Name: La fabricación de dispositivos analíticos de algodón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 40 s
Description: Aprende a fabricar dispositivos analíticos de algodón para diagnóstico clínico. Este método de bajo costo permite realizar múltiples ensayos de orina reduciendo la contaminación y mejorando la fiabilidad de los resultados en análisis de nitritos, proteínas y urobilinógeno.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Este trabajo fue apoyado en parte por subvenciones del Ministerio de Ciencia y Tecnología de Taiwán (MOST 104-2628-E-007-001-MY3 (CMC)), y el Hospital General de Veteranos Taichung <span style="color: rgb(34, 34, 34); font-family: arial, sans-serif; font-size: 12.8px; font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; letter-spacing: normal; line-height: normal; orphans: auto; text-align: start; text-indent: 0px; text-transform: none; white-space: normal; widows: 1; word-spacing: 0px; -webkit-text-stroke-width: 0px; display: inline !important; float: none; background-color: rgb(255, 255, 255);">(TCVGH-1056904C (MYH)).

PRECAUCIÓN: Se requiere la práctica adecuada de la higiene de laboratorio. Guantes y precauciones universales son necesarios cuando se utiliza este dispositivo POC. La contaminación de los resultados o la infección se puede producir si los procedimientos adecuados de esterilización no se realizan correctamente. 1. Preparar dispositivos de tira de prueba <ol><li> Determinar la hidrofobicidad de la capa exterior del algodón de limpieza mediante la medición del ángulo de contacto 8 (Figura 3). </li><li> Fabricar el dispositivo analítico basado en algodón cortando algodón limpieza en 5,5 cm x 1 cm piezas con un cortador de papel (Figura 2A). </li><li> Los agujeros del taladro (Ø = 0,5 cm) en una hoja estándar de la película de laminación en filas de tres; la distancia entre dos agujeros posteriores es de 1 cm. NOTA: Tanto como 36 tiras de prueba individuales con tres zonas de prueba, cada uno puede hacerse usando una hoja estándar de la película de laminación (5,5 cm x 2 cm) (Figura 2B). </li><li> Sandwich del algodón de limpieza (characterized por hidrofobicidad e hidrofilicidad exterior interior) entre dos piezas de película de laminación, es decir, la hoja de agujero taladrado de película de laminación en un lado, y una lámina no perforada de la película de laminación (sin agujeros) en el otro lado. Coloque el conjunto en un laminador para empaquetar el dispositivo. Esto mejora la resistencia mecánica del dispositivo, y proporciona una capa externa, impermeable. NOTA: Los diámetros de los agujeros se reducirá desde 0,5 cm a 0,47 ~ cm después de la laminación. Algunas ligeras deficiencias permanecerán entre el algodón y la limpieza de película de laminación en todo el perímetro de cada hoyo. Estas ligeras lagunas facilitan la colocación de los círculos almohadilla de análisis realizados en una etapa posterior. </li><li> Use un par de tijeras para cortar las tiras reactivas dispositivos individuales de 5,5 cm x 1 cm del conjunto, es decir, la hoja de laminado perforado / algodón / hoja de laminación sin perforar &quot;sandwich&quot; (Figura 2C). Hacer 48 dispositivos en total para crear curvas de calibración como se describe más adelante (18 dispositivospara el ensayo de nitrito, 15 dispositivos para el ensayo de BSA, y 15 dispositivos para el ensayo de urobilinógeno). </li><li> Utilice un cuchillo afilado o de afeitar para cortar una ranura (como un pequeño canal fluídico) desde el centro de cada zona de ensayo (no cubierta por la película de laminación), a través y a través de la capa hidrófoba de área de prueba para la capa hidrófila del dispositivo longitudinal, ser cauteloso para cortar la mitad de la profundidad del dispositivo de intercalado (Figura 2D). </li><li> Aplicar las almohadillas de análisis de papel (Ø = 0,5 cm) deslizándolos dentro de los huecos en el perímetro de cada agujero en el laminado (Figura 2E). </li></ol> 2. Preparar normas y el indicador de Soluciones para el análisis de orina <ol><li> Preparar 10,0 mM solución madre de nitrito mediante la disolución de nitrito de sodio 69,0 mg en 100 ml de agua desionizada (DI). Se diluye la solución de nitrito de stock en agua DI para crear una serie de soluciones de nitrito estándar de concentración (2.500, 1.250, 625, 312, 156, y 78 M) (Figura4A). </li><li> Preparar 60 mM bovina solución de albúmina sérica (BSA) stock disolviendo 415 mg de BSA en 100 ml de solución de PBS (tampón fosfato 10 M, cloruro potásico 0,0027 M y cloruro de sodio 0,137 M; pH 7,0). Diluir la solución madre de BSA en agua DI para crear una serie de soluciones patrón de concentración de BSA (30, 15, 7,5, 3,75, y 1,875 M) (Figura 4B). </li><li> Preparar 25 g / L de solución de stock de urobilinógeno disolviendo 2,5 g de urobilinógeno en 100 ml de agua DI. Diluir solución madre urobilinógeno en agua DI para crear una serie de soluciones de concentración urobilinógeno estándar (7.8, 15.6, 31.2, 62.5, y 125 mg / L) (Figura 4C). </li><li> Preparar la solución de nitrito de indicador que contiene sulfanilamida 50 mM, ácido cítrico 330 mM, y dihidrocloruro de etilendiamina mM N- 10 (1-naftil). </li><li> Preparar la solución de indicador de BSA que contiene 250 mM solución tampón de citrato (pH 1,8) y una solución 3,3 mM de tetrabromofenol azul en 95% de etanol. </li><li>Preparar la solución de indicador de urobilinógeno que contiene 0,1 M benzaldehído 4-dimetilamina. </li></ol> 3. Preparar Pad Indicador <ol><li> Cortar tres almohadillas circulares o en forma de discos (Ø = 0,5 cm) de papel de cromatografía e insertar cada uno de ellos (uno para cada ensayo en la tira de ensayo de tres) en cada dispositivo de tira reactiva para crear una curva estándar de solución (sección 4). </li><li> En cada uno de los tres agujeros de la película de laminación de la asamblea, observar un pequeño espacio entre la película de laminación y la almohadilla de ensayo de algodón en los mismos bordes del agujero cortado. Nota, el agujero en la película de laminación es ligeramente más pequeño en diámetro que la almohadilla de ensayo de papel. NOTA: En conjunto, estas características permiten que la almohadilla de ensayo de papel que se aplica contra la parte de la almohadilla de prueba de algodón del dispositivo de manera que los bordes de la almohadilla de hoja de prueba de papel en el hueco delgado mencionado, es decir, en los bordes del agujero película de laminación. Esto mantiene las almohadillas de ensayo de papel en su lugar. </li><li> Preparar el nitrito Assay parte del dispositivo. <ol><li> Escudo de la almohadilla de análisis de nitrito con 4 l de solución de nitrito de indicador (preparado en el paso 2.4) y deje que se seque por completo a temperatura ambiente. </li></ol></li><li> Preparar el total de las porciones de ensayo de proteínas del dispositivo de detección. <ol><li> Escudo de la almohadilla de ensayo total de proteínas con 4 l de solución de BSA indicador (preparado en el paso 2.5) y deje que se seque por completo a temperatura ambiente. </li></ol></li><li> Preparar la porción Uroblinogen Ensayo del dispositivo de detección. <ol><li> Escudo de la almohadilla de análisis uroblinogen con 4 l de indicador uroblinogen (preparado en el paso 2.6) y deje que se seque por completo a temperatura ambiente. </li></ol></li></ol> 4. Crear curvas de calibración para el dispositivo analítico basado en algodón <ol><li> Para cada patrón preparada, sumergir el extremo de absorción de un dispositivo preparado (precargado con indicadores de ensayo (ver sección 3.4)) en la solución estándar durante 10 segundos (el volumen de absorción ~200 - 300 l) (Figura 2F). </li><li> Coloque el dispositivo basado en algodón en un entorno ambiente durante 10 min para completar reacciones colorimétricas (Figura 2F). Repetir cada experimento por triplicado. </li><li> Analizar el dispositivo para analizar el cambio colorimétrico que ocurre en cada almohadilla de análisis (Figura 2G). Lugar resultante almohadillas de análisis en el cristal de un escáner de sobremesa y almohadillas de análisis de exploración en el modo RGB con 600 dpi de resolución de imagen. Guardar cada imagen en formato jpeg. </li><li> Analizar la imagen escaneada en un ordenador utilizando el software de análisis de imágenes para determinar las intensidades de color respectivos (Figura 2H). <ol><li> Descargar el software ImageJ en http://imagej.nih.gov/ij/. Abrir los archivos de imágenes escaneadas. Seleccione la imagen en los comandos de menú y seleccione &quot;Tipo&quot; para convertir las imágenes RGB a escala de grises de 8 bits. </li><li> Utilice la herramienta de &quot;oval&quot; en la barra de herramientas para seleccionar el área de análisis de la almohadilla de prueba. Seleccione &quot;Analizar&quot; en el menú de comunicacionesands, y seleccione &quot;medida&quot; para analizar la intensidad del color. Grabar significa resultados de intensidad. </li></ol></li><li> Establecer las curvas estándar de nitrito, proteína total, y los ensayos de urobilinógeno (Figura 2I). <ol><li> Indicar diferentes concentraciones de nitrito estándar, proteína total, y soluciones de urobilinógeno y correlacionada resultados medios de intensidad en un sistema de coordenadas de dos dimensiones utilizando software stastical. </li><li> Adaptarse a la curva estándar para un ensayo de nitrito por un modelo cuadrático y las curvas de calibración para proteínas totales y urobilinógeno ensayos de modelos de regresión lineal. </li></ol></li></ol> 5. Determinar concentraciones de las muestras desconocidas usando establecido valores curva estándar <ol><li> Para determinar el nitrito, proteína total, y las concentraciones de urobilinógeno en soluciones desconocidas, utilizar el dispositivo como se describe para la medición de concentraciones de la solución estándar y sustitutos medido resultados de intensidad para el nitrito, proteína total y urobilinogen ensayos en las ecuaciones de los modelos construidos en el paso 2. </li></ol>

<ol><li>Yager, P., Domingo, G. J., Gerdes, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Point-of-care+diagnostics+for+global+health%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Point-of-care diagnostics for global health.</a> Annu. Rev. Biomed. Eng. 10, 107-144 (2008).</li>
<li>Chin, C. D., Linder, V., Sia, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commercialization+of+microfluidic+point-of-care+diagnostic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Commercialization of microfluidic point-of-care diagnostic devices.</a> Lab Chip. 12, 2118-2134 (2012).</li>
<li>Lu, Y., Shi, W., Jiang, L., Qin, J., Lin, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+prototyping+of+paper-based+microfluidics+with+wax+for+low-cost%2C+portable+bioassay%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Rapid prototyping of paper-based microfluidics with wax for low-cost, portable bioassay.</a> Electrophoresis. 30 (9), 1497-1500 (2009).</li>
<li>Ballerini, D. R., Li, X., Shen, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+control+concepts+for+thread-based+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Flow control concepts for thread-based microfluidic devices.</a> Biomicrofluidics. 5 (1), 014105(2011).</li>
<li>Lin, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cotton-based+Diagnostic+Devices%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+reports%22%5BJournal%5D)">Cotton-based Diagnostic Devices.</a> Scientific reports. 4, 6976-6976 (2013).</li>
<li>Hsu, M. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+the+VEGF+level+in+aqueous+humor+of+patients+with+ophthalmologically+relevant+diseases+via+ultrahigh+sensitive+paper-based+ELISA%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Monitoring the VEGF level in aqueous humor of patients with ophthalmologically relevant diseases via ultrahigh sensitive paper-based ELISA.</a> Biomaterials. 35 (12), 3729-3735 (2014).</li>
<li>Hsu, M. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+VEGF+levels+with+low-volume+sampling+in+major+vision-threatening+diseases%3A+age-related+macular+degeneration+and+diabetic+retinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Monitoring VEGF levels with low-volume sampling in major vision-threatening diseases: age-related macular degeneration and diabetic retinopathy.</a> Lab Chip. 15 (11), 2357-2363 (2015).</li>
<li>Kwok, D., Neumann, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contact+angle+measurement+and+contact+angle+interpretation%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Colloid+Interface+Sci%22%5BJournal%5D)">Contact angle measurement and contact angle interpretation.</a> Adv. Colloid Interface Sci. 81 (3), 167-249 (1999).</li>
<li>Martinez, A. W., Phillips, S. T., Butte, M. J., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterned+paper+as+a+platform+for+inexpensive%2C+low-volume%2C+portable+bioassays%5BTitle%5D)+AND+%22Angew.+Chem.+Int.+Ed.+Engl%22%5BJournal%5D)">Patterned paper as a platform for inexpensive, low-volume, portable bioassays.</a> Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 46 (8), 1318-1320 (2007).</li>
<li>Li, X., Tian, J. F., Shen, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+biomarker+assay+with+microfluidic+paper-based+analytical+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Bioanal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Quantitative biomarker assay with microfluidic paper-based analytical devices.</a> Anal. Bioanal. Chem. 396 (1), 495-501 (2010).</li>
<li>Coad, S., Friedman, B., Geoffrion, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+Urinalysis%5BTitle%5D)+AND+%22medscape%22%5BJournal%5D)">Understanding Urinalysis.</a> medscape. 7 (3), 269-279 (2012).</li>
<li>Kupka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+of+urine+urobilinogen+and+bilirubin+assays+in+predicting+liver+function+test+abnormalities%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Emerg.+Med%22%5BJournal%5D)">Accuracy of urine urobilinogen and bilirubin assays in predicting liver function test abnormalities.</a> Ann. Emerg. Med. 16 (11), 1231-1235 (1987).</li>
<li>Binder, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Failure+of+prediction+of+liver+function+test+abnormalities+with+the+urine+urobilinogen+and+urine+bilirubin+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Pathol.+Lab.+Med%22%5BJournal%5D)">Failure of prediction of liver function test abnormalities with the urine urobilinogen and urine bilirubin assays.</a> Arch. Pathol. Lab. Med. 113 (1), 73-76 (1989).</li>
<li>Gubala, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Point+of+care+diagnostics%3A+status+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+chem%22%5BJournal%5D)">Point of care diagnostics: status and future.</a> Anal. chem. 84 (2), 487-515 (2011).</li>
<li>Vaidya, V. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Urinary+biomarkers+for+sensitive+and+specific+detection+of+acute+kidney+injury+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Transl.+Sci%22%5BJournal%5D)">Urinary biomarkers for sensitive and specific detection of acute kidney injury in humans.</a> Clin. Transl. Sci. 1 (3), 200-208 (2008).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos. S.C.L., C.M.K., F.G.T. y C.M.C. son inventores de una patente (patente No.: US 8691162 B1) propiedad de la Universidad Nacional Tsing Hua sobre la base del trabajo informado en este manuscrito. S.C.L., C.M.K., F.G.T. y C.M.C. tienen patentes pendientes en Taiwán y China basadas en el trabajo reportado en este manuscrito. M.Y.H. declara que no hay ningún conflicto de intereses potencial.

Los pasos críticos en este protocolo incluyen la determinación de la combinación adecuada de tela de algodón (con diferentes hidrofobicidad / hidrofilicidad) y el papel de filtro (papel de filtro o cromatografía de papel de filtro cuantitativo). Un diseño del dispositivo bien planificado y ejecutado hace atribuye el mejor rendimiento para ensayos colorimétricos. A partir de nuestros resultados de ensayo colorimétrico, el dispositivo analítico basado en algodón presentada en este documento demuestra un gran potencial com...

El desarrollo de los puntos de atención (PDA) dispositivos de diagnóstico que sean asequibles, robusto y fácil utilización es imprescindible para la mejora de la salud mundial 1,2. En particular, los dispositivos compuestos por sustratos de celulosa (por ejemplo, papel, hilo, algodón) y proporcionar plataformas analíticas prometedores para el análisis bajo costo debido a su ubicuidad, la accesibilidad, la facilidad de uso, robustez y capacidad para proporcionar resultados rápidos 3-7. Aquí, revelamos el desarrollo de un dispositivo analítico basado en algodón que utiliza un formato basado en flujo lateral para análisis de orina. Este dispositivo analítico basado en el algodón ofrece un enfoque alternativo de detección con varias ventajas clave: i) la fabricación con el esfuerzo humano mínima; ii) bajo coste; iii) la capacidad de ser utilizado para llevar a cabo varios ensayos diferentes, sin preocupaciones de contaminación cruzada; . iv) la independencia de dispositivo, es decir, la capacidad de funcionar sin el equipo y / o electricidad adicional; y, v) Velocidad (ensayos colorimétricos se puede completar en 10 min). La estructura de este dispositivo analítico basado en algodón se puede dividir en cuatro partes: i) de algodón que es naturalmente hidrófoba sobre su capa hidrófoba externa; ii) de algodón que es internamente hidrófilo y sirve como un canal de transporte para absorción de líquido; iii) película de laminación que se une y comprime el algodón se utiliza, pero contiene perforado los agujeros para la colocación de almohadillas de reacción / de prueba; y, iv) almohadillas de análisis papel de cromatografía, que se recubren / incrustados con reactivos reactivos, colocados en la superficie exterior del algodón (en concreto, en el espacio perforado fuera de la película de laminación) como zonas de reacción para ensayos colorimétricos (es decir, nitrito, proteína total, pH, y los ensayos de urobilinógeno) y visualización de resultados. El mecanismo subyacente de la prueba es el siguiente. El dispositivo analítico basado en el algodón se obtuvo con las líneas que penetran a mitad de camino a través del departamentoh de la tela de algodón para crear un canal de flujo que permite que el fluido de la muestra para llegar a las almohadillas de reactivos utilizados. El borde de absorción del dispositivo analítico se sumerge en la muestra diana, después de lo cual la solución es malo a lo largo del canal fluídico desde el extremo de absorción para las almohadillas de ensayo (Figura 1). Debido a que la fuerza de absorción de la almohadilla de ensayo es mayor que la de algodón, soluciones absorbidas por las almohadillas de ensayo queden contenidos en el interior del papel almohadilla de ensayo de manera que no hay reflujo de nuevo en el canal fluídico, y los resultados colorimétricos se convierten posteriormente fijos en el material de la almohadilla de prueba. Al final de la reacción, los resultados colorimétricos se registran a través de un escáner de escritorio, y se analizaron mediante software de análisis de imagen.

<table><tbody><tr><td>albúmina sérica bovina</td><td>Sigma-Aldrich, US</td><td>No. 9048468</td><td>&ge; 99%</td></tr><tr><td>nitrito&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich, Nº de EE. UU</td><td>. 7632000</td><td>&ge; 99%</td></tr><tr><td>urobilinógeno&nbsp;</td><td>Biografía de Santa Cruz, US</td><td>No. SC-296690</td><td></td></tr><tr><td>citrato</td><td>Sigma-Aldrich U.S</td><td>. No. 6132043</td><td>&ge; 99%</td></tr> <tr><td>azul de tetrabromofenol</td><td>Sigma-Aldrich U.S</td><td>. No. 4430255</td><td>&ge; 99%</td></tr><tr><td>sulfanilamida</td><td>Sigma-Aldrich U.S</td><td>. No. 63741</td><td>&ge; 99%</td></tr><tr><td>ácido cítrico&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich N.º de EE. UU</td><td>. 77929</td><td>&ge; 99.5%</td></tr><tr><td>&nbsp; N-(1-naftil) diclorhidrato de etilendiamina</td><td>Sigma-Aldrich Nº de</td> EE<td>. UU. 1465254</td><td>&ge; 98%</td></tr><tr><td>4-(dimetilamina)benzaldehído AlfaAesar</td><td>, Nº de EE. UU</td><td>. A11712</td><td>&ge; 98%</td></tr><tr><td>Rojo de metilo sal sódica</td><td>sigma, Nº de EE. UU</td><td>. 114502</td><td>&ge; 95%</td></tr><tr><td>Azul sigma de bromotyle</td><td>, n.º</td><td>114413</td>&ge de EE. UU<td>.; 95%</td></tr><tr><td>Shiseido Algodón limpiador</td><td>Shiseido, Japón</td><td>No. 79014</td><td></td></tr><tr><td>papel de cromatografía</td><td>GE Healthcare Whatman, Springfield Mill, Reino Unido</td><td>No. 30306132</td><td></td></tr><tr><td>película de laminación de</td><td>sustrato plástico</td>, MAS <td>A4</td><td>216 mm x 303 mm</td></tr><tr><td>escáner</td><td>microtek scanmaker</td><td>&nbsp; Cortador de papel i2400</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Life cortador de papel</td><td>No.306</td><td></td></tr><tr><td>laminador</td><td>AURORA&nbsp;</td><td></td><td></td>LM4231H</tr><tr><td>película laminadora</td><td>UNI LAMI&nbsp;</td><td>4A</td><td></td></tr></tbody></table>

la fabricación de dispositivos analíticos de algodón

Fabricating Cotton Analytical Devices

Un dispositivo analítico bajo costo robusta debe ser fácil de usar, rápida y asequible. Tales dispositivos también deben ser capaces de operar con muestras escasos y proporcionar información para el seguimiento del tratamiento. Aquí, demostramos el desarrollo de un análisis de orina basado en algodón (es decir, nitrito, proteína total y urobilinógeno ensayos) dispositivo analítico que emplea un formato basado en flujo lateral, y es barato, fácilmente fabricado, rápida, y se puede utilizar para llevar a cabo múltiples pruebas sin preocupaciones de contaminación cruzada. El algodón se compone de fibras de celulosa con propiedades de absorción naturales que pueden ser aprovechados para el análisis basado en el flujo. El simple pero elegante proceso de fabricación de nuestro dispositivo analítico basado en algodón se describe en este estudio. La disposición de la estructura de algodón y la prueba de la almohadilla se aprovecha de la hidrofobicidad y la fuerza de absorción de cada material. Debido a estas características físicas, los resultados colorimétricos pueden adherirse persistentemente a la pruebaalmohadilla. Este dispositivo permite a los médicos para recibir información clínica en el momento oportuno y muestra un gran potencial como herramienta para la intervención temprana.

Hemos demostrado con éxito el desarrollo de dispositivos analíticos basados ​​en algodón mediante el uso de algodón disponible en el mercado que se caracteriza por la limpieza de hidrófilo (parte interior) y propiedades hidrofóbicas (parte exterior) (figura 1A). La figura 3 muestra los resultados de la medición del ángulo de contacto. La interfaz hidrofóbica de algodón exterior era 127.35 ° ± 4,73 °. Desde una perspectiva fácil de usar, ensayos colorimét...

Para investigar enfoques de fabricación simples para múltiples necesidades de ensayo, creamos un sistema de canales de absorción de fluidos hecho de material de algodón. Este dispositivo se utilizó para establecer una plataforma de detección múltiple y resolver problemas de contaminación que comúnmente afectan a los dispositivos biomédicos basados en flujo lateral, para el análisis de orina clínico de nitrito, proteína total y urobilinógeno.

La fabricación de dispositivos analíticos de algodón

A robust, low-cost analytical device should be user-friendly, rapid, and affordable. Such devices should also be able to operate with scarce samples and ...

El objetivo general de este protocolo es fabricar un dispositivo analítico a partir de un material fácil de obtener, el algodón, para utilizarlo en sus análisis. La principal ventaja de esta técnica es que el dispositivo es fácil de fabricar. Es de muy bajo costo, puede utilizarse para múltiples ensayos y se ensambla rápidamente.El método analítico con el dispositivo es sensible a la detección de contaminación de la muestra y de la reacción. El procedimiento será demostrado por Shang-Chi Lin, quien tuvo un papel fundamental en la innovación del método. Comience por preparar los dispositivos de tira reactiva.Primero, determine la hidrofobicidad del algodón limpiador para las tiras reactivas utilizando una medición estándar del ángulo de contacto con gotas de agua desionizada. Luego, comience a fabricar el dispositivo analítico basado en algodón cortando el algodón limpiador en trozos de 5,5 centímetros por un centímetro. Use una cortadora de papel.El siguiente paso consiste en perforar conjuntos de tres orificios de 0,5 centímetros de diámetro en una hoja de película laminadora. Perfore los orificios en filas con un centímetro de separación entre ellos. Cada conjunto de orificios fo

Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingeniería

Este protocolo se describe cómo generar electrodos de fibra de carbono. Los electrodos se utilizan posteriormente para detectar la liberación de catecolaminas de las vesículas con amperometría de fibra de carbono.

Fabricación de electrodos amperométricos

Se presenta el protocolo detallado para la mediada por Agrobacterium inducida por el virus de silenciamiento génico (VIGS) de ensayo en el algodón. El virus del cascabel del tabaco (TRV) vectores derivados de VIGS fueron desplegados para inducir el silenciamiento de ARN de algodón GrCLA1, Alterados Cloroplastos un gen. El fenotipo albino causadas por el silenciamiento GrCLA1 ​​se observó en el estado de plántula dentro de 2 semanas después de la inoculación.

Mediada por Agrobacterium inducida por el virus Gene ensayo silenciamiento en algodón

Un enfoque eficaz para la preparación de nanofibras decoradas con grupos funcionales capaces de interactuar específicamente con proteínas se describe. El primer enfoque requiere la preparación de un polímero funcionalizado con el grupo funcional apropiado. El polímero funcional se fabrica en nanofibras por electrohilado. La eficacia de la unión de las nanofibras con una proteína se estudió por microscopía confocal.

Procedimiento para la fabricación de nanofibras Biofuncionales

Los metamateriales en frecuencias de terahercios ofrecen oportunidades únicas, pero son difíciles de fabricar de forma masiva. Nos adaptar el procedimiento de fabricación de fibras de polímero microestructurados ópticos para fabricar económicamente metamateriales potencialmente a escala industrial. Nos producir fibras que contienen polimetilmetacrilato ~ 10 micras de diámetro alambres de indio separadas por ~ 100 micras, que exhiben una respuesta plasmónica de terahercios.

Los metamateriales Fabricacion mediante el método de dibujo de fibra

Describimos un método para la fabricación de películas poliméricas de gran superficie (hasta 13 cm de diámetro) y ultrafinas (tan finas como 8 nm). En lugar de utilizar una capa intermedia de sacrificio para deslaminar la película de su sustrato, utilizamos un tratamiento de superficie autolimitado adecuado para áreas arbitrariamente grandes.

La fabricación de superficies de gran autoportante ultrafinos Polymer Films

En este trabajo, se presenta un protocolo para depositar selectivamente materiales orgánicos sobre los textiles, lo que permite la integración directa de dispositivos electrónicos orgánicos con llevar encima. Los dispositivos fabricados pueden integrarse plenamente en el sector textil, respetando su aspecto mecánico y permitiendo capacidades de detección.

Un método de fabricación simple y escalable para dispositivos electrónicos orgánicos sobre los Textiles

Se presenta un protocolo para el spinning de microfluidos y caracterización de la microestructura de monofilamento de fibroína de seda regenerado.

Seco de microfluidos-spinning y caracterización de las fibras regeneradas fibroína de seda

El objetivo principal del estudio es desarrollar un protocolo para preparar a especímenes consistentes para la prueba mecánica exacta de fibras de aramida de copolímero de alta resistencia, quitando una capa y desenmarañar los hilos de la fibra individual sin introducir importantes degradación química o física.

Desenredar las fibras de aramida de copolímero de alta resistencia para permitir la determinación de sus propiedades mecánicas

Se presenta un protocolo para la fabricación de un dispositivo para secar simultáneamente múltiples células ópticas.

Fabricación de una célula óptica para las células de análisis espectroscópico

Este protocolo describe un proceso sencillo que utiliza convenientes micromoldes de plástico para operaciones simples de microestampado para fabricar microcanales en papel de celulosa nanofibrilado, logrando un ancho mínimo de 200 μm.

Microestampado: un proceso conveniente para la fabricación de microcanales en microfluídica basada en papel de nanocelulosa

Aprende a fabricar dispositivos analíticos de algodón para diagnóstico clínico. Este método de bajo costo permite realizar múltiples ensayos de orina reduciendo la contaminación y mejorando la fiabilidad de los resultados en análisis de nitritos, proteínas y urobilinógeno.

La fabricación de dispositivos analíticos de algodón

Explorar más videos