Name: Photopatterning proteínas y células en el medio ambiente acuoso Usando TiO 2 Fotocatálisis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 26 s
Description: Aprende a modificar superficies de andamios celulares mediante fotocatálisis de dióxido de titanio para crear microdominios proteicos. Este método permite la adhesión selectiva de células en condiciones ex situ e in situ.

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Los autores agradecen al Sr. Kotaro Okubo por su amable ayuda con las imágenes SEM. Este trabajo fue apoyado por la Sociedad Japonesa para la Promoción de la Ciencia (B) (20310069), Grant-in-Aid for Research Activity Start-up (25880021), y por becas de investigación de la Fundación de Ciencia y Tecnología Kurata Memorial Hitachi y la Fundación Nippon Sheet Glass para la Ciencia e Ingeniería de Materiales.

1. Preparación de TiO2 presenta el revestimiento de cristal Coverslip <ol><li> Número los cubreobjetos utilizando una punta de trazar diamante. Esto no sólo ayuda a mantener un registro de cada cubreobjetos, sino también para asegurar que el lado correcto de la muestra quede hacia arriba. Limpie los cubreobjetos, primero bajo el chorro de ddH2O, a continuación, sumergiéndolas en una solución de pirañas (H 2 SO 4: H 2 O 2 = 4: 1). Después de 10 minutos, enjuague los cubreobjetos a fondo, 8 veces en ddH2O Seque el cubreobjetos bajo flujo de N2. </li><li> Conjunto TiO 2 de destino en el sistema de pulverización catódica de radiofrecuencia (RF). Coloque el cubreobjetos sobre un soporte de muestras del equipo de pulverización catódica con una cinta de poliamida. Colocar el soporte de muestra en la cámara de pulverización catódica. Evacuar la cámara hasta que la presión alcanza 2,0 × 10 -4 Pa. </li><li> Introducir gas Ar en la cámara y ajustar la presión de deposición a 4,0 mTorr. Mientras se mantiene el obturador cerrado, aumentar gradualmentela potencia de RF a 70 W. </li><li> Abra el obturador y pulverización catódica durante 15 min para obtener una película con un espesor de 120-150 nm de (Figura 1: Paso A). Tasa de crecimiento de la película tiene que ser derivado para cada máquina. </li></ol> 2. Recubrimiento de superficie con Film celular repelente <ol><li> Hidrofilizar la superficie de TiO 2 por tratamiento de la muestra con plasma de O2, siguiendo las instrucciones proporcionadas por el fabricante del reactor de plasma. Tratamos a la muestra durante 5 min a 200 W con O 2 flujo de 100 sccm. Sumergir la muestra en ddH2O y confirme que la superficie es superhidrófila. Seque la superficie a fondo en corriente de N2. </li><li> Preparar octadecyltrichlorosilane 1 mM solución (OTS) mediante la adición de 39,6 OTS mu l a 100 ml de tolueno. Sumergir la muestra en la solución durante 1 hora a RT. Llevar a cabo este paso dentro de una bolsa de N 2 guante -filled (Figura 1: Paso B). </li><li> Para eliminar las moléculas adsorbidas, sonicate la muestra en tolueno, acetona, etanol, y ddH 2 O durante 5 min cada uno, en ese orden. Enjuagar la muestra en cuatro ocasiones en fresco ddH2O y seque la superficie bajo flujo de N2. La superficie debe ser hidrófobo con un ángulo de contacto de 100-110ºC. </li></ol> 3. Ex-Situ Patrones de superficie <ol><li> Trabajando en una campana de flujo laminar, dibujar varias marcas de arañazos con una punta de trazar diamante en la superficie. Las marcas ayudan a mantener un registro de las regiones procesados ​​y también con lo que los microscopios en el foco. Esterilizar el TiO recubierto-OTS 2 mediante la inmersión de la muestra en etanol 70% durante 5 min. Luego enjuague la muestra dos veces en esterilizada ddH2O </li><li> Colocar la muestra en una placa de 35 mm, y añadir 2 ml de medio de crecimiento PC12 (ver Paso 4.2). Incubar durante más de 3 horas en una incubadora de CO 2 (37 ° C). Este procedimiento está destinado a dejar albúminas de suero absorben sobre la superficie. Albúminas adsorbidos inhiben la posterior adsorción de otra proteins y células (Figura 1: la etapa c). </li><li> Mientras espera, configurar el microscopio de fluorescencia invertida. <ol><li> Encienda la lámpara de arco, inserte el cubo de filtro UV, y establecer la lente objetivo de 20X. </li><li> Medir la intensidad de la luz I (W cm -2) utilizando un medidor de UV de intensidad, y calcular el tiempo de irradiación t (en segundos) para una dosis de d (en J cm -2) como: t = d / I. Por ejemplo, para irradiar a una dosis de 200 J cm -2 usando una fuente de luz de 600 mW cm -2, se requiere 333 seg de la irradiación. </li><li> Use un micrómetro y cerrar el diafragma de campo para establecer el tamaño de la región a ser irradiada, por ejemplo, 200 micras. </li></ol></li><li> Después de la incubación de 3 horas, suplementar el medio con 200 l de 3,0 mg ml -1 de colágeno tipo IV (Col-IV; finales de concentración de 300 mg ml -1). </li><li> Transferir el plato de 35 mm a la platina del microscopio. Encuentra el arañazo marca, foco del microscopio sobre la superficie de la muestra, y de irradiar luz UV a una dosis de 200 J cm -2 (Figura 1: Paso D). El área de la irradiación UV puede ser alterado ya sea ajustando la abertura del diafragma de campo o mediante la sustitución del diafragma de campo con una máscara de metal de la geometría arbitral. </li><li> Sustituya el medio con un medio de crecimiento fresco (sin Col-IV) y luego colocar la muestra de nuevo en la incubadora. </li></ol> 4. Cultivo Celular <ol><li> Cultivo de rutina de las células PC12 se lleva a cabo en un plato de plástico recubierta con colágeno. <ol><li> Para cubrir una de 60 mm placa de cultivo de tejidos con Col-IV, mojar primero la superficie con ddH2O y aspirar todo ddH 2 O. </li><li> Preparar 300 mg ml -1 Col-IV diluyendo la solución original (3 mg ml -1) 10x con ddH 2 O. </li><li> Añadir 200 l de 300 mg ml -1 Col-IV por 60-mm plato. Deje que la solución se extendió a través de la superficie. </li><li> T secoque plato en una campana de flujo laminar durante aproximadamente 1 hora. </li><li> Enjuague la superficie dos veces con 4 ml de solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco (D-PBS). Cuando no utilice el plato recubierto de inmediato, enjuague el plato una vez con 4 ml de ddH 2 O. Después de aspirar ddH2O, almacenar el plato en la incubadora. Trate de no mantenerla almacenada durante más de dos semanas. </li></ol></li><li> Las células PC12 se cultivan en un medio de crecimiento que consiste en: Medio (bajo nivel de glucosa) de Eagle modificado por Dulbecco suero solución de penicilina-estreptomicina + 10% de suero bovino fetal al 5% + caballo + 1%. Se incuban las células en una incubadora de CO 2 (37 ° C, 5% de CO 2), y reemplazar la mitad del medio cada dos días. Células Passage antes de llegar a la confluencia. <ol><li> Aspirar el medio de crecimiento, y añadir 2 ml de PBS + (D-PBS + 10 mg ml -1 albúmina de suero bovino (BSA) + EDTA 10 mM) precalentado a 37 ° C. Incubar durante 5 minutos a 37 ° C. Golpee suavemente el plato de separar todo ceLLS. </li><li> Recoger las células en un tubo cónico de 15 ml. Enjuague el plato con 3 ml de fresco D-PBS, precalentada a 37 ° C. </li><li> Centrifugar el tubo a 150 × g durante 4 min. </li><li> Aspirar el sobrenadante, y se añade 1 ml de medio de crecimiento. </li><li> Para el cultivo de rutina, dividir las células 1: 3 a 1: 5. </li></ol></li><li> Para placa células en la OTS / TiO2 muestra modificada UV, cuente densidad celular y añadir 3,0 × 10 5 células en una placa de 35 mm (Figura 1: Paso E). Incubar el plato en el incubador humidificado (37 ° C, 5% de CO 2) durante 1-2 días. Tanto el factor de crecimiento ingenua y el nervio (NGF), las células PC12 -differentiated se pueden utilizar para los experimentos de modelado. Para NGF diferenciación, 100 ng ml -1 de 7S-NGF se añade a la de crecimiento medio varios días antes en placas las células en la muestra. NGF-diferenciación parece aumentar la adhesividad de las células PC12 y hace que el manejo más fácil, especialmente en el in-situ e patronesxperimentos. </li></ol> 5. In-Situ Patrones de superficie <ol><li> Después de 1-2 días de cultivo en la superficie ex-situ modificado, confirman que las células se adhieran y crezcan sólo en la región UV-irradiado. Configure el microscopio, como se describe en el Paso 3.4. </li><li> Transferir la muestra a un nuevo 35-mm placa de cultivo tisular que contiene el medio de crecimiento, 100 ng ml -1 NGF (en el caso de la utilización de células diferenciadas-NGF), y 100 mg ml -1 Col-IV. </li><li> Coloque el plato en la platina del microscopio. Encontrar la posición adecuada, e irradiar la luz UV a una dosis de 200 J cm -2 (Figura 1: Paso F, G). La región permisiva recién creado se indica con un asterisco en la Figura 1: Paso G. </li><li> Trata de completar el procesamiento de una sola muestra dentro de los 30 min. Después de la irradiación, la transferencia de la muestra de nuevo en el medio sin Col-IV. </li><li> Tenga mucho cuidado al realizar el plato con cucélulas ltured y la transferencia de la muestra de plato a plato para evitar desprendimiento de las células estampadas. </li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/53045/53045fig1highres.jpg" width="700" /> Figura 1. Esquema del proceso general. Véase el texto para más detalles. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53045/53045fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

En nuestro protocolo actual, TiO2 película fue formada por pulverización catódica RF-magnetrón. Estamos a favor de este método de deposición, ya que nos permite preparar de manera reproducible una fotocatalítica de TiO2 película con una rugosidad sub-nm. Aunque los procesos de deposición por pulverización catódica son familiares para los científicos de materiales e ingenieros electrónicos, puede que no sea bastante accesible para los biólogos. En ese caso, TiO 2 película spin-revestido s...

Procesos de litografía de semiconductores y sus derivados - tales como 1,2 fotolitografía, la litografía por haz de electrones 3-6, y microcontacto impresión 7.10 - se han convertido en una herramienta establecida en la biología celular a crecer las células vivas en una posición y geometría definida. El método del patrón se basa en el uso de sustratos microfabricados, que consta de micro-isla de recubrimiento permisiva celular en un fondo no permisiva. Tal sustrato sirve como una plantilla para patrón de las células. Estas tecnologías nos han proporcionado los nuevos métodos para diseñar las células y su función en un nivel de una o varias celular, para extraer las propiedades intrínsecas de las células, y para aumentar el rendimiento de cribado de fármacos basado en células 11. El grado de libertad en la morfogénesis celular aumentaría enormemente si la geometría patrón de plantilla podría ser alterado in situ, es decir, mientras que las células se cultivan sobre los sTu cara. Los métodos convencionales para la formación de patrones no pueden aplicarse directamente aquí, ya que procesan muestras en la atmósfera o en el vacío. Por lo tanto se han propuesto diversas técnicas nuevas modificación de la superficie, que se basan, por ejemplo, en compuestos fotorreactivos 12,13 5,14 o ablación con láser, sólo para nombrar unos pocos. Los métodos propuestos han sido muy bien revisado por Robertus et al. 15, y más recientemente por Choi et al. 16 y 17 por Nakanishi. Aquí en este artículo, se describe un nuevo protocolo de modificación in situ de la superficie, que se aprovecha de la descomposición fotocatalítica de moléculas orgánicas en un dióxido de titanio (TiO2) Superficie 18,19. En este método, se inserta una película de TiO 2 entre el sustrato de vidrio y la película orgánica que interconecta las células, y la película orgánica se descompone in situ por localmente irradiar luz ultravioleta (UV)luz para una región de interés (λ &lt;388 nm). Se demuestra que el nuevo protocolo se puede utilizar para crear micropatrones de proteínas de matriz extracelular y células vivas tanto ex situ como in situ. TiO2 es biocompatible, químicamente estable y ópticamente transparente, características de lo que lo hace amigable para introducir en los experimentos de cultivo celular. Este protocolo proporciona una alternativa de ciencia de los materiales de base para la modificación de los andamios de cultivo celular en medio de cultivo celular.

<table><tbody><tr><td>Cubreobjetos de vidrio</td><td>Warner Instruments</td><td>CS-15R15</td><td>15 mm de diámetro, #1.5 de espesor</td></tr><tr><td>Trazador de diamantes</td><td>Ogura Jewel</td><td>Industry D-Point Pen</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de pulverización catódica</td><td>RF ANELVA</td><td>SPC350</td><td></td></tr><tr><td>TiO2 objetivo de pulverización catódica</td><td>Kojundo Chemical Lab</td><td>Óxido de titanio (IV), objetivo</td><td>Pureza, 99,9%</td></tr><tr><td>Reactor de plasma</td><td>Yamato</td><td>PR301</td><td></td></tr><tr><td>n-octadeciltriclorosilano (OTS)</td><td>Aldrich</td><td>104817</td><td></td></tr><tr><td>Tolueno</td><td>Wako</td><td>204-01866</td><td></td></tr><tr><td>Placa de cultivo de tejidos (35&#160; mm)</td><td>Greiner</td><td>627160</td><td></td></tr><tr><td>Plato de cultivo de tejidos (60&#160; mm)</td><td>BD Falcon</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>Colágeno tipo IV</td><td>Nitta</td><td>Gelatina Cellmatrix Tipo IV</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Medio de águila modificado de Dulbecco (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>11885-084</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Gibco</td><td>12483-020</td><td>Inactivo por calor y pasa a través de un 0.22&#160; &#956; m filtro antes de usar</td></tr><tr><td>suero de caballo</td><td>Gibco</td><td>26050-088</td><td>Pasar a través de un 0.22&#160; &#956; m filtro antes de usar</td></tr><tr><td>Penicilina-estreptomicina (100x)</td><td>Nacalai tesque</td><td>26253-84</td><td></td></tr><tr><td>7S factor de crecimiento nervioso (NGF)</td><td>Alomone Labs</td><td>N-130</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina (BSA)</td><td>Sigma</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Dojindo</td><td>N001</td><td>Solución madre en 0,5 M</td></tr><tr><td>TiO2 nanopartícula</td><td>Tayca</td><td>TKD-701</td><td></td></tr></tbody></table>

photopatterning proteínas y células en el medio ambiente acuoso usando tio<sub&gt; 2</sub&gt; fotocatálisis

Photopatterning Proteins and Cells in Aqueous Environment Using TiO2 Photocatalysis

Los contaminantes orgánicos adsorbidos en la superficie de dióxido de titanio (TiO 2) se pueden descomponer mediante fotocatálisis bajo radiación ultravioleta (UV). Aquí se describe un nuevo protocolo que emplea la fotocatálisis TiO2 para alterar localmente afinidad de células de la superficie del sustrato. Para este experimento, una delgada película de TiO 2 fue revestido por bombardeo iónico sobre un cubreobjetos de vidrio, y la superficie de TiO 2 fue posteriormente modificado con una monocapa de organosilano derivado de octadecyltrichlorosilane (OTS), que inhibe la adhesión celular. La muestra se sumerge en un medio de cultivo celular, y se centró la luz UV se irradió a una región octogonal. Cuando un neuronales células PC12 línea celular se sembraron en la muestra, células adheridas sólo en la zona UV-irradiado. Además, muestran que esta modificación de la superficie también se puede realizar in situ, es decir, incluso cuando las células están creciendo en el sustrato. Modificación adecuada de la superficie requiere una matriz extracelular protein colágeno para estar presente en el medio en el momento de la irradiación UV. La técnica que aquí se presenta potencialmente se puede emplear en múltiples tipos de células de modelado para la construcción de sistemas de cocultivo o manipular arbitrariamente células en cultivo.

La Figura 2A muestra una imagen de microscopía electrónica de barrido de la sección transversal (SEM) de la película de TiO 2 bombardeo iónico depositado. De la observación, el espesor de la película se estimó en aproximadamente 150 nm. Notable aquí es la planitud del depositada TiO2 película. Un análisis posterior mediante microscopía de fuerza atómica (AFM) reveló que la rugosidad de la raíz cuadrada media (RMS) de la superficie era de 0,2 nm (Figura 2B). <p ...

Describimos un protocolo para modificar la afinidad celular de la superficie de un andamio en un entorno acuoso. El método aprovecha la fotocatálisis de dióxido de titanio para descomponer la película orgánica en la región fotoirradiada. Demostramos que se puede utilizar para crear microdominios de proteínas de andamiaje, tanto ex situ como in situ.

Photopatterning proteínas y células en el medio ambiente acuoso Usando TiO<sub&gt; 2</sub&gt; Fotocatálisis

Organic contaminants adsorbed on the surface of titanium dioxide (TiO2) can be decomposed by photocatalysis under ultraviolet (UV) light. Here we describe ...

El objetivo general del siguiente experimento consiste en realizar una modificación superficial de un andamio para cultivo celular utilizando la actividad fotocatalítica del dióxido de titanio. Esto se logra depositando una capa delgada de dióxido de titanio sobre un cubreobjetos de vidrio y luego recubriéndolo con un octadeciltriclorosilano para hacer que toda la superficie sea hidrofóbica. Como segundo paso, el sustrato se bloquea sumergiéndolo en medio de cultivo celular que contiene albúmina sérica.La albúmina se adhiere a la superficie y la hace no permisiva para la adhesión celular. A continuación, la muestra se transfiere a una solución acuosa que contiene colágeno y luego se utiliza una luz UV enfocada para irradiar la superficie. Esto permite que las moléculas de colágeno se adhieran selectivamente a la región fotoirradiada y hace que dicha región sea permisiva para la adhesión celular.Este proceso puede repetirse con el fin de trazar múltiples proteínas o tipos celulares. En este video mostramos cómo la región adhesiva de las células PC12 puede modificarse selectivamente mediante irradiación UV. Tuvimos la idea original de este método cuando nos dimos cuenta de que la fotocatálisis con dióxido de titanio se aplica comercialmente en ventanas de vidrio autolimpiantes que eliminan contaminantes orgánicos de la superficie mediante radiación luminosa, demostrando que el procedimiento será codirigido por un estudiante de posgrado de mi laboratorio.Comience numerando los cubreobjetos con un punzón de diamante de manera que ayude a asegurar que el lado correcto de la muestra quede hacia arriba. Luego limpie los cubreobjetos primero bajo agua doblemente destilada corriente y después sumergiéndolos en solución piraña durante 10 minutos. Pasados los 10 minutos, enjuague los cubreobjetos ocho veces con agua doblemente destilada y séquelos con flujo de nitrógeno.A continuación, coloque un blanco de óxido de titanio en un sistema de pulverización catódica de radiofrecuencia y luego sujete las laminillas limpias al portamuestras utilizando cinta de poliamida. Coloque el portamuestras en la cámara de pulverización y evacúe la cámara hasta que la presión alcance 2,0 × 10⁻⁴ pascales. A continuación, introduzca gas argón en la cámara y ajuste la presión de deposición a 4,0 mTorr, manteniendo la compuerta cerrada. Aumente gradualmente la potencia de RF hasta 70 vatios.Luego abra el obturador y realice la pulverización durante 15 minutos para obtener una película con un espesor de 120 a 150 nanómetros. Comience secando un vaso de precipitados y pinzas en un horno a 120 grados Celsius durante 30 minutos. A continuación, coloque los cubreobjetos en un reactor de plasma y trate la superficie de dióxido de titanio con plasma de oxígeno durante cinco minutos a 200 vatios con un flujo de oxígeno de 100 centímetros cúbicos estándar por minuto para crear una superficie más hidrofílica.Luego retire las muestras y sumérjalas en agua doblemente destilada para confirmar que la superficie es superhidrofílica y seque completamente la superficie con flujo de nitrógeno. A continuación, transfiera las muestras, el vaso seco y la pinza a una bolsa de guantes llenada con nitrógeno y prepare una solución de un milimolar de octodesiltricloroetileno disuelta en tolueno. Sumerja la muestra en la solución durante una hora a temperatura ambiente para formar una monocapa autoensamblada sobre el óxido de titanio.Luego elimine cualquier molécula de fasor lavando la muestra con tolueno, acetona y etanol, y finalmente con agua doblemente destilada durante cinco minutos cada uno. A continuación, enjuague la muestra cuatro veces con agua doblemente destilada fresca y seque la superficie con flujo de nitrógeno.Sterilice los cubreobjetos recubiertos sumergiendo las muestras en etanol al 70 % durante cinco minutos. Luego enjuague las muestras dos veces con agua doblemente destilada estéril. A continuación, coloque la muestra en una placa de 35 milímetros y agregue dos mililitros de medio de crecimiento PC12.Incube las muestras durante al menos tres horas en un incubador tamponado con CO₂ a 37 grados Celsius mientras la albúmina sérica en el medio se adhiere a la superficie de las laminillas durante la espera. Configure el microscopio de fluorescencia invertido encendiendo primero la lámpara de arco. Luego inserte el cubo de filtro UV y gire el objetivo hasta uno con aumento de 20 x.Mida la intensidad de la luz con un medidor de intensidad UV y calcule el tiempo de irradiación para una dosis de 200 joules por centímetro cuadrado. A continuación, utilice un micrómetro de portaobjetos y ajuste el diámetro de la región que se irradiará a 200 micrones mediante el ajuste del diafragma de campo. Después de la incubación de tres horas, suplemente el medio que cubre las laminillas con 200 microlitros de colágeno tipo cuatro a 3,0 miligramos por mililitro.Luego, transfiera el platillo de 35 milímetros al portaobjetos del microscopio y enfoque el microscopio sobre la superficie de la muestra utilizando las marcas de rayado. Irradie un área del cubreobjetos con luz UV a una dosis de 200 joules por centímetro cuadrado. A continuación, reemplace el medio con dos mililitros de medio de crecimiento fresco, con NGF y sin colágeno tipo cuatro, y coloque la muestra nuevamente en el incubador.Recolecte las células PC 12 diferenciadas con NGF cultivadas en un tubo cónico de 15 mililitros y centrifugue el tubo a 150 ×g durante cuatro minutos. Luego aspire el sobrenadante y agregue un mililitro del medio de crecimiento. Resuspenda las células pipeteando suavemente hacia arriba y hacia abajo usando un hemocitómetro.Contar la densidad celular y agregar 3,0 × 10⁵ células a una placa de 35 mm que contenga los cubreobjetos modificados. Incubar la placa durante uno o dos días en un incubador con 5% CO₂ a 37 °C, tras uno o dos días de cultivo sobre la superficie modificada XC dos. Utilizar un microscopio para confirmar que las células se están adhiriendo y creciendo únicamente en la región irradiada con UV de los cubreobjetos.Luego, agregue 67 microlitros de colágeno tipo IV al cultivo celular de modo que la concentración final de colágeno sea de 100 microgramos por mililitro con el microscopio configurado para el modelado de superficies. Coloque el cultivo sobre la platina del microscopio y posicione la región de irradiación adyacente a la ubicación actual de las células. Irradiar el portaobjetos con luz ultravioleta a una dosis de 200 julios por centímetro cuadrado.Después de la irradiación, reemplace el medio por uno sin colágeno y coloque la muestra nuevamente en el incubador, intentando completar el procesamiento de una sola muestra dentro de los 30 minutos. Esta es una imagen de microscopía electrónica de barrido de sección transversal de la película de dióxido de titanio depositada por pulverización catódica. A partir de la observación, se estimó que el espesor de la película era aproximadamente 150 nanómetros.También es notable aquí la planicidad de la película de dióxido de titanio depositada. Un análisis adicional mediante microscopía de fuerza atómica reveló que la rugosidad cuadrática media de la superficie era de solo 0,2 nanómetros. El colágeno tipo IV y la solución se absorben preferentemente en la región irradiada con UV, donde el láser desplaza la albúmina.Para demostrar la versatilidad de este enfoque, otras proteínas como la fibrina también han sido impresas utilizando la misma técnica. Aquí, las células están creciendo en la región de dos patrones XC del cubreobjetos y justo al lado de ellas, en el área definida por la línea punteada. El cubreobjetos fue recientemente irradiado con UV in situ dos veces y recubierto con colágeno tipo cuatro.En los próximos cinco días, las células proliferan y migran para cubrir la región recién codificada. El procedimiento aquí presentado puede utilizarse para manipular arbitrariamente células en cultivo y, potencialmente, para configurar múltiples tipos de células con el fin de construir sistemas de co-cultivo complejos.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

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