Name: Generación de Genéticamente Modificados cultivos de piel organotípicos Uso Desvitalizada Dermis Humana (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 16 s
Description: Aprende a generar cultivos de piel organotípicos genéticamente modificados usando dermis humana desvitalizada y queratinocitos. Este método permite estudiar el impacto de la expresión génica alterada en el crecimiento y diferenciación epidérmica.

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Este trabajo fue supportedby la Sociedad Americana del Cáncer de Investigación estudiosos Grant (RSG-12-148-01-DDC) y el Premio de Biología CIRM Básica (RB4-05779).

El protocolo de la piel humana se realizó de acuerdo con las directrices de la Universidad de California, Comité de Ética de Investigación de San Diego. La piel humana se puede obtener a partir de muestras quirúrgicas desechadas o comprado a los bancos de la piel (banco de piel aparece en la Tabla de materiales / Equipo). La ubicación donde la piel se deriva de o la edad del donante no es crítico para el experimento, siempre y cuando las proteínas de la membrana basal (colágeno / laminina) en la dermis no se degradan. 1. Preparación de desvitalizados Dermis Humanos <ol><li> Tras la recepción de la piel humana, colocar el tejido en la campana de cultivo de tejido para descongelar (~ 3-5 min). Dependiendo del tamaño de la piel, colocar el tejido descongelado en un tubo estéril desechable de 50 ml o 125 ml cónica botella. El tamaño típico de la piel desde el banco de piel es de 0,75 pies cuadrados. </li><li> Llene el recipiente de 75% de su capacidad con penicilina y estreptomicina 4x (penicilina / estreptomicina) en 1x PBS. Agitar vigorosamente durante5 min y deseche el líquido. Repita este paso 3 veces más. </li><li> Después del último lavado, transferir el tejido a un nuevo tubo / botella y añadir 4x fresco pen / strep / PBS para llenar 75% del contenedor. Incubar esta mezcla en una incubadora de cultivo de tejidos a 37 ° C durante 2 semanas para permitir la separación de la dermis de la epidermis. </li><li> En condiciones estériles, el uso de fórceps para despegar la epidermis de la dermis. La dermis es completamente blanco, mientras que la epidermis tendrán coloración en función de la carrera del donante (Figura 1A). Deseche la epidermis, según el protocolo de la institución para hacer frente a los tejidos humanos. </li><li> Coloque la dermis en un tubo o botella y lavarlo en 4x pen / strep diluido en PBS 1x con agitación vigorosa (5 min lavados por 4 veces). Después del último lavado, transferir la dermis a un nuevo tubo / botella en 4x pen / strep diluido en PBS 1x y se almacena a 4 ° C hasta su utilización. Dermis pueden almacenarse a 4 ° C durante un máximo de un año. </li></ol&gt; 2. Modificar genéticamente primaria queratinocitos humanos NOTA: Use las células phoenix anfotrópicos cultivadas en medio DMEM completo [DMEM + 10% de suero bovino fetal (FBS) + penicilina / estreptomicina] para producir virus para infectar los queratinocitos humanos primarios. Genes de empaquetamiento virales que codifican proteínas tales como gag-pol y el sobre se integran de manera estable en el genoma de la célula phoenix que permite la producción de virus cuando se transfecta con un vector retroviral. Células Phoenix se pueden transfectar con una alta eficiencia permitiendo para alta producción de título viral. Virus producido a partir de esta línea de envasado también puede infectar una gran variedad de células de mamífero incluyendo humanos. <ol><li> Día 1: El día antes de la transfección, las células Phoenix semillas en una placa de 6 pocillos a una densidad de 800.000 células por pocillo en medio DMEM completo. </li><li> Día 2: El día de la transfección, utilice 3 g de vectores retrovirales por pocillo. Alícuota 3 g de vector retroviral en un tubo de 1,5 ml. Use una mezcla de 100 μ; l DMEM más de 6 l de reactivo de transfección por cada 3 g de vector. Mezclar 6 l de reactivo de transfección con 100 l DMEM en un tubo de 1,5 ml. (Los vectores retrovirales que se utilizan se enumeran en la tabla de equipos / materiales). <ol><li> Incubar durante 5 min y añadir la mezcla de 106 l en el tubo de pre-alícuota que contiene el 3 g de vector retroviral. Mezclar e incubar a temperatura ambiente durante 30 min. Añadir gota a gota toda esta mezcla a cada pocillo de las células Phoenix. </li></ol></li><li> Día 3: El día después de la transfección, retire el medio de las células Phoenix y añadir 2 ml de medio DMEM fresca completa. El mismo día, la semilla queratinocitos humanos primarios en placas de 6 pocillos a una densidad de 75.000 células por pocillo. Mantener los queratinocitos en un medio de suero de queratinocitos libre (KCSFM) con antibióticos (penicilina / estreptomicina). NOTA: los queratinocitos humanos primarios fueron adquiridos. Las células se pueden comprar en una variedad de proveedores (que aparece en la tabla de materiales / Equipo). </li><li> Día 4: Harconferir los medios de comunicación de las células transfectadas phoenix, que ahora contiene partículas virales. Pase los medios de comunicación a través de un filtro de 0,45 micras con una jeringa (para eliminar cualquier célula phoenix contaminantes) y coloque 2 ml en los queratinocitos (chapados a 75.000 células / pocillo el día anterior: véase el paso 2.3). Añadir bromuro de hexadimetrina (5 g / ml) a los medios para ayudar a mediar en el proceso de infección. Los títulos virales son ~ 1 x 10 7 TU / ml. <ol><li> Haga girar las placas de 6 pocillos en una centrifugadora a 200 xg durante 1 hora a temperatura ambiente. Después de la escisión, retire el soporte que contiene el virus y lavar las células una vez con PBS 1x antes de añadir KCSFM. </li></ol></li><li> Día 5: infectar el mismo lote de queratinocitos de nuevo como en el paso 2.4. NOTA: Seleccionar los queratinocitos utilizando un fármaco si hay un marcador seleccionable en el vector retroviral y expandir para su uso en análisis de aguas abajo o aplicaciones tales como cultivos organotípicos. </li></ol> 3. Configuración de las Culturas de la piel organotípicos <ol><li> Construir elcasete organotípico a partir de materiales comunes que se encuentran en el laboratorio o las cintas puede ser por encargo a través de un taller de fabricación de metal (Figura 2 A - F). Para hacer estos cassettes de una placa de cultivo tisular 3,5 cm, utilizar un cauterio para eliminar un cuadrado de 1,0 cm x 1,0 cm desde el centro de la tapa de una placa de 3,5 cm (Figura 2A-B). Haga esto en condiciones estériles. <ol><li> Adjuntar clavijas cuadradas a la parte inferior de la casete (tapa de 3,5 cm plato) usando esmalte de uñas transparente (Figura 2C). Permitir 5 min para el esmalte de uñas se seque y voltear la casete de manera que está descansando sobre las clavijas cuadradas (Figura 2D). Coloque el casete en un plato de 6 cm. NOTA: Plaza clavijas se pueden comprar en una variedad de tiendas de artesanías. </li></ol></li><li> Preparar medio de crecimiento de queratinocitos (KGM) compuesta de 66% de DMEM, 22% F12 de Ham, 100 unidades / ml de penicilina, 100 mg / ml de estreptomicina, 10% de FBS, 2,67 g / ml adenina, 40 ng / ml de hidrocortisona, 10 la toxina del cólera ng / ml, 4,94 mg / ml de insulina, 5 mg / ml de transferrina, 1,36 ng / ml triyodo-L-tironina, 10 ng / ml EGF, y 10 mg / ml de hidrocloruro de ciprofloxacino. Filtra los medios de comunicación a través de un filtro y tienda de 0,22 micras a 4 ° C hasta su utilización. </li><li> Tome la dermis de la solución PBS 4x penicilina / estreptomicina + y lavar 2 veces en KGM y luego incubar en KGM a 37 ° C durante dos días antes de su uso. </li><li> Cortar la dermis utilizando un bisturí para 1,5 cm x 1,5 cm trozos de tamaño y luego se coloca en el cassette organotípico. Coloque la dermis con la parte superior de la dermis hacia arriba. La parte superior de la dermis será el lado que entra en contacto con los queratinocitos (Figura 1B). </li><li> Coloque la dermis pre-cortadas en el orificio cuadrado de la casete organotípicos con el lado superior de la dermis hacia arriba (Figura 3A). </li><li> Voltear todo el casete organotípico contiene la dermis sobre el uso de fórceps (Figura 3B). Descongele la solución de la matriz extracelular en el hielo. Use una aguja y una jeringa para extraer 100 l de solución de matriz extracelular por casete. Añadir 5 gotas a la parte inferior de la dermis (lado brillante) y agitar ligeramente para asegurar una distribución uniforme por toda la dermis (Figura 3B). </li><li> Permitir a 5 min de la solución comercial matriz extracelular para solidificar completamente (Figura 3C). Después de la solidificación, utilizar pinzas para voltear el casete hacia atrás. Añadir 4 ml de KGM al plato 6 cm. </li><li> Coloque 0,5-1 millones de queratinocitos modificados genéticamente en los cassettes que contienen organotípicos la dermis (Figura 3D). <ol><li> Trypsinize queratinocitos mediante la colocación de 4 ml de tripsina al 0,05% en placas de 10 cm durante 5 min y se inactiva con 4 ml de medio DMEM completo. </li><li> Contar los queratinocitos utilizando un hemocitómetro y luego girar hacia abajo a 200 xg durante 5 min. Resuspender las células 0,5-1.000.000 (dependiendo del número de células disponibles) en 90 μl de KGM y colocar todas las células en la dermis. NOTA: Es importante colocar el mismo número de células en la dermis dentro del mismo experimento para garantizar que las diferencias observadas en espesor de la epidermis regenerada no es debido a diferencias en el número de células de partida. Colocación de menos de 0,5 millones de células de la dermis puede conducir a una mala estratificación y diferenciación. </li></ol></li><li> Cambie medios KGM en los cultivos organotípicos cada dos días. Tejido Cosecha 1-14 días después de la colocación de los queratinocitos en la dermis. Estratificación completa y la diferenciación de la epidermis por lo general se produce después del día 5. </li></ol>

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No tenemos nada que revelar.

La manipulación genética en la piel humana cultivos organotípicos ofrecen muchas ventajas para estudió comúnmente 2D células cultivadas, así como modelos de ratón. Culturas 2D carecen de las tres interacciones célula-matriz celular y extracelular de las células dimensionales que se encuentran en tejidos y órganos intactos. Estudios recientes también han encontrado enormes diferencias entre las células de cáncer de piel cultivadas en 2D y 3D con las células cultivadas en 3D que muestran mucho más similitudes de expresión...

La epidermis humana es un epitelio estratificado que se conecta a la dermis subyacente a través de una matriz extracelular conocida como la epidermis terraza, plancha membrana basal no sólo sirve como una barrera impermeable para evitar la pérdida de humedad, sino también como una primera línea de defensa para proteger la cuerpo de sustancias extrañas y tóxicos 1. La capa basal, que es la capa más profunda de la epidermis, contiene las células madre epidérmicas y progenitoras que dan lugar a la progenie diferenciada que forman el resto de la epidermis 2. Como las células progenitoras se diferencian epidérmicas que migran hacia arriba para formar la primera capa de células diferenciadas conocida como la capa espinosa 3. En la capa espinosa, las células se convierten en la expresión de las queratinas 1 y 10, que a continuación proporciona la fuerza para soportar el estrés físico para las capas diferenciadas de la epidermis. Como las células de la capa espinosas diferenciar aún más, se mueven hacia arriba en la epidermis a FORm la capa granular, que se caracteriza por la formación de gránulos de queratohialina y laminares, así como proteínas estructurales que se ensamblan por debajo de la membrana plasmática. Como las células proceden en el proceso de diferenciación, las proteínas por debajo de la membrana plasmática son cruz vinculadas entre sí, mientras que los gránulos lamelares son extruidos a partir de las células para formar un lípido barrera rica llama el estrato córneo 4. Enfermedades que implican alteraciones en crecimiento epidérmico y el impacto diferenciación ~ 20% de la población 5. Por lo tanto, la comprensión de los mecanismos de este proceso es de gran importancia. Desde manifestación de muchas de estas enfermedades está supeditada a la célula-célula o célula-matriz de contacto, cultivos organotípicos donde la epidermis humana se reconstituye en un entorno 3D se han creado 6-10. Estos métodos implican típicamente el uso de queratinocitos primarios o transformadas sembradas sobre la matriz extracelular tales como humano desvitalizadodermis, Matrigel, o colágeno. Para entender los mecanismos de regulación de genes que son importantes en crecimiento epidérmico y la diferenciación, los queratinocitos se pueden manipular genéticamente a través de vectores retrovirales para derribar o sobreexpresar genes en cultivo 2D y luego reconstituirse en 3D. Estos métodos se han utilizado ampliamente para caracterizar genes implicados en la madre epidérmicas y células progenitoras auto-renovación y diferenciación, así como la progresión a neoplasia 11-21. Aquí, se proporciona un protocolo en profundidad sobre cómo alterar la expresión de genes en cultivos organotípicos epidérmicas a través del uso de los retrovirus.

<table><tbody><tr><td>Piel humana</td><td>New York Firefighters Skin Bank</td><td><a href="http://www.cornellsurgery.org/pro/services/burn-surgery/skin-bank.html">http://www.cornellsurgery.org/pro/services/burn-surgery/skin-bank.html</a></td><td></td></tr><tr><td>PEN/STREP</td><td>GIBCO</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>líneas celulares de fénix anfotrópicas</td><td>ATCC</td><td>CRL-3213</td><td></td></tr><tr><td>FUGENE 6 transfección reactivo</td><td>Promega</td><td>E2691</td><td></td></tr><tr><td>Medios de queratinocitos (KCSFM)</td><td>Life Technologies</td><td>17005042</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>GIBCO</td><td>11995</td><td></td></tr><tr><td>Ham's F12</td><td>Cambrex</td><td>12-615F</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>GIBCO</td><td>10437-028</td><td></td></tr><tr><td>Adenina</td><td>Sigma</td><td>A-9795</td><td></td></tr><tr><td>Toxina del cólera</td><td>Sigma</td><td>&nbsp; C-8052</td><td></td></tr><tr><td>Hidrocortisona</td><td>Calbiochem</td><td>3896</td><td></td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Sigma</td><td>I-1882</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>Invitrogen</td><td>13247-051</td><td></td></tr><tr><td>Transferrin&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>T-0665</td><td></td></tr><tr><td>Clorhidrato de ciprofloxacino</td><td>Serológicos</td><td>89-001-1</td><td></td></tr><tr><td>cauterización</td><td>Bovie Medical Corporation</td><td>AA01</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>Corning</td><td>354234</td><td></td></tr><tr><td>Queratina 1 anticuerpo</td><td>Biolegend</td><td>PRB-149P clavijas</td><td></td></tr><tr><td>cuadradas Tiendas</td><td></td><td></td><td></td>de artesanía</tr><tr><td>humano queratinocitos neonatales</td><td>ATCC</td><td>PCS-200-010</td><td></td></tr><tr><td>queratinocitos neonatales humanos</td><td>Aplicaciones celulares</td><td>102K-05n</td><td></td></tr><tr><td>MSCV vector retroviral</td><td>Clontech</td><td>634401</td><td></td></tr><tr><td>LZRS vector retroviral</td><td>Addgene</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pSuper.Retro.Puro Vector retroviral</td><td>Oligoengine</td><td>VEC-PRT-0002&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>bromuro de hexadimetrina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>H9268-5G</td><td></td></tr></tbody></table>

generación de genéticamente modificados cultivos de piel organotípicos uso desvitalizada dermis humana

Generation of Genetically Modified Organotypic Skin Cultures Using Devitalized Human Dermis

Los cultivos organotípicos permiten la reconstitución de un entorno 3D crítico para contacto célula-célula y célula-matriz interacciones que imita la función y la fisiología de sus homólogos de tejidos in vivo. Esto se ejemplifica con cultivos de piel organotípicos que recapitula fielmente la diferenciación epidérmica y el programa de la estratificación. Queratinocitos epidérmicos humanos primarios son genéticamente manipulable mediante retrovirus donde los genes pueden ser fácilmente sobreexpresan o derribados. Estos queratinocitos modificados genéticamente se pueden utilizar para regenerar la epidermis humana en cultivos de piel organotípicos proporcionan un poderoso modelo para estudiar vías genéticas de crecimiento epidérmico de impacto, la diferenciación y la progresión de la enfermedad. Los protocolos presentados aquí describen métodos para preparar dermis humana desvitalizados, así como para manipular genéticamente los queratinocitos humanos primarios a fin de generar cultivos de piel organotípicos. La piel humana regenerada se puede utilizar en downstream aplicaciones tales como perfiles de expresión génica, la inmunotinción y inmunoprecipitaciones cromatina seguido de secuenciación de alto rendimiento. Por lo tanto, la generación de estos cultivos de piel organotípicos modificados genéticamente permitirá la determinación de los genes que son críticos para el mantenimiento de la homeostasis de la piel.

El primer paso en la generación de la piel humana organotípicos es eliminar la epidermis de la dermis. La incubación de dos semanas de la piel en 37 ° C en 4x pen / strep / PBS debería permitir la separación de la dermis de la epidermis (Figura 1A). Si es difícil separar la epidermis y la dermis luego colocar el tejido a 37 ° C en 4x penicilina / estreptomicina / PBS durante una semana y luego tratar de pelar de nuevo utilizando fórceps. Una de las claves para la regeneració...

El objetivo de este artículo es proporcionar un protocolo completo y detallado sobre cómo generar piel organotípica humana modificada genéticamente a partir de queratinocitos epidérmicos y dermis humana desvitalizada.

Generación de Genéticamente Modificados cultivos de piel organotípicos Uso Desvitalizada Dermis Humana

Organotypic cultures allow the reconstitution of a 3D environment critical for cell-cell contact and cell-matrix interactions which mimics the function ...

El objetivo general de este procedimiento es generar cultivos cutáneos organotípicos genéticamente modificados utilizando dermis humana revitalizada para determinar el impacto de la expresión génica alterada sobre el crecimiento y la diferenciación epidérmicos. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la dermatología, como determinar qué genes son responsables del crecimiento epidérmico, la diferenciación y la progresión hacia la enfermedad. La principal ventaja de esta técnica es que se genera piel humana genéticamente alterada en pocos días, lo que permite el estudio de muestras humanas potencialmente relevantes clínicamente.La persona que demostrará el procedimiento será Jingly de mi laboratorio. Si recibe piel humana congelada, coloque el tejido en la cabina de cultivo celular durante tres a cinco minutos para descongelarlo. Una vez descongelado, transfiera el tejido a un tubo cónico estéril de 50 mililitros o a un frasco de 125 mililitros, según el tamaño.A continuación, agregue cuatro veces penicilina y estreptomicina en un XPBS hasta que el recipiente esté lleno en un 75 %. Tape el recipiente y agite vigorosamente durante cinco minutos. Retire la solución antibiótica y repita este procedimiento.Repita el paso tres veces más tras el último lavado, transfiera el tejido a un nuevo recipiente y agregue solución antibiótica fresca. Incube esta mezcla en un incubador de cultivo de tejidos a 37 grados Celsius durante dos semanas para permitir la separación de la dermis de la epidermis. Cuando hayan transcurrido dos semanas, use pinzas para separar la epidermis de la dermis.Deseche la epidermis de acuerdo con el protocolo de la institución para el manejo de tejido humano. Coloque la dermis en un recipiente con solución antibiótica y lávela con agitación vigorosa como antes. Después del último lavado, transfiera la dermis a un nuevo recipiente con solución antibiótica y almacénela a cuatro grados Celsius hasta que esté lista para su uso, el día anterior a la transfección siembre células phoenix en medio completo en una placa de seis pocillos a una densidad de 800 000 células por pocillo.El día de la transfección, mezcle seis microlitros de reactivo de transfección con 100 microlitros de dmm. Por cada pocillo que se vaya a transfectar, incube a temperatura ambiente durante cinco minutos, agregue la mezcla a un tubo que contenga tres microgramos de vector retroviral por cada pocillo que se vaya a transfectar e incube a temperatura ambiente durante 30 minutos. Añada esta mezcla completa gota a gota a cada pocillo de las células phoenix e incube las células durante la noche. Al día siguiente de la transfección, retire el medio de las células phoenix y agregue dos mililitros de medio completo fresco el mismo día.Re-suspender queratinocitos humanos primarios en medio libre de suero para queratinocitos con antibióticos y sembrarlos en placas de seis pocillos a una densidad de 75.000 células por pocillo. Al día siguiente, recoger el medio, que ahora contiene partículas virales procedentes de las células Phoenix transfectadas. Filtrar el medio a través de un filtro de 0,45 micrones utilizando una jeringa para eliminar cualquier célula contaminante.Añada cinco microgramos por mililitro de bromuro de hexadimetilo al medio filtrado que contiene el virus para ayudar a mediar el proceso de infección. Luego, pipetee dos mililitros del virus sobre los queratinocitos sembrados el día anterior. A continuación, centrifugue las placas de seis pocillos a 200 G durante una hora a temperatura ambiente.Después de la centrifugación, retire y deseche el medio que contiene el virus. Lave las células una vez con PBS 1X y luego agregue medio K-C-S-F-M fresco al día siguiente. Infekte el mismo lote de queratinocitos con el virus utilizando el procedimiento recién mostrado.Para elaborar casetes organotípicos. Utilice una punta electrocauterizante para extraer un cuadrado de un centímetro por un centímetro del centro de la tapa de una placa de cultivo celular de 3,5 centímetros. Fije pernos cuadrados en la parte inferior del casete utilizando esmalte de uñas transparente y deje secar durante cinco minutos.Finalmente, dé la vuelta al casete y colóquelo en un recipiente de seis centímetros con el casete apoyado sobre los pernos. Retire la dermis del almacenamiento a cuatro grados Celsius y transfiérala a un recipiente con medio de crecimiento de queratinocitos para lavar.Después de repetir el lavado, coloque la dermis en KGM fresco e incube a 37 grados Celsius durante dos días. Tras la incubación, use un escalpelo para cortar la dermis en trozos de 1,5 centímetros por 1,5 centímetros. A continuación, coloque el fragmento sobre el orificio cuadrado del sistema organotípico, con la cara superior de la dermis orientada hacia arriba.Utilice pinzas para dar la vuelta al cassette organotípico completo que contiene la dermis. Añada cinco gotas de matriz extracelular recién preparada en la parte inferior de la dermis y agite ligeramente para asegurar una distribución uniforme sobre la dermis. Después de permitir que la matriz extracelular se solidifique durante cinco minutos, utilice pinzas para volver a girar el cassette, y luego añada cuatro mililitros de KGM al recipiente de seis centímetros de diámetro.A continuación, tras cosechar y contar los queratinocitos modificados genéticamente, resuspenda de 0,5 a 1 millón de células en 90 microlitros de KGM y distribuya las células sobre la dermis. Incube el cultivo conjunto a 37 grados Celsius. Cambie el medio de los cultivos cada dos días.La estratificación y diferenciación completas de la epidermis generalmente ocurren después del día cinco. El tejido puede recolectarse hasta 14 días después de la siembra. Esta imagen muestra la tinción con hematoxilina y eosina de organotípico.Los cultivos de piel regenerada contienen tanto la epidermis como la dermis. La epidermis está completamente estratificada y diferenciada, con cuatro capas distintas, incluyendo la capa basal indiferenciada y las tres capas diferenciadas: estrato espinoso, estrato granuloso y estrato córneo. Estas imágenes de inmunofluorescencia demuestran que la sobreexpresión de SNA i dos, como se muestra a la derecha, inhibe la diferenciación epidérmica en comparación con el tejido control mostrado a la izquierda, teñido para la diferenciación.La proteína queratina uno o K uno se muestra en verde y los núcleos se marcan en azul. El análisis de RTQ PCR R para medir los niveles de ARNm de SNAI dos en tejido control LAC Z y en tejido con sobreexpresión de S NNA I dos demuestra una expresión mayor de 50 veces en comparación con el control. Finalmente, este análisis de RTQ PCR R demuestra que la sobreexpresión de SNA I dos provoca la pérdida de expresión de genes estructurales inducidos durante la diferenciación, como TGM uno y SPRR uno A. Tras este procedimiento.Otros métodos como chipsy, inmunofluorescencia, RN, ae o inmunotransferencia pueden realizarse para determinar los mecanismos del crecimiento y la diferenciación epidérmica. Esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de la dermatología exploraran cómo la alteración de la función génica afecta la homeostasis de la piel. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo generar cultivos orgánicos de piel humana modificada genéticamente utilizando queratinocitos y dermis humana desvitalizada.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

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Modificación genética de queratinocitos humanos primarios: un método para manipular genéticamente los queratinocitos utilizando retrovirus recombinantes

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Aprende a generar cultivos de piel organotípicos genéticamente modificados usando dermis humana desvitalizada y queratinocitos. Este método permite estudiar el impacto de la expresión génica alterada en el crecimiento y diferenciación epidérmica.

Generación de Genéticamente Modificados cultivos de piel organotípicos Uso Desvitalizada Dermis Humana

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