24 de diciembre de 2015
Las propiedades inmunomoduladoras de las células madre mesenquimales humanas (MSC) aparecen cada vez más relevante para la aplicación clínica. El uso de un sistema de co-cultivo de MSCs y leucocitos de sangre periférica pre-manchado con la succinimidil éster colorante fluorescente carboxifluoresceína (CFSE), se describe la evaluación in vitro de MSC sobre la proliferación de leucocitos inmunomodulación efector y subpoblaciones específicas.
El objetivo general de este experimento es evaluar las propiedades inmunomoduladoras de las células madre mesenquimatosas humanas o msc. Este método puede ayudar a esclarecer los mecanismos implicados en la inmunomodulación por células madre mesenquimatosas humanas, un proceso que podría tener relevancia terapéutica. La principal ventaja de esta técnica es que tanto la ocurrencia de la proliferación de linfocitos efector como el número de divisiones celulares pueden evaluarse, demostrando que el procedimiento será por zapato.
Un técnico de mi laboratorio para aislar PBMC comienza diluyendo 25 mililitros de una muestra de sangre completa heparinizada con 25 mililitros de PBS en un tubo cónico de 50 mililitros. A continuación, añada 15 mililitros de gradiente de densidad Ficoll-Paque a un nuevo tubo de 50 mililitros. Luego, sosteniendo el tubo en un ángulo, superponga lentamente la suspensión celular diluida sobre el gradiente de densidad.
Al tener cuidado con eso, no se produce mezcla entre las capas. Uno de los pasos más críticos en este experimento es la superposición de la sangre sin perturbar el gradiente de densidad. Esto asegura una alta pureza y una baja contaminación con glóbulos rojos en los pbmc aislados.
Ahora, separe las células mediante centrifugación. Deberían observarse tres capas distintas: la capa superior de plasma, la capa inferior del gradiente de densidad del fial pack y una delgada capa media de PBMC.
Utilizando una pipeta PE, retire la capa superior teniendo cuidado de no aspirar la capa de interfase. Luego, use una pipeta de 10 mililitros para transferir cuidadosamente los pbmc a un tubo cónico de 50 mililitros. Mezcle las células con 20 mililitros de PBS y luego centrifúgelas para eliminar cualquier rastro del gradiente de densidad.
Luego, lave el sedimento con otros 20 mililitros de PBS para eliminar las plaquetas. Re_suspenda el segundo sedimento en medio completo para leucocitos a una concentración de uno por diez elevado a siete células por mililitro. Para preparar un cultivo co-cultivo de MSC y leucocitos, caliente previamente el medio completo para MSC a 37 grados Celsius durante no más de 30 minutos.
Luego, siembre cinco veces 10 a la cuarta CMM por un mililitro de medio completo para CMM por pocillo en placas de 24 pocillos para la adhesión nocturna a 37 grados Celsius, permitiendo que las células alcancen el 80 % de confluencia. A la mañana siguiente, aspire el medio y agregue el número apropiado de PBMC marcados con CFSE a las CMM en un mililitro de medio completo para leucocitos. A una relación de una a 10 de CMM respecto a PBMC, active las células con 10 microgramos de PHA por mililitro de medio completo para leucocitos.
Luego, en los días tres y cinco del co-cultivo, transfiera el número adecuado de co-cultivo a tubos cónicos y evalúe la proliferación de los leucocitos marcados con CFSE mediante análisis citométrico de flujo para realizar un ensayo de supresión de efector. Comience estableciendo un co-cultivo de M-S-C-P-B-M-C como se acaba de demostrar, con 2,5 × 10⁶ p BMCs en co-cultivo con 250.000 MSCs. Para asegurar suficientes p BMCs en co-cultivo con MSCs para la selección de subpoblaciones.
Después de 48 a 72 horas a 37 grados Celsius, seleccione los leucocitos inmunomoduladores inducidos por las MSC de interés con las microesferas magnéticas apropiadas. Luego, agregue células T alógenas positivas para CD cuatro marcadas con CFSE en un mililitro de medio completo para leucocitos por pocillo, en diversas proporciones experimentales. A continuación, agregue microesferas conjugadas con anti-CD3/28 en una proporción de uno a uno de microesferas por célula para estimular las células T positivas para CD cuatro.
El tercer día de co-cultivo, evalúe la proliferación de las células T CD4 positivas marcadas con CFSE mediante citometría de flujo. Las CMM son células adherentes con una morfología fusiforme fibroblástica, mientras que los PBMC y los leucocitos son células pequeñas, redondas y no adherentes, lo que permite distinguir claramente estas dos poblaciones celulares. En un co-cultivo, cuando no hay proliferación, las células marcadas con CFSE se observan como un solo pico altamente positivo y con fluorescencia nítida cuando las células han sido activadas.
La proliferación se manifiesta como múltiples picos más pequeños con una pérdida y un desplazamiento hacia la izquierda de la intensidad de fluorescencia cuando ha ocurrido la supresión de la proliferación. Por ejemplo, en un cultivo celular conjunto de MSC, el número de picos más pequeños disminuye con un aumento concomitante en la intensidad de fluorescencia, evidenciado por el desplazamiento de los picos hacia la derecha y el aumento en la nitidez del pico más a la derecha, que representa las células no divididas en un ensayo de supresión por células efectoras. El efecto supresor de los MSC sobre la proliferación de linfocitos T CD4 positivos puede evaluarse además de manera dependiente de la dosis.
Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo evaluar la inmunomodulación de las células madre mesenquimales humanas. No olvide que trabajar con células humanas puede ser peligroso y que siempre se deben tomar precauciones.
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Este estudio investiga las propiedades inmunomoduladoras de las células madre mesenquimales humanas (MSCs) mediante un sistema de co-cultivo con leucocitos de sangre periférica. La evaluación se centra en la proliferación de leucocitos efectorores y subpoblaciones específicas, destacando la relevancia terapéutica potencial de las MSCs.
La evaluación de la función inmunomoduladora de las CMM mediante ensayos de proliferación de leucocitos basados en CFSE proporciona un método cuantitativo y reproducible para evaluar el potencial terapéutico en enfermedades inmuno-mediadas. Este enfoque apoya la validación del blanco al permitir la reducción de riesgos mecanicistas de la inmunosupresión mediada por CMM antes de la inversión preclínica. La adaptabilidad del ensayo a subpoblaciones específicas de leucocitos mejora la confianza predictiva en la selección de candidatos líderes para las líneas de desarrollo inmunomoduladoras.
El ensayo de proliferación de leucocitos basado en CFSE se integra en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano como una herramienta funcional de cribado inmunomodulador, actuando como nexo entre la validación del objetivo y las etapas de optimización del fármaco líder para terapias basadas en células MSC.