Name: Un nuevo método de la Administración de Drogas a múltiple pez cebra ( Danio rerio) Y la cuantificación de Retiro (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Aprende un método novedoso para dosificar etanol simultáneamente en grupos de peces cebra (Danio rerio) y cuantificar comportamientos de ansiedad durante la abstinencia mediante seguimiento de movimiento.

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Los autores no tienen nada que revelar.

Todos los procedimientos y pruebas de comportamiento fueron aprobados por la Junta de Ética de Experimentación Animal de la Universidad de MacEwan con el número de protocolo 11/06/12, que está en cumplimiento con el Consejo Canadiense para las directrices del Cuidado de Animales para el cuidado y uso de animales de experimentación. 1. Preparar tanques de dosificación, soluciones y Horario Administración <ol><li> Preparar un programa de administración de tal manera que los animales se dosifican en el mismo entorno y durante la misma hora del día para evitar cualquier confunde de tiempo o de empuje a los estímulos visuales. </li><li> Obtener la mayor cantidad, 1,5 L, tanques de desove polipropileno claras idénticas como sea necesario para el número de tamaños de los grupos. Use grupos de 8 peces por tanque, lo que permite 2 grupos de peces a ensayar por día más tarde en el procedimiento (ver paso 3). Utilice un tanque de retención y un tanque de dosificación por grupo (2x número total de grupos). <ol><li> Coloque 400 micras inserciones de desove en todos los tanques de almacenamiento. Fenfermos los tanques con agua de hábitat o agua de ósmosis inversa a la temperatura correcta (para el pez cebra, 25-28 ° C) que sea consistente con los peces de temperatura son normalmente alojados en. NOTA: No puede haber interacciones químicas no deseadas entre algunos medicamentos y los componentes químicos del agua tamponada hábitat. En esta situación, utilizar agua de ósmosis inversa tamponada con sales mínimas o ninguna acuario para la administración de fármacos, así como para los grupos de control. </li><li> Asegúrese de que los tanques se encuentran en un ambiente neutral para evitar el pescado acondicionado a los estímulos visuales externos durante la dosificación. </li></ol></li><li> Preparar la solución de fármaco. Mezcle la cantidad apropiada de la droga con agua hábitat en los tanques de desove. Preparar la solución de etanol al 0,2% mediante la combinación de 3 ml de un etanol de alto grado (95% de etanol no desnaturalizado) con 1497 ml de agua. Preparar la solución de etanol al 1,4% mediante la combinación de 21 ml de etanol con 1479 ml de agua. </li></ol> 2. Compensación de Pesca y EtProcedimiento Administración Hanol <ol><li> Pescado con cuidado neto de sus tanques de hábitat y la transferencia en el tanque de retención adecuado que contiene el inserto de desove. Lo ideal sería que albergar a los peces en el inserto de desove para eliminar la compensación total. </li><li> Con todos los peces en sus respectivos tanques de almacenamiento, levante suavemente el desove insertar fuera del tanque de retención y colocarlo en el depósito de solución de fármaco apropiada (Figura 1A). <ol><li> Registre el tiempo de dosificación según sea necesario. Utilice 30 min en la solución de etanol para el procedimiento descrito aquí. </li><li> Si es posible, tener asistentes ayudan con la transferencia de todos los grupos experimentales para la solución de fármaco simultáneamente para garantizar el tiempo de dosificación precisa. Por otra parte, la transferencia de un grupo a la vez y hacer un seguimiento de la dosificación veces (Figura 1A) grupos individuales. </li></ol></li><li> Al final del período de dosificación requerida, quitar el pescado de la solución de etanol levantando cuidadosamente el inserto de desovede la solución de fármaco y colocando suavemente de nuevo en el tanque de retención. </li><li> Suavemente neta a los peces en los tanques de almacenamiento y colocarlos de nuevo en su hábitat hasta la próxima vez que la dosificación programada, o coloque el desove insertar de nuevo en el tanque de retención para eliminar la compensación. </li><li> Como se mencionó anteriormente, si es posible dentro de los parámetros de equipo de alojamiento de los animales, la casa de los animales en el mismo tanque y el inserto de desove que se utiliza como el tanque de retención. Esto eliminará la compensación por completo durante el proceso de administración. </li></ol> 3. Pruebas de Comportamiento <ol><li> Obtener una luz / arena oscuro 9,5 cm de ancho por 55 cm de largo y 9,5 cm de profundidad con un piso impermeable blanco (Figura 1B). Coloque papel no reflectante impermeable blanco y negro a las paredes interiores de la arena usando velcro, con la mitad de la arena cubierta en blanco y negro en medio cubierto. Llenar la arena hasta una profundidad de 5 cm con agua hábitat a una temperatura de 25-28 ° C. Maintain esta temperatura durante toda la prueba. </li><li> Minimalize estímulos visuales externas mediante la construcción de un recinto blanco de tres lados de la arena que se encuentra en. Asegúrese de que el área de pruebas tiene difusa iluminación cenital que no causa reflejos en la superficie del agua, sin embargo, es lo suficientemente brillante para el software de seguimiento de movimiento, o post cuantificación manual de -hoc a partir de imágenes de vídeo. </li><li> Coloque la arena en el recinto y configurar los parámetros de grabación y análisis de movimiento del software de seguimiento de la conducta. Establezca la duración del ensayo a 5-15 minutos, dependiendo de la pregunta de investigación. NOTA: En este caso, hemos utilizado 5 min. </li><li> Transportar el grupo de peces a ensayar para el área de investigación en el tanque de hábitat y colocarlos fuera del recinto de la arena. Aclimatar a los peces durante 10 minutos. </li><li> Un pez con cuidado neto del grupo y el lugar adecuado en el centro de la luz / arena oscura, asegurándose de liberar a los peces cuando se coloca paralela al eje largo de la arena para evIdentificación del sesgar el pescado a la luz o de la zona oscura. </li><li> Comience comportamiento a grabar inmediatamente después de soltar al animal. Esté atento a cualquier problema de software con el seguimiento de los peces o de peces saltando o congelación. Gire la arena 180 ° después de la mitad de los sujetos se ha probado para prevenir cualquier confunde debido a los sesgos resultantes de qué extremo de la arena está orientada hacia el extremo abierto de la caja. </li><li> Después de que el juicio ha terminado, suavemente red y eliminar el pescado de la arena a un tanque de almacenamiento o depósito de hábitat. </li></ol> 4. Análisis <ol><li> Examine el tiempo dedicado a la luz frente a las zonas oscuras. Para cada grupo y cada uno de los peces, obtenga el tiempo relativo transcurrido en las zonas claras y oscuras y analizar el uso de una muestra de t-test (o prueba de Wilcoxon para datos no paramétricos; diferencia de (la mitad del tiempo total de prueba) 150 seg) para determinar si los grupos prefieren significativamente un área sobre el otro. </li><li> Para comparar las preferencias, calcular una prefeíndice rencia restando el tiempo pasado en la zona de luz desde el tiempo pasado en la zona oscura y comparar las diferencias entre grupos. pruebas t- se puede utilizar para comparar dos grupos. Comparación de varios grupos con un solo sentido el análisis de varianza utilizando el test post hoc de Tukey HSD cuando sea necesario (o prueba de Kruskal-Wallis con comparaciones múltiples de Dunn test post hoc de los datos no paramétricos). </li><li> Comparar la velocidad, número de transiciones de zona, serpenteantes, y la inmovilidad en todos los grupos. Utilice solo sentido el análisis de varianza utilizando el test post hoc de Tukey HSD cuando sea necesario (o prueba de Kruskal-Wallis con comparaciones múltiples de Dunn test post hoc de los datos no paramétricos). </li></ol>

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<li>Hamilton, T. J., Paz-Yepes, J., Morrison, R. A., Palenik, B., Tresguerres, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exposure+to+bloom-like+concentrations+of+two+marine+Synechococcus+cyanobacteria+%28strains+CC9311+and+CC9902%29+differentially+alters+fish+behaviour%5BTitle%5D)+AND+%22Conservation+Physiology%22%5BJournal%5D)">Exposure to bloom-like concentrations of two marine Synechococcus cyanobacteria (strains CC9311 and CC9902) differentially alters fish behaviour.</a> Conservation Physiology. 2 (1), (2014).</li>
</ol>

Los autores reconocen Josué Gallup para el uso de su equipo de fotografía utilizada para la Figura 1. Este trabajo fue apoyado por una subvención de Ingeniería de Investigación (NSERC) Canadá Descubrimiento Ciencias Naturales y (a TJH).

Estudios previos que implican la administración de fármacos en el pez cebra, simplemente se han basado en la compensación de pescado para transportarlos desde su tanque de casa en la solución de fármaco 12,16. Compensación no siempre es consistente y, a menudo toma más tiempo de lo esperado debido a la respuesta de escape del pez cebra, que tiene importante variabilidad individual. Métodos de transferencia tradicionales, aunque útiles, pueden mejorarse por la disminución de la cantidad de tiempo total de los ...

El pez cebra (Danio rerio) es una pequeña especie de teleósteos originarios de la India, que es un organismo modelo útil para conductual 1 y 2,3 médicos de investigación. El pez cebra también se utilizan comúnmente en el ensayo de diversas sustancias farmacológicas con el fin de caracterizar su impacto en el comportamiento. Varias dosis y programas de administración de drogas se han utilizado para investigar el comportamiento del pez cebra después de la administración de compuestos tales como estimulantes, ansiolíticos 4 5 y etanol 6-8. Nuestro laboratorio ha investigado los efectos de los diferentes programas de administración de etanol sobre la ansiedad pez cebra y la locomoción en la luz / oscuridad ensayo bien validado 9, 20, también se conoce comúnmente como el ensayo scototaxic. Un nuevo método de administración de etanol fue desarrollado para aumentar la eficiencia para la administración repetitiva, diariamente durante un largo período de tiempo (21 días) 6 </sarriba&gt;. Métodos utilizados anteriormente eran prácticos, sin embargo, hemos tratado de desarrollar un método que reduce la compensación, con sus costos de tiempo asociados, y permite la administración simultánea, precisamente cronometrado de la droga de interés para un gran número de peces. En la investigación usando etanol tradicional, el pez cebra se anotó y se transfiere desde un tanque a otro que contiene la mezcla apropiada de etanol y agua 10-12. Si bien este método es ampliamente aceptada, redes pez cebra puede aumentar la variabilidad en el tiempo necesario para introducir y eliminar el pescado de la solución de fármaco. Por lo tanto, la exposición exacta para el compuesto de interés puede variar en el transcurso de un experimento con dosificación repetida. Un método que reduce las fuentes de error generados por la variabilidad en los tiempos de transporte es por lo tanto deseable. Con nuestro método somos capaces de mover todos los peces de forma simultánea, lo que resulta en el tiempo de dosificación idéntica en cada pez. Después de la exposición de etanol (que se describe aquí), el pez cebra se puede probar en cualquier number de ensayos de comportamiento, entre ellos los que evalúan la ansiedad. Dosificación grupos de peces utilizando el nuevo método tiene usos prácticos más allá de la capacidad de replicar y estandarizar la dosificación entre sujetos y entre los grupos de peces con precisión. La llegada de un nuevo software que permite el seguimiento de los peces múltiple a la vez puede ver investigadores utilizan nuestros métodos para garantizar la replicabilidad y la precisión en sus experimentos. Teniendo en cuenta el amplio uso del pez cebra como organismo modelo para la neurociencia conductual, este método aumentará la eficiencia y la practicidad en el futuro los estudios farmacológicos. En el actual paradigma, un programa de dosificación repetida fue empleado que refleja aproximadamente horarios beber humanos. Los peces fueron asignados aleatoriamente a uno de tres grupos: control, diario-moderada, o semanal-compulsivos. El horario de dosis fue de 21 días de duración, elegido porque superó significativamente los tiempos de exposición en estudios previos 7. Peces de control recibió cero alcohol, pescado al día de moderada recibió 0,2% de alcohol una vez por día, y el pescado semanal-atracón recibió 1,4% de alcohol una vez por semana. La tarea de luz / oscuridad se utilizó para evaluar la ansiedad después de 2 días de abstinencia. Esta es una prueba relativamente simple de administrar que utiliza una arena rectangular en el que las paredes en un lado son de color blanco y en el otro lado son de color oscuro 9. Pez cebra adulto robustamente prefieren el lado oscuro de la arena bajo condiciones de control 6,9,13. El aumento de la ansiedad se define operacionalmente como significativamente más tiempo de permanencia en la zona oscura, y la disminución de la ansiedad se puede suponer cuando el pez pasa relativamente más tiempo de permanencia en la zona de luz. Con el software de seguimiento de movimiento, otras variables informativas también se pueden cuantificar, incluyendo velocidad media, la inmovilidad, meandros, y la zona de transiciones 14. El método de dosificación desarrollado en nuestro laboratorio puede aplicarse a cualquier investigación en el que los compuestos solubles en agua se administran a uno o más zebrafish. Muchos otros agentes farmacológicos que pueden beneficiarse de esta metodología en la actualidad se están probando en el pez cebra. Comúnmente compuestos ensayados incluyen la nicotina, clordiazepóxido, buspirona, y escopolamina, que se disolvió en una manera similar a etanol; mezclando la cantidad apropiada de la sustancia química en el agua. Por lo tanto, el alcance general de este procedimiento es mucho más amplio y no limitado a etanol. Además, después de la dosificación con fármacos para múltiples días, la tarea luz / oscuridad es sólo una de las muchas pruebas de comportamiento que podrían emplearse. Después de la administración de drogas o durante la retirada, otros ensayos populares que se pueden utilizar incluyen la prueba de buceo tanque de novela 15 y las pruebas de comportamiento social, tales como shoaling 16. El siguiente procedimiento se esbozarán un método eficiente de transferir repetidamente grupos de peces o peces individuales en soluciones que contienen un compuesto farmacológico de interés. Además, el proceso de las pruebas de la ansiedad con la prueba de luz / oscuridaden grupos de peces que están en retirada después de ser expuesto a largos horarios de la administración de alcohol se describirá.

<table><tbody><tr><td>Sistema de alojamiento de banco con tres estantes</td><td><a href="http://aquatichabitats.com/research-systems/z-hab-system/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Aquatic Habitats</a></td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Tanque de desove de 1,5 L con difusor de 400 &amp;mu;m</td><td><a href="http://aquatichabitats.com/consumables/tanks-lids-and-baffles/info/nursery-tank-and-baffles/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Aquatic Habitats</a></td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Eter etílico de grano puro</td><td><a href="http://www.luxco.com/brands/vodka-neutral-spirits-neutral-spirits-everclear" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Luxco, INC</a></td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Software de seguimiento de movimiento Ethovision XT</td><td><a href="http://www.noldus.com/animal-behavior-research/products/ethovision-xt" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Noldus Information Technology</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipeta</td><td><a href="http://eshop.eppendorf.ca/categories/1" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Eppendorf Canada</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arena clara/oscura</td><td>Personalizado</td><td></td><td>Construir según la descripción del procedimiento. 9,5 cm de ancho, 9,5 cm de profundidad, 55 cm de largo.</td></tr></tbody></table>

un nuevo método de la administración de drogas a múltiple pez cebra ( danio rerio) y la cuantificación de retiro

A Novel Method of Drug Administration to Multiple Zebrafish (Danio rerio) and the Quantification of Withdrawal

Las pruebas de ansiedad en el pez cebra a menudo se estudian en combinación con la aplicación de sustancias farmacológicas. En estos estudios, los peces son rutinariamente atrapados con redes y transportados entre los acuarios domésticos y los tanques de dosificación. Con el fin de mejorar la facilidad de administración de compuestos, se desarrolló un método novedoso para transferir peces entre tanques para la administración de medicamentos. Los insertos diseñados para el desove se utilizaron para transferir grupos de peces a la solución del fármaco, lo que permitió una dosificación precisa de todos los peces del grupo. Esto aumenta la precisión y la eficiencia de la dosificación, lo que se vuelve muy importante en programas largos de administración repetida de medicamentos. Implementamos este procedimiento para su uso en un estudio que examinó el comportamiento del pez cebra en la prueba de luz/oscuridad después de administrar etanol con diferentes horarios de 21 días. En los peces expuestos a cantidades diarias moderadas de alcohol, hubo una diferencia significativa en la preferencia de ubicación después de 2 días de retiro en comparación con el grupo de control. Sin embargo, no se observó una diferencia significativa en la preferencia de ubicación en un grupo expuesto a la administración de atracones semanales. 
Este protocolo puede generalizarse para su uso con todo tipo de compuestos que son solubles en agua y puede utilizarse en cualquier situación en la que se examine el comportamiento de los peces durante o después de largos programas de administración de fármacos. La prueba de luz/oscuridad también es un método valioso para evaluar los cambios en la ansiedad inducidos por la abstinencia.

Para mantener la precisión y el control en estudios farmacológicos con el pez cebra es importante el tiempo de la duración de la administración de etanol consistentemente y con precisión como se describe anteriormente. Nuestro procedimiento puede aumentar la facilidad y el rendimiento del procedimiento de dosificación. La administración de etanol en la fecha prevista o bien un binge-semanal o diaria de moderada resultó en niveles alterados de ansiedad, medida con el / test oscuro luz, en comparación con los controles. C...

Se explica un nuevo método para reducir la variabilidad al exponer a los peces a drogas. Se encontró que los peces expuestos a varios patrones de exposición al etanol tenían niveles de ansiedad alterados durante la abstinencia en un ensayo escototáxico claro/oscuro.

Un nuevo método de la Administración de Drogas a múltiple pez cebra ( Danio rerio) Y la cuantificación de Retiro

Anxiety testing in zebrafish is often studied in combination with the application of pharmacological substances. In these studies, fish are routinely ...

El objetivo general de este procedimiento es dosificar grupos de peces de manera precisa y eficiente con etanol para evaluar los efectos de la dosis repetida en el comportamiento de abstinencia. Esto se logra mediante la primera dosificación del pez cebra, utilizando un nuevo método que se ha desarrollado para permitir la exposición simultánea a la droga de grupos enteros de peces durante períodos de tiempo precisos. El segundo paso es continuar dosificando el pescado en un horario que permita realizar pruebas para detectar efectos específicos de la extracción de etanol.A continuación, durante la retirada, los peces se prueban individualmente en una tarea clara y oscura utilizando un software de seguimiento de movimiento para registrar el movimiento. El paso final es analizar los datos para investigar los efectos de la extracción de etanol en el comportamiento del pez cebra. En última instancia, la dosificación repetida de etanol utilizando el procedimiento descrito da como resultado un efecto transitorio pero marcado en el comportamiento del pez cebra después de dos días de retirada.La principal ventaja de esta técnica es que permite la administración simultánea de fármacos a grandes grupos de peces, y es ideal para estudios que implican una exposición repetida a fármacos, fármacos o toxinas durante largos periodos de tiempo. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la neurofarmacología, como la cuantificación de los comportamientos relacionados con la abstinencia. Tuvimos la idea de este método por primera vez cuando intentamos administrar etanol a varios peces al mismo tiempo y descubrimos que las redes eran un método inexacto e impreciso para administrar medicamentos.comenzar. Prepare un horario de administración de tal manera que los animales se administren en el mismo entorno y durante la misma hora del día para evitar cualquier confusión de tiempo o sesgo a los estímulos visuales. A continuación, obtenga tantos tanques de desove de polipropileno transparente idénticos de 1,5 litros como sea necesario para el número de tamaños de grupo que permitan analizar dos grupos de peces por día.Use grupos de ocho peces por tanque, es necesario un tanque de retención y un tanque de dosificación por grupo. Por lo tanto, el número de tanques es dos veces el número de grupos. A continuación, coloque insertos de desove de 400 micras en todos los tanques de retención.Llene los tanques con agua de hábitat, agua o ósmosis inversa a la temperatura adecuada aquí. 25 a 28 grados Celsius se utiliza para el pez cebra. Asegúrese de que los tanques estén en un ambiente neutro para evitar el condicionamiento, los peces a estímulos visuales externos durante la dosificación.A continuación, prepare la solución del medicamento mezclando la cantidad adecuada del medicamento con agua de hábitat en los tanques de dosificación aquí, se prepara una solución de etanol al 0,2% y una solución de etanol al 1,4% combinando etanol de alta calidad con agua en el tanque. Atrape cuidadosamente a los peces en sus tanques de hábitat y transfiéralos al tanque de retención apropiado que contenga el inserto de desove. Lo ideal es alojar a los peces en el inserto de desove para eliminar por completo las redes con todos los peces en sus respectivos tanques de retención.Levante suavemente el inserto de desove fuera del tanque de retención y colóquelo en el tanque de solución de medicamento apropiado. Si es posible, pida ayuda con la transferencia de todos los grupos a la solución del medicamento simultáneamente para garantizar un tiempo de dosificación preciso. Registre el tiempo de dosificación según sea necesario.Se utilizan 30 minutos en la solución de etanol para el procedimiento descrito aquí al final del período de dosificación requerido. Retire los peces de la solución de etanol levantando con cuidado el inserto de desove de la solución del medicamento y colocándolo suavemente de nuevo en el tanque de retención. Obtenga una arena oscura clara de nueve centímetros y medio de ancho por 55 centímetros de largo y nueve centímetros y medio de profundidad con un piso impermeable blanco.Un papel impermeable no reflectante blanco y negro fijado a las paredes interiores de la arena con Velcro con la mitad de la arena cubierta de blanco y la otra mitad cubierta de negro, llena la arena a una profundidad de cinco centímetros con agua del hábitat a una temperatura de 25 a 28 grados centígrados. Mantenga esta temperatura durante toda la prueba, minimice los estímulos visuales externos construyendo un recinto blanco de tres lados para que se coloque la arena. Asegúrese de que el área de prueba tenga una sobrecarga difusa.Iluminación que no causa reflejos en la superficie del agua, pero que es lo suficientemente brillante para el software de seguimiento de movimiento o la cuantificación manual post hoc a partir de imágenes de vídeo. A continuación, configure los parámetros de registro y análisis de movimiento del software de seguimiento del comportamiento con una duración de prueba de cinco a 15 minutos, dependiendo de la pregunta de investigación, transporte el grupo de peces a probar al área de investigación en el tanque de hábitat y colóquelos fuera de la arena. Recinto. Deje que el pez se aclimate durante 10 minutos.Atrape suavemente un pez del grupo apropiado y colóquelo en el centro de la arena clara y oscura, liberando cada pez cuando se coloque paralelo al eje largo de la arena. Para evitar que los peces se desvíen hacia la zona clara u oscura, comience a registrar el comportamiento inmediatamente después de que se libere al animal. Esté atento a cualquier problema de software con el seguimiento de los peces o si los peces saltan o se congelan después de que haya finalizado la prueba, recoja suavemente y retire los peces de la arena a un tanque de retención o tanque de hábitat.Gire la arena 180 grados después de que la mitad de los sujetos hayan sido evaluados para evitar confusiones debidas a los sesgos resultantes de qué extremo de la arena está orientado hacia el extremo abierto del recinto. Comience el análisis examinando el tiempo que se pasa en las zonas claras frente a las oscuras para cada grupo y para cada pez, obtenga el tiempo relativo que se pasa en las zonas claras y oscuras y analice utilizando una prueba T de una muestra para determinar si los grupos prefieren significativamente una zona sobre la otra. Para comparar las preferencias, calcule un índice de preferencias restando el tiempo que se pasa en la zona clara del tiempo que se pasa en la zona oscura y compare las diferencias entre los grupos.Usando la prueba T, compare múltiples grupos con un análisis de varianza unidireccional utilizando dos pruebas post hoc de diferencias significativas honestas, cuando sea necesario para conjuntos de datos no paramétricos. Utilice la prueba de Wallace con la prueba post hoc de comparación múltiple de Dunn, luego compare la velocidad, el número de transiciones de zona, los meandros y la inmovilidad entre grupos. Utilizando el análisis de varianza unidireccional, de nuevo, utilice dos claves, una prueba post hoc de diferencias significativas honestas cuando sea necesario.La administración de etanol en un atracón semanal o en un horario moderado diario resultó en niveles de ansiedad alterados medidos con una prueba de luz oscura en comparación con los controles. Aquí se muestran gráficos de seguimiento representativos de una sola ruta de movimiento de pez cebra de control a lo largo de la prueba de luz oscura de cinco minutos para cada condición. La misma parcela de rastro de pez cebra se representa como un mapa de calor, que es una representación en color del movimiento del pez cebra a lo largo de la prueba.Basado en el tiempo que los peces pasaron en la ubicación representada por cada píxel. Cuando se probaron dos días después de la última dosis, el pez cebra en el grupo de control mostró el patrón de comportamiento esperado con los peces de control pasando significativamente más tiempo en el lado oscuro de la arena. Al igual que los peces cebra ingenuos en otros estudios, los peces del grupo de atracones semanales no mostraron preferencia por las zonas claras u oscuras de la tarea cuando se probaron dos días después de su última administración de etanol.Curiosamente, los peces del grupo moderado diario prefirieron significativamente el sitio claro de la arena. En contraste con el grupo control, el índice de preferencia indicó una diferencia significativa entre los grupos control y los grupos moderados diarios. No hubo diferencias significativas en la velocidad de natación o la inmovilidad entre los grupos y, por lo tanto, este efecto no se debió a un déficit motor en los peces.Al intentar este procedimiento, es importante recordar administrar el compuesto farmacológico de interés a la misma hora del día antes o después de alimentar a los peces. Por lo tanto, siguiendo este procedimiento realizado con etanol u otros compuestos farmacológicos, se pueden realizar otras pruebas de comportamiento del pez cebra para evaluar cosas como la adicción y la abstinencia. Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo dosificar grupos de peces cebra de manera eficiente y precisa para las pruebas de comportamiento.Seguir este procedimiento, particularmente el uso de los insertos de desove es una excelente manera de garantizar la precisión al dosificar los peces.

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Investigación

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Neurociencia

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Test de preferencia claro-oscuro: un método para estudiar el comportamiento relacionado con la ansiedad en el pez cebra

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