Name: Aplicaciones de la sonda: Single-Imaging espectrometría de masas y análisis de celda única bajo condiciones ambientales (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min
Description: Aprende a utilizar la sonda Single-probe para espectrometría de masas de célula única en condiciones ambientales y análisis de tejidos con alta resolución espacial. Esta técnica avanza estudios biológicos y farmacéuticos.

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Los autores desean agradecer al Dr. Laskin (del Laboratorio Nacional del Noroeste del Pacífico) por compartir el software de control de escenario motorizado y el programa de visualización MSI. También agradecemos al Dr. Mao (Universidad de Oklahoma) por proporcionar muestras de órganos de ratón y al Sr. Chad E. Cunningham (Universidad de Oklahoma) por su asistencia en el mecanizado y el trabajo electrónico. Esta investigación fue apoyada por subvenciones del Consejo de Investigación del Campus Norman de la Universidad de Oklahoma, el Premio de Investigación de la Sociedad Americana de Investigación en Espectrometría de Masas (patrocinado por Waters Corporation), el Centro de Oklahoma para el Avance de la Ciencia y la Tecnología (Subvención HR 14-152) y los Institutos Nacionales de Salud (R01GM116116).

el uso y el bienestar de los animales deben cumplir con la Guía del NIH para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio siguiendo los protocolos revisados ​​y aprobados por el Comité de Cuidado y Uso de Animales Institucional (IACUC). muestras de tejido de ratón fueron proporcionados por el colaborador Dr. Chuanbin Mao. 1. Ratón de tejidos sección de la preparación <ol><li> Colocar un órgano del ratón entero de interés (cerebro, riñón, hígado, etc.) en el centro de un pequeño plástico bien (por ejemplo, de 12 pocillos placa de cultivo celular), y sumergir en el tejido incrustación de compuesto de hasta aproximadamente 10 mm de altura. Asegúrese de que no hay ninguna burbuja formada en el compuesto incrustación de tejidos y que el órgano se coloca en la orientación deseada (es decir, sagital, coronal, etc.). </li><li> Inmediatamente colocar los tejidos en nitrógeno líquido para congelar flash. Para el almacenamiento a largo plazo, almacenar las muestras congeladas en un congelador a -80ºC. </li><li> Tome el órgano del ratón congelado y descongelar a -15 ° C en una temperature criomicrotomo controlada. </li><li> tejido Secure sobre una base de acero con aproximadamente 500 l de compuesto de la incrustación de tejido y el lugar en un criomicrotomo seccionar el montaje de manera que la orientación de seccionamiento deseada se presenta a la cuchilla. </li><li> Sección del tejido a un espesor 12 micras. Coloca las rebanadas de tejidos seccionados en portaobjetos de microscopio de policarbonato y dejar secar durante 30 minutos a temperatura ambiente. Para el almacenamiento a largo plazo, almacenar la diapositiva congelada en un congelador a -80ºC. </li></ol> 2. Cultura de la célula Nota: El cultivo celular se realizó en cabina de seguridad biológica (Bioseguridad Nivel II) en condiciones estériles. línea de células HeLa se usó como un modelo de sistema, y ​​las células se cultivaron en medio de cultivo completo con los siguientes protocolos convencionales: <ol><li> Reactivos calientes (es decir, la tripsina, la solución salina tamponada con fosfato (PBS), y medio de cultivo celular) a 37 ° C. Nota: El medio de cultivo celular contiene sa inorgánicolts, aminoácidos, vitaminas, y otros. Para obtener una lista completa de los componentes, se refieren a la formulación por parte del fabricante. </li><li> Obtener muestra de células (por ejemplo, 1 ml de suspensión de células HeLa) y añadirlo en 9 ml de medio de cultivo celular completo en una placa de cultivo celular estándar de 10 cm. El número inicial de células es de alrededor de 0,5 x 10 6 células / ml. Mantener las células en cultivo a 37 ° C con 5% de CO 2 durante 2-3 días hasta que la superficie de crecimiento está cubierto a 70-80% en la placa de cultivo celular. número de pases celulares registro para cada ronda sucesiva. </li><li> Realizar pases de células (es decir, la división celular) en la placa de cultivo celular. <ol><li> Aspirar el medio de crecimiento, y el uso de 5 ml de PBS 1x para aclarar las células. Retirar PBS utilizando una punta de aspiración estéril, y se incuban las células con 2,5 ml de tripsina (0,25%) durante ~ 5 min a 37 ° C para separar las células de la placa de cultivo. Nota: El tiempo de tratamiento necesario tripsina real para ser optimizado de acuerdo con la produ tripsina específicact compró al fabricante. tiempo de tratamiento inadecuada deja las células unidas a la placa, mientras que el tratamiento excesivo conduce a la muerte celular. </li><li> Deja de actividad de la tripsina mediante la adición de 7,5 ml de medio de cultivo de células completa, y luego volver a suspender uniformemente las células (volumen total 10 ml). Utilice la suspensión de células para cultivo (paso 2.2) o la preparación de muestras SCMS (paso 2.4). </li></ol></li><li> Preparar las muestras de células para los experimentos SCMS. <ol><li> Colocar los portaobjetos de micro portadas individuales en una placa de 12 pocillos, y añadir medio de cultivo de células 1,8 ml y 0,2 ml de suspensión celular en el pozo. </li><li> Mezclar suavemente las células con agitación suave de la placa, y se incuba en un entorno de 5% de CO2 a 37 ° C durante ~ 24 h. Para llevar a cabo el tratamiento de drogas a las células cultivadas, añadir una solución del compuesto de fármaco (por ejemplo, en DMSO (sulfóxido de dimetilo)) en placa de cultivo celular de 12 pocillos. Nota: La concentración de fármaco final (por ejemplo, 10 nM, 100 nM, 1 mM, y 10 mM) y tratamiento tiempo (por ejemplo, 4 horas) se varió de acuerdo con el propósito específico de los estudios. Las células están asociadas a las diapositivas micro cubierta y listo para los experimentos CSMS (paso 6). </li></ol></li></ol> Fabricación 3.-sonda individual <ol><li> Coloque el tubo de cuarzo de doble orificio (diámetro interior (ID) 127 m, diámetro exterior (OD) a 500 micras) en un extractor de micropipeta láser y tirar de una aguja de cuarzo de doble orificio. Utilice los siguientes parámetros como puntos de partida: Calor = 400, Fil = 3, Vel = 80, Del = 150, y = 250 Pul (todas las unidades son unidades del fabricante). Asegúrese de que la aguja de doble orificio de cuarzo tirado tiene una punta cónica para las propiedades óptimas de la sonda. Cortar la punta retirado de modo que no es de ~ 5 mm de largo de unpulled capilar de cuarzo de doble orificio a la izquierda en el otro extremo. Nota: Los parámetros reales del extractor láser debe ser optimizado de acuerdo con las condiciones específicas del instrumento. </li><li> Cortar una sección de ~ 80 mm de capilar de sílice fundida (ID 40 micras, OD. 105 micras) como disolvente proporcionando capilar, y la inserta en un orificio en el extremo plano de la aguja de cuarzo de doble orificio. </li><li> Cortar una sección de ~ 40 mm de capilar de sílice fundida (ID 40 micras, OD 105 micras) y el uso de una navaja de afeitar ~ 5 mm de la capa de poliimida del punto medio. Utilizar una llama de propano para calentar y tire del capilar cerrado en un emisor de ionización por electrospray nano-(ESI) con una fina cónica rápidamente. Cortar un emisor de nano-ESI (~ 7-10 mm de largo), y la inserta en el otro orificio en el extremo plano de la aguja de cuarzo de doble orificio. Como alternativa, utilice el extractor de láser para producir una fina cónica. </li><li> Aplicar una cantidad mínima de resina de curado UV (~ 1-2 l) en el extremo plano de la aguja de cuarzo de doble ánima, y ​​solidificar la resina usando una lámpara UV LED para ~ 20 seg para asegurar el disolvente proporcionando capilar y la nano- ESI emisor. Los procedimientos para ensamblar las partes individuales en una sola sonda se muestran en la Figura 1a. </li><li> Corte un microscopio estándar gldiapositiva culo (1 &quot;x 3&quot;) en la mitad a lo largo. Coloque la única sonda en un extremo de la lámina de vidrio de modo que el emisor de nano-ESI apunta hacia el exterior. Aplicar el epoxi regular para el cuerpo de la sonda de un solo modo que se convierta asegura sobre el portaobjetos de vidrio (Figura 1b). Dejar toda la noche para el endurecimiento. Pareja la sola sonda fabricada con la configuración de una sola sonda integrada (Figura 1c), que está unido a un espectrómetro de masas como se ilustra en la Figura 1d. </li></ol> 4. Construir el único integrado con sonda de instalación de MS <ol><li> Modificar la brida de interfaz de fuente de iones del espectrómetro de masas y fabricar el soporte (con posición ajustable y altura) de la estereoscopio digital (figuras 1e y 1f). <ol><li> Perforar un reborde interfaz de fuente de iones con dos agujeros que permiten la fijación de una junta óptica de aluminio. Hacer un dispositivo de carril de deslizamiento y una varilla de ajuste de altura (que se adjunta a launa etapa XY para la posición de ajuste fino), de manera que el sistema estereoscopio digital puede estar unido a la placa óptica de aluminio (Figura 1e). </li></ol></li><li> Una el microscopio modificado estéreo digital, un microscopio digital USB, una etapa de traducción XYZ manual de miniatura con un soporte de abrazadera flexible, el sistema de plataforma de traslación motorizado XYZ a la placa óptica de aluminio, que se monta en la brida de interfaz de fuente de iones a medida del espectrómetro de masas (Figuras 1c y 1f). Utilice el soporte de abrazadera flexible para fijar el portaobjetos de vidrio unida con una sola sonda. </li><li> Fije la configuración de una sola sonda hasta el espectrómetro de masas (Figura 1F). Ajuste el soporte de la mordaza flexible y la etapa de XYZ miniatura para colocar el emisor del single-sonda en frente de la entrada del espectrómetro de masas. Utilizar el microscopio digital USB (con ángulo de visión ajustable) en el lado de una sola sonda para proporcionar una imagen con zoom-in del single-ppunta de la túnica o el emisor de nano-ESI, y el estereoscopio digital (regulable en altura) por encima de la única sonda para ver las células y la punta de la sonda. Nota: El uso de la brida correspondiente fuente de iones, este sistema de una sola sonda integrada puede ser acoplado a cualquier otro tipo de espectrómetros de masas equipados con fuentes de ionización ambiente. </li></ol> 5. ambiente MSI <ol><li> Descongelar la sección de la muestra a temperatura ambiente y colocarlo en el sistema de plataforma de traslación motorizada XYZ debajo de la sola sonda. Ajustar la posición de la muestra por el cambio de las coordenadas en el software de control. </li><li> El uso de la jeringa para bombear el disolvente de muestreo a una tasa apropiada (por ejemplo, 0,2 l / min), y se aplica el voltaje de ionización (por ejemplo, 5 kV). La selección del disolvente de muestreo es flexible, y los más comunes incluyen MeOH: agua (9: 1) y acetonitrilo. El volumen muerto del emisor nano-ESI se estimó en ~ 3 nl, y el tiempo entre la sonda-surface el contacto y la observación de la señal de iones es por lo general menos de 1 seg 15. Nota: La brida de interfaz de fuente de iones a medida permite la tensión de ionización que se entregarán a partir del espectrómetro de masas para una unión conductora a través de una pinza de cocodrilo. El voltaje de ionización se transmite entonces a través de una unión conductora para el disolvente en el interior del capilar y los canales de una sola sonda, y se aplicó sobre el emisor nano-ESI para ionizar los analitos en la muestra. Asegúrese de que el voltaje de ionización se apaga cuando se conecta la pinza de cocodrilo con la unión conductora. </li><li> Ajustar la altura de la única sonda de modo que está descansando justo por encima de la superficie de la muestra y capaz de realizar la superficie de extracción de los metabolitos. Levante con cuidado el Z-etapa, y luego usar el microscopio digital USB (en el lado del single-sonda) para monitorear el cambio distancia entre la punta de una sola sonda y la superficie del tejido. Monitorear los cambios en el espectro de masas durante este ajuste en altura, y dejar de ascensoring la Z-etapa en la que se observa un cambio de la señal de ion de fondo disolvente a metabolitos de tejido. </li><li> Repita el paso 5.3 tres veces para ajustar tres puntos diferentes dentro del programa de control de la etapa de ajuste de aplanar la superficie automatizado. Coloque la punta de la sonda sola en tres puntos sobre la superficie de la muestra a una distancia de unos 10 mm de distancia entre sí. Realizar el ajuste de altura pulsando el arriba y abajo de los iconos, y bloquear los tres puntos en su posición en el marco del &quot;Plan de método&quot;. </li><li> Establecer otros parámetros de rastering a través de la sección de interés dentro de la muestra utilizando este programa. Para las secciones de riñón de ratón que aquí se presentan, utilizar una / s de velocidad de Barrido de 10,0 micras y 20 micras distancia entre líneas. El sistema de plataforma motorizada tiene un movimiento mínimo de la subasta 0,1 micras mínimo. La distancia entre la punta y el tejido de una sola sonda se obtiene de la etapa 5.3. </li><li> Configuración de un método automatizado para la adquisición de espectros de MS desde el espectrómetro de masas. for resolución de masas de alta MSI en muestra de riñón de ratón, utilice los siguientes parámetros: la resolución de masa de 60.000 (m / Delta M), ~ modo positivo 5 kV, 1 Microscan, tiempo de inyección de 150 ms como máximo, y en AGC. Todos los espectros de MS adquiridos representan líneas individuales de la imagen MS tenían el mismo número de exploraciones con una separación de tiempo uniforme entre cada exploración, lo que indica que los tamaños de pixel de las imágenes producidas se distribuyeron de manera uniforme. </li><li> Iniciar la adquisición de datos de MSI. Iniciar la secuencia de adquisición de MS para el espectrómetro de masas, y luego iniciar la secuencia de Barrido de para el programa de control de XYZ. <ol><li> Por ejemplo, en el programa de adquisición de datos MS utilizado aquí, ir a &quot;Configuración de Secuencia&quot;, seleccione &quot;Nueva secuencia&quot;, generar un conjunto de archivos para una nueva secuencia numerada de 01 a X, donde X es el número de líneas utilizadas para la MS imagen deseada que deben tomarse, a continuación, pulse &quot;secuencia de ejecución&quot;. </li><li> Utilice un dispositivo electrónico hecho en casa para permitir que el software para producir una contaseñal de cierre de la TC para el espectrómetro de masas para recoger los datos. El diagrama de circuito se muestra en la figura complementaria (Figura S1) como referencia. </li></ol></li><li> MS construir imágenes de archivos de MS primas que utilizan software de visualización MSI apropiado. Por ejemplo, cuando se utiliza el paquete de software desarrollado por el grupo de Laskin en PNNL 17, realice los siguientes pasos. <ol><li> Haga clic en &quot;Archivo cejas.&quot; Seleccione el primer archivo obtenido a partir del experimento de MSI. Especifique la ubicación del archivo comienza y termina en &quot;Número de líneas&quot;. Seleccionar un rango de valores de m / z para el rango de la imagen MS en &quot;Enter MZ Rango&quot;. </li><li> Presione el botón &quot;Inicio&quot; para iniciar el proceso de creación de la imagen. Una vez tomada la imagen MS, haga clic en &quot;Guardar imagen&quot; en &quot;Barra de herramientas&quot; para almacenar las imágenes en el ordenador. </li></ol></li></ol> 6. En situ vivo SCMS <ol><li> Configuración del sistema de una sola sonda según instruyaiones de MSI. Ajuste el disolvente (por ejemplo, MeOH / H 2 O o acetonitrilo) velocidad de flujo (por ejemplo, ~ 25 nl / min). </li><li> Se lavan las células cultivadas, que se adjuntan en los portaobjetos de vidrio cubierta de micro, con PBS para eliminar el medio cultural y componentes extracelulares de la droga. Colocar célula que contiene portaobjetos de vidrio en el sistema motorizado etapa de traslación XYZ para el experimento. Nota: Como alternativa, utilice el medio de cultivo celular fresco (sin contenía suero bovino fetal) para enjuagar las células cultivadas. se observó una supresión de iones menos. Además, la célula puede sobrevivir durante más tiempo durante el experimento donde la temperatura ambiente (~ 20 ° C) es significativamente menor que la temperatura de cultivo (37 ° C). El tipo de fármaco, la concentración de la solución, y el tiempo de tratamiento varían en los diferentes estudios. </li><li> Enfocar el microscopio estéreo digital (por encima de la muestra) sobre la punta de la sonda de un solo para controlar la penetración celular durante el análisis. Utilizar el microscopio digital USB (en el side del single-sonda) para supervisar las condiciones de trabajo del emisor nano-ESI en el single-sonda. </li><li> Utilice el programa de control de fase XYZ motorizado y el microscopio estéreo digital (por encima de las células) para localizar una célula de interés, y colocar con precisión la punta de una sola sonda por encima de la muestra. Iniciar la adquisición de datos de MS antes de la punta de una sola sonda se inserta en la célula. <ol><li> Utilice los siguientes parámetros como referencia para el análisis de MS utilizando un espectrómetro de masas de alta resolución: la resolución de masa 100.000 (m / Delta M), ~ 3 kV modo positivo y negativo, 1 Microscan, 150 ms de tiempo de inyección máxima, en modo AGC. adquisición automatizada de espectros de MS se realiza haciendo clic en &quot;Inicio&quot; en el programa de adquisición de datos de MS. </li><li> Levante la Z-platina motorizada haciendo clic en el icono para penetrar la membrana celular y mantener el registro de la señal MS generado a partir de la célula. Un retardo de tiempo de 1-2 seg por lo general se observa entre la inserción de la sonda y la detección de la señal MS. Como la otra confirmación dela penetración celular, un cambio dramático de las señales de MS se puede observar en la penetración de la membrana celular. Las señales MS de compuestos intracelulares por lo general puede durar ~ 15-20 segundos antes de una disminución significativa. </li><li> Más abajo en la celda que contiene la placa para tirar de la punta de una sola sonda hacia fuera de la célula. Por lo general toma &lt;15 seg para las señales de iones de los compuestos celulares para acercarse al nivel de ruido. Dejar que el flujo de disolvente para ~ 3 min para vaciar por completo el single-sonda. Mientras tanto, la posición del sistema XYZ etapa motorizada para localizar la siguiente celda a analizar. Cada experimento célula requiere ~ 3 minutos para llevarse a cabo. </li></ol></li></ol>

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</ol>

No tenemos ningún conflicto de intereses que declarar con el trabajo presentado aquí.

La sola sonda es un dispositivo multifuncional que se puede utilizar para ambos experimentos MSI y SCMS. La configuración de una sola sonda (incluyendo sistemas etapa de traducción, microscopios, bridas interfaz de fuente de iones, etc.) está diseñado como un componente de complemento que se puede adaptar flexiblemente al espectrómetro de masas existentes. Un intercambio rápido entre la configuración de una sola sonda y la fuente de iones ESI convencional puede llevarse a cabo dentro de un minuto. En principio, el uso de la brida de interfaz de fuente de iones apropiado, la configuración de una sola sonda se puede adaptar a los otros espectrómetros de masas. Además, el disolvente de muestreo que contiene una variedad de reactivos se puede utilizar con la configuración de una sola sonda para reactivos experimentos MSI y SCMS, que mejora en gran medida la detección de intervalos más amplios de las biomoléculas. Además de los tejidos animales y líneas celulares, la única sonda también es capaz de analizar otros sistemas biológicos, tales como plantas. Por lo tanto, con la misma configuración experimental yformación de usuario similar, una variedad de estudios se puede realizar utilizando un único instrumento y por los mismos usuarios, que se logra con el tiempo de entrenamiento mínimo y el costo de instrumentación que permite experimentos eficiente y versátil. El componente clave de la técnica de una sola sonda de MS es la propia sonda. La calidad del single-sonda tiene una influencia significativa en su rendimiento, lo que determina en gran medida la calidad de ambos experimentos MSI y SCMS. Cuando se fabrica solo-sondas, asegúrese de que los capilares en el interior del tubo de doble tubo están pegadas de forma segura para eliminar la posibilidad de fuga de disolvente durante los experimentos. Es fundamental para utilizar una cantidad mínima de UV epoxi curable, de manera que los orificios y los tubos capilares no están obstruidas durante la fabricación de la sonda. La única sonda se ha utilizado para llevar a cabo alta resolución ambiente espacial y la masa MSI en muestras biológicas 15. La principal ventaja de MSI ambiente durantemétodos no ambiente es que la preparación de la muestra se mantiene a un mínimo, sin necesidad de un entorno de toma de muestras de vacío, que permite que la muestra que va a analizarse en un estado nativo cerca de 8. Uno de los principales obstáculos para la mayoría de los demás ambiente técnica MSI ha habido una falta de resolución espacial 1. En comparación con la desorción basado MSI técnicas (tales como DESI y LAESI), el tamaño de la punta pequeña de la sola sonda permite una micro-extracción líquido superficie más robusto y eficiente para llevar a cabo sobre un área pequeña, lo que lleva a una alta resolución espacial de 8,5 micras, que se encuentra entre los más altos obtenidos mediante técnicas de MSI ambiente 15. Además, el ajuste de los componentes del disolvente de muestreo proporciona flexibilidad adicional para llevar a cabo los experimentos. Por ejemplo, el muestreo de disolventes que contienen reactivos (por ejemplo, compuestos dicatiónicos) se han utilizado para realizar experimentos de MSI reactivos, lo que permite un aumento significativo en el número de metabolitos identificados PEexperimento r 20. La otra ventaja de la sola sonda es el diseño integrado, que proporciona la facilidad de operación durante todo el proceso de adquisición de datos. Debido a que la distancia entre la punta y la superficie del tejido es muy sensible para la intensidad de la señal de iones y la estabilidad, la obtención de una sección de tejido plano y la superficie de la realización de aplanamiento de ajuste para minimizar la varianza distancia es una clave para los experimentos de MSI de alta calidad. De ello se desprende que las técnicas de MSI de una sola sonda no son adecuados para obtener imágenes de alto MS espaciales de superficies irregulares. Además de la fabricación de una sonda de alta calidad, sintonizar cuidadosamente el instrumento es esencial para un experimento de MSI éxito. Entre todas las etapas de ajuste, el ajuste de la altura de la punta de una sola sonda por encima de la superficie de sección de tejido es la más crítica. Al ajustar la altura de la sonda, bombear el disolvente muestreo y encender la tensión de ionización, por lo que sólo las señales de iones fondo disolvente puede ser observed. Entonces supervisar el cambio del espectro de masas al tiempo que reduce cuidadosamente la distancia de la sonda de la superficie por el levantamiento de la Z-platina motorizada hasta que las señales de iones fuertes y estables de la sección de tejido se pueden observar; esta altura de la sonda se utiliza para la recogida de datos MSI durante el experimento. Además, una tasa de flujo de disolvente optimizado es esencial para los experimentos de MSI. Ajustar la velocidad de flujo con la altura de la sonda optimizado. Asegúrese de que este no se presenta disolvente sobre la superficie del tejido (es decir, el caudal es demasiado alto) o la formación de burbujas en el interior del emisor nano-ESI (es decir, el caudal es demasiado bajo). El single-sonda es un dispositivo multifuncional para bioanálisis. Además de los experimentos de MSI, es capaz de llevar a cabo casi en tiempo real in situ SCMS para elucidar la información química detallada a partir de células eucariotas vivas 16, que es una gran ventaja en comparación con otros de vacío técnicas SCMS base (tales como MALDI 10 y SIMS 21 </sup&gt;). El pequeño tamaño de la punta de la sonda proporciona la capacidad de ser insertado en una célula eucariota en vivo y para extraer y ionizar los compuestos intracelulares para el análisis de MS inmediata. Del mismo modo, los disolventes de muestreo contienen los reactivos (por ejemplo, compuestos dicatiónicos) se pueden utilizar en los experimentos SCMS, y una gama más amplia de los componentes celulares se pueden detectar en una única célula viva que nunca (investigación en curso, los datos no se muestran). Aunque el análisis en tiempo real proporcionará los perfiles químicos de las células individuales en vivo, debido a la penetración de células de la membrana y la extracción de contenido celular, la célula bajo investigación se mató después del experimento, lo que implica que la de una sola sonda SCMS técnica es todavía un método destructivo. Además, la punta de la sonda y el emisor nano-ESI en el single-sonda puede ser obstruidas fácilmente para usuarios inexpertos. Para reducir la posibilidad de obstrucción dispositivo, asegurarse de no tocar el núcleo cuando se inserta la punta de una sola sonda en un cell. Si se produce la obstrucción, el dispositivo se puede regenerar mediante el calentamiento de la punta de la sonda obstruido o el nano-ESI emisor utilizando una bobina de calentamiento de construcción casera 16. Otra limitación de la técnica de una sola sonda SCMS es que sólo las células adhesivas (es decir, las células se unen a las superficies) se pueden analizar usando la configuración actual. Sin embargo, mediante la incorporación del sistema de manipulación de células en el aparato de MS-sola sonda, los tipos más amplios de la célula pueden ser estudiadas en el futuro. Al igual que en el experimento de MSI, la obtención de una sonda de alta calidad y una tasa de flujo de disolvente optimizado es crítica para estudios de SCMS. Cuando se ajusta un caudal de disolvente, la punta de una sola sonda se coloca por encima de la muestra (es decir, sin contacto con el medio de células o cultivo), y asegúrese de que no hay goteo de disolvente de la punta de la sonda o la formación de burbujas dentro de la nano-ESI emisor.

Las imágenes de espectrometría de masas (MSI) son una técnica de imagen molecular relativamente nueva para proporcionar la distribución espacial de los compuestos de interés en las superficies. Durante el análisis MSI, las mediciones de espectrometría de masas (MS) se registran en toda la superficie en una base de píxeles individuales para crear una imagen 2D de la especie de interés 1. Las técnicas MSI tienen la capacidad de proporcionar una distribución de características resuelta espacialmente para una amplia gama de metabolitos, lo que permite obtener una cantidad de información mucho mayor de una muestra que utilizando técnicas tradicionales de imagen molecular, y tienen el potencial de mejorar en gran medida el análisis de muestras biológicas para estudios biológicos y farmacológicos 2. A grandes rasgos, el MSI se puede dividir en enfoques no ambientales y ambientales. Las técnicas de análisis MSI no ambientales, como la ionización por desorción láser asistida por matriz (MALDI) MS 3 y el ion secundario de tiempo de vuelo MS (ToF SIMS) 4, son capaces de lograr una alta resolución espacial (alrededor de 5 μm y 100 nm, respectivamente) y una alta sensibilidad. Sin embargo, estos métodos requieren una preparación extensa de la muestra, como la aplicación de moléculas de la matriz a la superficie de la muestra, y un entorno de muestreo al vacío, que podría introducir artefactos en los datos obtenidos. Las técnicas ambientales como la ionización por electrospray por desorción (DESI) MS 5, la ionización por electrospray por ablación láser (LAESI) MS 6 y el nano-DESI MS 7 son capaces de MSI de muestras con poca o ninguna preparación previa en el entorno ambiental, lo que es capaz de producir imágenes MS que potencialmente reflejan la muestra en su estado más nativo. Sin embargo, la mayoría de estas técnicas generalmente carecen de la alta resolución espacial y la sensibilidad de detección en comparación con las técnicas no ambientales, con experimentos que generalmente se realizan a alrededor de 150 μm por píxel 8.
El análisis de células individuales (SCA) es un campo en crecimiento que tiene la capacidad de caracterizar la composición química de muestras biológicas a nivel celular. La SCA permite el análisis de sistemas biológicos a un nivel más fundamental que las técnicas tradicionales de análisis celular, que producen un resultado promedio de una población de células, lo que puede proporcionar información que antes era intratable. Recientemente se han aplicado técnicas de MS a la SCA (denominada espectrometría de masas de célula única o SCMS) utilizando técnicas no ambientales como MALDI MS 10 y ToF SIMS 11 en las que las células se tratan previamente antes del análisis, y con técnicas ambientales como LAESI MS 12 y métodos de extracción directa, como el vídeo monocelular en vivo-MS 13, 14, para analizar una amplia variedad de tipos de células como huevos, plantas y cáncer. Las técnicas ambientales tienen la ventaja de aplicarse a células vivas, lo que nuevamente minimiza los artefactos, lo que conduce a una mejor representación de los metabolitos en las células vivas. Sin embargo, los métodos basados en la extracción directa descritos anteriormente realizan el proceso de extracción y análisis de la muestra en dos pasos diferentes, lo que da lugar a un intervalo de tiempo durante el análisis que podría alterar los metabolitos presentes en la muestra. 
La sonda única, un dispositivo multifuncional miniaturizado que es capaz de realizar MSI ambiental de alta resolución espacial en secciones de tejido biológico 15 y SCMS in situ casi en tiempo real en células individuales vivas 16. La sonda única tiene una construcción integrada que se compone de un capilar de cuarzo de doble orificio tirado junto con una entrada que proporciona solvente y un emisor nano-ESI hecho de capilares de sílice fundida, lo que permite que la entrega de solvente y la extracción de analito se realicen desde un solo dispositivo. En el modo MSI ambiental, la sonda única se coloca sobre el tejido de la muestra y se produce la microextracción de la superficie, lo que permite crear una imagen MS rasterizada a alta resolución espacial. En particular, la punta cónica de la sonda única es lo suficientemente pequeña como para insertarse en células eucariotas vivas para el análisis SCMS in situ, donde la detección de metabolitos tarda menos de dos segundos entre la inserción de la sonda y la detección de MS, lo que permite tomar información química casi en tiempo real. Estos son los protocolos para fabricar el dispositivo de una sola sonda y para llevar a cabo los modos MSI y SCMS ambientales utilizando las técnicas MS de una sola sonda.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Fabricación de una sola sonda</fuerte>Tubo de</td></tr> <tr><td>cuarzo de doble orificio, 1.120' &rsquo; y tiempos; 0.005" y tiempos; 12"</td><td>Friedrich & Dimmock, Inc., Millville, NJ&nbsp;</td><td>MBT-005-020-2Q Extractor</td><td></td>láser de</tr><tr><td>micropipeta&nbsp;</td><td>Sutter Instrument Co., Novato, CA&nbsp;</td><td>Modelo P-2000</td><td></td></tr><tr><td>Capilar de sílice fundida, ID: 40&nbsp; y micro; m, OD: 110&nbsp; y micro; m</td><td>Molex, Lisle, IL</td><td>TSP040105</td><td></td></tr><tr><td>resina de curado UV&nbsp;</td><td>Prime Dental, Prime-Dent, Chicago, IL, EE. UU</td><td>. Artículo No. 006.030</td><td></td></tr><tr><td>Lámpara UV LED</td><td>Foshan Liang Ya Dental Equipment, Guangdong, China</td><td>LY-C240</td><td></td></tr><tr><td>Resina epoxi</td><td>Devcon, Danvers, MA &nbsp;</td><td>N.º de pieza 20945</td><td></td></tr><tr><td>Microfiltro en línea&nbsp;</td><td>IDEX Salud & Ciencia LLC, Lake Forest, IL</td><td>M-520</td><td></td></tr><tr><td>Microunion &nbsp;</td><td>IDEX Salud & Science LLC, Lake Forest, IL</td><td>M-539</td><td></td></tr><tr><td>Portaobjetos de microscopio (vidrio)</td> <td>C & Un Estreno Científico, Manassas, VA&nbsp;</td><td>9105</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa&nbsp;</td><td>Hamilton, Reno, NV</td><td>1725LTN 250UL</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Espectrómetro de masas</td></tr><tr><td>LTQ Orbitrap Orbitrap Mass sprectrometer</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA&nbsp;</td><td>LTQ Orbitrap XL</td><td></td></tr><tr><td>Xcalibur 2.1 Software</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA&nbsp;</td><td></td><td></td>XCALIBUR21</tr><tr><td>Fance Stage Control</td><td>Laboratorio Nacional del Noroeste del Pacífico, Richland, WA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vista rápida de MSI</td><td>Laboratorio Nacional del Noroeste del Pacífico, Richland, WA<td</td><td></td><td></td></tr><tr> colspan="4"><fuerte>Dispositivo de cierre de contacto</fuerte></td></tr><tr><td>USB-6009 Instrumentos nacionales DAQ multifunción</td><td>, Austin, TX</td><td>779026-01</td><td></td></tr><tr><td>DR-5V SDS Relé</td><td>Panasonic, Kadoma, Japón &nbsp;</td><td>DR-SDS-5</td><td></td></tr><tr><td>Puertas lógicas Controlador de línea de 50 ohmios</td><td>Texas Instruments, Dallas, TX&nbsp;</td><td>SN74128N</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Configuración de una sola sonda</fuerte></td></tr><tr><td>Escenario lineal motorizado y controlador (3 juegos)</td><td>Newport, Irvine, CA</td><td>Conex-MFACC</td><td></td></tr><tr><td>Miniatura escenario XYZ</td><td>Newport, Irvine, CA</td><td>MT-XYZ&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Traducción etapa XY</td><td>ThorLab, Newton, NJ</td><td>PT1 y PT102</td><td></td></tr><tr><td>Thermo LTQ XL brida de interfaz de fuente de iones</td><td>New Objective, Woburn, MA&nbsp;</td><td>PV5500</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio estereoscópico digital, 250X - 2,000X</td><td>Shenzhen D& F Co., Shenzhen, China</td><td>Supereyes T004</td><td></td></tr><tr><td>USB Microscopio de fotografía digital &nbsp;</td><td>DX.com, Hong Kong, China</td><td>S02 25~500X&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Bomba de jeringa</td><td>Chemyx Inc., Stafford, TX&nbsp;</td><td>Nexus 3000</td><td></td></tr><tr><td>Placa de prueba óptica de aluminio sólido, 8" x 8" x 1/2"</td> <td>Thorlabs, Newton, NJ</td><td>MB810</td><td></td></tr><tr><td>Soporte de abrazadera flexible</td><td>Siskiyou, Grants Pass, OR &nbsp; &nbsp;</td><td>MXB-3h</td><td></td></tr><tr><td colspan="4"><fuerte>Solventes</fuerte></td></tr><tr><td>Methol&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>34860 Chromasolv</td><td></td></tr><tr><td>Water</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>W4502</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrilo</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>34967 Chromasolv</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Cell culture</td></tr><tr><td>Dulbecco' s Águila Modificada' s Medio (DMEM)&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal bovino (FBS) 10% inactivado por calorGibco</td><td>/Life Technologies, Long Island, NY</td><td>10100-139</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>10 mM HEPES (pH 7.4)&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>25-060-CI</td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato (PBS)&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>46-013-CM</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE Express&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA&nbsp;</td><td>12604-013</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 12 pocillos&nbsp;</td><td>Corning Inc., Corning, NY&nbsp;</td><td>Matraz Falcon 351143</td><td></td></tr><tr><td>T25</td><td>Corning Inc., Corning, NY&nbsp;</td><td>Microcubreobjetos Falcon 3055</td><td></td></tr>, <tr><td>redondos, n.º 1</td><td>VWR International, Radnor, PA&nbsp;</td><td>48380-046</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (sulfóxido de dimetilo)</td><td>VWR International, Radnor, PA&nbsp;</td><td>BDH1115-1LP</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Tissue imaging</td></tr><tr><td>Cyro-Cut Microtomo</td><td>American Optical Coporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek, Temperatura óptima de corte (OCT)&nbsp;</td><td>Sakura Finetek Inc., Torrance, CA</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Portaobjetos de microscopio (policarbonato)</td><td>Soluciones de suministro científico, Elk Grove Village, IL</td><td>P11011P</td><td></td></tr></tbody></table>

aplicaciones de la sonda: single-imaging espectrometría de masas y análisis de celda única bajo condiciones ambientales

Applications of the Single-probe: Mass Spectrometry Imaging and Single Cell Analysis under Ambient Conditions

Las imágenes de espectrometría de masas (MSI) y el análisis de espectrometría de masas de una sola célula (SCMS) in situ en condiciones ambientales son dos campos emergentes con un gran potencial para el análisis detallado de espectrometría de masas (MS) de biomoléculas a partir de muestras biológicas. La sonda única, un dispositivo miniaturizado con capacidades integradas de muestreo e ionización, es capaz de realizar análisis MSI ambiental y SCMS in situ. En el caso de la MSI ambiental, la sonda única utiliza la microextracción de superficie para realizar continuamente el análisis de MS de la muestra, y esta técnica permite la creación de imágenes de MS con alta resolución espacial (8,5 μm) a partir de muestras biológicas como secciones de cerebro y riñón de ratón. Ambient MSI tiene la ventaja de que se necesita poca o ninguna preparación de la muestra antes del análisis, lo que reduce la cantidad de artefactos potenciales presentes en la adquisición de datos y permite obtener un análisis más representativo de la muestra. En el caso de la SCMS in situ, la punta de una sola sonda puede insertarse directamente en células eucariotas vivas, como las células HeLa, debido al pequeño tamaño de la punta de muestreo (< 10 μm), y esta técnica es capaz de detectar una amplia gama de metabolitos dentro de células individuales casi en tiempo real. El SCMS permite adquirir una mayor sensibilidad y precisión de la información química a nivel de una sola célula, lo que podría mejorar nuestra comprensión de los procesos biológicos a un nivel más fundamental de lo que era posible anteriormente. El dispositivo de una sola sonda puede acoplarse potencialmente con una variedad de espectrómetros de masas para una amplia gama de estudios MSI y SCMS.

La única sonda se utilizó con éxito para el análisis ambiental de MSI de tejido del riñón del ratón en sección 15. El dispositivo utiliza el mecanismo de líquido de la superficie micro-extracción (Figura 1a), que proporciona la extracción de analito altamente eficiente de un área pequeña, dando lugar a abundantes señales de iones intensidades en los resultados de MSI. Por ejemplo, las intensidades de señal de más de 10 7 Se han logrado algunos metabolitos abundantes (Figura 2a). Se detectaron un gran número de metabolitos de esta manera, incluyendo un número de esfingomielina (SM) y fosfatidilcolina (PC) especies tales como [SM (34: 1) + Na] + (725,5575 m / z), [PC (32: 0) + H] + (734,5700 m / z), [PC (34: 1) + Na] + (782,5696 m / z), y [PC (38: 5 + Na)] + (814,5726 m / z). Estos compuestos fueron identificados con masas de alta resolución y exactitud de la masa cuando se combina tespectrómetro de masas de alta resolución OA. Por ejemplo, la identificación se logró con menos de 4 ppm m / z exactitud de masa (es decir, la diferencia entre los valores observados y teóricos) para cada metabolito (figura 2b) en los resultados que aquí se presenta. Además, los análisis de MS en tándem (es decir, MS / MS) se llevaron a cabo también para la identificación de más confianza de especies de interés. 15 Debido a la capacidad de realizar micro-extracción líquido eficaz en un área pequeña, el dispositivo de una sola sonda se puede utilizar para llevar a cabo experimentos de alta resolución MSI espaciales en condiciones ambientales 15. Por ejemplo, imágenes detalladas MS de secciones de riñón de ratón han sido obtenidos que ilustra la distribución espacial de los metabolitos seleccionados (Figura 2C). La resolución espacial de la imagen de MS se determinó que era 8,5 micras, siguiendo la métrica ampliamente utilizado de tener la Transiti. en punto de una función determinada dentro de un brusco cambio de intensidad del 20-80% de la señal MS 18 En el caso de fosfolípidos [PC (38: 5 + Na)] + en la sección de riñón de ratón, la transición entre la función de médula interna y la médula externa se lleva a cabo a través de un ciclo de exploración en el cronograma, que muestra un cambio de intensidad alcance de más de 20-80%. Sobre la base de la velocidad de la muestra en movimiento (10,0 m / s) y MS tasa de adquisición de datos (0,85 seg / espectro), la muestra se mueve a distancia en una MS escanear ciclo (8,5 micras), es decir, la resolución espacial MSI, se puede calcular (Figura 2d). Esta resolución espacial es uno de los más alto alcanzado aún para las técnicas de MSI ambientales realizadas en muestras biológicas. Para SCMS la única sonda fue capaz de lograr el análisis de las células HeLa vivas individuales 16. El tamaño de la punta de la sonda sola es típicamente inferior a 10 micras (Figure 3a), que es lo suficientemente pequeño para insertarse directamente en muchos tipos de células eucariotas, de las cuales el diámetro es de ~ 10 m, para la extracción y el análisis de MS. El proceso de inserción de la punta de una sola sonda en una célula se puede monitorizar visualmente utilizando un microscopio estéreo digital (Figura 3b), y la penetración de la membrana celular puede ser confirmado a través del cambio rápido y significativo de espectros de masa de PBS (o cultivo celular fresco medio) a compuestos intracelulares (Figuras 3C y 3D). Los experimentos pueden llevarse a cabo en ambos modos de iones positivos y negativos para detectar los tipos más amplios de la especie molecular. Por ejemplo, 18 especies de lípidos diferentes se identificaron en el modo positivo, incluyendo esfingomielinas (SM) y fosfatidilcolinas (PC), mientras que los fosfatos de adenosina (AMP, ADP, y ATP) se detectaron en el modo de ion negativo (Figuras 3c y d). El retardo de tiempo entre el i-inserción única sondanto una célula y la detección de la señal era típicamente menos de dos segundos, lo que permite una detección en tiempo casi real de metabolitos celulares. SCMS se aplicó también a experimentos en los que las células se trataron con fármacos contra el cáncer (por ejemplo, OSW-1, paclitaxel y doxorrubicina) 19]. Los medicamentos correspondientes pueden ser detectadas dentro de las células HeLa después de un tratamiento de 4 horas en una serie de concentraciones (es decir, 10 nM, 100 nM, 1 mM, y 10 mM) en DMSO (dimetil sulfóxido), utilizando las células no tratadas (añadir DMSO solamente ) como los controles. Las señales MS de medicamentos no estaban presentes en el PBS extracelular o el control (Figura 3E), pero no se detectaron en las células individuales utilizando la técnica de MS-sola sonda (solamente los resultados del tratamiento 100 nM se muestran en la figura 3f). Dado que las células se aclararon con PBS (o medio de cultivo celular fresco) para eliminar los compuestos extracelulares y contaminaciones, la detección de metabolitos endógenos (por ejemplo, lípidos celulares unad fosfatos de adenosina) y los compuestos exógenos (por ejemplo, medicamentos contra el cáncer) indica que la sonda individual MS técnica se puede utilizar para analizar compuestos intracelulares. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/53911/53911fig1.jpg" /> Figura 1. La fabricación e instalación del single-sonda para el análisis ambiental MSI y SCMS. A) procedimientos de fabricación de la sola sonda. B) fotografía de una sola sonda fabricada unido a un portaobjetos de vidrio. C) Fotografía de la sola configuración sonda conectada a un espectrómetro de masas. d) Diagrama de la configuración de una sola sonda unida a un espectrómetro de masas. Durante un experimento, el disolvente de muestreo se proporciona continuamente desde la jeringa, el voltaje de ionización se aplica a la unión conductora de la espectrómetro de masas, dos microscopios digitales se utilizan para controlar la colocación de la muestra, la etapa de XYZ motorizadosistema se utiliza para controlar el movimiento de la muestra, y un espectrómetro de masas se utiliza para el análisis. e) Fotografía del sistema estereoscopio digitales personalizado. f) Fotografía que muestra el estereoscopio digital conectada a la brida de interfaz de fuente de iones a través de una junta óptica. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911fig1large.jpg" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/53911/53911fig2.jpg" /> Figura 2. Resultados de un estudio de MSI ambiente de una sección de riñón de ratón con una alta resolución espacial y de masas. A) un espectro de masas representativo de la única sonda MSI. La intensidad máxima de los metabolitos detectados puede alcanzar 3,39 x 10 7 (unidades arbitrarias). B) Una selección de los metabolitos detectados presenta con su precisión en masa. C)MS imágenes de [PC (32: 0) + H] + y [PC (34: 1) + Na] + tomadas de una sección de riñón de ratón a 8,5 micras resolución espacial. PC: fosfatidilcolina. Barra de escala: 2 mm; 0.20 mm (recuadro) d) Determinación de la resolución espacial de la imagen de MS. [PC (38: 5) + Na] + (adaptado con permiso de referencia 15). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="figura 3" src="/files/ftp_upload/53911/53911fig3.jpg" /> Figura 3. Los resultados de un análisis SCMS ambiente de tratados con el fármaco células HeLa con resolución de alta masa. A) zoom en la fotografía de la punta de una sola sonda que muestra un tamaño típico de &lt;10 micras de diámetro. B) Fotografía tomada en el punto de la inserción de una sola sonda en una célula HeLa. Barra de escala: 50 micras.c) Un espectro de masas modo de ion positivo típico con las identificaciones de un número de PC (fosfatidilcolina) especies. d) Una lista representativa de los metabolitos detectados a partir de análisis SCMS de las células HeLa, tanto en los modos de iones positivos y negativos. EF) Los espectros de masas de el control y tratada (100 nM OSW-1) células (adaptado con permiso de referencia 16). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> Figura S1. Diagrama de circuito del dispositivo electrónico utilizado para producir la señal de cierre de contacto para el espectrómetro de masas para recoger datos. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911figS1.jpg" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver o descargar esta figura.</a>

Aquí, presentamos protocolos para realizar tanto imágenes de espectrometría de masas ambiental (MSI) de tejidos como análisis in situ de MS de células individuales vivas (SCMS) utilizando la sonda única, que es un dispositivo multifuncional miniaturizado para el análisis de MS.

Aplicaciones de la sonda: Single-Imaging espectrometría de masas y análisis de celda única bajo condiciones ambientales

Mass spectrometry imaging (MSI) and in-situ single cell mass spectrometry (SCMS) analysis under ambient conditions are two emerging fields with great ...

El objetivo general de este método es crear un dispositivo de muestreo a microescala, el Single-probe, para analizar células individuales vivas mediante espectrometría de masas en condiciones ambientes. Y para realizar imágenes por espectrometría de masas ambiental de tejidos biológicos con alta resolución espacial. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en estudios biológicos y farmacéuticos.Por ejemplo, qué moléculas están presentes en células individuales vivas y cómo están distribuidas en los tejidos. La principal ventaja de esta técnica es que la sonda única es un dispositivo multifuncional que puede utilizarse tanto para el análisis de células individuales vivas como para experimentos de imagen por espectrometría de masas ambiental de alta resolución. Aunque este método puede analizar células individuales y tejidos, también puede aplicarse a otros sistemas donde sea deseable el muestreo a escala microscópica, como el análisis espacial de productos químicos y microcolonias vivas y biopelículas.Realizará el procedimiento junto conmigo Wei Rao, un posdoctorado de mi laboratorio. Coloque un órgano entero de ratón de interés en el centro de un pequeño pozo de plástico. Sumerja el órgano en compuesto de inclusión tisular hasta una altura de aproximadamente 10 mm.Coloque inmediatamente los tejidos en nitrógeno líquido para congelación rápida. Para preparar el corte de tejido de ratón, tome el órgano congelado y descongele hasta 15 grados Celsius en un criomicrotomo con control de temperatura. Sujete el tejido sobre una base de acero con aproximadamente 500 microlitros de compuesto de inclusión para tejidos, y colóquelo en el soporte de corte del criomicrotomo de modo que la orientación deseada del corte quede frente al cuchillo.Corte el tejido con un grosor de 12 micrones. Luego, coloque las secciones del tejido sobre portaobjetos de microscopio de policarbonato y déjelas secar durante 30 minutos a temperatura ambiente. Obtenga una muestra celular, como 1 mililitro de suspensión de células HeLa, y añádala a 9 mL de medio de cultivo celular completo en una placa de cultivo celular estándar de 10 cm.Mantenga las células en cultivo a 37 grados Celsius, con 5%CO2 durante dos o tres días, hasta que la superficie de crecimiento esté cubierta en un 70-80% en la placa de cultivo celular. Realice el pase celular en la placa de cultivo celular. Para ello, aspire el medio de crecimiento y enjuague las células con 5 mL de solución salina tamponada con fosfato 1x.Elimine el PBS utilizando una punta de aspiración estéril e incube las células con 2,5 mL de tripsina durante aproximadamente 5 minutos a 37 grados Celsius para desprender las células de la placa de cultivo. Detenga la actividad de la tripsina añadiendo 7,5 mL de medio de cultivo celular completo y luego resuspenda uniformemente las células. Para preparar las muestras celulares para un experimento de espectrometría de masas de una sola célula, o SCMS, coloque primero microportaobjetos individuales en los pocillos de una placa de 12 pocillos.Luego, agregue 1.8 mL de medio de cultivo celular y 0.2 mL de suspensión celular en el pocillo. Mezcle suavemente las células con una agitación leve de la placa antes de incubar en un ambiente de 5% CO2 a 37 grados Celsius, durante aproximadamente 24 horas. Para realizar el tratamiento farmacológico de las células cultivadas, agregue una solución del compuesto farmacológico en la placa de cultivo celular de 12 pocillos.Coloque el tubo de cuarzo con doble orificio en un micropipeteador láser y estire una aguja de cuarzo con doble orificio. Como puntos iniciales, ajuste el calor a 400, el filamento a tres, la velocidad a 80, el retardo a 150 y el estiramiento a 250. Corte la punta estirada de modo que queden aproximadamente 5 mm de capilar de cuarzo con doble orificio sin estirar en el otro extremo.Corte una sección de 80 mm de capilar de sílice fundida para utilizarlo como capilar proveedor de disolvente. Luego inserte el capilar en uno de los orificios del extremo plano de la aguja de cuarzo de doble orificio. Utilizando la llama, estire un capilar de sílice fundida para formar un emisor nanoESI, córtelo a una longitud de 7-10 mm e insértelo en el otro orificio del extremo plano de la aguja de cuarzo de doble orificio.Aplique una cantidad mínima de resina curable con UV en el extremo plano de la aguja de cuarzo con doble orificio. Solidifique la resina utilizando una lámpara UV LED durante aproximadamente 20 segundos, para fijar el capilar proveedor de disolvente y el emisor nanoESI. A continuación, corte longitudinalmente en dos mitades un portaobjetos de microscopio estándar.Luego, coloque la sonda individual en un extremo del portaobjetos, de modo que el emisor nanoESI quede orientado hacia afuera. Aplique el epoxi común al cuerpo de la sonda individual para fijarla firmemente al portaobjetos antes de dejarla reposar durante la noche para que endurezca. Este sistema incluye una brida de interfaz de fuente de iones personalizada para el espectrómetro de masas, y una placa óptica de aluminio equipada con microscopio digital USB, una etapa de traslación manual XYZ en miniatura y un sistema de etapa de traslación XYZ motorizado.Modifique la brida de la interfaz de la fuente de iones del espectrómetro de masas y fabrique el soporte del estereomicroscopio digital según se describe en el protocolo del texto. Sujete el estereomicroscopio digital modificado, un microscopio digital USB, una etapa de traslación manual XYZ miniatura con un soporte de abrazadera flexible y el sistema de etapa de traslación XYZ motorizado a la placa óptica de aluminio. Utilice el soporte de abrazadera flexible para fijar la portaobjetos de vidrio unido a una sonda única.A continuación, conecte el sistema de sonda única al espectrómetro de masas. Ajuste el soporte de sujeción flexible y la etapa XYZ miniatura para colocar el emisor de la sonda única frente a la entrada del espectrómetro de masas. Desele el segmento de muestra a temperatura ambiente y colóquelo sobre el sistema de etapa de traslación XYZ motorizado situado debajo de la sonda única.Ajuste la posición de la muestra cambiando las coordenadas en el software de control. Utilice una jeringa para bombear el disolvente de muestreo a una velocidad adecuada. A continuación, aplique el voltaje de ionización.Ajuste la altura de la sonda individual de modo que quede justo por encima de la superficie de la muestra y pueda realizar la extracción de metabolitos de la superficie. Eleve cuidadosamente la platina Z y luego utilice el microscopio digital USB para monitorear el cambio de distancia entre la punta de la sonda individual y la superficie del tejido. Establezca los parámetros para escanear la sección de interés dentro de la muestra.Para las secciones de riñón de ratón presentadas aquí, utilice una velocidad de rastreo de 10 micrómetros por segundo y una distancia de 20 micrómetros entre líneas. Establezca los parámetros para el rastreo a través de la sección de interés dentro de la muestra. Para las secciones de riñón de ratón presentadas aquí, utilice una velocidad de rastreo de 10,0 micrómetros por segundo y una distancia de 20 micrómetros entre líneas.Configure un método para la adquisición automatizada de espectros de MS desde el espectrómetro de masas. Para la IMS con alta resolución de masas en una muestra de riñón de ratón, utilice una resolución de masas de 60.000, modo positivo de 5 kV, 1 microescaneo, tiempo máximo de inyección de 150 milisegundos y control automático de ganancia activado. Inicie la adquisición de datos de IMS y luego construya imágenes de MS a partir de archivos de MS en bruto según se describe en el protocolo del texto.Configure el sistema de sonda única según las instrucciones para MSI y ajuste el caudal del disolvente. Lave las células cultivadas adheridas a las laminillas de microcubierta con PBS para eliminar el medio de cultivo y los componentes extracelulares del fármaco. A continuación, coloque la laminilla de vidrio con las células sobre el sistema de etapa de traslación motorizado XYZ para el experimento.Enfoque el estereomicroscopio digital sobre la muestra, en la punta de la sonda individual para monitorear la penetración celular durante el análisis. Utilice el microscopio digital USB situado al lado de la sonda individual para supervisar las condiciones de trabajo del emisor nanoESI en la sonda individual. Use el programa de control del escenario motorizado XYZ y el estereomicroscopio digital para localizar una célula de interés y posicionar con precisión la punta de la sonda individual sobre la muestra.Inicie la adquisición de datos de MS antes de insertar la punta del sonda única en la célula. Baje la placa que contiene la célula para extraer la punta del sonda única de la célula. Finalmente, deje fluir el disolvente durante aproximadamente tres minutos, para enjuagar completamente la sonda única.Se realizó la imagen espectrométrica de masas en condiciones ambientales de secciones de riñón de ratón, y se puede detectar un gran número de moléculas presentes en la superficie del tejido. Se representó la distribución espacial y la abundancia relativa de múltiples moléculas en la superficie del tejido. Se logró una resolución espacial de 8,5 micrones mediante la observación de transiciones nítidas de características presentes dentro de los datos de espectrometría de masas.La fabricación de la sonda única con una punta afilada y canales abiertos es fundamental para el análisis de células individuales. Se necesitan microscopios para localizar las células diana y monitorear el proceso de penetración celular. El cambio de señal en los espectros de masas también proporciona información adicional para confirmar la penetración celular.Se ha detectado un gran número de moléculas a partir de células individuales vivas. Cuando se utiliza en estudios de fármacos anticancerígenos, se realizan experimentos con células de control para mostrar la diferencia provocada por el tratamiento con fármacos anticancerígenos. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo se fabrica la sonda individual y de cómo se utiliza este dispositivo para el análisis por espectrometría de masas de una sola célula y para la obtención de imágenes por espectrometría de masas en condiciones ambientales de tejidos biológicos.Por lo general, las personas nuevas en este método podrían tener dificultades porque se necesitan instrucciones detalladas para fabricar el dispositivo de una sola sonda, configurar todo el sistema y operar los instrumentos. Una vez dominado, el análisis de células individuales se puede realizar continuamente en muchas células. Y cada análisis toma menos de tres minutos.Terminar un experimento de imagen por espectrometría de masas en condiciones ambiente puede llevar algunas horas, dependiendo del tamaño de la muestra, la resolución espacial y el espectrómetro de masas utilizado. Al intentar este procedimiento, es importante recordar que la fabricación de una sonda única de alta calidad es el paso clave. Además, el ajuste y la operación del instrumento son fundamentales para llevar a cabo con éxito un experimento.Se pueden desarrollar otros métodos siguiendo procedimientos similares a los presentados aquí. Por ejemplo, se pueden añadir reactivos al disolvente de la muestra y realizar análisis reactivos de célula individual y espectrometría de masas con imagen en condiciones ambiente para mejorar la detección de moléculas procedentes de las muestras. Tras su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en los campos del análisis de célula individual y de la espectrometría de masas con imagen pudieran trabajar en condiciones ambiente.Esta técnica podría utilizarse potencialmente en investigaciones de biología celular, estudios de farmacología y pruebas clínicas. No olvide que trabajar con capilares de cuarzo afilados y resina epoxi curable por UV puede ser peligroso, y siempre se deben tomar precauciones, como usar guantes y gafas de seguridad contra la radiación UV, durante la realización de este procedimiento.

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Investigación

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Biología

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