Name: Combinación de Microstereolithography y electrospinning para Fabricación de membranas Equipado con nichos para la regeneración de la córnea (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 42 s
Description: Aprende a combinar microstereolitografía y electrospinning para fabricar membranas PLGA con microbolsillos que imitan el nicho de células madre. Esta técnica avanza la ingeniería de tejidos corneales.

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Agradecemos la financiación de Wellcome Trust Affordable Healthcare para India y una beca de paisajismo de EPSRC para Ilida Ortega, así como las contribuciones de The Electrospinning Company Ltd.

Declaración de Ética: Los ojos utilizados en este estudio fueron utilizados de acuerdo con la Declaración sobre la apertura de Investigación Animal: 1. Fabricación de PLGA biodegradables Membranas Equipado con microbolsas <ol><li> Los andamios de anillos fueron creados por una combinación de microstereolithography y electrospinning técnicas 31. En esencia, el proceso se puede resumir en 2 partes (i) la creación de plantillas de PEGDA por microstereolithography y (ii) electrospinning en las plantillas para la reproducción de la estructura de PEGDA subyacente (en este caso un anillo microfabricado). Estos dos pasos se describen en detalle a continuación (Figuras 1 y 2). <ol><li> Fabricación de plantillas PEGDA por microstereolithography (microSL) <ol><li> Fabricar los anillos por medio de un modelo de capa 2, con la primera capa (L1) es la base de la estructura y la segunda capa (L2) que presenta 6 microbolsas con Morphologi herraduraes en una gama de tamaños de 300 a 500 micras. La fabricación de los anillos de PEGDA fue descrito recientemente por este grupo 22. <ol><li> Crear L1 dibujando un círculo de 1,2 cm negro usando cualquier programa de dibujo adecuado. </li><li> Crear L2 de la misma forma pero incluyen 8 estructuras en forma de herradura 0,5 x 0,35 mm Blanco. Distribuir las pequeñas herraduras blancas dentro de la estructura del círculo negro. </li><li> Guardar L1 y L2 en formato JPEG. </li></ol></li><li> En un vial de vidrio oscuro, mezcla de polietilenglicol diacrilato (PEGDA, Mn = 250 g / mol) con 1% w / w Canforquinona, un fotoiniciador, en un agitador magnético durante 20 min. </li><li> Expandir el rayo láser de la microstereolithography configuración utilizando una disposición de lente telescópica y luego proyectarla sobre un dispositivo multimirror computadora digital programable (kit de inicio DMD UV-habilitado). NOTA: La DMD refleja la imagen (en este caso un anillo) sobre un espejo a través de un tubo de 10 cm de longitud focal de la lente. La imagen se dirige entonces por la plata-CoAted espejo en un vial que contiene el polímero fotocurable (PEGDA). </li><li> Ajustar y limpiar cuidadosamente la óptica del microstereolithography configurar. </li><li> Ponga 300 l de la mezcla de PEGDA en un pocillo de una placa de cultivo tisular de 12 pocillos. Asegúrese de que los pozos se pre-recubiertas con teflón u otro material antiadherente para facilitar la extracción de la estructura después de curar. </li><li> Encienda el láser azul (MBL-III 473 nm; 150 mW) y subir L1 en el software-ALP3 básica previamente instalado en el PC. Irradiar la primera capa durante 60 segundos. NOTA: ALP3-básica es una interfaz USB que proporciona el enlace entre el PC y el dispositivo digital. </li><li> Añadir al pozo 250 l más de los PEGDA, subir L2 como se describe anteriormente y L2 para irradiar 60 seg. </li><li> Retire el polímero sin curar y lavar el anillo con isopropanol O / N. </li></ol></li><li> Fabricación de membranas usando PLGA Biodegradable electrospinning NOTA: Los anillos PEGDA fueron utilizados como plantillas sobre la que se electrospun PLGA con el PLGA reproducción de la topografía subyacente, ya que se hace girar sobre estas plantillas. Después de la hilatura, la hoja de polímero PLGA se despegó desde el colector. La membrana final PLGA no contenía los anillos PEGDA que quedaron unido al colector metálico. <ol><li> Distribuir los anillos PEGDA sobre una lámina de aluminio galvanizado (12 cm x 20 cm) para la creación de un colector de electrospinning estática. </li><li> Coloque los anillos con cinta de carbón conductor. NOTA: Estos anillos una vez formados pueden ser re-utilizado como plantillas para electrospinning. </li><li> Preparar la solución de polímero para la hilatura. Disolver PLGA (DL-lactida 50/50 (52% en moles): glicólido (48% en moles), 44 kg / mol) en diclorometano (DCM) al 20% w / w de concentración. </li><li> Revuelva O / N antes de su uso. </li><li> Jeringas Place 4 de insulina (Blunt, agujas de diámetro 0,8 cm interiores indefinidos) en una bomba de jeringa. NOTA: Cuatro jeringas aseguraron electrospinning más rápido que trabajar con una sola jeringa. </li><li> Cargar 2,5 ml de solución de PLGA en cada jeringa. </li><li> Electrospin utilizando un caudal / min 30 l y voltajes de 12 a 15 kV. Deje una distancia entre las agujas y el colector de 15 cm. </li><li> Electrospin durante 1 hora y 30 minutos y finalmente pelar con cuidado la hoja electrospun PLGA del colector de apoyar a los anillos PEGDA. </li><li> Cortar los andamios electrospun en círculos 22 mm de diámetro usando un punzón circular y salen de la estructura de anillo colocado en el centro. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. de almacenamiento a largo plazo de PLGA Microfabricated membranas Nota: Los anillos de PLGA fueron fabricados y esterilizados por empresas externas acreditadas; muestras se irradiaron en un rango de dosis externa de 25-40 kGy. <ol><li> Monte la membrana en un recipiente pequeño (placa de Petri de plástico) y colocarlo dentro de una bolsa de grado médico. </li><li> Utilice papel de filtro para crear pequeñas bolsas de filtro para los desecantes. To crear las bolsas, doble el papel de filtro (125 mm de diámetro) y cortar el semicírculo que resulta en la mitad; luego sellar los extremos juntos usando cinta. <ol><li> Llenar tres bolsas de papel de filtro con 1 g de naranja de sílice, cobalto (II) cloruro y cobre (II) sulfato, respectivamente. </li><li> Ponga las tres bolsas de desecante dentro de la bolsa de grado médico junto con la membrana electrospun. </li></ol></li><li> Añadir a la bolsa de una tarjeta de seis punto indicador de humedad disponible en el mercado para detectar cualquier acumulación de humedad durante el período de almacenamiento. </li><li> Use una máquina de termosellado para aspirar y selle la bolsa. </li><li> Enviar las membranas de anillo a una empresa externa para la γ-irradiación. </li><li> Tienda γ-irradiados membranas de PLGA en una amplia gama de temperaturas de -20 ° C a 37 ° C en un ambiente húmedo dentro de un incubador que contenía 5% de CO 2. </li><li> Almacenamiento Post, examinar el indicador de humedad para confirmar que el nivel de humedad está por debajo de 30%. </li><li> USE Microscopía Electrónica de Barrido (SEM) para evaluar la integridad de la fibra. </li></ol> 3. Aislamiento de limbares explantes Conejo explantes del limbo se aislaron de los ojos del conejo (obtenidos de una granja donde los conejos son criados para el consumo). <ol><li> Desinfectar los ojos de conejo utilizando una solución antiséptica (3%). </li><li> Limpie los ojos mediante la eliminación de cualquier exceso de tejido que rodea la córnea. </li><li> Separar la región limbar (identificado como un área circular delgada entre la córnea (transparente) y la esclerótica (blanco)) del resto de la córnea usando un microscopio de disección. </li><li> Cortar en gajos (alrededor de 1,5 cm de largo) en el microscopio de disección. </li><li> Desinfectar los segmentos del limbo en solución antiséptica 1,5% durante 1 min. </li><li> Cortar los segmentos del limbo en trozos pequeños (100-500 M) con una hoja de bisturí. </li><li> Guarde los pequeños trozos de tejido en los medios de cultivo (DMEM + Glutamax: HAM &#39;s F12 (1: 1), 10% de suero fetal bovino, 1 U / ml plumaicillin, 100 mg / ml de estreptomicina, 2,5 mg / ml de anfotericina, 10 ng / ml de EGF, y 5 g / ml de insulina) a 37 ° C y 5% CO 2 hasta su uso (no más de 60 min). </li></ol> 4. derivación de células de explantes limbales Conejo explantes del limbo se colocaron en ambas membranas microfabricados recién hiladas y membranas que eran y almacenado durante 6 meses a -20 ° C y envasada al vacío. <ol><li> Escudo los andamios de anillo con 15 l de la cola de fibrina (1: 1 mezcla de fibrinógeno a partir de plasma humano a una concentración de 18,75 mg / ml y trombina a partir de plasma humano a una concentración de 2,5 U / ml) utilizando un rascador de células para distribuir la fibrina uniformemente. </li><li> Coloque los explantes de tejido directamente en las microbolsas de PLGA utilizando una aguja de 25 G y un microscopio de disección. </li><li> Añadir medio de cultivo celular con mucha suavidad para evitar separar los explantes. <ol><li> Cambie los medios de comunicación cada 3 días (receta medios descritos en la sección 3.7) y keep en cultivo durante 2 semanas en un incubador humidificado a 37 ° C y 5% de CO 2. </li></ol></li><li> Fijar las muestras con 3,7% de formaldehído tamponado durante 10 min, seguido de 3 lavados con PBS. </li><li> Contratinción por incubación en 1 mg / ml de 4 &#39;, 6-diamino-2-fenilindol (DAPI) o de yoduro de propidio (PI) durante 10 min a TA. </li><li> Lavar 3 veces en PBS y almacenar las muestras cubiertas con papel de aluminio. </li><li> Image las muestras usando un microscopio de fluorescencia a longitudes de onda de 543 nm y 800 nm (de dos fotones). </li></ol> 5. Marco-up conejo herido Modelos Cornea 3D <ol><li> Limpiar y desinfectar los ojos de conejo como se describe anteriormente. </li><li> Heridas los ojos de los conejos por inmersión en hidróxido de amonio 0,14% durante 5 min. </li><li> Enjuague los ojos en PBS y raspar el epitelio con un cuchillo esclerotoma. </li><li> Cortar y aislar el botón-escleral córnea eliminando cualquier resto de tejido. </li><li> Coloque las córneas lado epitelial hacia abajo sobreuna taza y estéril llene con 0,5% de agar hecho en DMEM. </li><li> Una vez establecido, puso las córneas lado epitelial hacia arriba, en pequeñas placas de Petri y añadir medio de cultivo (receta descrita anteriormente) hasta la zona del limbo. NOTA: No cubra toda la córnea; mantener el cultivo de órganos en la interfase aire-líquido. </li></ol> 6. Aislamiento de limbales explantes e Inclusión de Anillo andamios en conejo Modelos Cornea 3D <ol><li> Escudo de las membranas de anillo con 15 l de la cola de fibrina (1: 1 mezcla de fibrinógeno a una concentración de 18,75 mg / ml y la trombina a una concentración de 2,5 U / ml) .Use un rascador de células como se describió anteriormente. </li><li> Coloque los explantes de tejido directamente en las microbolsas de PLGA utilizando una aguja de 25 G y un microscopio de disección. </li><li> Coloque los anillos con los explantes de tejidos en las córneas desnudas con los explantes hacia arriba y en condiciones de interfaz aire-líquido. (Estas condiciones se han descrito anteriormente 22). </li><li> Mantener los modelos de cultivo de órganos para4 semanas en un incubador humidificado a 37 ° C y 5% CO 2 cambiando los medios de comunicación cada 2 días. </li></ol> 7. Evaluación de la regeneración de la córnea y el mantenimiento de células madre <ol><li> Después de 4 semanas, fijar las córneas utilizando 3,7% de formaldehído. </li><li> Procesar las córneas para histología convencional para producir 6 m secciones de parafina. </li><li> Teñir con hematoxilina y eosina (H &amp; E). </li><li> Para inmunocitoquímica, desparafinar las secciones en xileno (3min) y rehidratar en etanol al 100% (1 min), etanol al 70% (1 min), y agua destilada (2 min). </li><li> Delinear las secciones usando una pluma Dako para delimitar áreas pequeñas y evitar el uso excesivo de anticuerpo. <ol><li> Tratar las áreas delimitadas con 0,05% de tripsina (100 l) durante 20 min (37 ° C). </li></ol></li><li> Lavar a fondo con PBS y añadir 100 ml de suero 10% de cabra (bloqueo) durante 1 hora. </li><li> Incubar las muestras con 100 l de anticuerpo monoclonal de ratón cytokeraestaño 3 (CK3) y 100 l de p63 en el suero O 1% de cabra / N a 4 ° C. </li><li> Lavar con PBS y se trata con 100 l de anticuerpo secundario anti-ratón biotinilado (1: 1000 en 1% de suero de cabra) durante 1 hora a TA. </li><li> Añadir 100 l de FITC-estreptavidina (1: 100 en 1% de suero de cabra) durante 30 min a RT. </li><li> Se tratan las muestras con DAPI como se describe anteriormente. </li><li> Imagen las muestras usando un microscopio de fluorescencia a longitudes de onda de 800 nm (de dos fotones) y 488 nm. </li></ol>

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<li>Ortega, Í, Ryan, A. J., Deshpande, P., MacNeil, S., Claeyssens, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+microfabrication+and+electrospinning+to+produce+3-D+architectures+for+corneal+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Combined microfabrication and electrospinning to produce 3-D architectures for corneal repair.</a> Acta Biomaterialia. 9, 5511-5520 (2013).</li>
<li>Blackwood, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+biodegradable+electrospun+scaffolds+for+dermal+replacement%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Development of biodegradable electrospun scaffolds for dermal replacement.</a> Biomaterials. 29, 3091-3104 (2008).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este estudio describe (a) una técnica para la fabricación de membranas electrohiladas contiene microfeatures dentro de ellos y (b) cómo preparar tales membranas para uso clínico por el envasado al vacío, radiación gamma y después de almacenamiento antes de su uso. En esta aplicación particular hemos desarrollado membranas que contienen PLGA microbolsas que imitan las características físicas de los nichos de células madre del limbo. Los objetivos de este estudio son: (i) describir los métodos para proporcionar a los lectores con los conocimientos necesarios para diseñar y fabricar andamios que contienen microfeatures para la investigación sobre la contribución de los nichos de células madre para la regeneración de tejidos y (ii) a proporcionar al lector una mejor comprensión de cómo almacenar los andamios electrospun durante largos períodos de tiempo. En cuanto a la aplicación clínica, el almacenamiento de las membranas del anillo es de suma importancia. En este trabajo, se estudió la degradación del anillo durante un período de 6 meses. La degradación de lamembranas es impulsado por hidrólisis de manera simplemente manteniendo las membranas sea detenido libre de humedad del proceso. Blackwood et al. Informó que mediante la variación de la proporción de PLA a PGA, la degradación de la membrana cambia 32. Este estudio también mostró que al aumentar la cantidad de PGA, la tasa de degradación de las membranas electrospun aumentó in vivo 22. Aquí se ha demostrado que con las membranas de embalaje de vacío junto con algo de desecante y la irradiación de ellos y su almacenamiento a bajas temperaturas durante 6 meses, no hay ningún cambio en la integridad y la degradación de la fibra. En la actualidad, 6 meses es por lo que hemos estudiado con estas membranas que contiene microbolsas pero los datos de almacenamiento durante 1 año ha sido reportado en las membranas electrohiladas llano a -20 ° C 22 y ahora tenemos datos no publicados para su almacenamiento a -20 ° C durante 2 años sin ningún signo de degradación. Así, para el almacenamiento a largo plazo sería recomendable almacenarlas en seco a -206; C, pero es posible almacenarlos a temperatura ambiente incluso en la India durante al menos 6 meses (posiblemente mucho más tiempo). La inclusión de un indicador de humedad da una forma fácil de comprobar que el embalaje ha mantenido membranas secas en cuyo caso serán aptos para el propósito. La transferencia de células de estos anillos a los modelos 3D de córnea se muestra al colocar los explantes del limbo dentro de los microbolsas. Este grupo informó recientemente de la transferencia de células en un modelo de córnea de conejo in vitro mediante la colocación de los explantes de PLGA de fricción en las membranas (membranas sin estructuras de anillo) 24. Usando la presente transferencia de células andamios microfabricados se ha dado un paso más ya que ahora podemos ubicar específicamente explantes de tejido dentro de los microfeatures. La capacidad de colocar los explantes directamente dentro de los nichos también permite al cirujano usar las membranas directamente en el quirófano evitando la necesidad de una sala limpia para expandir primero las células madre del limbo. Aunque este pedazo de work se ha centrado en el desarrollo de dispositivos para la enfermedad de la córnea, esta tecnología de microfabricación se puede aplicar también para los dispositivos para muchas otras aplicaciones en desarrollo. El trabajo futuro se explorará la fabricación de construcciones para la regeneración de otros tejidos como la piel y los huesos. Si bien el diseño y la fabricación inicial de las microestructuras PEGDA puede llevar mucho tiempo, una vez fabricado las estructuras se pueden reutilizar muchas veces sin degradación. Por lo tanto, la posterior fabricación de membranas biodegradables de PLGA microestructurada por electrospinning se puede realizar a una velocidad comparable a la producción de membranas (&#39;no estructurados&#39;) de fricción tras el montaje del colector. Aunque en este trabajo se han utilizado microstereolithography para fabricar los moldes, se podrían también utilizar otros métodos de fabricación, tales como 3D-impresión o de moldeo por inyección. En consecuencia, el molde subyacente podría estar hecho de otros polímeros o metales en lugar de PEGDA. Como tal, esta técnica es muy versátil y puede adaptarse fácilmente a los investigadores el método para que coincida con sus propias necesidades y las instalaciones. La casa en-microstereolithography configuración utilizada en este estudio no permitirá la preparación de construcciones con características menores de 30 micras; esto no es una limitación para la aplicación de la córnea se describe aquí, pero podría ser crucial en el diseño de otros modelos. En ese caso otras técnicas tales como 2 polimerización de fotones (2PP) podría ser de su interés, sin embargo la técnica de electrospinning podría no permitir la reproducción de las estructuras en la escala inferior a la micra (esto está siendo estudiado por nuestro grupo). Los pasos críticos en el proceso de fabricación son (i) Evitar la sobrecuración de las plantillas de PEGDA que pueden ser controlados por el tiempo y cantidades de fotoiniciador de ajuste. (Ii) controlar las condiciones de electrospinning tales como la temperatura y la humedad. (Iii) Almacenar adecuadamente la electrospumembranas anillo n utilizando envasado al vacío y desecantes. En resumen, mediante la colocación de explantes de tejido del limbo dentro de los microfeatures de la membrana hemos demostrado crecimiento externo de células de los explantes en las áreas de nicho, la transferencia de células en una córnea de conejo heridos y posterior re-epitelización de la córnea. La degradación de las membranas almacenadas a diferentes temperaturas también se ha estudiado y un protocolo de embalaje que permite el almacenamiento a largo plazo de las membranas se ha desarrollado, siendo este último esencial en el desarrollo de membranas para uso clínico.

La córnea, el tejido avascular más exterior central del ojo, es uno de los tejidos más importantes que intervienen en la visión 1. Hay varios tipos de células que mantienen la función de la córnea. La capa más externa superior de la córnea se compone de células epiteliales que pueden ser alrededor de 5-7 capas de espesor 2. Esta capa evita la invasión bacteriana en la córnea 3 y permite la entrada de oxígeno 4. Se ha informado de que las células madre de la mentira epitelio corneal en nichos o criptas (con tamaños de 120-150 micras) en la región periférica de la córnea conocido como el limbo 5,6. Como las células madre se dividen, las células hijas también conocidas como células de amplificación transitorias viajan fuera de los nichos y como la división sigue las células se mueven de forma centrípeta hacia dentro y hacia arriba resultante en las células terminalmente diferenciadas en la región central de la córnea 7,8. Estas células se limpian rutinariamente lejos con un abrir y cerrar de los ojos exposing células nuevas debajo de 9. Además de ser la localización de las células madre epiteliales, el limbo también juega un papel en el mantenimiento de la conjuntiva vascularizado lejos de la región de la córnea 10. Daños en el limbo puede ser causada por quemaduras térmicas / químicas, la radiación y también enfermedades genéticas 10. Cuando esto sucede, la barrera limbo se descompone permitiendo que las células conjuntivales y mueva sobre la córnea, vascularizante la región, causando dolor y ceguera en algunos casos. La condición se conoce como insuficiencia límbica (SIL) 10. Diferentes sustratos naturales han sido reportados como posibles portadores de células madre para ayudar en la regeneración de la córnea. Por ejemplo, las membranas a base de colágeno fueron utilizados por Drávida et al. 11 y Rama y compañeros de trabajo 12 informaron el uso de fibrina en un estudio con 112 pacientes. En la actualidad, sin embargo el método más comúnmente usado de tratamientoes el uso de la membrana amniótica humana a partir de un banco de tejidos y el cultivo de células límbicas en su superficie 13,14. Una vez que se ha formado una monocapa, la membrana amniótica se pega lado célula arriba sobre la córnea dañada que tiene todas las células conjuntivales y tejido de cicatriz extirpado quirúrgicamente de ella antes de este trasplante de células 14. La membrana amniótica se degrada en cuestión de semanas a meses dejando las células epiteliales unidas a la zona despojada de regenerar el epitelio 15,16. Esta técnica ha tenido éxito en la restauración de la visión, sin embargo todavía hay algunas cuestiones prácticas que restringen su adopción generalizada clínicamente. A medida que la membrana amniótica es un tejido humano que tiene que someterse a cribado utilizando los buenos procedimientos de bancos de tejidos antes de utilizarse para el trasplante de células de los pacientes. Esta selección sólo reduce el riesgo de transmisión de enfermedades, pero no puede eliminar por completo 17. Además de esto ha habido informes de la variabilidad en el pendimiento de la membrana amniótica debido a la variación de los donantes entre 18,19 y 19,20 diferentes métodos de procesamiento. Junto con el pequeño riesgo de transmisión de enfermedades existe el requisito de que los centros quirúrgicos para tener acceso a los bancos de tejidos bien administradas, que no están disponibles para todos. Aunque la membrana amniótica es relativamente exitosa, hay una necesidad para el desarrollo de nuevas alternativas de soporte de células biodegradables sintéticos para el tratamiento de la enfermedad de la córnea. Portadores sintéticos superarían la necesidad de procedimientos bancarios, así como eliminar el pequeño riesgo de transmisión de enfermedades y la variabilidad entre los donantes. En este sentido, se han estudiado materiales tales como polietilenglicol 21,22 y 23,24 PLGA. En el desarrollo de una alternativa sintética a la membrana amniótica humana también existe la posibilidad de diseñar en él características deseables para ayudar esperemos que la supervivencia de las células cultivadas. El inclusion de microfeatures dentro de los dispositivos de biomateriales para el control específico de la conducta celular es un área emergente de interés. Muchos autores han descrito el trabajo hacia el desarrollo de células madre artificiales nichos 25-30. Este grupo ha informado recientemente la creación de un PEGDA fibronectina-biofuncionalizadas limbo artificial microfabricado para la entrega de las células epiteliales del limbo 22 y una metodología para la fabricación de membranas biodegradables que contienen bolsillos electrospun microfabricados para el apoyo de las células epiteliales del limbo 31. El objetivo de este trabajo es el desarrollo de una nueva tecnología de fabricación para el desarrollo de dispositivos de biomateriales que contienen microfeatures que imitan hasta el punto de los microambientes en el que las células madre se encuentran en el cuerpo. Hemos desarrollado una técnica que combina microstereolithography y electrospinning que permite la fabricación de membranas microestructurados biodegradables que muestran great potencial para aplicaciones de regeneración tisular. Es importante notar que, aunque en este trabajo esta técnica se ha aplicado a la fabricación de anillos para la regeneración de la córnea, la tecnología se puede aplicar a la fabricación de dispositivos para la regeneración de una amplia gama de tejidos epiteliales, por ejemplo, piel, orales epitelios mucosa, intestino, respiratorias, y de la vejiga. Específicamente, en este estudio hemos desarrollado una membrana biodegradable sintético que funciona de una manera similar a la membrana amniótica para administrar células a la córnea. Esta membrana contiene microbolsas de alrededor de 300 micras (más grande que las criptas del limbo de los Pallisades de Vogt (alrededor de 150 micras)). Finalmente, se ha establecido un protocolo de envasado que permite a estas membranas para ser almacenadas a -20 ° C durante más de 6 meses sin mostrar ningún signo de descomposición.

<table><tbody><tr><td>Ácido poli (< láctico> -glicólico)</td><td>Purac</td><td>PDLG5004</td><td></td></tr><tr><td>Diclorometano</td><td>Sigma Aldrich O Fisher</td><td>270997 O D/1850/17></td><td>99.8% contiene 50-150 ppm estabilizador de amileno</td></tr><tr><td>Dispositivo de microespejo digital (DMD) Discovery 1100 Placa controladora & Kit de inicio</td><td>Texas Instruments</td><td>1076N732 (UV)</td><td></td></tr><tr><td>473 nm</td><td>Láser Láser 2000</td><td>MBL-III</td><td>150 mW</td></tr><tr><td>Diacrilato de poli(etilenglicol)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>475629</td><td>Mn = 250 g/mol, 500 ml</td></tr><tr><td>DEMEM + Glutamax</td><td>Jamón Fisher 12077549</td><td></td><td></td></tr>'<tr><td> s F12</td><td>Labtech biosera</td><td>LMH1236/500</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Labtech biosera</td><td>FB-1090/50</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>R& D</td><td>236-EG-200</td><td></td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>91077C-1G</td><td></td></tr><tr><td>Anfotericina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A2942-100ml</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/estreptomicina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P0781-100ml</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma Aldrich</td><td>32670</td><td></td></tr><tr><td>Yoduro de propidio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P4864</td><td></td></tr><tr><td>Trombina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T9326</td><td></td></tr><tr><td>Fibrinógeno</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F3879</td><td></td></tr><tr><td>p63</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3737</td><td></td></tr><tr><td>CK3</td><td>Merck Millipore</td><td>CLB218</td><td></td></tr><tr><td>Hematoxilina</td><td>SLS</td><td>HHS16-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Eosina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>HT110232-1L</td><td></td></tr><tr><td>Bolsa de grado médico (PET/Lámina/LDPE) Bolsa pelable</td><td>Riverside Medical Ltd. Derby, Reino Unido</td><td>Laminado de lámina PET/Lámina/LDPE, (12,7,50)</td><td></td></tr><tr><td>Irradiación gamma (esterilización)</td><td>Tecnologías de esterilización aplicadas (Synergy Health Laboratory Services (SHLS), Abergavenny, Reino Unido) - rango de dosis externa de 25-40 KGy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gel de sílice naranja</td><td>Sigma Aldrich</td><td>10087</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de cobalto (II)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>232696</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de cobre (II)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-1297</td><td></td></tr><tr><td>Tarjeta indicadora de humedad de seis puntos</td><td>SCC, EE. UU</td><td>. 6HIC200</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de termosellado al vacío</td><td>Andrew James UK Ltd, Bowburn, Reino Unido</td><td>VS518</td><td></td></tr><tr><td>Andrew James Rollos de selladora al vacío de 28 cm x 40 metros</td><td>Andrew James UK Ltd, Bowburn, Reino Unido</td><td>BR2805</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio electrónico de barrido (SEM)</td><td>Philips/FEI Microscopio confocal XL-20 SEM</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Zeiss LSM 510 META</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solución antiséptica Videne Ecolab</td><td>, Swindon, Reino Unido</td><td></td><td>3%</td></tr></tbody></table>

combinación de microstereolithography y electrospinning para fabricación de membranas equipado con nichos para la regeneración de la córnea

Combination of Microstereolithography and Electrospinning to Produce Membranes Equipped with Niches for Corneal Regeneration

Problemas corneales afectan a millones de personas en todo el mundo, reduciendo su calidad de vida significativamente. Enfermedad de la córnea puede ser causada por enfermedades como la aniridia o síndrome de Steven Johnson, así como por factores externos tales como quemaduras químicas o radiación. Los tratamientos actuales son (i) el uso de injertos de córnea y (ii) el uso de células madre expandida en el laboratorio y entregado en soportes (por ejemplo, de membrana amniótica); estos tratamientos son relativamente exitoso, pero lamentablemente pueden fallar después de 3-5 años. Hay una necesidad de diseñar y fabricar nuevos dispositivos de biomateriales capaces de imitar la córnea en detalle el entorno fisiológico, donde las células madre residen en la córnea. Células madre del limbo se encuentran en el limbo (área circular entre la córnea y la esclerótica) en nichos específicos conocidos como los Palisades de Vogt. En este trabajo se ha desarrollado una nueva tecnología de plataforma que combina dos técnicas de fabricación de última generación (microstereolithography y electrospinning) para la fabricación de membranas de la córnea que imitan a un cierto punto del limbo. Nuestras membranas contienen microbolsas artificiales cuyo objetivo es proporcionar células con protección que el Palisades de Vogt hacer en el ojo.

Anillos electrospun microfabricado fueron fabricados usando una combinación de microstereolithography y electrospinning (Figuras 1 y 2). PEGDA anillos de diferentes tamaños fueron fabricados utilizando microstereolithography (Figura 3); esta técnica permite que las estructuras de fabricación en el orden de cm y la incorporación simultánea de microfeatures. En este caso, los anillos de diámetros que van desde 1,2 hasta 1,6 cm que contienen microbolsas de 350-500 micras fueron fabricados (Figura 4). En términos de producción, esterilización y envasado de materiales para futuro uso clínico se encontró que el envasado al vacío en bolsas de grado médico mejoró significativamente la capacidad de lograr el almacenamiento a largo plazo de las membranas de PLGA (Figura 5); el uso de una bolsa de grado médico (PET / aluminio / LDPE) con un espesor de 0,12 mm nos permitió lograr una vida útil más larga. Esto fue investigado por el envío de membranes a nuestros colaboradores en la India y las membranas se almacenaron durante un período de meses a -20 ° C, a temperatura ambiente y a 37 ° C en condiciones húmedas (deliberadamente una incubadora húmeda). Figura 5 muestra que el uso de las condiciones deliberadamente provocativas de almacenamiento a 37 ° C en condiciones de humedad, membranas sólo se mantuvieron estables durante aproximadamente 1 mes bajo condiciones de vacío no lleno, pero logra 3 meses de almacenamiento bajo condiciones de envasado al vacío (Figura 5 y Tabla 1). Tabla 1 demuestra la mejora en las condiciones de almacenamiento que se pueden lograr incluso bajo condiciones seleccionadas para ser propicio para la absorción de agua y la fibra hinchazón Si se presta atención a la elección de la bolsa usada. Los anillos de crecimiento externo de células compatibles a partir de explantes del limbo en diferentes condiciones (i) anillos recién hecho y (ii) anillos almacenan durante 6 meses (Figura 6). La transferencia de células se logró después de 4 semanas cuando placing las membranas de PLGA en los modelos 3D heridos. Las células crecieron fuera de los explantes de tejido colocados en las membranas de la creación de un nuevo epitelio en las córneas previamente denudadas (Figura 7). Positivos (córneas sin ningún tipo de tratamiento) y controles negativos (córneas heridos) también se mantuvieron en cultivo durante los mismos períodos de tiempo. Los controles negativos confirmaron la falta de formación de un nuevo epitelio en ausencia de cualquier células añadidas. La inmunocitoquímica demostró que las células que crecen fuera de los explantes fueron células epiteliales de la córnea ya que eran positivas para el marcador de diferenciación CK3 corneal (Figura 7E). <img alt="Figura 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig1highres.jpg" width="500"> Figura 1. esquemática de microstereolithography configurado para la creación de anillos de PEGDA. her.within-page = "always"&gt; <img alt="Figura 2" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig2highres.jpg" width="500"> Figura 2. esquemática de proceso de electrospinning usando anillos PEGDA microfabricado como plantillas. <img alt="Figura 3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig3highres.jpg" width="500"> Figura 3. (A) muestra un ejemplo de un colector estática (hoja de aluminio galvanizado con anillos PEGDA) para la hilatura de las membranas de PLGA microfabricados. (B) y (E) muestran diferentes esteras electrospun se pelan de los colectores estáticos. (C) muestra PEGDA plantillas de diferentes tamaños destacando la versatilidad de la utilización de microstereolithography para la fabricación de la superficie subyacente. (d) muestra una réplica de PLGA microfabricado./files/ftp_upload/51826/51826fig3highres.jpg "target =" _blank "&gt; Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. <img alt="Figura 4" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig4highres.jpg" width="500"> Figura 4. imagen SEM de un anillo de PEGDA con un microfeature de herradura (A); alta magnificación de la imagen SEM de un bolsillo microfabricado (B). Imagen de contraste de fase de un anillo de PLGA con un microfeature de herradura (C); alta imagen de contraste de fase de ampliación de un bolsillo microfabricado (D). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51826/51826fig4highres.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 5" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig5highres.jpg" width="500"> Figura 5 Efecto de la temperatura y el tiempo de almacenamiento de vacío y no vacío lleno de PLGA (50/50) membranas (44 kg / mol) con anillos de micro-fabricado más de 6 meses. integridad de membrana se anotó como fibras totalmente intactas (+++), algo de fibra hinchazón (++), fibra de fusión de (+) o sin fibras intactas (-). Imágenes SEM y tres desecantes (Naranjas de sílice, cobalto (II) cloruro, y (II) sulfato de cobre) no muestran cambios en la integridad de la fibra o la humedad. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51826/51826fig5highres.jpg" target="_blank">Por favor haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 6" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig6highres.jpg" width="500"> Figura 6. imágenes de fluorescencia que muestra fruto de LEC de explantes del limbo en los anillos de PLGA biodegradables recién hechos (A, B) y en los anillos después de 6 meses de almacenamiento a -20° C (C, D). Imágenes (A) y (B) corresponden a las células teñidas con DAPI (azul) y yoduro de propidio (rojo), respectivamente. La imagen B es una vista ortogonal de un confocal z-pila de un explante colocado en un bolsillo microfabricado. Imágenes (C) y (D) muestran una tinción positiva para p63 (verde). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51826/51826fig6highres.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 7" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51826/51826fig7highres.jpg" width="500"> Figura 7. (A) muestra un modelo de córnea de conejo heridos con un anillo de andamio y tejidos explantes situados en el andamio que se recubre previamente con cola de fibrina (B) y (C) son controles positivos y negativos.; el control positivo es un rabino fresca . t córnea y el control negativo una córnea donde el epitelio se retiró deliberadamente (el control negativo también se cultivó durante 4 semanas) (d) es una imagen de un tejido de la córnea de ingeniería después de 4 semanas en cultivo H &amp; E; la figura muestra el nuevo epitelio de múltiples capas formado por las células que salen de los explantes colocados en los nichos (E) es una imagen que muestra la inmunocitoquímica de células consecuencia de un explante limbal.; núcleos se tiñeron con DAPI (azul) y las células muestran una tinción positiva para citoqueratina 3, un marcador de diferenciación de la córnea (verde). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51826/51826fig7highres.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" fo:keep-together.within-page="always" width="611"><tbody><tr height="22"><td height="43" rowspan="2" style="height:43px;width:163px;"> PLGA (50/50) </td> x; "&gt; la integridad de la fibra para las membranas almacenados a 37 ° C húmedo </tr><tr height="21"><td height="21" style="height:21px;width:64px;"> Día 0 </td><td style="width:64px;"> Mes 1 </td><td style="width:64px;"> Mes 2 </td><td style="width:64px;"> Mes 3 </td><td style="width:64px;"> Mes 4 </td><td style="width:64px;"> Mes 5 </td><td style="width:64px;"> Mes 6 </td></tr><tr height="21"><td height="21" style="height:21px;width:163px;"> No Envasado al vacío </td><td style="width:64px;"> +++ </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td></tr><tr height="67"><td height="67" style="height:67px;width:163px;"> Aspiradas (Bag A) (PE, PA Composite) Espesor: 0,14 mm </td><td style="width:64px;"> +++ </td><td style="width:64px;"> + </td><td style="width:64px;"> - </td>64px; "&gt; - <td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td></tr><tr height="61"><td height="61" style="height:61px;width:163px;"> Aspiradas (Bolsa B) (PET / papel aluminio / LDPE) Espesor: 0,75 mm </td><td style="width:64px;"> +++ </td><td style="width:64px;"> +++ </td><td style="width:64px;"> +++ </td><td style="width:64px;"> + </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td><td style="width:64px;"> - </td></tr></tbody></table> TABLA 1 Efecto de bolsas de vacío y diferente de almacenamiento en la integridad de PLGA (50/50) membranas (44 kg / mol) examinaron más de 6 meses de almacenamiento. Integridad de la membrana se puntuó como fibras totalmente intactos (+++), algo de inflamación de fibra (++), la fusión de la fibra (+) o sin fibras intactas (-).

Se presenta una técnica para la fabricación de membranas microbolsas dentro electrohiladas en el que estudiar el comportamiento celular. Específicamente, se describe una combinación de microstereolithography y electrospinning para la producción de PLGA (poli (lactida-co-glicólido)) dispositivos de biomateriales corneales equipados con microfeatures.

Combinación de Microstereolithography y electrospinning para Fabricación de membranas Equipado con nichos para la regeneración de la córnea

Corneal problems affect millions of people worldwide reducing their quality of life significantly. Corneal disease can be caused by illnesses such as ...

El objetivo general del siguiente experimento es introducir la complejidad espacial 3D dentro de los andamios de ingeniería de tejidos mediante la combinación del uso de técnicas de fabricación aditiva y electrohilado. Esto se logra mediante la creación de una plantilla no degradable hecha de polietilenglicol, D acrl o PEG DA, utilizando una técnica de fotocurado capa por capa llamada microestereolitografía. Como segundo paso.Las plantillas se unen a un sustrato metálico y se utiliza un electrohilado para producir una membrana biodegradable que imita la morfología subyacente. A continuación, se estudian los procedimientos de empaquetado y la degradación de las membranas electrohiladas. La degradación prematura de las membranas almacenadas se evita mediante el control de la temperatura y la humedad.El paso final consiste en colocar las membranas biodegradables en un modelo 3D de córnea herida para estudiar su potencial uso como dispositivos de regeneración corneal. Los resultados muestran la versatilidad del uso de técnicas de fabricación aditiva y electrohilatura para crear membranas complejas que contienen microbolsas que imitan hasta cierto punto el nicho de las células madre naturales. La principal ventaja de esta técnica es su versatilidad.Dado que los moldes no biodegradables se pueden crear nuevos, utilizando una amplia gama de técnicas de fabricación, este método sería de interés tanto en el campo de la fabricación como en el de la regeneración de tejidos, y ayudaría a responder preguntas clave relacionadas con el comportamiento de las células madre y el nicho de las células madre. Este método de fabricación de andamios microfabricados puede proporcionar información sobre la regeneración de la córnea. También se puede aplicar a otros tejidos epiteliales con nichos de células madre, como la piel y la mucosa oral, o para proporcionar otras características 3D y andamios para la ingeniería de una amplia gama de tejidos.Tanto el líder Ortega como Thomas Patterson harán una demostración del procedimiento. Comience este procedimiento creando L uno, la primera capa. Eso se convertirá en la base de la estructura utilizando cualquier programa de dibujo adecuado para un círculo negro de 1,2 centímetros.A continuación, crea L dos. La segunda capa, dibuja otro círculo negro de 1,2 centímetros, pero incluye de seis a ocho estructuras blancas en forma de herradura de 0,5 por 0,35 milímetros. Distribuye las pequeñas formas de herradura blanca dentro de la estructura del círculo negro.Guarde L uno y L dos en formato JPEG para configurarlos para la microestereolitografía. Primero, ajuste y limpie cuidadosamente la óptica del sistema. Coloque 300 microlitros de polietilenglicol di acrl, o mezcla de PEG D en un pocillo de una placa de cultivo de tejidos de 12 pocillos.El pozo debe estar prerrecubierto con teflón u otro material antiadherente o de fácil extracción de la estructura. Después del curado, encienda el láser azul y cargue L one en el software básico ALP three. Este software es una interfaz USP que proporciona el enlace entre la PC y el dispositivo de microespejo digital.Irradia la primera capa durante 60 segundos. Agregue al pozo 250 microlitros más de la peg da. Cargue L dos e irradie L dos durante 60 segundos.Retire el polímero sin curar y lave los anillos con isopropanol durante la noche El día antes del electrohilado, cree un colector de electrohilatura estático distribuyendo los anillos PEG DA en una lámina de aluminio galvanizada de 12 centímetros por 20 centímetros. Fije los anillos con cinta de carbono conductora. Prepare la solución de polilactida co glico o PLGA y revuélvala durante la noche antes de usarla al día siguiente.Coloque cuatro jeringas de cinco mililitros con agujas de 0,8 centímetros de diámetro interior en una bomba de jeringa. Se utilizan cuatro jeringas en lugar de una sola jeringa. Para garantizar una carga de electrogiro más rápida, 2,5 mililitros de la solución de PLGA en cada jeringa.Para el éxito de este procedimiento, es importante tratar de mantener las variables laro pinina lo más constantes posible. Deje una distancia entre las agujas y el colector de 15 centímetros. Establezca un caudal de 30 microlitros por minuto y voltajes que oscilan entre 12 y 15 kilovoltios para el electrogiro electrogiratorio durante una hora y 30 minutos.Cuando termine el electrohilado, despegue con cuidado la lámina de electroesponja PLGA del colector que soporta los anillos PEG da. Los anillos PEG DA se pueden reutilizar como plantillas para el electrohilado. Utilice una perforadora circular para cortar los andamios electro spon en círculos de 22 milímetros de diámetro.Dejando la estructura del anillo colocada en el centro para preparar las membranas PLGA para el almacenamiento a largo plazo. Monte cada uno en un recipiente pequeño, como una placa de Petri de plástico, y colóquelo dentro de una bolsa de grado médico. Coloque tres bolsas de desecante dentro de la bolsa de grado médico.Agregue a la bolsa una tarjeta indicadora de humedad de seis puntos disponible en el mercado. Esto detectará cualquier acumulación de humedad durante el período de almacenamiento. Use una máquina de sellado térmico al vacío para aspirar y sellar la bolsa.Posteriormente, las membranas de PLGA se envían a una empresa externa, la gamma o radiación antes del almacenamiento. En este experimento, se aíslan berenjenas limbales de conejo a partir de ojos de conejo obtenidos de una granja donde se crían conejos para el consumo. Primero desinfecte los ojos de conejo con una solución antiséptica al 3%.A continuación, limpie los ojos eliminando el exceso de tejido que rodea la córnea. La región limbal se puede identificar como un área circular delgada entre la córnea transparente y la esclerótica blanca. Separa la región limbal del resto de la córnea.Corte la región limbal en segmentos de aproximadamente 1,5 centímetros de longitud, desinfecte los segmentos limbales en una solución antiséptica al 1,5% durante un minuto. Después de la desinfección, use una hoja de bisturí para cortar los segmentos limbales en trozos pequeños. Almacene los pequeños trozos de tejido en DMEM más medios de saturación máxima a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono o máximo una hora antes de su uso.Para comenzar este procedimiento, use un raspador de células para cubrir las membranas del anillo con 15 microlitros de pegamento de fibrilina. Distribuya la fibrilina de manera uniforme mientras trabaja bajo un microscopio de disección. Utilice una aguja de calibre 25 para colocar los explantes limbales directamente en las microbolsas de PLGA.Coloque los anillos con el tejido explanado sobre córneas desnudas previamente preparadas. Con el explan hacia arriba y en condiciones de interfaz aire-líquido, el anillo PLGA se humedecerá rápidamente y adoptará la forma del modelo de córnea. Mantener los modelos de cultivo de órganos durante cuatro semanas en una incubadora humidificada a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono, cambiar el medio cada dos días.La microestereolitografía permite la fabricación de anillos PEG DA de diferentes tamaños y la incorporación simultánea de microcaracterísticas. Los anillos se pueden fabricar y reutilizar de forma reproducible y se fijan fácilmente a una lámina de metal que se puede utilizar como colector de electrohilado. En este ejemplo, los anillos contienen micro características de herradura.A continuación, Electro spinning produce réplicas de PLGA: el envasado al vacío de las membranas PLGA mejora significativamente su almacenamiento a largo plazo incluso a 37 grados centígrados en condiciones deliberadamente húmedas. El tipo de bolsa utilizada también afecta la estabilidad de la membrana, la microscopía electrónica de barrido y el examen de los tres diseños no muestran cambios en la integridad de la fibra o la humedad de las fibras intactas. Crecimiento celular de implantes limbales o soportado por anillos y anillos de PLGA biodegradables recién hechos después de seis meses de almacenamiento a menos 20 grados centígrados.Al colocar las membranas de PLGA en modelos 3D de córnea herida, la transferencia celular se logró después de cuatro semanas. Las imágenes H y e muestran el nuevo epitelio multicapa formado por las células que salen de los explantes colocados en los nichos. El control negativo confirmó la falta de formación de un nuevo epitelio en ausencia de células añadidas.En comparación con un epitelio corneal convencional observado en una córnea de conejo fresca utilizada como control positivo. La inmunocitoquímica demostró que las células que crecían a partir de los implantes eran células epiteliales de la córnea, ya que eran positivas para la citoqueratina tres, un marcador de diferenciación corneal. Dado que los colectores electro giratorios que contienen las plantillas no biodegradables son reutilizables, la producción de los andamios se puede realizar en dos horas cuando se optimiza el protocolo.Esta técnica permite a los investigadores en los campos de la ingeniería de tejidos explorar una nueva forma de fabricar membranas complejas de ingeniería de tejidos que contienen microcaracterísticas en las que estudiar el comportamiento celular. Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo crear una plantilla microfabricada no degradable mediante el uso de técnicas de fabricación aditiva o enfoques similares, como el modelado y cómo usar el electrohilado para agregar complejidad a sus andamios.

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Se presentan dos procesos de microfabricación de chips de polímero poroso para el cultivo de células en tres dimensiones. El primero es el estampado en caliente combinado con un proceso de soldadura vapores de disolventes. El segundo utiliza un proceso desarrollado recientemente microthermoforming combinada con la tecnología de iones de la pista que conduce a una simplificación significativa de la fabricación.

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Este protocolo combina electrospinning y microesferas para desarrollar andamios de ingeniería tisular para dirigir neuronas. El factor de crecimiento nervioso se encapsuló dentro de microesferas de PLGA y se electrohiló en andamios fibrosos de ácido hialurónico (HA).  La bioactividad proteica se probó sembrando los andamios con ganglios primarios de la raíz dorsal del pollito y cultivando durante 4-6 días.

Factor de Crecimiento de electrospinning Liberar microesferas en Fibrosa andamios

Los avances en las tecnologías de biomateriales permiten el desarrollo de construcciones tridimensionales de tipo multicélula. Hemos desarrollado protocolos de electrospinning para producir tres andamios individuales para cultivar las principales células estructurales de la vía aérea y proporcionar un modelo 3D in vitro de la pared del bronquiolo de la vía aérea.

Adaptación del Proceso Electrohilado para proporcionar tres ambientes únicos para un Tri-capa<em&gt; In Vitro</em&gt; Modelo de la pared de la vía aérea

Este protocolo describe la fabricación de microcryogels elástico macroporoso 3D integrando microfabricación con tecnología cryogelation. A cargar con las células, se generan microtissues 3D, que puede ser fácilmente inyectados en vivo para facilitar la terapia regenerativa o montado en arreglos de discos para en vitro screening de drogas de alto rendimiento.

Microtissues 3D para la terapia regenerativa inyectable y drogas de alto rendimiento

Se ha desarrollado una estrategia de fabricación aditiva para el procesamiento de los hidrogeles UV-reticulables. Esta estrategia permite el montaje de capa por capa de estructuras de hidrogel recientemente así como el montaje de componentes independientes, produciendo dispositivos integrados que contienen componentes móviles que respondan al accionamiento magnético.

Un aditivo fabricación técnica para la fabricación fácil y rápida de Micromachines base de hidrogel con componentes magnéticamente sensibles

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Micropatrón simple de células únicas sin litografía con plantillas de corte láser

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Un modelo de cultivo de órganos corneales humanos de la extracción de Descemet solo con curación acelerada estimulada por el factor de crecimiento de fibroblastos diseñado 1

Tradicionalmente, el cultivo celular se realiza sobre sustratos planos que imitan mal el entorno natural de las células in vivo. Aquí describimos un método para producir sustratos de cultivo celular con geometrías curvas fisiológicamente relevantes y proteínas extracelulares micromodeladas, lo que permite investigaciones sistemáticas sobre la detección celular de estas señales extracelulares.

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Combinación de Microstereolithography y electrospinning para Fabricación de membranas Equipado con nichos para la regeneración de la córnea (Video) | JoVE Journal

Combinación de Microstereolithography y electrospinning para Fabricación de membranas Equipado con nichos para la regeneración de la córnea

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