Name: Aislamiento de leucocitos de la interfaz humana Materno-fetal (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 19 s
Description: Aprende a aislar leucocitos viables de la decidua humana mediante disociación mecánica, digestión enzimática y centrifugación en gradiente de densidad. Este método preserva los marcadores de superficie celular para estudios inmunológicos.

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Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional Eunice Kennedy Shriver de Salud Infantil y Desarrollo Humano, NIH / DHHS. Este trabajo también fue apoyado, en parte, por la iniciativa de la Universidad de Wayne State Perinatal en maternas, perinatales y Salud Infantil. Agradecemos Maureen McGerty (Wayne State University) por sus lecturas críticas del manuscrito.

Este protocolo es apropiado para el aislamiento de leucocitos de la decidua basal y decidua parietal en preparación para inmunofenotipo por citometría de flujo. Además, las células aisladas se pueden utilizar para la clasificación de células, cultivo celular, el aislamiento de ARN, y la citología. Antes de trabajar con las muestras mencionadas en este protocolo, la aprobación ética humana debe ser obtenido de la Comisión de Ética Local Investigación y Juntas de Revisión Institucional. La recolección y utilización de muestras humanas para fines de investigación fueron aprobados por las Juntas de Revisión Institucional del Instituto Nacional Eunice Kennedy Shriver de Salud Infantil y Desarrollo Humano (NICHD), los Institutos Nacionales de Salud (NIH), Departamento de Salud y Servicios Humanos (DHHS , Bethesda, MD, EE.UU.) y la Universidad Estatal de Wayne (Detroit, MI, EE.UU.). Escrito el consentimiento informado se obtuvo de todas las mujeres embarazadas antes de la recogida de muestras de tejido. NOTA: Mientras trabajaba con la sangre de animales, células, o peligroagentes sas como se menciona en este protocolo, es esencial que la bioseguridad adecuada y medidas de seguridad de laboratorio seguir. 1. La disección de los tejidos deciduales Humanos NOTA: La placa basal es la base debajo y unido a la placenta y representa la superficie materna. Las membranas corioamnióticas incluyen el amnios y el corion. La placa basal incluye la decidua basal y el corion incluye la decidua parietal (Figura 1). <ol><li> Decidua Basalis <ol><li> Diseccionar una pieza de la placa basal a partir de un cotiledón de la placenta (Figuras 1A y 1B). </li><li> Colóquelo sobre una tabla de cortar estéril con las vellosidades placentarias hacia arriba. El lateral que muestra las vellosidades de la placenta es generalmente de color rojo sangriento con el tejido peluda en apariencia. La placa basal es suave y rojo pálido en color. </li><li> Utilice afilados, tijeras de punta fina y unas pinzas para quitar la villtejidos y los vasos sanguíneos sas. Mantenga el tejido empapado en 1x PBS (Ca 2+ - y Mg 2 + - libre) durante el proceso (Figura 1C). Suma 2 a 3 de estas piezas y enjuague a fondo con 1x PBS para eliminar la sangre (Figura 1D). </li></ol></li><li> Decidua parietal <ol><li> Diseccionar un pedazo de las membranas corioamnióticas (aproximadamente 10 cm x 10 cm, Figura 1E). Colóquelo en el tablero con el corion hacia arriba. El lado coriónica contiene coágulos sangrientos y suele ser la luz de color amarillento. </li><li> Utilice unas pinzas de punta fina para eliminar la mayor cantidad de los coágulos de sangre como sea posible (Figura 1E). Enjuague la membrana en 1x PBS estéril para limpiar el exceso de sangre de la membrana hasta que el PBS 1x salga clara. </li><li> Use un raspador celular estéril desechable para raspar suavemente la capa decidual de la membrana. Aplicar 1x PBS estéril en la membrana al completar este proceso (Figura 1F). Recoge los tejidos deciduales y colocarlos en un tubo de plástico de 50 ml con PBS 1x estéril (Figura 1G). </li></ol></li></ol> 2. La desagregación mecánica y digestión enzimática <ol><li> Lave el tejido diseccionado de la decidua basal (desde el paso 1.1.3) o la decidua parietal (del Paso 1.2.3) con 1x PBS estéril en un tubo de plástico de 50 ml. Recoger gránulos de tejidos por centrifugación a 300 xg durante 5 min a TA. </li><li> Aspirar el sobrenadante situado por encima del sedimento de tejido cuidadosamente sin perturbar el sedimento. NOTA: En este punto, los pellets son muy floja, ya que contienen las células rojas de la sangre. Si el volumen de la pastilla está relacionado o menos de 3 ml, vuelva a suspender el sedimento en 6 ml de solución de desprendimiento de células pre-calentado a 37 ° C. Si la pastilla es mayor que 3 ml de volumen, añadir más solución desprendimiento celular (añadir alrededor de 2 veces ªe volumen de las muestras de tejido). </li><li> Transferir los tejidos homogeneizados (decidua basal + desprendimiento de células de soluciones o decidua parietal + solución desprendimiento de células) a un tubo C. </li><li> Coloque el tubo de C en el disociador automática y ejecutar el programa correspondiente. NOTA: El programa de la decidua basal tiene una duración de 17 segundos con 668 rondas totales por corrida. El programa para la decidua parietal tiene una duración de 37 segundos con 235 rondas totales por corrida. Estos programas han sido diseñadas para aislar leucocitos de la decidua basal o la decidua parietal con buen rendimiento y la viabilidad celular. </li><li> Tras la desagregación mecánica de los tejidos, digerir los tejidos con una solución de desprendimiento celular comercialmente disponible tal como accutase; (Un cóctel que contiene enzimas proteolíticas y colagenolíticas) durante 45 min a 37 ° C con agitación suave. </li></ol> 3. Aislamiento de leucocitos <ol><li> Después de la incubación, añadir 10 ml de PBS 1x a la digemezcla stion y pasarlo por un colador celular 100 micras en un tubo de plástico de 50 ml. Dependiendo de la viscosidad de la mezcla de digestión, se puede necesitar utilizar varios filtros de células para una mezcla. </li><li> Llenar el tubo con 1x PBS y centrifugar a 300 xg durante 5 min a TA. Retire el PBS 1x por encima de los sedimentos celulares con cuidado y volver a suspender los pelets con 5 ml de tampón de FACS enfriado con hielo. NOTA: Para el estudio de los leucocitos polimorfonucleares y mononucleares juntos, ir al paso 6.1; para estudiar los leucocitos mononucleares, continúe con el Paso 3.3. </li><li> Añadir 5 ml de 20% de medios de gradiente de densidad (1,077 + 0,001 g / ml) a un tubo de plástico de 15 ml y superponer lentamente la suspensión celular en la parte superior de los medios de gradiente de densidad. Mientras capas de la muestra, es importante no mezclar los medios de gradiente de densidad con la suspensión de células. </li><li> Centrifugar con un rotor basculante a 500 xg durante 30 min a 4 ° C sin el freno. Es muy importante para desactivar el freno para evitar la mezcla de las células y lOsing el gradiente. Los leucocitos se encuentran en la interfaz entre los medios de gradiente de densidad y el tampón FACS. </li><li> Eliminar la capa superior que contiene el tampón y los desechos de células FACS muy cuidadosamente con una pipeta. La banda en la interfase contiene las células mononucleares de la decidua y una porción de los leucocitos polimorfonucleares. </li><li> Transferencia de las células en la interfaz completamente a un nuevo tubo de plástico de 15 ml. Añadir al menos 3 veces más volumen de tampón FACS. </li><li> Centrifugar a 300 xg durante 5 min a peletizar las células. Aspirar el sobrenadante y lavar las células con tampón FACS. Peletizar las células con otra centrifugación a 300 xg durante 5 min a TA. NOTA: Para llevar a cabo el cultivo celular, consulte el Paso 4. Para llevar a cabo la clasificación de células, consulte el Paso 5. Para realizar inmunofenotipo, consulte el Paso 6. </li></ol> 4. Aplicaciones - Cultivo de células <ol><li> Vuelva a suspender las células del paso 3.7 en 1 ml de medio de cultivo RPMI 1640. Cuenta las células viables using de un contador de células automático o un hemocitómetro y una solución de azul de tripano al 0,4%. </li><li> Añadir la cantidad de medio de cultivo RPMI para hacer una concentración celular de 1 x 10 6 células / ml. Las células están listas para la cultura. </li></ol> 5. Aplicaciones - Aislamiento de macrófagos para la Cultura de la célula primaria <ol><li> Para aislar las células CD14 +, magnéticamente marcar las células de la Etapa 3.7 con microperlas CD14 (20 l perlas por 10 7 células), se incuba durante 15 min a 4 ° C, y las células CD14 + separado de otros tipos de células mediante la aplicación de un campo magnético. Después de 2 lavados con tampón MACS y la eliminación del campo magnético, eluir las células CD14 + retenidas magnéticamente con tampón MACS. </li><li> Después de la centrifugación, re-suspender los sedimentos celulares en medio de cultivo RPMI 1640. Las células están listos para el chapado (Figura 2). </li></ol> 6. Aplicaciones - inmunotipificación <ol><li> Para utilizar las células para immunophenotyping, volver a suspender las células del paso 3.7 en 1 ml de PBS 1x. Contar las células viables usando un contador de células automático o un hemocitómetro y una solución de azul de tripano al 0,4%. </li><li> Etiqueta de las células con un colorante viabilidad corregible (Figura 3). Lavar las células dos veces con tampón FACS y volver a suspender las células en tampón de tinción. Incubar con un bloqueador FcR durante 15 min a 4 ° C. </li><li> Añadir anticuerpos conjugados con fluorocromos extracelulares. Por ejemplo, en este protocolo, utilizar anti-CD3, anti-CD19, anti-CD14, anti-CD15, anti-CD56 y anticuerpos (Tabla 1). Incubar durante 30 minutos a 4 ° C en la oscuridad. </li><li> Después de 2 lavados con PBS 1x, se analizarán las células en 500 l de tampón de tinción utilizando un citómetro de flujo. Una representación de la estrategia de gating utilizado para analizar las subpoblaciones de leucocitos que se encuentran en los tejidos deciduales se muestra en la Figura 4. </li></ol>

Los autores no revelan conflictos de intereses.

Caracterización de las propiedades funcionales y fenotípicas de la infiltración de leucocitos en la interfase materno-fetal humano es esencial para la comprensión de los mecanismos inmunológicos que conducen a trastornos del embarazo. Varias técnicas se han descrito con el fin de aislar los leucocitos de la interfaz materno-fetal durante el embarazo humano 10,14,25,28,37,42,43. Sin embargo, cada una de estas técnicas es distinta, utiliza enzimas o combinaciones de enzimas diferentes, requiere diferentes tiemp...

El embarazo se caracteriza por tres fases distintas inmunológicos: 1) la implantación y placentación temprana asociada con una respuesta pro-inflamatoria (es decir, la implantación se asemeja a una &quot;herida abierta&quot;); 2) el segundo trimestre y la mayor parte del tercer trimestre del embarazo cuando se logra la homeostasis inmune a través de un estado predominantemente anti-inflamatoria en la interfase materno-fetal; y 3) el parto, un estado pro-inflamatorio 1-7. Las células inmunes juegan un papel importante en la regulación de la respuesta inflamatoria en la interfase materno-fetal, donde su abundancia y el cambio de localización durante todo el embarazo 6-9. En los seres humanos, la interfaz materno-fetal representa un área de contacto directo entre los tejidos materna (decidua) y fetal (corion o trofoblasto). Esta interfaz incluye: 1) la decidua parietal que recubre la cavidad uterina no cubierto por la placenta y es en yuxtaposiciónpara el corion leve; y 2) la decidua basal, que se encuentra en la placa basal de la placenta donde es invadida por los trofoblastos intersticiales 10 (Figura 1). La intimidad de estas zonas de contacto crea condiciones para la exposición antigénica fetal al 11-13 materna sistema inmunológico. No es sorprendente, los leucocitos comprenden hasta el 30-40% de las células deciduales 8,9,14,15 además de las células de tipo estromal típicos y células glandulares 8,14,16. El papel de los leucocitos en la interfase materno-fetal abarca múltiples procesos que incluyen la limitación de la invasión trofoblástica 17, la remodelación de las arterias espirales 18,19, el mantenimiento de la tolerancia materna 12,20, y el inicio del trabajo 21-26. Los leucocitos tanto de la adaptación y las extremidades innata del sistema inmune, es decir, las células T, macrófagos, neutrófilos, células B, células dendríticas, y células NK, se han identificado en los tejidos deciduales, y suproporciones y estado de activación se ha demostrado que variar espacialmente y temporalmente durante toda la gestación 6-10,12,14,24,27-30. Las perturbaciones en la población y / o la función de leucocitos están asociados con el aborto espontáneo 31, 32 preeclampsia, restricción del crecimiento intrauterino 32,33, y trabajo de parto prematuro 7,24. Por lo tanto, el estudio de las características fenotípicas y la funcionalidad de los leucocitos en la interfase materno-fetal humano facilitará la elucidación de las vías inmunológicas dysregulated en los trastornos del embarazo. Una de las herramientas más poderosas utilizadas para determinar el fenotipo y las propiedades funcionales de los leucocitos se citometría de flujo, la tecnología que permite el análisis cuantitativo de múltiples parámetros simultáneamente 34-36. Para analizar los leucocitos por citometría de flujo, se requiere aislamiento de los leucocitos en una suspensión de una sola célula. Por lo tanto, un método para separar la infiltración leuSe necesita kocytes desde la interfaz materno-fetal para estudiar su fenotípica y propiedades funcionales. Varios métodos han sido descritos para aislar los leucocitos desde la interfaz materno-fetal humano 10,14,25,27,37-39. Mientras que algunos se aplican desagregación mecánica 10,25,27,38, otros utilizan digestión enzimática 37,40 para la disociación de tejido. Debido a la desagregación mecánica produce un menor rendimiento y reducción de la viabilidad 41, y la disociación enzimática puede afectar a la viabilidad y la retención de marcador de superficie celular 42, el método descrito en el presente documento combina la disociación mecánica suave con enzimático pre-tratamiento para aumentar el rendimiento de los leucocitos aislados sin comprometer la viabilidad celular. Una combinación similar de métodos ha demostrado ser eficaz en el aislamiento de leucocitos de los tejidos deciduales en la interfase materno-fetal 39. Por lo tanto, el protocolo descrito en este documento implica mechadesagregación nica con un disociador tejido automático que aumenta la consistencia, mientras que el ahorro de tiempo y mano de obra en comparación con picado tradicional con escalpelos opuestas, hojas de afeitar o tijeras quirúrgicas 10,28. La enzima seleccionada para la disociación del tejido era Accutase. A diferencia colagenasa utilizada 43, Dispasa 44, 45 y tripsina, Accutase (una solución desprendimiento celular) combina proteolítica general y actividades colagenolíticas que contribuyen a la disociación eficiente pero suave 46,47. Después de la disociación, los leucocitos se enriquecen a partir de la población total de las células deciduales por centrifugación en gradiente de densidad. Varios medios de gradiente de densidad se han utilizado previamente, el más común de los cuales son Percoll (una suspensión de partículas de sílice coloidal) y Ficoll 48 (un polímero de sacarosa con un alto peso molecular sintético) 49. La eficacia superior de aislamiento por el polímero sacarosa ha sido Previously muestra 50, y el protocolo descrito en el presente documento además demuestra que este medio de gradiente de densidad produce una pureza suficientemente alta de los leucocitos mononucleares. Por lo tanto, el protocolo descrito en el presente documento combina la desagregación tisular mecánico con un disociador automática tejido, la digestión enzimática con una solución de desprendimiento celular, y la separación de leucocitos con un medio de gradiente de densidad (1,077 + 0,001 g / ml) para aislar los leucocitos de tejidos deciduales humanos. Este protocolo se ha demostrado para preservar los antígenos de superficie celular, junto con la viabilidad celular. Los leucocitos aislados se pueden utilizar para múltiples aplicaciones que incluyen inmunofenotipo con citometría de flujo y estudios funcionales in vitro.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Dissection</td></tr><tr><td>Herramientas de disección estériles: tijeras quirúrgicas, pinzas y pinzas de punta fina&nbsp;</td><td>Cualquier proveedor</td><td>20012-027</td><td></td></tr><tr><td>1X solución salina tamponada con fosfato (PBS)</td><td>Life Technologies</td><td></td><td>(1X PBS)</td></tr><tr><td>Placas de Petri grandes y pequeñas</td><td>Cualquier proveedor</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"><fuerte>Disociación</fuerte></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Life Technologies</td><td>A11105-01</td><td>(solución de desprendimiento de células)</td></tr><tr><td>Tubos cónicos estériles de 2 ml con cierre seguro</td><td>Cualquiera vendor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>tubos de centrífuga cónicos de 50 ml</td><td>Cualquier proveedor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 &micro; coladores de células</td><td>m FALCON/Corning</td><td>352360</td><td></td></tr><tr><td>5 ml tubos de ensayo de poliestireno de fondo redondo</td><td>Cualquier proveedor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipetas de transferencia</td><td>Cualquier proveedor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubos C</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-237</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Cell Culture</td></tr><tr><td>RPMI medio de cultivo 1640&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>22400-089(</td><td>1X) (10% FBS y 1% P/S)</td></tr><tr><td>Portaobjetos de cámara de plástico</td><td>Incubadora</td> de <td>177437</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Thermo Scientific Corporation Thermo Scientific Corporation Baño</td> de agua <td>HEPA Clase 100</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Fisher Scientific</td><td>ISOTEMP 110</td><td></td></tr><tr><td>Contador de celdas</td><td>Nexelcom</td><td>Celómetro Auto2000</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>Olympus</td><td>Olympus CKX41</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Cell Separation</td></tr><tr><td>MS</td> columnas <td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-201</td><td></td></tr><tr><td>Separador</td> celular <td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-109</td><td></td></tr><tr><td>30 &mu; m filtros de preseparación</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-041-40</td><td></td></tr><tr><td>Multistand</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-303</td><td></td></tr><tr><td>Tubos cónicos de 15 ml con cierre seguro</td><td>Cualquier proveedor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tampón MACS&nbsp;</td><td></td><td></td><td>(0,5% albúmina sérica bovina, 2 mM EDTA y 1X PBS)</td></tr><tr><td colspan="4"><fuerte>Reactivos</fuerte></td></tr><tr><td>FcR Bloqueo</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-059-901</td><td>(Fc Block)</td></tr><tr><td>Anti-anticuerpos anti-antígeno de superficie celular humana&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>(Tabla 1)</td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>Tinte de viabilidad LIVE/DEAD</td><td>BD Biosciences</td><td>564406</td><td></td></tr><tr><td>tampón Lyse/Fix&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>346202</td><td></td></tr><tr><td>tampón FACS&nbsp;</td><td></td><td></td><td>(0,1% BSA, 0,05% azida de sodio y 1X PBS, pH = 7,4)</td></tr><tr><td>Tampón de tinción&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>554656</td><td></td></tr><tr><td>solución de Trypan Blue 0.4%</td><td>Life Technologies</td><td>15250-011</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1440-02 Medios de</td><td>gradiente de densidad del 20% (1,077 + 0,001 g/ml)</td></tr><tr><td colspan="4">Instrumentos adicionales</td></tr><tr><td>Incubadora con agitador</td><td>Citómetro</td> de flujo <td>Thermo Scientific MAXQ 4450</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Centrífuga BD Biosciences</td><td>LSR-Fortessa</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Beckman Coulter</td><td>SpinChron DLX</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de vacío</td><td>Cualquier proveedor</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Disociador automático de tejidos&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>gentleMACS Disociator</td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento de leucocitos de la interfaz humana materno-fetal

Isolation of Leukocytes from the Human Maternal-fetal Interface

El embarazo se caracteriza por la infiltración de leucocitos en los tejidos reproductivos y en la interfase materno-fetal (decidua basal y decidua parietal). Esta interfaz es el lugar anatómico de contacto entre la madre y tejidos fetales; Por lo tanto, es un sitio de acción inmunológica durante el embarazo. Leucocitos infiltrantes en la interfase materno-fetal juegan un papel central en la implantación, el mantenimiento del embarazo, y el momento de la entrega. Por lo tanto, caracterizaciones fenotípicas y funcionales de estos leucocitos proporcionarán información sobre los mecanismos que conducen a trastornos del embarazo. Varios protocolos se han descrito con el fin de aislar la infiltración de leucocitos de la decidua basal y decidua parietal; sin embargo, la falta de coherencia en los reactivos, enzimas, y los tiempos de incubación hace que sea difícil comparar estos resultados. Se describe aquí un nuevo enfoque que combina el uso de diss mecánicos y enzimáticos suavesociation técnicas para preservar la viabilidad e integridad de los marcadores extracelulares e intracelulares en los leucocitos aislados de los tejidos humanos en la interfase materno-fetal. Aparte de inmunofenotipo, cultivo celular, y la clasificación de células, las aplicaciones futuras de este protocolo son numerosas y variadas. Siguiendo este protocolo, los leucocitos aislados se pueden utilizar para determinar la metilación del ADN, la expresión de genes diana, en funcionalidad vitro de leucocitos (es decir, la fagocitosis, citotoxicidad, la proliferación de células T, y la plasticidad, etc.), y la producción de especies reactivas de oxígeno en la interfase materno-fetal. Además, utilizando el protocolo descrito, este laboratorio ha sido capaz de describir nuevos y raros leucocitos en la interfase materno-fetal.

. La disección de los tejidos humanos en la interfase materno-fetal (decidua basal y decidua parietal) se muestra en la Figura 1 Este procedimiento incluye la disección de la placa basal, que incluye la decidua basal (Figura 1A - D). La decidua basal se obtiene mediante la eliminación de las vellosidades de la placenta (lado fetal) de la placa basal (Figura 1C). La decidua parietal se recoge raspando suavemente la membrana coriónica (Figura 1E</...

En este trabajo se describe un protocolo para aislar y estudiar más a fondo los leucocitos infiltrantes de la decidua basalis y la decidua parietalis - la interfaz materno-fetal humana. Este protocolo mantiene la integridad de los marcadores de superficie celular y produce suficientes celdas viables para aplicaciones posteriores, como lo demuestra el análisis de citometría de flujo.

Aislamiento de leucocitos de la interfaz humana Materno-fetal

Pregnancy is characterized by the infiltration of leukocytes in the reproductive tissues and at the maternal-fetal interface (decidua basalis and decidua ...

El objetivo general de este procedimiento es aislar leucocitos del endometrio humano, baus y endometrio paral. Esto se logra primero mediante la disección de los tejidos deciduales humanos de la placenta. A continuación, el tejido decidua se disocia mediante desagregación mecánica y digestión enzimática.Luego, la suspensión celular se filtra utilizando un tamiz celular de 100 micrómetros, lavado con un XPBS, y se centrifuga a 300 G durante cinco minutos a cuatro grados Celsius para obtener un botón celular. Finalmente, la suspensión celular se coloca encima de la solución de gradiente de densidad y se centrifuga, recolectándose la interfase que contiene los leucocitos. En última instancia, los leucocitos aislados pueden utilizarse para inmunofenotipificación, cultivo celular y estudios funcionales.La ventaja de esta técnica, o de los métodos existentes, como la disociación mecánica o la digestión enzimática, es que combina la desagregación mecánica del tejido con un asociador automático de tejidos y la digestión temática con Accutase y el aislamiento de leucocitos mediante un gradiente de Ficoll. Se ha demostrado que este protocolo preserva los antígenos de superficie celular y la viabilidad celular, y sus implicaciones se extienden hacia la comprensión de las propiedades funcionales y fenotípicas de los leucocitos infiltrantes en la interfaz materno-fetal relacionadas con la patogénesis de complicaciones prenatales. La recolección y el uso de muestras humanas con fines de investigación fueron aprobados por las juntas de revisión institucional de Eunice Kennedy Shriver, el Instituto Nacional de Salud Infantil y del Desarrollo Humano, los Institutos Nacionales de Salud, el Departamento de Salud y Servicios Humanos y la Universidad Estatal de Wayne. Se obtuvo el consentimiento informado por escrito de todas las mujeres embarazadas antes de la recolección de las muestras de tejido. Para comenzar, el decí basilis disecciona un fragmento de la placa basal de un co leadin de la placenta. Colóquelo sobre una tabla de cortar estéril con el vli placentario, que presentará un color rojo sangre con apariencia vellosa, orientado hacia arriba.La placa basal es lisa y de color rojo pálido, mientras se mantiene el tejido sumergido en un XPBS; utilice tijeras de punta fina y aguda y pinzas para eliminar el tejido vellositario y los vasos sanguíneos. Recolecte dos o tres fragmentos y use PBS para enjuagarlos minuciosamente y eliminar la sangre. Para aislar el decidual, seccione un cuadrado de 10 centímetros por 10 centímetros.Colóquelo sobre la placa con el corion, que contiene coágulos sanguíneos y generalmente tiene un color amarillo claro, orientado hacia arriba. A continuación, utilice pinzas de punta fina para eliminar la mayor cantidad posible de coágulos sanguíneos. Luego, con PBS estéril, enjuague la membrana hasta que el PBS salga transparente.Utilizando un raspador celular estéril desechable y añadiendo PBS sobre la membrana, desprenda suavemente la capa decidual. Recopile los tejidos decidual y colóquelos en un tubo plástico de 50 mililitros con PBS estéril para disgregar mecánicamente la decidua Bali o la deci paral. Comience utilizando PBS 1X estéril para lavar el tejido en un tubo de 50 mililitros.Luego, centrifugue el tejido a 300 G y temperatura ambiente durante cinco minutos. Aspire cuidadosamente el sobrenadante sin perturbar el botón. A continuación, después de resuspender el tejido y la solución de disociación según el protocolo descrito, transfiera los tejidos homogeneizados a un tubo C.Coloque el tubo en el disociador automático y ejecute el programa correspondiente tras la disociación con una solución comercialmente disponible para la separación de células, como Accutase, aplicada a los tejidos. Incube a 37 grados Celsius con agitación suave durante 45 minutos para digerir la muestra. Tras la incubación, añada 10 mililitros de PBS a la mezcla digerida y pásela a través de un filtro celular de 100 micrómetros hacia un tubo de 50 mililitros. Dependiendo de la viscosidad, pueden ser necesarios varios filtros para filtrar una única digestión.Use PBS para llenar el tubo y centrifugue a 300 G y temperatura ambiente durante cinco minutos. Retire cuidadosamente el sobrenadante S y use cinco mililitros de tampón fax frío para resuspender el sedimento celular. Para estudiar los leucocitos mononucleares, agregue cinco mililitros de medio de gradiente de densidad al 20 % a un tubo plástico de 15 mililitros.Luego, superponga lentamente la suspensión celular en la parte superior, teniendo cuidado de no mezclar las capas, y centrifugue con un rotor de balanceo a 500 G, a cuatro grados Celsius y sin freno durante 30 minutos; los leucocitos se encontrarán en la interfase entre el medio de gradiente de densidad y el tampón fax. A continuación, aspire cuidadosamente con pipeta la capa superior que contiene el tampón fax y los restos celulares. La interfase contiene las células mononucleares residuales y una fracción de los leucocitos polimorfonucleares.Transfiera esta capa a un nuevo tubo de 15 mililitros. Añada al menos tres volúmenes de tampón fax al tubo, luego centrifugue a 300 G durante cinco minutos. Para recoger las células, aspire el sobrenadante S y lave las células con tampón fax una segunda vez antes de llevar a cabo el cultivo celular.Ordenamiento e inmunofenotipado de acuerdo con el protocolo descrito, esta figura muestra la morfología de macrófagos aislados obtenidos del decidua parias en un embarazo a término mediante separación celular magnética. Los macrófagos aislados conservan la capacidad de liberar citoquinas tras tres días de cultivo. El rendimiento de células viables aisladas del decidua, baus y decidua paral se determinó tras la separación por gradiente de densidad.Al utilizar un marcador de viabilidad fijable como se muestra aquí, fue superior al 90 % para cada población de células deci. Se muestra aquí la estrategia de selección para analizar los leucocitos polimorfonucleares y mononucleares dentro de la selección visible, incluyendo linfocitos T, neutrófilos, macrófagos, células NK, células T NK y células B. En el embarazo a término, esta figura muestra neutrófilos, macrófagos, células T y células B a partir de células residuales aisladas de un embarazo a término.Finalmente, en este conjunto de gráficos se representan las células NK, NKT y T procedentes de las células residuales aisladas de un embarazo a término. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en tres horas si se lleva a cabo correctamente. Al intentar este procedimiento, es importante recordar limpiar bien el tejido para evitar contaminación con sangre y mantener el tejido y el cóctel enzimático protegidos durante todo el procedimiento.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Un método rápido para obtener la infiltración de leucocitos en el cerebro murino se describe. Este método utiliza un gradiente de Percoll continua y discontinua gradiente de Ficoll para seleccionar y purificar la capa de leucocitos enriquecido. Leucocitos aislados se puede caracterizar por las mediciones de citometría de flujo.

El aislamiento de la infiltración de leucocitos cerebro-

Aquí se describe un protocolo para aislar los subconjuntos de precursor de células B de sangre del cordón umbilical. Una cantidad suficiente y calidad de los ácidos nucleicos se pueden extraer de las células y utilizarse en ensayos subsiguientes utilizando ADN o ARN.

Aislamiento de los precursores de células B subconjuntos de Sangre del Cordón Umbilical

En este trabajo se describe un protocolo para aislar y analizar los leucocitos infiltrantes de tejidos en la interfaz materno-fetal (útero, decidua y placenta) de ratones. Este protocolo mantiene la integridad de la mayoría de los marcadores de superficie celular y produce suficientes células viables para aplicaciones posteriores, incluido el análisis de citometría de flujo.

Aislamiento de leucocitos a partir de los tejidos murinos en la interfase materno-fetal

En este documento se describen los métodos para la disección de tejidos fetales y maternas de placenta humana a término, seguido por el aislamiento y expansión de células madre mesenquimatosas / estroma (MSC) de estos tejidos.

Aislamiento y expansión de células madre mesenquimales / estromales derivadas de tejido de placenta humana

Se describe un método simple para establecer la placenta humana primaria (vellosidades) y cultivos de órganos de la decidua. cultivos de órganos de las vellosidades y decidua son herramientas muy valiosas para el estudio de la patogénesis en la interfase materno-fetal humano. La infección con la bacteria intracelular Listeria monocytogenes facultativos se demuestra.

Los cultivos humanos de la placenta y Decidual de órganos para el Estudio de Infecciones en la interfase materno-fetal

Aquí, se presenta un protocolo para la disección de cordón umbilical humano umbilical (CU) y la muestra de placenta fetal en cable de forro (CL), gelatina de Wharton (WJ), la unión de cordón placenta (CPJ), y placenta fetal (FP) para el aislamiento y caracterización de células estromales mesenquimales (MSCs) utilizando la técnica de cultivo de explantes.

Aislamiento y caracterización de las células mesenquimales del estroma de cordón umbilical humano y fetal Placenta

Este protocolo muestra un método para el aislamiento de las células decidual humanas primarias recogidas de las membranas fetales de la placenta de término que puede ser utilizada para una variedad de aplicaciones (es decir, inmunocitoquímica, citometría de flujo, etc.) con el objetivo de para estudiar el papel de diferentes poblaciones celulares en complicaciones del embarazo.

Aislamiento de células Decidual humanas primarias de las membranas fetales de la placenta de término

La leche materna transmite el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), aunque sólo el 15 % de los lactantes amamantados por madres infectadas por el VIH se infectan. Los lactantes amamantados ingieres diariamente de 105x 108 leucocitos maternos, aunque estas células están poco estudiadas. Aquí describimos el aislamiento de los leucocitos de la leche materna y un análisis de su capacidad fagocítica.

Aislamiento de leucocitos de la leche materna humana para su uso en un ensayo de fagococitosis celular dependiente de anticuerpos de metas de VIH

Este es un método para aislar las células linfoides uterinas de ratones preñados y no preñados. Este método se puede utilizar para múltiples aplicaciones posteriores, como fenotipado FACS, clasificación celular, ensayos funcionales, ARN-seq y proteómica. El protocolo aquí demuestra cómo fenotipar el grupo 1 de las células linfoides innatas uterinas mediante citometría de flujo.

Aislamiento de células linfoides innatas uterinas para análisis por citometría de flujo

Este protocolo detalla el aislamiento de poblaciones vivas inmunes y no inmunes del pulmón de ratón en un estado estacionario y después de la infección por influenza. También proporciona estrategias de activación para identificar subconjuntos de células epiteliales y mieloides.

Aislamiento de poblaciones vivas de células mieloides y epiteliales del pulmón de ratón

Este protocolo permite la purificación, caracterización y cultivo de trofoblastos extravillosos primarios de HLA-G+ (EVT) de la decidua basal y la membrana coriónica de placentas humanas a término. Los cultivos primarios de EVT mantienen la viabilidad durante 96 horas, permitiendo el cocultivo con células inmunitarias maternas emparejadas por muestras y el posterior análisis citométrico y molecular de flujo de sus interacciones.

Purificación de trofoblastos extravillosos HLA-G+ de tejidos placentarios humanos para fenotipado y análisis funcional

Aprende a aislar leucocitos viables de la decidua humana mediante disociación mecánica, digestión enzimática y centrifugación en gradiente de densidad. Este método preserva los marcadores de superficie celular para estudios inmunológicos.

Aislamiento de leucocitos de la interfaz humana Materno-fetal

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