una línea celular neuronal y delinear la participación de las vías de mensajería secundaria en el proceso de protección. Esto se logra primero cultivando una línea celular neuronal en condiciones proliferativas en un analizador celular en tiempo real basado en impedancia. En el segundo paso, potencialmente relevante.Las vías de mensajeros secundarios se inhiben farmacológicamente antes de someter la línea celular a tratamientos neuroprotectores. A continuación, se monitorea el estado de la línea celular neuronal mediante un analizador celular en tiempo real bajo diferentes condiciones experimentales. Finalmente, se puede utilizar un análisis estadístico para evaluar la participación en tiempo real de las vías de mensajeros secundarios en la citoprotección de las células neuronales.La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes como los ensayos de neurotoxicidad en punto final es que permite evaluar la protección Tito y la toxicidad tito en líneas celulares neuronales en tiempo real y en condiciones libres de marcado. Este método puede ayudar a responder rápidamente preguntas en el campo de la neurobiología molecular al contribuir a una evaluación más de alto rendimiento de compuestos neuroprotectores potenciales in vitro, y al proporcionar información sobre los mecanismos moleculares implicados en la neuroprotección. Comience por lavar una capa de línea celular neuronal adherente. Por ejemplo, aquí se utilizan células de neuroblastoma humano S-K-N-S-H con PBS y luego se trypsinizan las células durante cinco minutos a 37 grados Celsius.Elimine la tripsina mediante centrifugación y luego resuspenda las células en 10 mililitros de medio de proliferación. Después de contar las células, dilúyalas hasta una concentración de tres veces 10 a la quinta células por mililitro con más medio de proliferación, luego equilibre cada pocillo de una placa EPL 96 con 100 microlitros de medio de proliferación en una cabina de cultivo celular a temperatura ambiente. Tras 30 minutos, inserte la placa EPL 96 en una estación de analizador celular en tiempo real dentro de una incubadora de dióxido de carbono a 37 grados Celsius e inicie el software del analizador celular en tiempo real.Luego, en la página de diseño, seleccione los pocillos adecuados para el experimento e ingrese el tipo celular, el número de células y los nombres y concentraciones de los compuestos químicos de interés en los cuadros de edición de la página del software de programación, ya que el paso uno está preestablecido. Para la medición del fondo, seleccione agregar un paso y configure el paso dos para medir el índice celular cada 15 minutos durante 96 horas. A continuación, haga clic en iniciar para comenzar el paso uno y medir la impedancia de fondo del medio.Ahora retire el EPL y agregue 100 microlitros de la suspensión de células de neuroblastoma. A cada pocillo experimental, agite suavemente el EPL 96 para recubrir uniformemente los pocillos, luego incube la placa a temperatura ambiente en la cabina de cultivo celular para permitir que las células se asienten. Pasada media hora, coloque nuevamente el EPL 96 en la estación del analizador celular en tiempo real e inicie el paso dos. Para monitorear los valores del índice celular durante todo el experimento, visualice las curvas celulares en la página de gráficos y los datos brutos del índice celular en la página del índice celular a las 24 horas.Después de sembrar las células, detenga el experimento y retire la placa de la estación analizadora de células en tiempo real. Añada un microlitro del inhibidor de interés recién diluido en cada pocillo y, tras recargar el EPL 96, reanude las mediciones del índice celular experimental tras 30 minutos. Luego detenga nuevamente el experimento y retire rápidamente pero con cuidado el medio de proliferación de cada pocillo, dirigiendo el borde de la punta de la pipeta hacia la esquina del pocillo para evitar alterar la capa celular adherida. A continuación, añada inmediatamente 200 microlitros de medio de privación de suero a cada pocillo, un microlitro de los compuestos neuroprotectores de interés recién diluidos y un microlitro de los inhibidores de interés de la vía del mensajero secundario a los pocillos correspondientes.Luego, continúe con las mediciones del índice celular cada 15 minutos durante 96 horas según se haya configurado previamente para analizar los datos. Ahora, seleccione las funciones de índice celular normalizado y tiempo normalizado en la página de gráficos para normalizar el índice celular al último punto de tiempo antes de las modificaciones en el cultivo celular. Para reducir la variación entre los experimentos, resalte los pocillos en la página de gráficos correspondientes a las condiciones experimentales de interés y haga clic en agregar para trazar las curvas del índice celular normalizado.Luego, exporte los datos experimentales de todos los puntos temporales del índice celular desde la página del software de índice celular a un archivo de hoja de cálculo para el análisis estadístico de las diferencias en los valores del índice celular bajo distintas condiciones de tratamiento en puntos temporales específicos. Seleccione los valores del índice celular en sus respectivos puntos temporales dentro del archivo de hoja de cálculo exportado. Finalmente, analice los valores del índice celular para los puntos temporales seleccionados mediante un análisis de varianza unifactorial o bifactorial, seguido de una prueba post hoc utilizando software estadístico. Los estímulos neurotóxicos aplicados a las células provocan una disminución en los valores del índice celular; aquí se observa un aumento del índice celular cuando las células S-K-N-S-H se cultivan en medio de proliferación, y la caída del índice celular seguida de una estabilización en nuevos niveles más bajos tras cambiar las células a medio con privación de suero se muestra en estos gráficos.Se puede observar el efecto neuroprotector de dos agonistas del receptor de serotonina 2A, cinco micromolar, DOI y 20 micromolar, IDE, añadidos cuando las células fueron alimentadas con medio de privación de suero. Una pregunta importante en los estudios de neuroprotección es si un efecto sobre la proliferación celular contribuye al efecto del compuesto observado sobre la supervivencia celular. En esta gráfica, se muestra la ausencia de efecto del tratamiento con cinco micromolar de DOI sobre la proliferación de células SKNS, lo que sugiere que la proliferación no contribuye al efecto neuroprotector observado.En este gráfico final, se puede observar el efecto del tratamiento con 10 micromolar del inhibidor de la fosfatidilinoicial tres quinasas LY 2 9 4 0 0 2 sobre la supervivencia celular y el efecto neuroprotector de DOI en células SK-N-SH privadas de suero. LY 2 9 4 0 0 2 evitó el efecto neuroprotector de DOI durante la etapa de privación de suero, pero también mostró un cierto efecto tóxico propio. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo seguir la protección frente a CTO en una línea celular neuronal utilizando un analizador celular en tiempo real, y de cómo delimitar la participación de las vías de mensajeros secundarios en la protección.

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En este video, demostramos el proceso de monitoreo en tiempo real de eventos celulares, incluida la proliferación de células adherentes, a través de un ensayo de impedancia celular. Aquí, las celdas adherentes actúan como aislantes, restringiendo el flujo de corriente entre los electrodos y aumentando la impedancia.

Análisis basado en impedancia celular para la monitorización de procesos celulares en tiempo real

Fuente: Mudduluru, G., et. al. Medición en tiempo real basada en impedancia de la migración e invasión de células cancerosas. J. Vis. Exp. (2020)Este video muestra un ensayo basado en impedancia para medir la invasión y migración de células de glioblastoma. Las células degradan la matriz extracelular, se mueven a través de membranas microporosas y se adhieren a los electrodos, generando impedancia. Este análisis en tiempo real refleja su potencial invasivo para aplicaciones de investigación del...

Mediciones basadas en impedancia de la invasión de células cancerosas cerebrales

Este protocolo revisa eléctrico de la célula-sustrato Impedancia de detección, un método para registrar y analizar el espectro de impedancia de las células adherentes para la cuantificación de la unión celular, la proliferación, motilidad, y las respuestas celulares a estímulos farmacológicos y tóxicos. La detección de la permeabilidad endotelial y la evaluación de los contactos célula-célula y célula-sustrato que se obtienen.

Eléctrico de la célula-sustrato Impedancia de detección para la cuantificación de la proliferación endotelial, la función de barrera, y la motilidad

Este manuscrito describe cómo preparar biochips fluídicos con células epiteliales branquiales de trucha arco iris para su uso en un sensor de impedancia de sustrato de celda eléctrica portátil de campo.  También se describe el protocolo para realizar una prueba rápida de toxicidad del agua potable con el sensor.

Preparación y ensayo de impedancia basada en biochips fluido con células RTgill-W1 para evaluación rápida de muestras de agua potable para la toxicidad

Aquí, describimos un modelo murino in vitro de la barrera hematoencefálica que hace uso de la espectroscopia de células de impedancia, con un enfoque en las consecuencias sobre la integridad y permeabilidad de las células endoteliales al interactuar con las células T activadas.

Un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modelo de la barrera sangre-cerebro mediante Espectroscopia de Impedancia: Un enfoque en la interacción de células T de la célula endotelial

El cáncer es una enfermedad letal debido a su capacidad para hacer metástasis en diferentes órganos. Determinar la capacidad de las células cancerosas para migrar e invadir bajo diversas condiciones de tratamiento es crucial para evaluar las estrategias terapéuticas. Este protocolo presenta un método para evaluar las capacidades metastásicas en tiempo real de una línea celular de cáncer de glioblastoma.

Medición en tiempo real basada en impedancia de la migración e invasión de células cancerosas

Describimos un enfoque para detectar y capturar subpoblaciones celulares invasivas en tiempo real. El diseño experimental utiliza el análisis celular en tiempo real mediante el monitoreo de los cambios en la impedancia eléctrica de las células. Se pueden capturar células invasivas de cáncer, inmunes, endoteliales o estromales en tejidos complejos y se puede evaluar el impacto de los cocultivos.

Detección y captura en tiempo real de subpoblaciones celulares invasivas a partir de cocultivos

Aquí, demostramos el uso de la impedancia eléctrica basada en células (CEI) como un método muy fácil y directo para estudiar la infección y replicación del virus Zika en células humanas en tiempo real. Además, el ensayo CEI es útil para la evaluación de compuestos antivirales.

Plataforma de impedancia eléctrica basada en células para evaluar los inhibidores del virus del Zika en tiempo real

Aquí demostramos la técnica de uso de biosensores basados en impedancia: ECIS y cellZscope, para medir la fuerza de la barrera endotelial cerebral. Detallamos la preparación y técnica de adición de diversos estímulos a un modelo in vitro del endotelio cerebral. Medimos, registramos y damos un análisis representativo de los hallazgos.

Medición de cambios en la integridad de la barrera endotelial cerebral con dos biosensores basados en impedancia en respuesta a células cancerosas y citocinas

Hemos desarrollado un programa de computadora para analizar la morfología neuronal. En combinación con dos herramientas existentes de código abierto de análisis, nuestro programa realiza análisis de Sholl y determina el número de neuritas, los puntos de ramificación, y consejos de las neuritas. Los análisis se realizan para que los cambios locales en la morfología de las neuritas se puede observar.

Automatizado de Análisis de la morfología neuronal Sholl digitalizados en múltiples escalas

Aprende a utilizar un analizador celular basado en impedancia para monitorear en tiempo real la citoprotección en líneas celulares neuronales. Este método permite evaluar la participación de vías de segundos mensajeros en neuroprotección.

Cell Analyzer basados ​​en impedancia Real-Time como una herramienta para delinear vías moleculares implicadas en la neurotoxicidad y neuroprotección en una línea celular neuronal (Video) | JoVE Journal

Cell Analyzer basados ​​en impedancia Real-Time como una herramienta para delinear vías moleculares implicadas en la neurotoxicidad y neuroprotección en una línea celular neuronal

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