10 de diciembre de 2014
Los métodos para mapear las interacciones proteína-ADN in vivo se están volviendo cruciales para todos los aspectos de la investigación genómica, pero son laboriosos, costosos y requieren mucho tiempo. Aquí se presenta un sistema robótico de manejo de líquidos disponible comercialmente que automatiza la inmunoprecipitación de cromatina para mapear las interacciones proteína-ADN in vivo con cantidades limitadas de células.
El objetivo general de este procedimiento es proporcionar a los investigadores una plataforma automatizada capaz de realizar experimentos de inmunoprecipitación de cromatina en solo 10.000 células. Esto se logra preparando primero cromatina cortada de alta calidad para la inmunoprecipitación de cromatina. En el segundo paso, se crea un experimento automatizado de inmunoprecipitación de cromatina y se ejecutan bibliotecas automatizadas con el ADN inmunoprecipitado.
El ADN inmunoprecipitado se analiza mediante PCR cuantitativa y secuenciación de nueva generación. En última instancia, el éxito de la tecnología automatizada puede validarse mediante la comparación de los perfiles de secuencia de inmunoprecipitación de cromatina generados en la muestra original de 10.000 células con los experimentos realizados en 100.000 células y los conjuntos de datos existentes como referencia. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo epigenético para mejorar nuestra comprensión de las funciones de biomarcadores específicos en varios tejidos.
Etapas de desarrollo y estados de la enfermedad. Esta técnica tiene implicaciones hacia el diagnóstico de múltiples enfermedades ya que ayudará a identificar biomarcadores epigenéticos en la salud y la enfermedad, de forma precisa y fiable. Las tecnologías automáticas son herramientas importantes para los investigadores en el análisis epigenético de tipos específicos de células, subpoblaciones y biopsias.
Para un experimento estándar de inmunoprecipitación de cromatina automatizada, comience agregando 120 microlitros de tampón de inmunoprecipitación de cromatina H a 100 microlitros de cromatina cortada de una a 2 millones de células, reservando de dos a 20 microlitros de cromatina para la muestra de entrada. A continuación, para configurar el experimento automatizado en el compacto IP star, seleccione los protocolos y haga clic en el icono de inmunoprecipitación de cromatina. Elija el método directo de inmunoprecipitación de cromatina y, a continuación, en la siguiente pantalla, elija el protocolo de inmunoprecipitación de cromatina de 200 microlitros y especifique el número de muestra.
Ajuste los parámetros experimentales de inmunoprecipitación de cromatina a cuatro horas para el recubrimiento de anticuerpos. Paso 15 horas para la etapa de inmunoprecipitación y cinco minutos para cada etapa de lavado. A continuación, configure los reactivos siguiendo las instrucciones que se muestran en la pantalla de información de diseño y añada los reactivos adecuados y los anticuerpos de grado ChIP-seq altamente validados.
Luego agregue 20 microlitros de proteína, perlas magnéticas recubiertas de A para cada reacción, y las muestras de cromatina después de que finalice el protocolo de chip nocturno y la reticulación inversa. Purifique el ADN con un kit de purificación de ADN basado en perlas magnéticas. Utilice un ensayo fluorométrico comercial de alta sensibilidad para cuantificar el ADN inmunoprecipitado.
A continuación, el uso de cebadores para al menos una región genómica de control positiva y una negativa. Analizar la calidad del ADN inmunoprecipitado por PCR cuantitativa según los parámetros adecuados de los materiales para el análisis. Los resultados se expresan como el porcentaje de la recuperación de la entrada para la secuenciación de próxima generación bajo protocolos.
Ahora haga clic en el icono de preparación de la biblioteca, luego elija la tecnología de preparación de la biblioteca de su preferencia y configure los reactivos de acuerdo con las instrucciones en la pantalla de información de diseño. Por ejemplo, en este experimento, se generaron perfiles de secuenciación para seis modificaciones diferentes de histonas asociadas con la expresión génica. La alta correlación de picos observada entre estos marcadores de histonas indica la capacidad del sistema automatizado para generar datos precisos y confiables.
Además, estos gráficos muestran la distribución de los picos para las diferentes modificaciones de histonas en regiones genómicas específicas. Finalmente, para un experimento de inmunoprecipitación de cromatina automatizada para muestras con números de células bajos, configure el protocolo de inmunoprecipitación de cromatina automatizada de 200 microlitros en el sistema de automatización como se acaba de demostrar. A continuación, cargue el sistema con el ChIP-seq, los anticuerpos y reactivos de grado se optimizan para trabajar en cantidades de cromatina entre 10.000 y 100.000 células utilizando solo 10 microlitros de proteína, una perlas magnéticas recubiertas para cada reacción.
Después del chip, ejecute la preparación de la biblioteca, seleccione el protocolo de preparación de la biblioteca micro plex y configure los reactivos siguiendo las instrucciones que se muestran en la pantalla de información de diseño. En esta PCR cuantitativa representativa de una inmunoprecipitación de cromatina a partir de una muestra inicial de 10.000 células, se observaron enriquecimientos significativos con los anticuerpos antihistonas en las regiones de control positivas y señales insignificantes en las regiones de control negativas. Aquí se muestran una serie de 10 reacciones de inmunoprecipitación que fueron reproducibles y altamente comparables con un experimento de inmunoprecipitación manual de cromatina, lo que demuestra la capacidad del sistema automatizado para trabajar con bajas cantidades de células sin un aumento visible en la variabilidad de un experimento a otro en comparación con la inmunoprecipitación manual.
Estos datos ilustran los análisis bioinformáticos de las bibliotecas de secuencias de 10.000 y 100.000. He a células S3 después de la inmunoprecipitación de cromatina, demostrando resultados sobresalientes de las muestras de inmunoprecipitación de cromatina de bajo número de células. Este conjunto de datos, que corresponde al experimento con 10.000 células de material de partida, contiene un ruido de fondo bajo con picos de enriquecimiento altamente fiables que son confirmados tanto por el conjunto de datos de 100.000 células como por el conjunto de datos de referencia del Instituto Broad.
Para el proyecto de codificación, es importante tener en cuenta que los datos de 10.000 celdas muestran picos casi idénticos a los datos del Broad Institute con una relación de superposición del 98% del mejor 40% de los picos clasificados por la puntuación significativa utilizada en el proyecto de código final. El sistema automatizado IP star requiere una intervención mínima del operador, lo que reduce el tiempo de manipulación de la inmunoprecipitación de cromatina a solo una o dos horas. Además, el proceso automatizado reemplaza los numerosos pasos propensos a errores de la inmunoprecipitación manual de cromatina y ofrece resultados altamente consistentes.
Al intentar este procedimiento, es importante recordar que una buena inmunoprecipitación de cromatina y una buena selección de anticuerpos altamente específicos y sensibles son clave para el éxito del experimento. Esta tecnología allanó el camino para que los investigadores de todos los campos de la biología mejoraran la precisión, la reproducibilidad y la consistencia de la terapia. Estudios de epigenética.
Este artículo presenta una plataforma automatizada para la inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) que puede procesar eficientemente un bajo número de células, específicamente 10.000 células. El método tiene como objetivo simplificar la determinación de interacciones proteína-ADN, lo cual es esencial para la investigación genómica.
La automatización de ChIP-seq para entradas bajas de células aborda un cuello de botella crítico en la validación de dianas epigenéticas, permitiendo la desviación mecanicista de hipótesis mediante el uso de poblaciones celulares primarias escasas o raras. Esta capacidad mejora la confianza predictiva en las fases iniciales del descubrimiento al generar perfiles epigenómicos reproducibles a partir de muestras limitadas, apoyando la selección de carteras y la toma de decisiones guiada por biomarcadores. La tecnología posiciona a los ensayos epigenómicos como herramientas de descubrimiento escalables y reutilizables, alineadas con la continuidad traslacional desde la identificación de dianas hasta la validación preclínica.
El método automatizado de ChIP-seq se integra en el continuo de descubrimiento desde la prueba de hipótesis hasta la identificación de compuestos líder, lo que permite el perfilado epigenómico en etapas tempranas con material limitado.