Name: Síntesis de nanopartículas de oro liposomas Integrado fotosensible y la medición de su microburbujas cavitación al pulso láser de excitación (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: Aprende la síntesis de liposomas fotosensibles con nanopartículas de oro y la medición de cavitación por microburbujas mediante láser pulsado. Este método permite liberación controlada de fármacos para terapia de tejidos superficiales.

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Este trabajo fue parcialmente apoyado por los Fondos de Investigación Académica de nivel 1 por Singapur Ministerio de Educación (RG 64/12 al CX) y el Instituto NTU-Noroeste de Nanomedicina.

1. Preparación <ol><li> Limpias redondo de 100 ml matraces de fondo utilizando agua regia (1 parte de ácido nítrico concentrado (HNO 3) y 3 partes de ácido clorhídrico concentrado (HCl)) y lavar los frascos con agua DI. Autoclave los frascos y se secan en un horno de aire caliente a 100 ° C durante 15 minutos. Envolver y almacenar los frascos estériles hasta su uso. </li><li> Esterilizar el conjunto de mini-extrusora de mano utilizando etanol al 70%. </li><li> Encienda el evaporador rotatorio y ajustar la temperatura del baño de agua caliente y la torre de refrigeración a 37 ° C y 4 ° C, respectivamente. </li><li> Preparar 60 mM de calceína solución madre disolviendo 374 mg de calceína en 10 ml de 0,1 mM solución salina tamponada con fosfato (PBS) (pH 7,4). Ajustar el pH a 7,4 utilizando solución 1 M de hidróxido sódico (NaOH). </li></ol> 2. Síntesis de liposomas <ol><li> Retire los lípidos (1,2-sn Dipalmitoyl- glicero-3-fosfocolina (DPPC), 1-palmitoil-2-hidroxi-sn-glicero-3 phosphocholínea (MPPC) y 1, 2-distearoyl- sn -glicero-3-phosphoethanol-amina N - [carboxi (polietilenglicol) -2.000] (sal de amonio) (DSPE-PEG2000)) del congelador (-20 ° C) y descongelar a temperatura ambiente. </li><li> Pesar 15,9 mg de DPPC, 1,3 mg MPPC, y 2,8 mg de DSPE-PEG2000. Disolverlos juntos en 2 ml de cloroformo. </li><li> Transferir la solución de cloroformo al matraz de fondo redondo estériles y se evapora el disolvente usando un evaporador rotatorio a presión reducida, para formar una capa fina de lípido seco. </li><li> Hidratar la capa de lípidos a 45 ° C con una solución acuosa 2 ml de 30 min que contiene 1,95 ml 60 mM de calceína preparado en la etapa 1.4 y 50 l de Au NPs (3,36 × 10 16 partículas / ml). </li><li> Pre-calentar el bloque de calentamiento a 45 ° C. Colocar un filtro de membrana de policarbonato de 200 nm entre los soportes de filtro y montar el conjunto de mini-extrusora. Compruebe la posibilidad de fugas de agua DI. </li><li> Llenar una de las jeringas con 1 ml de solución de liposomas de la etapa 2.4 y Extrude la muestra por paso de la solución a la jeringa en el otro extremo de la montar mini-extrusora. Repetir 11 veces. </li><li> Ejecutar los liposomas sintetizados a través de una columna de desalación PD-10 para eliminar las gratuito Au NPs, lípidos y calceína utilizando PBS como eluyente según el protocolo del fabricante. </li><li> Almacenar las muestras en tubos estériles a 4 ° C y el uso en 2 días. </li></ol> 3. calceína lanzamiento de liposomas con calefacción <ol><li> Calcular la moralidad de los lípidos de la solución madre mediante la suma de los molaridad de DPPC, MPPC, y DSPE-PEG2000 en el paso 2.2. Se diluye la solución de liposomas de valores para la concentración de lípidos 5 mM utilizando tampón PBS 0,1 mM (pH 7,4). Transferir las muestras a un tubo de centrífuga (2 ml). </li><li> Se coloca el tubo en un baño de agua caliente, y aumentar gradualmente la temperatura de 25 a 70 ° C. Aumentar la temperatura a una velocidad de 1 ° C / min aquí. </li><li> Recoger alícuotas (10 l) a diferentes puntos de temperatura (27, 32, 37, 39, 41,43, 45, 52, 57, 62, 67 y 70 ° C). </li><li> Añadir 10 l de 2% de Triton X-100 alícuota de 2 ml de la solución liposomal de digerir los liposomas durante 10 min a RT y para conseguir la liberación completa de calceína. </li><li> Transferir 200 l de la solución liposomal a cada pocillo en la microplaca de 96 pocillos y se mide la intensidad de fluorescencia de las muestras recogidas utilizando un lector de microplacas de fluorescencia. Las longitudes de onda de excitación y emisión de calceína son 480 y 515 nm, respectivamente. </li><li> Tomando la intensidad de fluorescencia de las muestras tratadas Triton X-100 como 100% de liberación, calcular el porcentaje de la calceína liberada en cada punto de tiempo, utilizando la fórmula: <img alt="Fórmula 1" src="/files/ftp_upload/53619/53619formula1.jpg" /> Ft es la intensidad de fluorescencia de la solución en un punto de tiempo dado. F I y F x son las intensidades de fluorescencia inicial y final normalizadas de la solución, respectivamente. </li></ol> 4. Re calceínaarrendamiento de liposomas con láser pulsado <ol><li> Transferir la solución de liposoma 100 l a una cubeta de cuarzo y colocarlo en un soporte de cubetas. Utilice un láser pulsado de Nd: YAG con una duración de pulso de 6 ns a 532 nm de longitud de onda como fuente de luz. Utilice los siguientes parámetros láser - Frecuencia de repetición: 1 Hz; Densidad de energía del láser: 1 mJ / cm 2; diámetro del haz: 0,5 mm. </li><li> Guía del rayo láser colimado a través de la cubeta de tal manera que la luz pasa a través de la solución de liposomas y recoger alícuotas después de varios impulsos. </li><li> Añadir 10 l de 2% de Triton X-100 alícuota de 2 ml de la solución liposomal de digerir los liposomas durante 10 min a RT y para conseguir la liberación completa de calceína. </li><li> Teniendo en cuenta calceína es sensible a la luz y puede ser blanqueada durante el experimento láser, pre-medir el efecto de blanqueo de láser de impulsos en solución de calceína para normalizar los datos de liberación de liposomas. <ol><li> En concreto, exponer solución de calceína (60 mM) para wi láser pulsadoTH frecuencia de 1 Hz para un número variable de impulsos (0, 25, 50 y 100). Medir la intensidad de fluorescencia de calceína con excitación y emisión de longitudes de onda 480 y 515 nm, respectivamente, antes y después de la exposición de láser. </li><li> Calcular la cantidad de blanqueo (intensidad de la fluorescencia de calceína antes de la intensidad del láser de exposición / fluorescencia de calceína después de que el número de impulsos específico). Usar este factor para normalizar los valores obtenidos de muestras de liposomas multiplicando la intensidad de fluorescencia de los liposomas con el factor. </li></ol></li><li> Medir la intensidad de fluorescencia de la muestra recogida usando un lector de microplacas de fluorescencia a longitudes de onda de excitación y emisión a 480 y 515 nm, respectivamente. </li><li> Tomando la intensidad de fluorescencia de las muestras tratadas Triton X-100 como 100% de liberación, calcular el porcentaje de la calceína liberada en cada número de impulsos, mediante la fórmula: <img alt="Fórmula 1" src="/files/ftp_upload/53619/53619formula1.jpg" /> I y F x son las intensidades de fluorescencia inicial y final normalizadas de la solución, respectivamente. </li></ol> 5. Medición de los impulsos de presión <ol><li> Coloque 100 l de la muestra en un portaobjetos microscópico y ajustar el enfoque del láser sobre la muestra. </li><li> Sumergir un hidrófono aguja (diámetro de 1 mm y 450 sensibilidad nV / Pa) en la solución. Precaución: El hidrófono no debe estar iluminada por la luz láser para evitar el daño. </li><li> Irradiar la muestra con el láser de impulsos con un número variable de impulsos (0-100) y la energía de impulsos (20 a 160 mu J / pulso). </li><li> Grabar las señales de presión utilizando un osciloscopio digital. </li></ol>

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</ol>

No hay conflicto de intereses se declaran.

hidratación de película delgada es el método convencional para la preparación de liposomas. disolventes orgánicos (cloroformo en este caso) se utilizó por primera vez para disolver los lípidos y luego se retiraron en un evaporador rotatorio a 37 ° C para generar una fina película lipídica en el matraz. Esta película de lípido se hidrató con la solución acuosa que contiene 60 mM de calceína y 5 nm Au NPs. Durante el proceso de hidratación, la temperatura se mantuvo alrededor de 50 ° C y el matraz se agita constantemente ...

La posibilidad de desencadenar la liberación del fármaco mediante estímulos externos es una forma atractiva para entregar los medicamentos en las modas espacialidad, temporalidad y dosificación controlada con especificidad maximizada y efectos adversos mínimos. Entre una amplia gama de sistemas exógenos estímulos que responden (la luz, el campo magnético, ultrasonido, radiación de microondas), plataformas de luz provocada son atractivos, debido a su carácter no invasivo, la sencillez y la adaptabilidad en las clínicas. 1 Una amplia investigación en la última década ha proporcionado una variedad de tecnologías de plataforma, como el oro responsables del infrarrojo cercano luz (Au) nano-cajas recubiertas con polímeros inteligentes, 2, nanopartículas poliméricas foto-lábil (NPS) conjugados con fármacos, 3 y nanovesículas porphysome autoensambladas. 4 Sin embargo , estas tecnologías están aún en las etapas preclínicas de desarrollo, y requieren una comprensión clara y optimización de los parámetros que intervienen en el proceso de iniciar y controdar la liberación del fármaco. Uno de los métodos más simples y de fácil acceso para la preparación de un sistema de este tipo es la integración de Au NPs con liposomas térmicamente sensibles 5,6, ambos de los cuales están ampliamente disponibles en el mercado y han sido ampliamente investigados en ensayos preclínicos y clínicos aún. A pesar de la limitación de la activación de tejido profundo de Au NPs en su longitud de onda plasmónica, en comparación con Au nanoestructuras del infrarrojo cercano activado (por ejemplo, nano-cajas), este sistema todavía una gran promesa cuando se utiliza en animales pequeños o para la administración tópica en los seres humanos. 7 Hay algunos esfuerzos tempranos en la combinación de Au PN con liposomas para la liberación luz disparado. 8-11 Si bien la mayoría de ellos se centran en la novedad de los materiales, los problemas de accesibilidad y escalabilidad deben ser abordados. Por otra parte, los informes sobre los mecanismos de liberación que utilizan estos nanoportadores son todavía limitados. En este documento, la fabricación de foto-sensibleliposomas, cargados simultáneamente con las drogas y el hidrófilos Au NPs se ha descrito. Calceína se utiliza como un compuesto modelo para evaluar la eficacia de encapsulación y el perfil de liberación del sistema. Además, en este sistema, la luz absorbida por Au NPs disipa al microambiente que rodea en forma de calor, lo que resulta en un aumento de la temperatura local. Microburbujas de aire se generan durante el calentamiento por láser y causan la rotura mecánica de liposomas (Figura 1). El mecanismo de la cavitación de las microburbujas se confirmó por mediciones de hidrófonos.

<table><tbody><tr><td>1,2-Dipalmitoil-sn-glicero-3-fosfocolina (DPPC)</td><td>Avanti Polar Lipids (Alabama, EE. UU.)</td><td>850355P</td><td>Polvo, almacenar a -20 & grados; C</td></tr><tr><td>1-palmitoil-2-hidroxi-sn-glicero-3-fosfocolina (MPPC)</td><td>Avanti Polar Lipids (Alabama, EE. UU.)</td><td>855675P</td><td>Polvo, almacenar a -20 & grados; C</td></tr><tr><td>1,2-distearoyl-sn-glicero-3-fosfoetanol-amina-N-[metoxi(polietilenglicol)-2000] (sal de amonio) (DSPE-PEG2000)</td><td>Avanti Polar Lipids (Alabama, EE. UU.)</td> <td>880120P</td><td>Polvo, almacenar a -20 & grados; </td></tr><tr><td>C Nanopartículas de Oro</td><td>Sigma Aldrich</td><td>752568-100mL</td><td>5&nbsp; partículas de nm, estabilizadas a 0,1&nbsp; mM PBS</td></tr><tr><td>Calcein</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C0875-10g</td><td>60&nbsp; mM, pH 7,4 (ajustado con NaOH)</td></tr><tr><td>solución salina tamponada con fosfato (PBS)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5493</td><td>0,1 mM, pH 7,4</td></tr><tr><td>Agua bidestilada</td><td>Sistema</td><td></td><td></td>de purificación de agua Millipore Milli-DI</tr><tr><td>Triton X100&nbsp; &nbsp;</td><td>Sigma, Ciencias de la Vida</td><td>X-100</td><td>Para interrumpir los liposomas para calcular la encapsulación total</td></tr><tr><td>Rotavapor&nbsp; &nbsp;</td><td>Buchi (Suiza)</td><td>R 210</td><td>Utilizado para la preparación de lipososmo</td></tr><tr><td>Baño calefactor</td><td>Buchi (Suiza)</td><td>B 491</td><td>Utilizado para la preparación de lipososmo</td></tr><tr><td>Controlador de vacío&nbsp; &nbsp;</td><td>Buchi (Suiza)</td><td>V-850</td><td>Utilizado para la preparación de lipososmo</td></tr><tr><td>Bomba de vacío</td><td>Buchi (Suiza)</td><td>V-700</td><td>Utilizado para la preparación de lipososmo</td></tr><tr><td>Baño de recirculación con controlador de temperatura</td><td>Polyscience</td><td></td><td>Utilizado para la preparación de lipososmo</td></tr><tr><td>Conjunto de miniextrusora con bloque calefactor&nbsp;</td><td>Avanti Polar Lipids (Alabama, EE. UU.)</td><td>610000</td><td>Utilizado para la extrusión de liposomas</td></tr><tr><td>Jeringas, 1,000 &#956; l</td><td>Avanti Polar Lipids (Alabama, EE. UU.)</td> <td>610017</td><td>utilizado para la extrusión de liposomas Membrana de</td></tr><tr><td>filtro de policarbonato, 200 &nbsp; nm</td><td>Whatmann</td><td>800281</td><td>Se utiliza para la extrusión de liposomas</td></tr><tr><td>Soporte de filtro</td><td>Avanti Polar Lipids (Alabama, EE. UU.)</td><td>610014</td><td>Se utiliza para la extrusión de liposomas</td></tr><tr><td>PD 10 Desalinización de culomas, medio Sephadex G-25</td><td>GE Healthcare, Ciencias de la vida</td><td>17-0851-01</td><td>Se utiliza para purificar los liposomas</td></tr><tr><td>Centrífuga&nbsp; &nbsp;</td><td>Centrífugas de laboratorio Sigma</td><td>3K30</td><td>Se utilizan para concentrar la solución liposomal&nbsp;</td></tr><tr><td>Rotor</td><td>Sigma</td><td>19777-H</td><td>Se utiliza para concentrar la solución liposomal&nbsp;</td></tr><tr><td>Zetasizer&nbsp; &nbsp;</td><td>Nano ZS Malvern</td><td></td><td>Se utiliza para la determinación del tamaño del liposoma y el zetapotencial</td></tr><tr><td>Espectrofotómetro UV-Visible</td><td>Shimadzu</td><td>UV-2450</td><td>Se utiliza para medir la absorbancia de las muestras</td></tr><tr><td>Espectrofluorómetro fluorescente&nbsp; &nbsp;</td><td>Molecular Devices</td><td>SpectraMax M5</td><td>Se utiliza para medir la emisión de fluorescencia de las muestras</td></tr><tr><td>Nd:YAG Laser</td><td>NewWave Research</td><td></td><td>532 nm; Potencia máxima: 17&nbsp; Mj; Ancho: 406&nbsp; NSEC; Se utiliza para la irradiación de muestras</td></tr><tr><td>Hidrófono</td><td>HNR ONDA</td><td>HNR-1000</td> de <td>1 mm de diámetro y sensibilidad de 450 nV / Pa, rango de frecuencia de trabajo adecuado: 0.25-10&nbsp; MHz; Calibración: 50&nbsp; mV/Bar; Se utiliza para medir las señales acústicas</td></tr><tr><td>Osciloscopio digital</td><td>LECORY - Wave Runner 64Xi-A</td><td></td><td>Frecuencia: 600 MHz; Frecuencia de muestreo máxima: 10 &nbsp; Gs/seg (a dos canales); Se utiliza para registrar las señales acústicas medidas</td></tr></tbody></table>

síntesis de nanopartículas de oro liposomas integrado fotosensible y la medición de su microburbujas cavitación al pulso láser de excitación

Synthesis of Gold Nanoparticle Integrated Photo-responsive Liposomes and Measurement of Their Microbubble Cavitation upon Pulse Laser Excitation

Las nanopartículas fotosensibles (NPs) han recibido considerable atención debido a su potencial para proporcionar control espacial, temporal y de dosis sobre la liberación del fármaco. Sin embargo, la mayoría de las tecnologías pertinentes aún están en proceso de desarrollo y las clínicas no pueden obtenerlas. Aquí, describimos una fabricación fácil de estas NPs foto-sensibles con NPs de oro disponibles comercialmente y liposomas termo-sensibles. La calceína se utiliza como fármaco modelo para evaluar la eficiencia de la encapsulación y el perfil cinético de liberación tras la estimulación de calor/luz. Finalmente, demostramos que esta liberación fotoactivada se debe a la ruptura de la membrana causada por la cavitación de microburbujas, que se puede medir con hidrófono.

Los liposomas se prepararon usando una técnica de hidratación de película delgada convencional con DPPC, MPPC y DSPE-PEG2000 en una relación molar de 86: 10: 4 o 7,95: 0,65:. 1,39 mg / ml 12 El tamaño de Au NPs es crítica para determinar la luz para calentar la eficiencia de conversión durante el siguiente experimento de excitación láser. Más pequeño es el tamaño de Au PN, mayor es la eficiencia de transducción. 13 Por lo tanto 5 nm Au PN, las muestras más pequeñas ...

Este protocolo describe un método de preparación sencilla para nanopartículas de oro liposomas fotosensible integrado con los materiales disponibles en el mercado. También muestra cómo medir el proceso de cavitación de las microburbujas de los liposomas sintetizados en el tratamiento de láser pulsado.

Síntesis de nanopartículas de oro liposomas Integrado fotosensible y la medición de su microburbujas cavitación al pulso láser de excitación

Photo-responsive nanoparticles (NPs) have received considerable attention because of their potential in providing spatial, temporal, and dosage control ...

El objetivo general de este protocolo es demostrar la síntesis de liposomas sensibles a la luz y revelar el mecanismo de liberación controlada por luz de fármacos a partir de estos liposomas. Este método ayuda a responder preguntas clave sobre la respuesta figurativa de los liposomas a la luz en la administración de fármacos, donde los desafíos principales son la síntesis de los liposomas y la mejora de la magnitud de liberación controlada. La principal ventaja de esta técnica es la síntesis celular de liposomas sensibles a la luz utilizando materiales disponibles comercialmente.La implicación de esta tecnología se extiende hacia la terapia de tejidos superficiales. El uso de procedimientos mínimamente invasivos, así como una parte del dispositivo láser, hará que la plataforma tecnológica sea más accesible para los pacientes. Además de ofrecer información sobre los cuidados óptimos y la administración precisa de fármacos, nuestro sistema también puede aplicarse a otros sistemas, como el sistema anión-anión-rosa y el sistema mucoso, mediante láseres guiados.Primero limpie un matraz redondo de 100 mililitros utilizando agua regia. Después de lavarlo con agua desionizada y autoclavarlo, seque el matraz en una estufa de aire caliente a 100 grados Celsius durante 15 minutos. Luego envuélvalo y almacénelo estéril hasta su uso.Esterilice un conjunto de extrusora manual con etanol al 70 %. A continuación, encienda el evaporador rotatorio y ajuste la temperatura del baño de agua caliente y de la torre de enfriamiento a 37 y 4 grados Celsius, respectivamente. Prepare una solución stock de calcio de 60 milimolar disolviendo 374 miligramos de calceína y 10 mililitros de solución salina tamponada con fosfato 0,1 milimolar o PBS.Ajuste el pH a 7,4 utilizando una solución unimolar de hidróxido de sodio. Retire los lípidos del congelador y déjelos descongelar a temperatura ambiente. Una vez que los lípidos se hayan descongelado, disuelva 15,9 miligramos de DPPC, 1,3 miligramos de MPPC y 2,8 miligramos de DSPE-PEG2000 en dos mililitros de cloroformo.Después de transferir la solución de cloroformo a un matraz estéril de fondo redondo, evapore el disolvente utilizando un evaporador rotatorio bajo presión reducida para formar una capa delgada y seca de lípidos. A continuación, hidrate la capa lipídica a 45 grados Celsius con dos mililitros de solución acuosa que contenga 1,95 mililitros de la solución de calcio 60 milimolar previamente preparada y 50 microlitros de nanopartículas de oro durante 30 minutos. Precaliente un bloque calefactor a 45 grados Celsius.Coloque un filtro de membrana de policarbonato de 200 nanómetros entre los soportes de filtro y arme el conjunto del extrusor miniatura. Luego, verifique posibles fugas con agua desionizada. Llene una de las jeringas con un mililitro de la solución de liposomas previamente preparada y extruya la muestra haciendo pasar la solución a través de la jeringa situada en el otro extremo del extrusor miniatura ensamblado.Después de repetir el paso anterior 11 veces, pase los liposomas sintetizados a través de una columna de desalinización PD-10 para eliminar las nanopartículas de oro libres, los lípidos y la calceína, utilizando PBS como eluyente según el protocolo del fabricante. Una vez finalizado, almacene las muestras en tubos estériles a cuatro grados Celsius. En este punto, calcule la molaridad de lípidos de la solución stock sumando las molaridades de DPPC, MPPC y DSPE-PEG2000.Diluya la solución stock de liposomas hasta una concentración de lípidos de 5 milimolares utilizando PBS 0,1 milimolar, luego transfiera las muestras a tubos centrífugos de 2 mililitros. A continuación, coloque los tubos en un baño de agua caliente y aumente la temperatura gradualmente desde 25 hasta 70 grados Celsius. Recoja alícuotas de 10 microlitros en diferentes puntos de temperatura.Añada 10 microlitros de Triton X-100 al 2 % a una alícuota de 2 mililitros de solución liposomal para digerir los liposomas durante 10 minutos a temperatura ambiente y lograr la liberación completa de calceína. A continuación, transfiera 200 microlitros de la solución liposomal a cada pocillo de una microplaca de 96 pocillos. Mida la intensidad de fluorescencia de las muestras recogidas utilizando un lector de microplacas con fluorescencia.Tomando la intensidad de fluorescencia de las muestras tratadas con Triton X-100 como liberación del 100 por ciento, calcule el porcentaje de calceína liberada en cada punto de tiempo utilizando la siguiente fórmula: Transfiera 100 microlitros de la solución de liposomas a una cubeta de cuarzo y coloque la cubeta en un soporte para cubetas. Dirija el haz láser colimado a través de la cubeta de manera que la luz atraviese la solución de liposomas. Luego, recoja alícuotas tras varios pulsos.A continuación, agregue 10 microlitros de Triton X-100 al 2 % a una alícuota de 2 mililitros de la solución liposomal para digerir los liposomas durante 10 minutos a temperatura ambiente y lograr la liberación completa de calceína. Para medir previamente el efecto de blanqueo del láser sobre la solución de calceína, exponga la solución a un láser con una frecuencia de 1 hercio durante un número variable de pulsos. Mida la intensidad de fluorescencia de la calceína con longitudes de onda de excitación y emisión de 480 y 515 nanómetros, respectivamente, antes y después de la exposición al láser.Después de calcular las cantidades de blanqueamiento, utilice este factor para normalizar los valores obtenidos de las muestras de liposomas multiplicando la intensidad de fluorescencia de los liposomas por el factor. A continuación, mida la intensidad de fluorescencia de la muestra recolectada utilizando un lector de microplacas con fluorescencia a longitudes de onda de excitación y emisión de 480 y 515 nanómetros, respectivamente. Tomando la intensidad de fluorescencia de las muestras tratadas con Triton X-100 como liberación del 100 por ciento, calcule el porcentaje de calceína liberada en cada número de pulso.Coloque 100 microlitros de la muestra sobre un portaobjetos de microscopio y luego enfoque el láser sobre la muestra. El láser se guía manualmente a través de la muestra, por lo tanto, es importante asegurarse de que el punto focal del haz esté bien dentro de la muestra y no sobre el portaobjetos para evitar experimentos posteriores. A continuación, sumerja un hidrófono de aguja en la solución.La punta del hidrófono se introduce en la muestra a una distancia suficiente del punto focal del láser. Esto se hace para prevenir cualquier daño inducido por el láser en el hidrófono. Irradie la muestra con el láser de pulsos con diferentes números de pulsos y energía de pulso.Finalmente, registre las señales de presión utilizando un osciloscopio digital. No se observa una diferencia significativa en el porcentaje de liberación para los liposomas con y sin nanopartículas de oro. Los liposomas estuvieron casi intactos a la temperatura fisiológica, con un porcentaje de fuga inferior al 10 por ciento, con o sin nanopartículas de oro.Cuando la temperatura se incrementó a 42 grados Celsius, entre el 60 y el 80 por ciento del Calceína encapsulado se liberó de los liposomas en dos minutos. Los liposomas con nanopartículas de oro liberaron la Calceína encapsulada tras la excitación, en la cual la cantidad de Calceína liberada aumentó conforme aumentó el número de pulsos. Las señales acústicas registradas para las nanopartículas de oro, los liposomas con nanopartículas de oro y los liposomas sin nanopartículas de oro se muestran aquí: El impulso de presión contiene fases positiva y negativa y sugiere que se forman y rompen microburbujas en la solución.Como era de esperar, la amplitud de la señal acústica aumentó gradualmente con el incremento de la energía láser y debería deberse al aumento de la intensidad de la oscilación de las partículas, atribuible a la subsiguiente expansión y contracción termoelástica. Una vez dominada la fabricación, los liposomas pueden prepararse en un plazo de 3 horas, siempre que todo el material de vidrio y los equipos estén preparados con antelación. Al intentar la liberación controlada por láser, es importante recordar que el haz láser debe enfocarse completamente sobre la muestra para evitar la pérdida de energía láser.Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros experimentos, como la liberación controlada mediante láser in vitro e in vivo, para responder preguntas adicionales, como cómo las condiciones fisiológicas afectarán la liberación controlada mediante láser. Tras este desarrollo, esta técnica será útil en el campo de la reactividad para explorar, localizar y controlar la liberación en piel, ojos y membranas mucosas.

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Síntesis de nanopartículas de oro liposomas Integrado fotosensible y la medición de su microburbujas cavitación al pulso láser de excitación (Video) | JoVE Journal

Síntesis de nanopartículas de oro liposomas Integrado fotosensible y la medición de su microburbujas cavitación al pulso láser de excitación

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