Name: El agotamiento selectivo de la microglía de cerebeloso gránulos Cultivos Celulares El uso de L-leucina metil éster (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: Aprende a depletar microglía de cultivos de células granulares cerebelosas usando L-leucina metil éster. Este método permite estudiar interacciones neuronales y su papel en enfermedades neurodegenerativas con neuroinflamación.

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Esta investigación fue apoyada por una beca de doctorado de Aims2Cure, Reino Unido y UCL Impact Award para JMP y una beca de doctorado en Demencia de MRC Capacity Building para JMP.

Todos los experimentos descritos en este documento se realizaron de acuerdo con las Unido Animales Unidas (procedimientos científicos) Act de 1986. 1. Preparación de instrumentos, medios de cultivo, y platos <ol><li> Prepare dos tijeras de disección de laboratorio de acero inoxidable y dos pinzas de laboratorio de acero inoxidable. Autoclave todos los instrumentos y lugar en una campana de cultivo O / N bajo la luz (UV) ultravioleta para la esterilización. </li><li> Hacer 500 ml de (MEM) medio de cultivo medio esencial mínimo (10% de suero bovino fetal [FBS], 20 mM KCl, 25 mM NaHCO 3, 30 mM D-glucosa, 2 mM L-glutamina, 100 U / ml de penicilina, 100 g / ml de estreptomicina y 6 mg / ml de ampicilina) y esterilizar filtro. Almacenar a 4 ° C durante meses. </li><li> Preparar 24 placas de cultivo de pocillos que contenían 14 mm, número 1 cubreobjetos espesor. Autoclave los cubreobjetos y capa en 100 mg / L de poli-D-lisina (PDL) como se describe previamente 3. Luz UV esterilizar O / N. </li></ol> 2. Preparación de Soluciones CGC Cultura <ol><li> Preparar &#39;solución A&#39; (100 ml) en autoclave, luz UV tratada, dH 2 O estéril que contiene 250 mg de glucosa, 300 mg de albúmina de suero bovino [BSA], 955 mg de solución salina tamponada con fosfato [PBS] (Ca 2+ y Mg + gratis), y 1 ml de 3,8% MgSO4 · 7H 2 O. </li><li> Preparar &#39;solución B&#39; (10 ml) que contiene 1 ml de 5 mg / ml de tripsina diluido en 9 ml de solución A. </li><li> Preparar &#39;solución C&#39; (10 ml) que contienen 1,000 unidades de ADNasa, 0,5 mg de inhibidor de tripsina de soja, 100 l de 3,8% MgSO4 · 7H 2 O, se diluyó a 10 ml con solución A. </li><li> Preparar &#39;solución D&#39; (20 ml) que contiene 3,2 ml de solución C, se diluyó a 20 ml con solución A. </li><li> Prepare la solución de BSA / Earle solución salina equilibrada (EBSS) que contiene EBSS, 25 mM NaHCO3, 3 mM MgSO4 · 7H 2 O, y4% de BSA, pH 7,4, como se ha descrito previamente 3. </li><li> Preparar LME añadiendo puro LME en 5 ml de medio de cultivo MEM para dar una concentración final de 150 mM LME, devolver la solución a pH 7,4 usando un medidor de pH de sobremesa, y el filtro de esterilizar usando un poliéter sulfona 28 mm (PES) 0,2 micras jeringa filtro. </li></ol> 3. El cultivo de las CGC <ol><li> Recoger cerebelo 4-7 días de edad crías de rata como se describe anteriormente 3. Coloque inmediatamente en placa de Petri que contiene 5 ml de la solución A en hielo. </li><li> Vierta el exceso de solución de cerebelo y el lugar del tejido en el plato tapa Petri. </li><li> Picar finamente tejido con una cuchilla de afeitar así flameado-en al menos tres direcciones diferentes. </li><li> Añadir tejido picado a la solución B (enjuague placa de Petri con solución para asegurar el tejido limitada se pierde) y colocar en baño de agua a 37 ° C durante 5 min. Agite suavemente cada par de minutos. </li><li> Añadir solución D (20 ml) al tubo para neutralizar la tripsina, agitar y cientorifuge a 65 xg durante 5 min. </li><li> Retirar el sobrenadante. </li><li> Resuspender en 4 ml de solución C. Se tritura pocillos (aproximadamente 10 veces cada uno) con tres pipetas de vidrio flameado de diámetro decreciente, hasta que la suspensión es tan homogénea como sea posible. </li><li> Lenta y suavemente añadir unas gotas de este homogeneizado en la parte superior de la BSA / EBSS. Si comienza a hundirse a través de la BSA / EBSS, triturar más y / o añadir un poco más de la solución C. El homogeneizado debe sentarse en una capa en la parte superior de la BSA / EBSS. No agite. Girar a 100 xg durante 5 min. </li><li> Eliminar el sobrenadante y resuspender el pellet (suave) en 1 ml de medio MEM. </li><li> Contar las células utilizando un hemocitómetro y placa a 800.000 células / cubreobjeto en 500 l de medio MEM. Coloque en una incubadora a 37 ° C con 6% de CO 2. </li><li> Cambie el medio al día siguiente (24 a 36 horas después de la preparación). Hacer una solución de medio MEM que contiene 10 M del ciclo celular citidina arabinofuranosil inhibidor (AraC). <ol><li> Para cadacubreobjetos, retener 250 l de medio de edad en una placa de 24 frescos, aspirar el resto, añadir 250 l de medio normal MEM y aspirar este para lavar las células, a continuación, añadir los 250 l de medio de edad de nuevo a las células y recarga con 250 l de medio que contenía AraC. Nota: Las células se pueden usar desde los 6 días in vitro (DIV). </li></ol></li></ol> 4. selectiva que agotan la microglía (realizado a las 6 DIV) <ol><li> Añadir LME pura a 5 ml de una alícuota separada de medio MEM para dar una concentración final de 150 mM LME. </li><li> Devolver la solución a pH 7,4 y esterilizar utilizando un filtro de poliéter sulfona 28 mm (PES) filtro de 0,2 micras jeringa. </li><li> Diluir la solución a una concentración de 50 mM (2 x LME) en medio MEM y colocar en un baño de agua a 37 ° C durante 10 minutos, junto con medio normal MEM para cultivos de control. </li><li> Retire la mitad (250 l) el medio MEM a partir de cultivos de CGC y retener a 37 ° C. </li><li> Tratar a las célulascon medio MEM que contiene 2 x LME (250 l), es decir, diluido 1: 1 dando una concentración bien de 25 mM, o con medio de pre-calentado MEM sin ​​LME (250 l) para los cultivos de control. </li><li> Se incuban las células a 37 ° C en una atmósfera húmeda con un 6% de CO 2 durante 1 hora. </li><li> Lavar las células dos veces en medio precalentado fresca MEM para eliminar medios LME-que contienen, y luego reemplazar el medio de cultivo retenido y un volumen igual de medio precalentado fresca MEM a los pocillos correspondientes. </li><li> Culturas Regreso a la incubadora (humidificado con 6% de CO 2 a 37 ° C) y dejar reposar durante 24 horas antes de cualquier tratamiento adicional. </li></ol>

<ol><li>Herculano-Houzel, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+remarkable%2C+yet+not+extraordinary%2C+human+brain+as+a+scaled-up+primate+brain+and+its+associated+cost%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">The remarkable, yet not extraordinary, human brain as a scaled-up primate brain and its associated cost.</a> PNAS. 26 (109), 10661-10668 (2012).</li>
<li>Evans, G. J., &Pocock, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+neurotransmitter+release+by+dihydropyridine-sensitive+calcium+channels+involves+tyrosine+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neuro%22%5BJournal%5D)">Modulation of neurotransmitter release by dihydropyridine-sensitive calcium channels involves tyrosine phosphorylation.</a> Eur J Neuro. 11 (1), 279-292 (1999).</li>
<li>Kingham, P. J., Cuzner, M. L., Pocock, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apoptotic+pathways+mobilized+in+microglia+and+neurones+as+a+consequence+of+chromogranin+A-induced+microglial+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Apoptotic pathways mobilized in microglia and neurones as a consequence of chromogranin A-induced microglial activation.</a> J Neurochem. 73 (2), 538-547 (1999).</li>
<li>Contestabile, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebellar+granule+cells+as+a+model+to+study+mechanisms+of+neuronal+apoptosis+or+survival+in+vivo+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Cerebellum%22%5BJournal%5D)">Cerebellar granule cells as a model to study mechanisms of neuronal apoptosis or survival in vivo and in vitro.</a> Cerebellum. 1 (1), 41-55 (2002).</li>
<li>Kramer, D., Minichiello, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+culture+of+primary+cerebellar+granule+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell culture of primary cerebellar granule cells.</a> Methods Mol Biol. 633, 233-239 (2010).</li>
<li>Facci, L., Skaper, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+rat+cerebellar+granule+neurons+and+application+to+identify+neuroprotective+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Culture of rat cerebellar granule neurons and application to identify neuroprotective agents.</a> Methods Mol Biol. 846, 23-37 (2012).</li>
<li>Thiele, D. L., Kurosaka, M., Lipsky, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotype+of+the+accessory+cell+necessary+for+mitogen-stimulated+T+and+B+cell+responses+in+human+peripheral+blood%3A+delineation+by+its+sensitivity+to+the+lysosomotropic+agent%2C+L-leucine+methyl+ester%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunology%22%5BJournal%5D)">Phenotype of the accessory cell necessary for mitogen-stimulated T and B cell responses in human peripheral blood: delineation by its sensitivity to the lysosomotropic agent, L-leucine methyl ester.</a> J Immunology. 131 (5), 2282-2290 (1983).</li>
<li>Giulian, D., Vaca, K., Corpuz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+glia+release+factors+with+opposing+actions+upon+neuronal+survival%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Brain glia release factors with opposing actions upon neuronal survival.</a> J Neurosci. 13 (1), 29-37 (1993).</li>
<li>Guillemin, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Obtention+and+characterization+of+primary+astrocyte+and+microglial+cultures+from+adult+monkey+brains%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Obtention and characterization of primary astrocyte and microglial cultures from adult monkey brains.</a> J Neurosci Res. 49 (5), 576-591 (1997).</li>
<li>Hewett, J. A., Hewett SJ,, Winkler, S., Pfeiffer SE, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+nitric+oxide+synthase+expression+in+cultures+enriched+for+mature+oligodendrocytes+is+due+to+microglia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Inducible nitric oxide synthase expression in cultures enriched for mature oligodendrocytes is due to microglia.</a> J Neurosci Res. 56 (2), 189-198 (1999).</li>
<li>Jebelli, J., Hooper, C., &Pocock, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglial+p53+activation+is+detrimental+to+neuronal+sysnapses+during+activaton-induced+inflammation%3A+implications+for+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Microglial p53 activation is detrimental to neuronal sysnapses during activaton-induced inflammation: implications for neurodegeneration.</a> Neurosci Lett. 7 (583), 92-97 (2014).</li>
<li>Frade, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutamate+induces+release+of+glutathione+from+cultured+rats+astrocytes+%E2%80%93+a+possible+neuroprotective+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Glutamate induces release of glutathione from cultured rats astrocytes – a possible neuroprotective mechanism.</a> J Neurochem. 105 (4), 1144-1152 (2008).</li>
<li>Hamby, M. E., Uliasz, T. F., Hewett, S. J., Hewett, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+an+improved+procedure+for+the+removal+of+microglia+from+confluent+monolayers+of+primary+astrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Characterization of an improved procedure for the removal of microglia from confluent monolayers of primary astrocytes.</a> J Neurosci Methods. 150 (1), 128-137 (2006).</li>
<li>Morgan, S. C., Taylor, D. L., Pocock, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+release+activators+of+neuronal+proliferation+mediated+by+activation+of+mitogen-activated+protein+kinase%2C+phosphatidylinositol-3-kinase%2FAkt+and+delta-Notch+signalling+cascades%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Microglia release activators of neuronal proliferation mediated by activation of mitogen-activated protein kinase, phosphatidylinositol-3-kinase/Akt and delta-Notch signalling cascades.</a> J Neurochem. 90 (1), 89-101 (2004).</li>
<li>Crocker, S. J., Frausto, R. F., Whitton, J. L., Milner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+to+establish+microglia-free+astrocyte+cultures%3A+comparison+of+matrix+metalloproteinase+expression+profiles+in+pure+cultures+of+astrocytes+and+microglia%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">A novel method to establish microglia-free astrocyte cultures: comparison of matrix metalloproteinase expression profiles in pure cultures of astrocytes and microglia.</a> Glia. 56 (11), 1187-1198 (2008).</li>
<li>Kumamaru, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liposomal+clodronate+selectively+eliminates+microglia+from+primary+astrocyte+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neuroinflamm%22%5BJournal%5D)">Liposomal clodronate selectively eliminates microglia from primary astrocyte cultures.</a> J Neuroinflamm. 9, 116(2012).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Los pasos más importantes para garantizar la eliminación selectiva de éxito de la microglia de CGC y / o cultivos mixtos son: 1) el mantenimiento de una cultura CGC estéril y saludable; 2) Filtro de esterilizar el medio que contiene LME-y devolver la solución a pH 7,4; 3) mantenimiento de los medios de comunicación CGC retenidas y LME-que contiene los medios de comunicación a 37 ° C para evitar el choque térmico; y 4) que trabajan rápidamente para reducir el tiempo las células se mantienen fuera de la incub...

El cerebro humano comprende un estimado de 85 mil millones de neuronas y otras 85 mil millones de células no neuronales incluyendo glia 1. Para la mayor parte de los últimos 100 años los neurocientíficos se han centrado principalmente en la población de células neuronales, creyendo células gliales a ser poco más que las células de apoyo pasivos que proporcionan soporte estructural para las neuronas - de ahí la etimología griega de &#39;glia&#39; traducida al Inglés como &quot;pegamento&quot;. Recientemente, sin embargo, se ha vuelto cada vez más evidente que las interacciones neuronales glial pueden ser mucho más fundamental a los aspectos básicos de la neurobiología, la neurofisiología, y la génesis y progresión de muchas enfermedades neurodegenerativas. Células granulares del cerebelo (CGC), el más abundante población neuronal homogénea en el cerebro humano, dominan el cerebelo y constituyen más del 90% de sus componentes celulares. En consecuencia, estas células se han utilizado ampliamente in vitro como un sistema modelo para tque estudian el desarrollo neuronal, la función y patología 2-6. Sin embargo, los cultivos de CGC aún contienen microglia y otra glía en proporciones posiblemente significativas. Como resultado, los datos CGC que muestran supuestamente respuestas neuronales directos a diferentes tratamientos con células pueden, de hecho surgir - en parte o en total - a partir de la respuesta secundaria indirecta de la glía vecino en el cultivo. Para evaluar esto, hemos eliminado selectivamente microglial de CGC cultivos neuronales con la ayuda de éster metílico de L-leucina (LME). LME es un agente lysomotropic originalmente usado para destruir selectivamente los macrófagos 7, y desde entonces ha sido utilizado también para agotar selectivamente microglia desde neural, astrocitos, y los cultivos gliales mixtos 8,9,10. LME es internalizado por los macrófagos y microglia, en el que se provoca la interrupción lisosomal y la posterior apoptosis 13,14. Los macrófagos y microglia son característicamente rico en lisosomas, haciendo que sea particularly vulnerables a la exposición a un tratamiento de LME. Este protocolo proporciona una forma potente, pero simple y fácil de determinar la contribución de la microglia en experimentos que utilizan CGC y otros sistemas de cultivos neuronales / gliales.

<table><tbody><tr><td>Pinzas&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4142</td><td>El extremo curvo facilita la extracción del cerebelo&nbsp;</td></tr><tr><td>Tijeras de microdisección</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3146</td><td>La punta recta y afilada facilita la disección de roedores P4-7&nbsp;</td></tr><tr><td>Clorhidrato de éster metílico de L-leucina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7517-19-3</td><td></td></tr><tr><td>Solución EBSS&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E7510-500 ml</td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-lisina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>27964-99-4</td><td>Cubreabrios 1 día antes de usar&nbsp;</td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9418</td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato (PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4417</td><td></td></tr><tr><td>DNasa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5025</td><td></td></tr><tr><td>Inhibidor de la tripsina de soja&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6414</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo anti-ED1 para ratones&nbsp;</td><td>Abcam</td><td>ab31630</td><td></td></tr></tbody></table>

el agotamiento selectivo de la microglía de cerebeloso gránulos cultivos celulares el uso de l-leucina metil éster

Selective Depletion of Microglia from Cerebellar Granule Cell Cultures Using L-leucine Methyl Ester

Microglia, las células inmunocompetentes residentes del SNC, desempeñan funciones multifacéticas en la modulación y el control de la función neuronal, así como en la mediación de la inmunidad innata. Los modelos de cultivo primario de células de roedores han avanzado enormemente nuestra comprensión de las interacciones neuronales-gliales, pero solo recientemente se han utilizado métodos para eliminar específicamente la microglía de los cultivos mixtos. Una de estas técnicas, descrita aquí, es el uso del éster metílico de L-leucina, un agente lisotropico que es internalizado por los macrófagos y la microglía, en el que causa disrupción lisosomal y posterior apoptosis13,14. Los experimentos con éster metílico de L-leucina tienen el poder de identificar la contribución de la microglía al entorno celular circundante en diversas condiciones de cultivo. Utilizando un protocolo optimizado en nuestro laboratorio, describimos cómo eliminar la microglía del cultivo de células granulosas cerebelosas de roedores P5. Este enfoque permite evaluar el impacto relativo de la microglía en los datos experimentales, así como determinar si la microglía desempeña un papel neuroprotector o neurotóxico en modelos de cultivo de afecciones neurológicas, como el accidente cerebrovascular, la enfermedad de Alzheimer o la enfermedad de Parkinson.

La capacidad de esta técnica para eliminar selectivamente microglia de CGC y / o cultivos mixtos se basa en la posterior capacidad del investigador para identificar y diferenciar microglia de sus células circundantes con precisión. Esto se puede lograr usando una máquina de célula microglial-específico, como isolectina-B4, como se ilustra en la Figura 1. Como se demuestra en la Figura 2, no se registraron cambios observables a los astrocitos y la densidad y morfología neuronal con respe...

Microglia puede influir en las neuronas y otras glías en cultivo mediante varios mecanismos autónomos no celulares. Aquí, presentamos un protocolo para agotar selectivamente la microglía a partir de cultivos neuronales primarios. Este método tiene el potencial de dilucidar el papel de las interacciones microglial-neuronales, con implicaciones para las enfermedades neurodegenerativas en las que la neuroinflamación es una característica distintiva.

El agotamiento selectivo de la microglía de cerebeloso gránulos Cultivos Celulares El uso de L-leucina metil éster

Microglia, the resident immunocompetent cells of the CNS, play multifaceted roles in modulating and controlling neuronal function, as well as mediating ...

El objetivo general de este procedimiento es eliminar selectivamente las células microgliales de cultivos de células granulares de la silla. Esto se logra primero cultivando una población de CGC y almacenándola en una incubadora a 37 grados Celsius con 6% de dióxido de carbono. El segundo paso consiste en preparar una solución de LME en medio MEM para obtener una concentración final de 150 milimolar de LME.Se retira la mitad del medio MEM de los cultivos de CGC y se mantiene en el incubador; luego, los cultivos de CGC se reemplazan con un volumen igual de LME que contiene medio MEM y se colocan en el incubador a 37 grados Celsius con 6% de dióxido de carbono durante una hora. El paso final consiste en lavar los cultivos de CGC dos veces con medio MEM precalentado fresco.Sustituya el medio de cultivo retenido por un volumen igual de medio fresco y, a continuación, devuelva las células al incubador durante 24 horas antes de cualquier tratamiento adicional. En última instancia, se utiliza inmunoquímica y microscopía de fluorescencia para demostrar la eliminación específica de células microgliales de cultivos de células granulares cerebelosas. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la neurobiología, como qué efectos tienen las microglías sobre las neuronas bajo diversas condiciones y qué importancia tienen estos efectos para nuestra comprensión de los trastornos neurodegenerativos, tales como la enfermedad de Alzheimer y la enfermedad de Parkinson.Generalmente, las personas nuevas en esta técnica tendrán dificultades porque el trabajo con cultivos primarios requiere precisión y rapidez. Comience este procedimiento recolectando los cerebelos de ratas jóvenes de cuatro a siete días de edad. Colóquelos inmediatamente en una placa de Petri que contenga cinco mililitros de solución A sobre hielo.Luego, retire la solución excesiva de los cerebelos y coloque el tejido en la tapa de la placa de Petri. A continuación, corte finamente el tejido con una cuchilla de afeitar bien afilada en al menos tres direcciones diferentes. Posteriormente, añada el tejido picado a la solución B. Colóquelo en un baño de agua a 37 grados Celsius durante cinco minutos y agítelo suavemente cada pocos minutos.Luego, agregue 20 mililitros de la solución D al tubo para neutralizar la tripsina; agite y centrifugue a 60 5G durante cinco minutos. Posteriormente, deseche el sobrenadante S y resuspenda en cuatro mililitros de la solución CT tri. Agite la muestra 10 veces con cada una de las tres pipetas de vidrio flameadas de diámetro decreciente hasta que la suspensión sea lo más homogénea posible.A continuación, agregue lentamente y con cuidado unas gotas de este homogenato encima del B-S-A-E-B-S-S; si comienza a hundirse a través del B-S-A-E-B-S-S-T, triture más y agregue un poco más de la solución C. El homogenato debe quedar en una capa encima del B-S-A-E-B-S-S. Centrifúguelo a 100 G durante cinco minutos y no agite. Luego elimine el sobrenadante y resuspenda el sedimento.En un mililitro de medio MEM, cuente las células utilizando un hemocitómetro y siembre 800.000 células por cubreobjetos. Añada después 500 microlitros de medio MEM, coloque en un incubador a 37 grados Celsius con 6% de dióxido de carbono. A continuación, prepare una solución de medio MEM que contenga 10 micromolares del inhibidor del ciclo celular RC. Para cada cubreobjetos, conserve 250 microlitros del medio antiguo en una placa nueva de 24 pocillos y aspire el resto.Añada 250 microlitros de medio MEM normal para lavar las células. Posteriormente, añada de vuelta 250 microlitros de medio antiguo a las células y complete con 250 microlitros de medio que contenga RSE. En este procedimiento, añada LME puro a cinco mililitros de medio MEM para obtener una concentración final de 150 milimolar de LME.Devuelva la solución a pH 7,4 utilizando una solución ácido-base. Luego, filtre estérilmente mediante un filtro de jeringa de 0,2 micrómetros con PES de 28 milímetros. A continuación, diluya la solución de LME hasta una concentración de 50 milimolares en medio MEM.Luego, colóquelo en un baño de agua a 37 grados Celsius durante 10 minutos, junto con medio MEM normal para cultivos de control. Después de 10 minutos, retire 250 microlitros del medio MEM de cada cultivo de CGC. A continuación, mantenga los medios a 37 grados Celsius.A continuación, trate las células con medio MEM que contenga dos veces LME o con medio MEM precalentado sin LME. Para los cultivos de control, incube las células a 37 grados Celsius en una atmósfera humedecida con 6% de dióxido de carbono durante una hora. Posteriormente, lave las células dos veces con medio MEM recién precalentado para eliminar el medio que contiene LME. Luego, reemplace el medio de cultivo retenido con una cantidad igual de medio MEM fresco precalentado.Por último, incubar los cultivos en dióxido de carbono humedecido al 6 % a 37 grados Celsius durante 24 horas antes de cualquier tratamiento adicional. Esta figura muestra las imágenes representativas de los experimentos realizados en cultivos de CGC después del tratamiento con 25 a 75 milimolares de LME durante una hora, seguido del lavado. Se realizó inmunoquímica con DPI para la cuantificación del número total de células y de aquellas que mostraban morfología apoptótica, y con ISO lectina B cuatro para la identificación y cuantificación de microglía. Este gráfico muestra la cuantificación de células que exhiben morfología apoptótica; aquí se presentan las imágenes representativas de los experimentos realizados en cultivos de CGC tras el tratamiento con 25 milimolares de LME durante una hora.Se realizó inmunoquímica con DAPI antitúbulo beta tres para la identificación de cambios en la densidad neuronal y con antí-GFAP para la identificación de cambios en la densidad y morfología astrocítica. Las imágenes del control negativo representan cultivos de CGC en los cuales se omitieron los anticuerpos primarios una vez dominada la técnica. Este procedimiento puede realizarse en aproximadamente dos horas si se lleva a cabo adecuadamente.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociencia

El video muestra una técnica para aislar la microglía de la corteza del cerebro de un ratón adulto. En primer lugar, la corteza se somete a segmentación y homogeneización para eliminar las neuronas y otras células gliales, preservando la microglía. Después de eso, la suspensión celular se expone a microesferas magnéticas antimielina y a un campo magnético, separando efectivamente la microglía y las células mieloides de los restos de mielina y las células que contienen mielina.

Aislamiento de la microglía de la corteza del cerebro de un ratón adulto

Este video muestra la técnica para aislar y cultivar neuronas cerebelosas primarias de ratón. Las células se tratan con un antimetabolito para eliminar las células gliales proliferantes y producir un cultivo puro de neuronas granulosas cerebelosas.

Aislamiento y cultivo de neuronas cerebelosas primarias de ratón

Este video muestra una técnica para la eliminación selectiva de microglía de un cultivo neuronal primario de rata. Las neuronas granulosas cerebelosas se tratan con un antimetabolito para eliminar las células gliales en proliferación. Además, se tratan con agentes dirigidos a los lisosomas para agotar la microglía del cultivo.

Eliminación selectiva de la microglía de un cultivo de neuronas de gránulos cerebelosos de rata

Este video muestra el aislamiento y cultivo de células progenitoras neurales cerebelosas del cerebelo de un cachorro de ratón. Los progenitores de las neuronas granulosas cerebelosas se aíslan y purifican a través de la adhesión diferencial, eliminando eficazmente los astrocitos. Estos progenitores cultivados se diferencian posteriormente en neuronas granulosas cerebelosas.

Aislamiento y cultivo de progenitores granulares de neuronas cerebelosas murinas

Este video muestra un protocolo para extraer células microgliales de lesiones desmielinizantes en cerebros de ratones utilizando la clasificación magnética de células. El protocolo consiste en diseccionar el tejido cerebral lesionado que contiene células microgliales, tratar el tejido con enzimas específicas para obtener una suspensión unicelular y utilizar perlas magnéticas específicas del receptor microglial para aislar las células microgliales.

Aislamiento de microglía de lesiones desmielinizantes del cerebro de ratón mediante clasificación de células activadas magnéticamente

Este video describe la generación de un modelo de lesión neuronal utilizando especies reactivas de oxígeno (ROS) en neuronas cerebelosas primarias de ratón. En él se detalla el proceso de inducción del estrés oxidativo mediante la adición de altas concentraciones de peróxido de hidrógeno. La exposición a las ROS provoca roturas de cadenas de ADN e inestabilidad genómica. Además, la oxidación de las proteínas celulares perjudica sus funciones, mientras que la peroxidación lipídica compromete la...

Modelado de la muerte neuronal inducida por especies reactivas de oxígeno en neuronas granulosas cerebelosas de ratón

Una clave para el éxito de la investigación de la biología microglial es la preservación de immunofunction microglial ex vivo durante el aislamiento del tejido del SNC. Aislar microglia mediante agitación rotatoria resultados en cultivos de células de alta pureza y inmunofuncional según la evaluación de imágenes fluorescentes, inmunocitoquímica y ELISA después de la activación microglia con el lipopolisacárido estímulos proinflamatorias (LPS) y Pam 3 CSK 4 (Pam).

Aislamiento de cortical Microglia con Inmunofenotipo Conservas y funcionalidad de murinos Neonatos

Este protocolo describe cómo medir con precisión la viabilidad neuronal utilizando fluoresceína diacetato (FDA) y Propidium Iodide (PI) doble tinción en neuronas cultivadas de gránulos cerebelosos, un cultivo neuronal primario utilizado como un modelo in vitro en neurociencia y neurofarmacología investigación.

Evaluación de la Viabilidad Neuronal Utilizando Colorante de Fluoresceína-Ioduro de Propidio Doble Coloración en Gránulos Cerebelosos Cultura de Neuronas

Este protocolo describe un método simple para el aislamiento y cultivo de neuronas de gránulo cerebral primario de ratón (CGNs) de cachorros de 6-7 días, transduction eficiente de CGNs por pérdida y ganancia de estudios de la función y modelado de excitotoxicidad neuronal inducida por el NMDA, muerte celular inducida por potasio bajo, daño del ADN y estrés oxidativo utilizando el mismo modelo de cultura.

Modelado de la muerte Neuronal y la degeneración en las neuronas del gránulo cerebeloso primario de ratón

Proporcionamos un protocolo para el aislamiento de la microglia de diferentes regiones diseccionadas de un hemisferio cerebral de ratón adulto, seguido de la preparación de la biblioteca semiautomática para la secuenciación profunda de ARN de una sola célula de transcriptomes de longitud completa. Este método ayudará a dilucidar la heterogeneidad funcional de la microglia en salud y enfermedad.

Aislamiento de microglia específica de la región del hemisferio cerebral de un ratón adulto para la secuenciación profunda del ARN de una sola célula

Aquí, presentamos un protocolo para aislar y purificar la microglía primaria en modelos animales de enfermedades desmielinizantes, utilizando la clasificación de células activadas magnéticamente columnares.

Aislamiento de la microglía primaria del ratón mediante clasificación celular activada magnéticamente en modelos animales de desmielinización

Aprende a depletar microglía de cultivos de células granulares cerebelosas usando L-leucina metil éster. Este método permite estudiar interacciones neuronales y su papel en enfermedades neurodegenerativas con neuroinflamación.

El agotamiento selectivo de la microglía de cerebeloso gránulos Cultivos Celulares El uso de L-leucina metil éster

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