Mapas de destino celular

JoVE Science Education
Developmental Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Developmental Biology
Fate Mapping

60,634 Views

06:58 min
April 30, 2023

Overview

Asignación de destino es una técnica utilizada para comprender las células embrionarias cómo dividir, distinguir y migran durante el desarrollo. En experimentos de asignación de destino clásico, células en diferentes áreas de un embrión son marcadas con un pigmento químico y luego realiza un seguimiento para determinar qué tejidos o estructuras que forman. Avances tecnológicos permiten ahora las células individuales a ser marcado y trazado a lo largo de la edad adulta y el desarrollo embrionario.

Este video comentarios sobre los conceptos de asignación de destino y luego detalles de un protocolo de asignación de destino en el pez cebra con proteínas fluorescentes photoactivatable. Finalmente, se discuten las aplicaciones específicas y las modificaciones de esta técnica única.

Procedure

Biólogos del desarrollo usan la asignación sino como una herramienta para linajes celulares de rastro mientras que un organismo madura. Esto se hace por el etiquetado de células en una fase embrionaria y luego seguimiento de ellos y su progenie en todo el desarrollo del organismo. Asignación de destino también se utiliza para estudiar la migración celular y la diferenciación durante el desarrollo, así como la regeneración y reparación durante la vida adulta.

Este video proporciona una visión general de asignación de destino, explicar un protocolo que se utiliza para generar un mapa de destino en el pez cebra y muestran algunas formas en que actualmente se está aplicando esta técnica en los laboratorios.

Antes de saltar en los detalles de procedimiento, vamos a discutir lo que un mapa de destino es y cómo se construye.

En clásico sino asignación de experimentos, los científicos tiñen grupos de células en un embrión, como en la etapa de gástrula, con un tinte que pasarían a todos los descendientes de estas células. Después de permitir que el embrión a desarrollar durante un tiempo, han consultado las células en el organismo más maduro. Luego se observó la localización de células en el organismo maduro. Se combinaron los resultados de varios experimentos similares permitidos la construcción de un diagrama conocido como mapa de destino.

Por lo tanto, un mapa de destino es un plan general que describe el destino de cada parte de un embrión temprano. Estos mapas ayudan a los científicos a determinar cosas como que las células embrionarias se diferencian en que las células adultas funcionales, y cómo migrar y organizar en estructuras maduras.

Los científicos han utilizado muchos organismos modelo para crear mapas de destino, incluyendo ranas, nematodos, pescados, pollos y ratones. Algunos organismos modelo, como el pez cebra Danio rerio, tienen una ventaja adicional en este tipo de experimento. Desde que son pequeños y permanecen transparentes durante gran parte del proceso de desarrollo, los científicos pueden controlar fácilmente células consultando el pescado bajo un microscopio de luz. Lo importante, avances en técnicas de etiquetado ahora la célula permiten a los científicos precisamente marcar celdas individuales y trazarlos a medida que se desarrolla el organismo, que ayuda en la creación de un mapa extremadamente detallado del destino.

Ahora que tienes una idea sobre lo que el destino los mapas son, vamos a discutir un protocolo para la asignación de destino en el pez cebra que utiliza fotoactivación. Este relativamente nuevo enfoque depende de las proteínas photoactivatable. Estas son las proteínas fluorescentes especiales, que están “enjauladas,” lo que significa que se llevan a cabo en una conformación específica para evitar la fluorescencia. Una aplicación de un pulso de láser controlado provoca un cambio conformacional, conocido como “uncaging”, que resulta en fluorescencia visible.

Para realizar este experimento, estas proteínas especializadas enjauladas se sintetizan primero y luego inyectadas en embriones de pez cebra de etapa de células de uno o dos. A continuación, los embriones pueden madurar hasta la etapa de desarrollo deseada antes de fotoactivación.

Entonces, para preparar el pescado para la fotoactivación, los embriones son dechorionated para hacer accesible el tejido diana. A continuación, se montan en un medio ópticamente claro, tales como baja fusión agarosa de temperatura, que con seguridad les mantiene en una posición estable. Las muestras son alineadas para exponer el área de interés y montadas en un microscopio equipado con láser. Un pulso de láser se aplica a las células que contienen específica área de interés, inducir la fotoactivación.

Tras el tratamiento con láser, embriones cuidadosamente se quitan de la agarosa y devuelto a su medio natural hasta llega a la etapa de desarrollo deseada. Para rastrear las células Fotoactivado, embriones se integran otra vez en baja fusión agarosa de temperatura, y las células de fotoactivado luego pueden visualizarse y rastrearla con fluorescencia directa o immunostaining.

Ahora que tienes una comprensión global de un protocolo de asignación de destino, echemos un vistazo a algunos experimentos de laboratorio que se aprovechan de este procedimiento.

Además de estudiar el desarrollo embrionario, asignación de destino puede utilizarse para examinar la reparación en los sistemas maduros. En este experimento, fue quitado por ablación de una retina de pez cebra transgénico un subtipo específico de la célula. Los científicos entonces remontados genéticamente marcado residente células madre adultas para decidir su destino después de lesión. Finalmente, análisis de imágenes fue realizada, que demostró la activación de las células madre adultas y reparación de tejidos posterior.

Los científicos también están utilizando protocolos similares para entender el destino de las células madre trasplantadas. Aquí, con la etiqueta genéticamente células madre embrionarias humanas, o hESCs, se trasplantaron en un modelo en ratones inmunodeprimidos. Las células implantadas se permitieron diferenciar durante 8-12 semanas, tras lo cual el teratoma resultante, que es un tumor que contiene tejido de múltiples capas del germen, se cosechó, fijo y immunostained para determinar el destino de implanta las células madre. Este tipo de experimento ayuda a los científicos para confirmar el potencial differentiative en vivo de las células madre cultivadas.

Como se mencionó anteriormente, los científicos realizan procedimientos de asignación de destino en diversos organismos modelo, incluyendo los mamíferos. En este estudio en particular, los científicos marcaron las células en una región específica de un embrión temprano de ratón usando el enfoque genético inducible. Esto se hace mediante la administración de un agente inductor a un ratón embarazado llevando descendencia genéticamente modificado. Las células marcadas fueron seguidas a lo largo de etapas tardías del desarrollo, que ayudó a los científicos a determinar su destino final.

Sólo has visto video de Zeus en la asignación de destino. Este video proporciona una idea en la creación de mapas de destino, repasa un destino específico protocolo de mapeo y discute algunas de las modificaciones y aplicaciones de esta técnica muy útil. ¡Como siempre, gracias por ver!

Transcript

Developmental biologists use fate mapping as a tool to trace cell lineages while an organism matures. This is done by labeling cells at an embryonic stage and then tracking them and their progeny throughout the organism’s development. Fate mapping is also used to study cell migration and differentiation during development, as well as regeneration and repair during adulthood.

This video will provide an overview of fate mapping, explain a protocol used to generate a fate map in zebrafish, and show some ways in which this technique is currently being applied in labs.

Before jumping into the procedural details, let’s discuss what a fate map is and how it’s constructed.

In classical fate mapping experiments, scientists stained groups of cells in an early embryo, such as those in the gastrula stage, with a dye that would be passed on to all the descendants of these cells. After allowing the embryo to develop for a certain period of time, they viewed the stained cells in the more mature organism. The location of stained cells in the mature organism was then noted. Pooled results of several similar experiments allowed construction of a diagram known as a fate map.

Therefore, a fate map is an overall plan that outlines the fate of each part of an early embryo. These maps help scientists to determine things like which embryonic cells differentiate into which functional adult cells, and how they migrate and organize into mature structures.

Scientists have used many model organisms to create fate maps, including frogs, nematodes, fish, chicks, and mice. Some model organisms, such as the zebrafish Danio rerio, have an additional advantage in this type of experiment. Since they are small and remain transparent for much of the developmental process, scientists can easily track cells by viewing the fish under a light microscope. Importantly, advances in cell labeling techniques now allow scientists to precisely mark single cells and trace them as the organism develops, which helps in the creation of an extremely detailed fate map.

Now that you have an idea about what fate maps are, let’s discuss a protocol for fate mapping in zebrafish that uses photoactivation. This relatively new approach depends on photoactivatable proteins. These are special fluorescent proteins, which are “caged,” meaning they are held in a specific conformation to prevent fluorescence. An application of a controlled laser pulse causes a conformational change, referred to as “uncaging,” that results in visible fluorescence.

In order to perform this experiment, these specialized caged proteins are first synthesized and then injected into one or two cell stage zebrafish embryos. Next, the embryos are allowed to mature to the desired developmental stage prior to photoactivation.

Then, to prepare the fish for photoactivation, the embryos are dechorionated to make the target tissue accessible. Next, they are mounted in an optically clear medium, such as low melting temperature agarose, which safely maintains them in a steady position. The samples are aligned to expose the area of interest, and mounted onto a laser-equipped microscope. A laser pulse is applied to the targeted area containing cells of interest, inducing photoactivation.

Following the laser treatment, embryos are carefully removed from the agarose and returned to their natural environment until the desired developmental stage is reached. In order to trace the photoactivated cells, embryos are again embedded in low melting temperature agarose, and the photoactivated cells can then be visualized and traced using direct fluorescence or immunostaining.

Now that you have an overall understanding of a fate mapping protocol, let’s take a look at a few lab experiments that take advantage of this procedure.

In addition to studying embryonic development, fate mapping can be used to examine repair in mature systems. In this experiment, a specific cell subtype was ablated from a transgenic zebrafish retina. Scientists then traced genetically labeled resident adult stem cells to determine their fate following injury. Finally, image analysis was performed, which demonstrated activation of adult stem cells and subsequent tissue repair.

Scientists are also using similar protocols to understand the fates of transplanted stem cells. Here, genetically tagged human embryonic stem cells, or hESCs, were transplanted into an immunocompromised mouse model. The implanted cells were allowed to differentiate for 8-12 weeks, following which the resulting teratoma, which is a tumor that contains tissue from multiple germ layers, was harvested, fixed, and immunostained to determine the fate of implanted stem cells. This type of experiment helps scientists to confirm the in vivo differentiative potential of cultured stem cells.

As mentioned earlier, scientists perform fate mapping procedures in various model organisms, including mammals. In this particular study, scientists marked cells in a specific region of an early mouse embryo using inducible genetic approaches. This is done by administering an inducing agent to a pregnant mouse carrying genetically modified offspring. The labeled cells were tracked throughout later developmental stages, which helped scientists to determine their ultimate fate.

You’ve just watched JoVE’s video on fate mapping. This video provided some insight into creating fate maps, reviewed a specific fate mapping protocol, and discussed some of the modifications and applications of this extremely useful technique. As always, thanks for watching!