Name: Interrupción Anti-virulenta de patógenos biopelículas utilizando Engineered Quórum para saciar lactonasas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: Aprende a interrumpir biopelículas bacterianas usando lactonasas de quorum-quenching en A. baumannii S1. Este método permite cuantificar la disrupción in vitro y desarrollar terapias antibacterianas novedosas.

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Este trabajo fue apoyado por subvenciones del Fondo de Investigación Académica del Ministerio de Educación, el Consejo Nacional de Investigación Médica y la Fundación Nacional de Investigación de Singapur.

1. Crystal Violet La cuantificación de Biofilm Formation en A. baumannii S1 <ol><li> Cultivar una cultura 5 ml de A. baumannii S1 en caldo Lisogenia (LB) (triptona 10 g / L, extracto de levadura 5 g / l) a 30 ° C en una incubadora con agitación (220 rpm) durante 16 hr. </li><li> Ajuste el cultivo de A. baumannii S1 a un OD 600 de 0,8 deseado. Usando una placa de 96 pocillos, inocular el cultivo de bacterias (1: 100 dilución) en fresco LB que contiene 10 l de enzima purificada GKL (40 mg / ml); volumen final de la nueva cultura es de 100 l. </li><li> Preparar una cultura de control, así; esto no contendrá ninguna enzima. Repita condiciones similares para obtener el número deseado de repeticiones. </li><li> Cubra el plato con una tapa y colóquelo en un recipiente de plástico de 10 L sellada. Incubar la placa a 30 ° C durante 3 horas antes de retirar suavemente los medios de comunicación. </li><li> Añadir otros 100 l de medio LB fresco al pozo e incubar la placa durante 21 horas a 30 ° C. </li&gt; <li> Después de que el segundo período de incubación, retire con cuidado todos los medios de comunicación. Lavar la célula bacterias planctónicas con 200 l de agua estéril. Asegúrese de que sólo hay una perturbación mínima a las células durante el lavado. </li><li> Añadir 100 l de solución de cristal violeta al 1% a cada pocillo e incubar durante 15 min a TA. Eliminar la solución de cristal violeta lavando el bien con 200 l de agua estéril. Repita el lavado dos veces más. </li><li> Añadir 100 l de ácido acético 33% a cada pocillo e incubar durante 15 min con agitación suave; esto va a disolver el colorante. </li><li> Cuantificar la cantidad de biofilm formado por la medición de la absorbancia del violeta cristal a los 600 nm. La cantidad de cristal violeta es proporcional a la cantidad de formación de biopelículas. </li></ol> 2. confocal de barrido láser microscopía de A. baumannii S1 Biofilm <ol><li> Cultivar una cultura 5 ml de A. baumannii S1 en LB a 30 ° C en una incubadora con agitación (220 rpm) durante 16 hr. </li><li> Anunciosólo el cultivo de A. baumannii S1 a un OD 600 de 0,8 deseado. El uso de un 35 mm μ-plato con fondo de cristal, inocular el cultivo de bacterias (dilución 1: 100) en fresco LB que contiene 30 l de enzima purificada GKL (40 mg / ml); volumen final de la nueva cultura es de 1 ml. </li><li> Cubra la μ-plato con una tapa y colóquelo en un recipiente de plástico de 10 L sellada. Incubar la μ-Dish a 30 ° C durante 3 horas antes de retirar suavemente los medios de comunicación. Añadir 30 l de enzima purificada y GKL medio fresco, llevándola a un volumen total de 1 ml. Incubar durante otras 21 horas a 30 ° C. </li><li> Repita el paso 2.3 e incubar la μ-Dish durante otras 24 horas a 30 ° C. Luego, retire los medios de comunicación con suavidad. </li><li> Añadir 500 l de 5 mg / ml Alex Fluo 488 conjugado con aglutinina de germen de trigo (WGA) disuelto en solución salina equilibrada de Hank (HBSS) a la μ-Dish y se incuba a 37 ° C durante 30 min; esto va a manchar la biopelícula formada. Retire la solución de tinción y lavar tque Mu Plato con 2 ml de HBSS. Repita el paso de lavado una vez más. </li><li> Añadir 500 l de 3,7% de formaldehído disuelto en HBSS y se incuba a 37 ° C durante 30 min; Esto solucionará el biofilm sobre la μ-Dish. Lave la μ-Dish una vez con 2 ml de HBSS y luego retire la solución completamente. El μ-Dish fijo con biofilm se puede almacenar en la oscuridad a 4 ° C antes de la formación de imágenes CLSM. </li><li> Para imágenes CLSM y el análisis, utilizar 63 veces de aumento para generar 97 pilas por imagen con un intervalo de 0,21 micras por pila. </li></ol>

<ol><li>Alanis, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+to+antibiotics%3A+are+we+in+the+post-antibiotic+era%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+medical+research%22%5BJournal%5D)">Resistance to antibiotics: are we in the post-antibiotic era?</a> Archives of medical research. 36, 697-705 (2005).</li>
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<li>Chow, J. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+evolution+of+a+thermostable+quorum-quenching+lactonase+from+the+amidohydrolase+superfamily%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+biological+chemistry%22%5BJournal%5D)">Directed evolution of a thermostable quorum-quenching lactonase from the amidohydrolase superfamily.</a> The Journal of biological chemistry. 285, 40911-40920 (2010).</li>
<li>Chow, J. Y., Yang, Y., Tay, S. B., Chua, K. L., Yew, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+biofilm+formation+by+the+human+pathogen+Acinetobacter+baumannii+using+engineered+quorum-quenching+lactonases%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrobial+Agents+and+Chemotherapy%22%5BJournal%5D)">Disruption of biofilm formation by the human pathogen Acinetobacter baumannii using engineered quorum-quenching lactonases.</a> Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 58, 1802-1805 (2014).</li>
<li>Pour, N. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilm+formation+by+Acinetobacter+baumannii+strains+isolated+from+urinary+tract+infection+and+urinary+catheters%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+immunology+and+medical+microbiology%22%5BJournal%5D)">Biofilm formation by Acinetobacter baumannii strains isolated from urinary tract infection and urinary catheters.</a> FEMS immunology and medical microbiology. 62, 328-338 (2011).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

En ambos conjuntos de experimentos, A. baumannii S1 se cultivó en medio LB sin NaCl como una alta concentración de sal puede reducir la cantidad de formación de biopelículas por las bacterias 15. La presencia de tales artefacto podría subestimar la cantidad de formación de biopelículas, así como los efectos de las enzimas de quórum de extinción a través de diferentes condiciones de tratamiento. El uso de una enzima catalíticamente inactiva es importante como un control negativo para eliminar...

Las opciones de tratamiento para las enfermedades infecciosas se han complicado por el rápido aumento de bacterias resistentes a múltiples fármacos que son inmunes a una amplia gama de fármacos antibióticos 1. Con altas tasas de morbilidad y mortalidad por infecciones con bacterias resistentes mediadas, existe la necesidad de intensificar los procesos de desarrollo de fármacos y / o explorar mejores alternativas antibacterianos para mejorar las opciones terapéuticas. Últimamente, el enfoque anti-virulencia está ganando interés dado su potencial en la prevención de la virulencia través de métodos no bactericidas, por lo tanto, la mitigación de los riesgos de los mecanismos de resistencia 2. Quórum de detección es un &quot;interruptor maestro&quot; en la virulencia bacteriana y la interrupción de este fenómeno de señalización es un método anti-virulencia prometedora contra patogénesis 3. El inicio de la virulencia requiere la acumulación de moléculas de quórum en el medio extracelular después de que se alcanza una densidad crítica población bacteriana. Como quomoléculas de ron difunden de nuevo en la matriz intracelular, la unión con sus receptores afines conduce a la activación de factores de virulencia, así como genes asociados con la resistencia a los antibióticos y la formación de biopelículas 4. En, la interrupción del quórum de detección general, implica la inhibición de molécula de quórum y la interacción del receptor sin afectar las rutas metabólicas primarias. Por lo tanto, no tiene ninguna implicación directo sobre el crecimiento celular. Desde la aptitud no se vea comprometida, no hay presión de selección mínimos para las bacterias para evolucionar y ganar resistencia contra tales tratamientos 5. Además, la interrupción de detección de quórum puede interferir con los mecanismos de protección bacterianas inherentes, como en el caso de la formación de biopelículas, que proporciona protección de los agentes anti-bacterianas y respuestas inmunes del huésped. Se estima que el 99% de los microbios en la Tierra existe en matrices de biofilm como complejas, que confiere ventajas de supervivencia cruciales a los microorganismos que viven dentro de THestructuras ESE 6. Más importante aún, la formación de estos dominios sésiles es la causa de las infecciones nosocomiales más persistentes y crónicas 7. Acinetobacter baumannii es uno de los principales patógenos humanos que se asocia con infecciones globales adquiridas en el hospital y su virulencia se atribuye en gran parte al quórum de detección la formación de biopelículas mediada 8. Enzimas-quorum quenching han utilizado con éxito en la interrupción de la transducción de señales mediada por-quórum dirigidas a un grupo de compuestos conocido como N-acil homoserina lactonas (AHL) que son producidas por bacterias Gram-negativas 9. Varios estudios también han expandido en el uso de estas enzimas para bloquear la patogénesis bacteriana a través de la reducción de la expresión del factor de virulencia y el número de células en los biofilms 10,11. Desafortunadamente, sigue existiendo una falta de demostración palpable de la utilización eficaz de las enzimas de quórum de extinción contra la formación de biofilm por patógenos bacterianos. losre ha habido intentos de utilizar inhibidores de quórum (análogos de AHL), en lugar de las enzimas de quórum de enfriamiento, para interrumpir A. la formación de biopelículas baumannii 12. Aunque este método de uso de inhibidores de moléculas pequeñas es un enfoque válido, el mantenimiento de su biodisponibilidad en usos de traslación puede ser un desafío. Por el contrario, el uso de enzimas de quórum para saciar catalíticos podría eludir el problema biodisponibilidad como enzimas son más susceptibles a la inmovilización sobre superficies de dispositivos biomédicos para efectos terapéuticos. Aquí se describe una evaluación de los efectos de lactonasas de quórum para saciar la ingeniería de Geobacillus kaustophilus (GKL) 13 en la formación de biopelículas bacterianas, mediante la tinción de cristal violeta y microscopía láser confocal de barrido (CLSM). Este estudio es la primera demostración con éxito de la interrupción del biofilm en un A. clínicamente relevante cepa baumannii S1 utilizando enzimas de quórum temple. Los métodos descritosen este estudio son útiles para evaluar la eficacia de otras enzimas de quórum para saciar en posteriores esfuerzos de desarrollo terapéuticas contra bacterias Gram-negativas patógenas.

<table><tbody><tr><td>Triptona&nbsp;</td><td>BD</td><td>211705</td><td></td></tr><tr><td>Extracto de levadura</td><td>BD</td><td>212750</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 96 pocillos</td><td>Costar</td><td>3596</td><td></td></tr><tr><td>Crystal Violet</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C6158</td><td></td></tr><tr><td>Ácido Acético</td><td>PLA00654X</td> de <td>escaneo de laboratorio</td><td>Precaución: Plato inflamable</td></tr> <tr><td></td><td>Ibidi</td><td>80136</td><td></td></tr><tr><td>Alex Fluo 488-conjugado WGA</td><td>Invitrogen</td><td>W11261</td><td></td></tr><tr><td>Hank' s solución salina equilibrada &nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>141475095</td><td></td></tr><tr><td>formaldehído</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F8775</td><td>Precaución: Corrosivo&nbsp;</td></tr><tr><td>Synergy HT Lector de microplacas</td><td>BioTek</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1X-81 Microscopio de fluorescencia invertida</td><td>Olympus</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

interrupción anti-virulenta de patógenos biopelículas utilizando engineered quórum para saciar lactonasas

Anti-virulent Disruption of Pathogenic Biofilms using Engineered Quorum-quenching Lactonases

La rápida aparición de bacterias multirresistentes ha acelerado la necesidad de nuevos enfoques terapéuticos para contrarrestar las infecciones potencialmente mortales. La persistencia de la infección bacteriana a menudo se asocia con la formación de biopelículas mediada por detección de quórum. Por lo tanto, la interrupción de este circuito de señalización presenta una atractiva estrategia anti-virulencia. Se ha informado que las lactonasas que apagan el quórum son disruptores efectivos de los circuitos de detección de quórum. Sin embargo, ha habido muy pocos informes sobre el uso efectivo de estas enzimas para interrumpir la formación de biopelículas bacterianas. Este protocolo describe un método para interrumpir la formación de biopelículas en una cepa de A. baumannii S1 clínicamente relevante mediante el uso de una lactonasa diseñada para apagar el quórum. Acinetobacter baumannii es un importante patógeno humano implicado en graves infecciones intrahospitalarias en todo el mundo, y su virulencia se atribuye principalmente a la tenacidad de su biopelícula. El tratamiento con lactonasa diseñado logró una reducción significativa de la biopelícula de A. baumannii S1. Este estudio también mostró la posibilidad de utilizar enzimas de extinción de quórum modificadas en el futuro tratamiento de enfermedades bacterianas mediadas por biopelículas. Por último, el método puede utilizarse para evaluar la competencia de enzimas prometedoras que apagan el quórum.

En la cuantificación experimento cristal violeta, se utilizaron dos enzimas de quórum de enfriamiento para demostrar la viabilidad en la interrupción de la formación de biopelículas: de tipo salvaje GKL y un doble mutante GKL mejorado (E101G / R230C). Ambas enzimas se han demostrado para demostrar la actividad lactonasa contra 3-hidroxi-decanoil-L-homoserina lactona (3-OH-C 10 -HSL), la molécula de quórum importante utilizado por A. baumannii S1 14. Para la...

Las enzimas que apagan el quórum son opciones antivirulentas y antibacterianas que pueden mitigar la patogénesis sin riesgo de incurrir en resistencia, al prevenir la expresión de factores de virulencia y genes asociados con la resistencia a los antibióticos y la formación de biopelículas. En este estudio, presentamos un método que demuestra la eficacia de las enzimas que extinguen el quórum en la disrupción de la biopelícula bacteriana.

Interrupción Anti-virulenta de patógenos biopelículas utilizando Engineered Quórum para saciar lactonasas

The rapid emergence of multi-drug resistant bacteria has accelerated the need for novel therapeutic approaches to counter life-threatening infections. The ...

El objetivo general de este experimento es demostrar la eficacia de las enzimas rompedoras del quórum en la interrupción de biopelículas bacterianas. Este método ayudará a responder preguntas clave en el campo de los tratamientos antibacterianos y a comprender el efecto de las lactonasas rompedoras del quórum sobre bacterias patógenas en un entorno de biopelícula. La principal ventaja de esta técnica es que las lactonasas rompedoras del quórum pueden añadirse directamente en un entorno in vitro.Por lo tanto, su efecto sobre la disrupción del biofilm se puede cuantificar fácilmente. Demostrando este procedimiento está Terrence Tay, un técnico en nuestro laboratorio. Para comenzar, cultive una muestra de 5 mililitros de A. baumannii S1 en LB a 30 grados Celsius en un incubador con agitación durante 16 horas.Ajuste el cultivo a una DO600 de 0,8. Luego, utilice LB fresco que contenga 4 miligramos por mililitro de enzima GKL purificada para diluir el cultivo 1:100. Añada 100 microlitros a las pocillos de una placa de 96 pocillos.Utilice las tapas para cubrir las placas y colóquelas en un recipiente plástico de 10 litros. Selle el recipiente e incube a 30 grados Celsius durante tres horas, antes de retirar suavemente el medio. Añada otros 100 microlitros de medio LB fresco a los pocillos e incube la placa a 30 grados Celsius durante 21 horas.Después de retirar suavemente el medio, use 200 microlitros de agua estéril para lavar suavemente las células bacterianas planctónicas. Coloque la punta de la pipeta en el fondo de la cavidad y retire cuidadosamente el medio líquido para asegurar perturbaciones mínimas en el biofilm presente entre la interfase aire-líquido. A continuación, añada 100 microlitros de solución de violeta de cristal al 1% a cada cavidad e incube durante 15 minutos a temperatura ambiente.Elimine la solución de violeta de cristal utilizando 200 microlitros de agua estéril para lavar los pocillos tres veces. Añada 100 microlitros de ácido acético al 33% a cada pocillo e incube con agitación suave durante 15 minutos para disolver el colorante. Cuantifique la cantidad de biopelícula midiendo la absorbancia del violeta de cristal a 600 nanómetros.La cantidad de violeta de cristal es proporcional a la cantidad de biopelícula formada. Para realizar microscopía confocal de barrido con láser, o CLSM, de biopelículas de A.baumannii S1, cultive una muestra de cinco mililitros de A.baumannii S1 en LB a 30 grados Celsius en un incubador con agitación durante 16 horas. Ajuste la muestra de A.baumannii S1 a una DO 600 de 0.8.Luego, use LB fresco que contenga 1,2 miligramos por mililitro de enzima GKL purificada para diluir el cultivo en una proporción de uno a 100, y agregue un mililitro a un microdishes de vidrio de 35 mililitros. Cubra el microdishes con una tapa y colóquelo en un recipiente plástico de 10 litros, séllelo y luego incube el plato a 30 grados Celsius durante tres horas. Después de retirar suavemente el medio, agregue un mililitro de medio fresco que contenga 30 microlitros de enzima GKL purificada y luego incube a 30 grados Celsius durante otras 21 horas.Retire suavemente el medio por segunda vez y sustitúyalo con un mililitro más de enzima GKL en medio fresco. Incube a 30 grados Celsius durante 24 horas. Después de la incubación, retire suavemente el medio y agregue 500 microlitros de cinco microgramos por mililitro de wheat germ agglutinin conjugado con Alexa Fluor 488 disuelto en HBSS.Incube el microdisco a 37 grados Celsius durante 30 minutos para teñir los biopelículas. Para fijar las biopelículas, agregue 500 microlitros de formaldehído al 3,7 % disuelto en HBSS e incube a 37 grados Celsius durante 30 minutos. Use dos mililitros de HBSS para lavar el microdisco una vez, luego elimine completamente la solución.Guarde la placa en la oscuridad a cuatro grados Celsius antes de la imagenología mediante microscopía confocal de barrido láser (CLSM). Para la imagenología y análisis mediante CLSM, utilice un objetivo de 63X para generar 97 cortes por imagen con un intervalo de 0,21 micrómetros por corte. En el experimento de cuantificación de violeta cristal, se utilizaron el GKL de tipo silvestre y una enzima mejorada de doble mutante GKL con actividad de cuenqui-enzima para lactonasa contra la homoserina lactona de tres hidroxidecanoil L o 3OHC10HSL, la principal molécula de quórum utilizada por A. baumannii S1. Como se muestra aquí, ambas enzimas pudieron reducir significativamente la formación de biopelículas en A. baumannii S1 de tipo silvestre previamente tratado. El grado de alteración de las biopelículas por ambas enzimas no es proporcional a su eficacia contra 3OHC10HSL.Como se observa en esta tabla, la velocidad de conversión de la GKL mutante es seis veces mayor que la de la GKL de tipo salvaje frente al 3OHC10HSL. Sin embargo, la diferencia en el grado de interrupción de los biopelículas entre las enzimas es solo del doble. En este experimento, se utilizaron para comparación la enzima mutante GKL mejorada y su enzima inactiva catecólica.Esta imagen de contraste de interferencia diferencial (DIC) muestra que el tratamiento con la enzima mutante GKL mejorada provocó una disminución en el tamaño del biofilm en comparación con la enzima inactiva. El análisis de las imágenes de fluorescencia también reveló una reducción en el área superficial, la biomasa y el espesor promedio de los biofilms cuando se trataron con la enzima mutante GKL mejorada. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en tres a cuatro horas, excluyendo el tiempo de incubación, si se realiza adecuadamente.Al realizar este procedimiento, es importante recordar minimizar la eliminación y alteración del biofilm durante los pasos de lavado. Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros métodos como el recuento celular y los ensayos de estabilidad enzimática. Esto responderá preguntas adicionales, como los efectos de las lactonasas cuenquiadoras del quórum sobre la población celular dentro del biofilm, así como su duración de acción.Después de su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo del tratamiento de enfermedades infecciosas exploraran los efectos de posibles lactonasas interferentes del quórum en el biofilm producido por bacterias patógenas. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión sobre cómo cuantificar la interrupción del biofilm mediante tinción con violeta de cristal y cómo evaluar los cambios morfológicos en el biofilm mediante imágenes confocales. No olvide que trabajar con material patógeno puede ser extremadamente peligroso.Siempre se deben tomar precauciones, como el uso de instalaciones adecuadas para el confinamiento de riesgos biológicos, al realizar este procedimiento.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Fuente: Tay, S. B., et al. Disrupción antivirulenta de biopelículas patógenas mediante lactonasas modificadas que apagan el quórum.  J. Vis. Exp. (2016)El vídeo demuestra un método para cuantificar biomasa de biofilm en una bacteria patógena, comparando controles no tratados con muestras tratadas con una enzima que apaga el quorum. La enzima interrumpe la señalización bacteriana durante la incubación temprana, reduciendo la adhesión celular. Tras el lavado y una incubación adicional, los pozos...

Cuantificación de la supresión de biopelículas inducida por enzimas en bacterias patógenas

Fuente: Tay, S. B., et.al. Disrupción antivirulenta de biopelículas patógenas mediante lactonasas modificadas que apagan el quórum.  J. Vis. Exp. (2016)Este vídeo demuestra el proceso de inhibir la formación de biopelículas introduciendo una enzima que interrumpe la señalización celular bacteriana. La enzima impide que las bacterias produzcan sustancias poliméricas extracelulares, reduciendo así el desarrollo de biofilm en una microplaca con fondo de cristal. Finalmente, la estructura de la...

Evaluación microscópica de la inhibición mediada por enzimas de la formación de biopelículas

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Este protocolo describe un enfoque que combina métodos estáticos y dinámicos para evaluar la eficacia de los peroxiácidos orgánicos para erradicar las biopelículas en la industria láctea. Este enfoque también se puede utilizar para probar la eficacia de nuevas formulaciones biológicas o químicas para controlar las biopelículas.

Evaluación de la eficacia de los peroxiácidos orgánicos para la erradicación de biofilms lácteos utilizando un enfoque que combina métodos estáticos y dinámicos

Los compuestos de tiofenesulfonamida son inhibidores potentes y específicos de los reguladores de detección LuxR /HapR que bloquean su actividad in vivo, evitando así la transcripción de genes de virulencia, motilidad y biopelículas. Este protocolo detalla cómo se sintetizan, modelan in silico y analizan in vivo estos compuestos para determinar su actividad frente a LuxR/HapR.

Síntesis y ensayo de inhibidores de detección de quórum Vibrio

El objetivo de este protocolo es cuantificar la producción de violaceína por Chromobacterium violaceum ATCC 12472 como un proxy para evaluar la inhibición de la detección de quórum por compuestos bioactivos.

Cuantificación de violaceína en Chromobacterium violaceum y su inhibición por compuestos bioactivos

Biopelículas microbianas están constituidas generalmente por distintas subpoblaciones de células especializadas. Sola célula de análisis de estas subpoblaciones requiere el uso de reporteros fluorescentes. A continuación se describe un protocolo para visualizar y controlar varias...

Sola célula de análisis de Bacillus subtilis Las biopelículas mediante microscopía de fluorescencia y citometría de flujo

Aprende a interrumpir biopelículas bacterianas usando lactonasas de quorum-quenching en A. baumannii S1. Este método permite cuantificar la disrupción in vitro y desarrollar terapias antibacterianas novedosas.

Interrupción Anti-virulenta de patógenos biopelículas utilizando Engineered Quórum para saciar lactonasas

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