Name: Poligráfico Procedimiento de Grabación en medición del sueño en ratones (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-25T19:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 45 s
Description: Aprenda el procedimiento de grabación poligráfica para evaluar estados de vigilia en ratones mediante EEG y EMG. Este método permite correlacionar comportamiento y fisiología con actividad neuronal cortical.

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Agradecemos al Dr. Larry D. Frye por su ayuda editorial con este manuscrito. Este trabajo fue apoyado por la Sociedad Japonesa para la Promoción de la Ciencia Grants-in-Aid for Scientific Research 24300129 (a M.L.), 25890005 (a Y.O.) y 26640025 (a Y.T.), la Organización Nacional de Investigación Agrícola y Alimentaria (a Y.U.), la Iniciativa de Centros de Investigación Internacional (WPI) del Ministerio de Educación, Cultura, Deportes, Ciencia y Tecnología (a Y.O., Y.T., Y.U. y M.L.) y el Consejo de Nutrición de Nestlé, Japón (a M.L.).

Declaración de Ética: Procedimientos que involucran sujetos animales han sido aprobados por el Comité Experimental Animal Institucional de la Universidad de Tsukuba. 1. Preparación de electrodos y cables de EEG / EMG Grabaciones <ol><li> Preparar EEG / EMG electrodo de registro de acuerdo con el siguiente procedimiento. Nota: El electrodo es desechable y puede ser utilizado sólo para 1 animal. Planee cuidadosamente la configuración del cableado para todos los conectores. Coloque marcas en los conectores para la orientación correcta. <ol><li> Soldar cada pin de una cabecera de 4 pines a un cable de acero inoxidable de 2 cm. En resumen, sostenga un extremo del cable a la clavija, coloque un cautín caliente sobre la articulación de alambre pines y derretir un poco de soldadura para asegurar que sólo lo suficiente de soldadura se ejecuta sin problemas en la articulación. Tenga cuidado de no aplicar demasiado calor para el pasador; de lo contrario, el plástico alrededor de las clavijas se derretirá. </li><li> Suelde el extremo libre de cada uno de 2 cables conectados a la cabecera de pines a la cabezade un tornillo de acero inoxidable 1,0 mm de diámetro. En resumen, mantenga el extremo libre del alambre con el hilo por debajo de la cabeza del tornillo, coloque un cautín caliente sobre la articulación de alambre-tornillo, y derretir un poco de soldadura para asegurar que sólo lo suficiente de soldadura se ejecuta sin problemas en la articulación. Los 2 cables con tornillos sirven como electrodos de registro EEG, mientras que los 2 cables sin tornillos sirven como electrodos de registro EMG. </li><li> Use las tijeras para despojarse de 1 mm del aislamiento en el extremo de los electrodos EMG para aumentar la calidad de la señal EMG. </li><li> Cubra completamente todas las patillas soldadas con adhesivo epoxi mediante el uso de un palo o un diente de selección fina de madera para reducir el ruido eléctrico durante las grabaciones de EEG / EMG. </li></ol></li><li> Preparar un cable para conectar el electrodo con el anillo de deslizamiento tal como se describe a continuación. Este cable puede ser reutilizado. <ol><li> Soldar cada pin de un conector FFC / FPC 4 pines con un alambre de un cable plano de 30 cm. En resumen, mantenga el extremo pelado del cable a la clavija, coloque un cautín calienteen la articulación de alambre pines y derretir un poco de soldadura para asegurar que sólo lo suficiente de soldadura se ejecuta sin problemas en la articulación. Nota: Elija la longitud del cable plano que es apropiado para la altura de la jaula animal de experimentación utilizado para las grabaciones de EEG / EMG. </li><li> Soldadura pines hembra a un extremo de los cables en el otro extremo del cable plano. En resumen, mantenga un enchufe engarzado al extremo libre pelado del cable, coloque un cautín caliente sobre la articulación de alambre-socket, y derretir un poco de soldadura para asegurar que sólo lo suficiente de soldadura se ejecuta sin problemas en la articulación. </li><li> Inserte cada engarzado toma en una posición 4 engarzado vivienda. </li><li> Completamente cubrir el engarzado zócalos con adhesivo epoxi mediante el uso de un palo o un diente de selección fina de madera. </li></ol></li></ol> 2. La implantación de electrodos en la cabeza del ratón (Duración: Aprox. 20 min) <ol><li> Esterilizar todos los instrumentos quirúrgicos en un esterilizador de cuentas en caliente antes de la cirugía. Anestesiar un ratón macho (10 - 20 semanas de edad, 20 - 30 g)con una inyección intraperitoneal de pentobarbital (50 mg / kg). Después de comprobar que el ratón está profundamente anestesiado apretando un dedo del pie, afeitar el pelo en la cabeza y el cuello con una maquinilla. </li><li> Mueve el ratón para el marco estereotáxico, y fijar la cabeza entre los 2 bares del oído. Aplique vaselina en los ojos para evitar la sequedad. Limpiar la piel afeitada con alcohol y cortar a lo largo de la línea media con un escalpelo para exponer el cráneo. Clip de la piel para mantener el área quirúrgica abierta. </li><li> Mediante el uso de un cortador de carburo (tamaño de perforación: 0,8 mm de diámetro), taladro 2 agujeros en el cráneo, uno sobre el área cortical frontal (1 mm anterior al bregma, 1,5 mm lateral a la línea media) y la otra sobre la zona parietal ( 1 mm anterior a lambda, 1,5 mm lateral a la línea media) del hemisferio derecho, de acuerdo a las coordenadas estereotáxicas de Paxinos y Franklin. 23 </li><li> Mediante el uso de un destornillador de joyero, tornillos de grabación de EEG de acero inoxidable lugar en los agujeros y hacen 2 - 2.5 vueltas para cada screw para el posicionamiento epidural sobre la corteza. Nota: No inserte los tornillos demasiado profundas para evitar daños en el tejido cerebral. Compruebe que los tornillos estén bien fijos en el cráneo. Esto es importante contar con señales de EEG estables durante un largo período de varias grabaciones (por lo general, más de 1 mes). Tornillos contoneantes producen artefactos del EEG y pueden salir antes de que finalice el programa experimental. </li><li> Fije el conjunto de electrodos (véase la Sección 1.1, los pines se volvieron hacia arriba) con pegamento instantáneo en el cráneo y cubren con cemento dental. Hacer bilateralmente pequeños agujeros con unas pinzas en los trapecios (cuello) músculos e inserte los cables de acero inoxidable que sirven como EMG electrodos en los orificios. Suturar la piel con un hilo de seda (0,1 mm de diámetro) para evitar la exposición del músculo. </li><li> Retire el ratón del marco estereotáxico. Administrar ampicilina (100 mg / kg) y meloxicam (1 mg / kg) por vía intraperitoneal al ratón para evitar la infección bacteriana y para reducir el dolor post-quirúrgico, respectivamente. Keep el ratón sobre una almohadilla de calor y su seguimiento hasta que se haya recuperado el conocimiento suficiente para mantener decúbito esternal. Casa el ratón de forma individual durante la recuperación para evitar la extracción de electrodos por otros animales, y administrar meloxicam (1 mg / kg) por vía intraperitoneal en el primer día después de la cirugía. </li></ol> 3. Registro y adquisición de EEG / EMG datos <ol><li> Después de un período de recuperación de 1-semana, casa de cada ratón individualmente en una jaula experimental colocado en una cámara de registro a prueba de sonido. Mantener una temperatura ambiente de 23 ± 1 ° C y automáticamente el control de ciclos de 12 horas de luz / 12 horas de oscuridad (luces encendidas a las 08:00, la intensidad de iluminación ~ 100 lux). </li><li> Conecte el conjunto de electrodos EEG / EMG en la cabeza del ratón a un cable de grabación. Asegúrese de que el cable de grabación está conectado a un anillo deslizante (que está diseñado de tal manera que los movimientos del ratón no están restringidos por la torsión del cable) y un amplificador de señal EEG / EMG. Filtrar EEG / señales EMG (EEG, 0,5-64 Hz; EMG, 16-64 Hz), digitalizar a una velocidad de muestreo de 128 Hz por un convertidor de analógico a digital (A / D) y, finalmente, grabar en un equipo que ejecuta el software de grabación de EEG / EMG (4ª entrada &#39;Materiales&#39; Mesa, desde la parte inferior). </li><li> Habituar el ratón durante 2 - 3 días en la cámara de grabación. Si el registro de EEG / EMG incluye administraciones intraperitoneales de drogas, manejar suavemente el ratón en cada día de habituación en el momento de la administración del fármaco. </li><li> Posteriormente, iniciar el software EEG / EMG de grabación (&#39;Materiales&#39; Tabla, 4ª entrada de abajo). <ol><li> Seleccione la pestaña &quot;Archivo de datos de la información&quot; y haga clic en la casilla junto al nombre del archivo. Introduzca un nombre de archivo y haga clic en &quot;Guardar&quot;. </li><li> Seleccione la pestaña &quot;condición de grabación&quot; y seleccionar todos los canales EEG / EMG que se pueden grabar. </li><li> Seleccione la frecuencia de muestreo (128 Hz) en la pestaña de &quot;condición de grabación &#39;. </li><li> Compruebe si se muestran correctamente los canales seleccionados in thpestaña e &#39;Canal de información &quot;. </li><li> Seleccione la pestaña &quot;Ajuste del temporizador&quot; y haga clic en &quot;Monitor&quot; para mostrar EEG y EMG. </li><li> Verifique si las señales de EEG / EMG se muestran correctamente. </li><li> Seleccione la pestaña &quot;Ajuste del temporizador&quot; y establecer el tiempo de reloj para el comienzo y el final de la grabación en el área &#39;Timer principal&#39;. </li><li> Haga clic en &quot;Monitor&quot; en la pestaña de &quot;Ajuste del temporizador&quot; para iniciar la grabación. </li></ol></li><li> Registros EEG / EMG señales bajo la línea de base (es decir., La conducta de sueño / vigilia de un ratón libremente comportarse) y diferentes condiciones de tratamiento (por ejemplo., La administración de cafeína o tratamiento simulado) durante varios días. La eutanasia del ratón con una inyección intraperitoneal de pentobarbital (200 mg / kg) después de que el último día experimental. </li></ol> 4. La puntuación de la Conducta Estado Basado en EEG / EMG datos <ol><li> Inicie el software para el análisis de EEG / EMG (&#39;Materiales&#39; Mesa, 4ª entrada de abajo). Abra los datos en bruto del EEG / EMG (archivo .kcd) producidos bajo el paso 3. Haga clic en la pestaña &#39;Sleep&#39; y seleccionar el tiempo de Época. Seleccione 10 seg. </li><li> Haga clic en la pestaña &#39;Sleep&#39; y seleccione &#39;Multi-screening&#39; para anotar automáticamente todas las épocas de 10 seg en 3 etapas (es decir., NREM y sueño REM, y la vigilia) sobre la base de las amplitudes de EEG y EMG y el análisis espectral de potencia del EEG. 3 </li><li> Haga clic en &quot;condición FFT para EEG &#39;. </li><li> Establecer los parámetros para el análisis espectral de potencia [256 puntos de referencia (correspondiente a 2 segundos del EEG), función de ventana Hanning, y el promedio de 5 espectros por época]. 3 Haga clic en &#39;Aceptar&#39;. </li><li> Haga clic en &quot;Iniciar Screening &#39;para comenzar la detección automática. Abra los datos anotados (archivo .raf). </li><li> Revise los resultados de la detección automática y, si es necesario, corregir manualmente en base a los criterios estándar (ver los resultados representativos, Figura 1B y Tabla 1 </strong&gt;). 2, 3 En pocas palabras, haga clic y mantenga pulsado el botón izquierdo del ratón en una época incorrectamente anotada y arrastrar el cursor a través de la cadena de épocas incorrectamente anotados. Suelte el botón izquierdo del ratón y seleccione el estado de comportamiento correcto en la ventana emergente. Nota: En ocasiones, las épocas en la transición entre dos estados vigilantes son difíciles de conseguir de forma inequívoca a un estado. En tales casos, la época debe anotó al estado ostensible y los mismos criterios debe aplicarse a épocas similares durante todo el experimento para asegurar la reproducibilidad de los datos. </li></ol>

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</ol>

Los autores Yujiro Tauguchi y Sayaka Kohtoh son empleados de Kissei Comtech Co., Ltd que desarrolla el software SleepSign para la adquisición y puntuación automática de los datos de EEG / EMG utilizados en este artículo.

Este protocolo describe una puesta a punto para las grabaciones de EEG / EMG que permite la evaluación de sueño y la vigilia en virtud de bajo ruido, condiciones rentables y de alto rendimiento. Debido al pequeño tamaño del conjunto de cabezal de electrodos EEG / EMG, este sistema se puede combinar con otros implantes para experimentos intra-cerebrales, incluyendo la optogenética (implantación de fibra óptica) o, en conjunto con la implantación de la cánula simultánea, microinfusión de fármacos en el ratón cerebro. <sup...

Los avances técnicos a menudo han precipitado saltos cuánticos en la comprensión de los procesos neurobiológicos. Por ejemplo, el descubrimiento de Hans Berger en 1929 que los potenciales eléctricos grabadas desde el cuero cabelludo humano tomaron la forma de ondas sinusoidales, la frecuencia de la que se relaciona directamente con el nivel de vigilia del sujeto, llevó a los rápidos avances en la comprensión de sueño-vigilia la regulación, tanto en animales y seres humanos por igual. 1 Hasta el día de la electroencephlogram (EEG), en conjunto con el electromiograma (EMG), es decir., la actividad eléctrica producida por los músculos esqueléticos, representa los datos &quot;columna vertebral&quot; de casi todas las clínicas y experimentales evaluación que busca correlacionar el comportamiento y fisiología con la actividad de las neuronas corticales en comportarse animales, incluyendo seres humanos. En la mayoría de los laboratorios de investigación del sueño de base, estos registros de EEG se llevan a cabo mediante el uso de un sistema basado en cable (Figura 1) en la que d adquiridaATA se somete fuera de línea para el análisis del patrón y el espectro de [por ejemplo., la aplicación de una transformada rápida de Fourier (FFT) algoritmo] para determinar el estado de vigilancia del sujeto que se está grabando. 2, 3 Sleep consta de movimiento ocular rápido (REM) y no REM (NREM). Sueño REM se caracteriza por una rápida baja tensión EEG, movimiento de los ojos al azar, y la atonía muscular, un estado en el que los músculos están paralizados con eficacia. Sueño REM también se conoce como sueño paradójico, porque la actividad cerebral se asemeja al de la vigilia, mientras que el cuerpo es en gran medida desconectado del cerebro y parece estar en un sueño profundo. Por el contrario, las neuronas motoras son estimulados durante el sueño NREM, pero no hay movimiento del ojo. Sueño NREM humano se puede dividir en 4 etapas, con lo que la etapa 4 se llama sueño profundo o sueño de ondas lentas y se identifica por las grandes, las ondas cerebrales lentas con la actividad delta entre 0,5 a 4 Hz en el EEG. Por otro lado, una subdivisión entre las fases de sueño NREM en animales más pequeños, como las ratas unand ratones, no se ha establecido, sobre todo porque no tienen largos períodos consolidados de sueño como se ve en los seres humanos. A través de los años, y sobre la base de la interpretación EEG, tanto de circuitos y basadas en humoral, se han propuesto varios modelos de regulación del sueño-vigilia. La neural y bases celulares de la necesidad de dormir o, alternativamente, &quot;unidad de sueño,&quot; sigue sin resolverse, pero se ha conceptualizado como una presión homeostática que se acumula durante el período de vigilia y se disipa por el sueño. Una teoría es que los factores endógenos somnogenic acumulan durante la vigilia y que su acumulación gradual es la base del sueño presión homeostática. Mientras que la primera hipótesis formal de que el sueño es regulada por factores humorales se ha acreditado al trabajo de Rosenbaum publicado en 1892 4, era Ishimori 5, 6 y Pieron 7 que de forma independiente, y hace más de 100 años, demostró la existencia de productos químicos con el sueño la promoción. Ambos investigadores propusieron, y de hecho han demostrado, que las sustancias Hypnogenic o &#39;hypnotoxins&#39; estaban presentes en el líquido cefalorraquídeo (LCR) de los perros con falta de sueño. 8 Durante el siglo pasado varias sustancias Hypnogenic putativos adicionales implicados en el proceso homeostático del sueño han sido identificados (para una revisión, ver ref. 9), incluyendo la prostaglandina (PG) D 2, 10 citocinas, 11 adenosina, la anandamida 12, 13 y el péptido de urotensina II. 14 El trabajo experimental por Ecónomo 15, 16, Moruzzi y Magoun 17, y otros en los hallazgos producidos siglo principios y mediados del 20 th que inspiró teorías basadas en circuitos de sueño y vigilia y, hasta cierto punto, eclipsó la teoría humoral entonces predominante de dormir. Hasta la fecha, se han propuesto varios &quot;modelos de circuitos&quot;, cada uno informado por los datos de diversa calidad y cantidad (para una revisión, ver Ref. 18). Uno de los modelos, Por ejemplo, propone que el sueño de onda lenta se genera a través de la inhibición de la adenosina mediada por la liberación de acetilcolina de las neuronas colinérgicas en el prosencéfalo basal, un área consisiting principalmente del núcleo de la extremidad horizontal de la banda diagonal de Broca y el inominata sustancia. 19 Otro modelo popular de la regulación del sueño / vigilia describe un mecanismo interruptor flip-flop sobre la base de las interacciones mutuamente inhibitorias entre las neuronas que inducen el sueño en el área preóptica ventrolateral y neuronas estela que inducen en el tallo del hipotálamo y el cerebro. 18, 20, 21 Por otra parte, para la conmutación en y fuera del sueño REM, un similares interacción recíprocamente inhibitoria ha sido propuesto para áreas en el tronco cerebral, que es la ventral gris periacueductal, tegmento pontino lateral, y el núcleo sublaterodorsal. 22 En conjunto, estos modelos han demostrado ser valiosa heurística y los marcos interpretativos que ofrece importantes para los estudios de investigación del sueño; sin embargo, un ost más completa comprensión de los mecanismos moleculares y circuitos que regulan el ciclo de sueño-vigilia requerirá un conocimiento más completo de sus componentes. El sistema de registro poligráfico se detalla a continuación debe ayudar en este objetivo.

<table><tbody><tr><td>Cabezal de 4 pines</td><td>Hirose</td><td>A3B-4PA-2DSA(71)</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilina</td><td>Meiji Seika</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Convertidor de analógico a digital</td><td>Contec</td><td>AD16-16U(PCIEV)</td><td></td></tr><tr><td>Cafeína</td><td>Sigma</td><td>C0750</td><td></td></tr><tr><td>Fresa de carburo</td><td>Minitor</td><td>B1055</td><td></td></tr><tr><td>Carcasa de crimpado</td><td>Hirose</td><td>DF11-4DS-2C</td><td></td></tr><tr><td>Zócalo de crimpado</td><td>Hirose</td><td>DF11-30SC</td><td></td></tr><tr><td>Cemento dental (Toughron Rebase)</td><td>Miki Chemical Product</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adhesivo epoxi</td><td>Konishi</td><td>#16351</td><td></td></tr><tr><td>Conector FFC/FPC</td><td>Honda Tsushin Kogyo</td><td>FFC-10BMEP1(B)</td><td></td></tr><tr><td>Cable plano</td><td>Hitachi Cable</td><td>20528-ST LF</td><td></td></tr><tr><td>Pegamento instantáneo (Aron Alpha A)</td><td>Toagosei</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Meloxicam</td><td>Boehringer Ingelheim</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital</td><td>Kyoritsu Seiyaku</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Amplificador de señal</td><td>Biotex</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Cámara de registro del sueño</td><td>APL</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Software SleepSign</td><td>Kissei Comtec</td><td>N/A</td><td>para registro/análisis</td></tr> <tr><td>de EEG/EMGAnillo rozante</td><td>Biotex</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Tornillo de acero inoxidable</td><td>Yamazaki</td><td>N/A</td><td>&phi; 1.0 y tiempos; 2.0</td></tr><tr><td>Alambre de acero inoxidable</td><td>Cooner Wire</td><td>AS633</td><td></td></tr></tbody></table>

poligráfico procedimiento de grabación en medición del sueño en ratones

Polygraphic Recording Procedure for Measuring Sleep in Mice

El registro del electroencefalograma epidural (EEG) y el electromiograma (EMG) en animales pequeños, como ratones y ratas, ha sido fundamental para estudiar la homeodinámica y los circuitos de la regulación del sueño-vigilia. En muchos laboratorios, se utiliza un sistema de registro del sueño basado en cable para monitorear el EEG y EMG en ratones que se comportan libremente en combinación con software de computadora para la puntuación automática de los estados de vigilancia sobre la base del análisis del espectro de potencia de los datos de EEG. En este documento se detalla una descripción de este sistema. Los tornillos de acero se implantan sobre el área cortical frontal y el área parietal de 1 hemisferio para monitorear las señales de EEG. Además, la actividad EMG se controla mediante la colocación bilateral de alambres en ambos músculos del cuello. Movimientos oculares no rápidos (no REM; El sueño NREM) se caracteriza por ondas cerebrales grandes y lentas con actividad delta por debajo de 4 Hz en el EEG, mientras que se puede observar un cambio de la actividad delta de baja frecuencia a un EEG rápido de bajo voltaje en el rango theta entre 6 y 10 Hz en la transición del sueño NREM a REM. Por el contrario, la vigilia se identifica por las ondas cerebrales de voltaje bajo a moderado en el trazo del EEG y la actividad EMG significativa.

Figura 1B ilustra ejemplos del EEG del ratón en los diferentes estados de vigilancia. Como se muestra en la Tabla 1, épocas se clasifican como sueño NREM si el EEG muestra grandes, ondas cerebrales lentas con un ritmo delta por debajo de 4 Hz y la EMG tiene solamente una señal débil o no. Épocas se clasifican como sueño REM si el EEG muestra rápidas ondas cerebrales de baja tensión en el rango theta entre 6 y 10 Hz y el EMG muestra baja ...

El registro del electroencefalograma (EEG) y el electromiograma (EMG) en ratones que se comportan libremente es un paso crítico para correlacionar el comportamiento y la fisiología con el sueño y la vigilia. El protocolo experimental descrito en este documento proporciona un sistema basado en cable para adquirir registros de EEG y EMG en ratones.

Poligráfico Procedimiento de Grabación en medición del sueño en ratones

Recording of the epidural electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in small animals, like mice and rats, has been pivotal to study the ...

El objetivo general de este procedimiento de registro poligráfico es determinar el estado de vigilancia de los ratones y medir el tiempo que pasan en vigilia, sueño con movimientos oculares rápidos o sueño con movimientos oculares no rápidos. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en casi todos los campos de la neurociencia que buscan correlacionar el comportamiento y la fisiología con la actividad de las neuronas corticales en animales que se comportan. La principal ventaja de esta técnica es que puede registrar una gran cantidad de ganglios, electroencefalograma y electromiograma y se puede combinar con otros implantes cerebrales como fibras ópticas y cánulas de infusión.La demostración visual de este método es muy importante porque la implantación del electrodo debe realizarse correctamente y la calidad del electrodo es extremadamente crítica para juzgar los estados físicos. El encargado de demostrar el procedimiento será Yohko Takata, un postdoc de mi laboratorio. Antes de comenzar, esterilice todas las herramientas quirúrgicas en un esterilizador de perlas calientes.Una vez que se confirme que el ratón está anestesiado con un pellizco en el dedo del pie, afeita e

polygraphic-recording-procedure-for-measuring-sleep-in-mice

Research

Investigación

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociencia

Fuente: Kodani, S., et.al. Manipulación optogenética de circuitos neuronales durante el monitoreo de estados de sueño / vigilia en ratones. J. Vis. Exp. (2019)Este video demuestra la manipulación optogenética de los circuitos neuronales involucrados en la transición del sueño a la vigilia en ratones. El procedimiento consiste en implantar quirúrgicamente una fibra óptica y electrodos en el cerebro y los músculos para permitir la estimulación de la luz y el registro electrofisiológico. Al...

Manipulación optogenética de circuitos neuronales para la transición del sueño a la vigilia en ratones

Este video muestra un protocolo para implantar un conjunto de electrodos de electroencefalograma (EEG) y electromiograma (EMG) en un ratón anestesiado. El proceso consiste en asegurar el ratón en un marco estereotáxico, hacer una incisión en la línea media del cráneo, perforar agujeros para los electrodos y fijar la unidad de electrodos para el registro de la señal. Después de la recuperación, el comportamiento de sueño-activación del mouse se analiza utilizando las señales registradas.

Análisis del comportamiento del sueño en ratones a través de registros de electroencefalograma y electromiograma

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La manipulación de epileptiforme Electrocorticograms (ECoGs) y del sueño en ratas y ratones por acupuntura

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