Name: Aislamiento de células endoteliales de ratón coronaria (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 36 s
Description: Aprende a aislar células endoteliales coronarias de ratón con alto rendimiento y pureza mediante este protocolo validado. Esta técnica robusta facilita experimentos de imagen y biología molecular para avanzar en la investigación cardiovascular.

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Este trabajo fue apoyado por la subvención de los Institutos Nacionales de Salud (HL115578 de A. Makino).

La investigación en ratones fue aprobado por el Comité Institucional de Cuidado de Animales y el empleo (IACUC) de la Universidad de Arizona y se llevó a cabo de acuerdo con el Instituto Nacional de Salud (NIH) Directrices. NOTA: Las secciones 1, 2 y 3 deben llevarse a cabo el día antes del experimento como configuración. 1. Preparación de Soluciones <ol><li> tampón de CD31 (50 ml) <ol><li> Añadir 50 ml de 1 x tampón fosfato salino (PBS) a un tubo de 50 ml. Pesar 0,05 g Albúmina de suero bovino (BSA) y 0,037 g de ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) y se añade al tubo de 50 ml y colocar el tubo de girar durante aproximadamente 1 h hasta que el polvo se disuelva. Ajustar el pH a 7,4, se filtra a través de un filtro de 0,2 micras en un nuevo tubo de 50 ml y se almacena a 4 ° C hasta su uso. </li></ol></li><li> Solución salina equilibrada de Hank (HBSS) con HEPES (500 ml) <ol><li> Añadir 1,1915 g de HEPES hacer HEPES 10 mM en solución HBSS y mezclar bien. Medir el pH y ajustar a 7,4. Se filtra y se almacena a 4DO. </li></ol></li><li> 1X solución de Kreb (1 L) <ol><li> Añadir 100 ml de solución de 10 × de Krebs [Tabla 1] para duplicar agua destilada en un matraz de 1 L. Pesar 2,1 g de bicarbonato de sodio y 2 g de D-glucosa y añadir al matraz. Mezclar y ajustar el volumen total a 1 L. </li><li> Solución de la burbuja con un 95% de O2 / 5% de CO2 del gas durante 30 minutos y se filtra la solución dentro de la campana. Almacenar a 4 ° C y se mantiene en hielo durante el experimento. </li></ol></li></ol> 2. Preparación de las perlas magnéticas <ol><li> Añadir 1 ml de tampón de CD31 en cada tubo 1,5 ml (un tubo por muestra). Mezclar las perlas de IgG anti-rata de oveja y añadir la cantidad apropiada para cada muestra [Tabla 1]. Agitar vigorosamente los tubos 30 veces y colocarlos en la placa magnética durante 1 min de agitación. Abrir los tubos mientras que en el plato y volcar las soluciones en un cubo. </li><li> Añadir 1 ml de tampón de CD31 en cada tubo. Añadir 2 l de rata anti-ratón anti CD31cuerpo a cada tubo y girar tubos O / N a 4 ºC. </li></ol> 3. El tratamiento en autoclave <ol><li> Autoclave todas las herramientas de cirugía y puntas de pipeta. Cortar los extremos de las puntas de pipeta de manera que hay consejos con 4 diámetros diferentes, de mayor a más estrecho. diámetros aproximados de los consejos son de 3 mm, 2,5 mm, 2 mm y 1,5 mm, respectivamente. Cortar las puntas y autoclave el día anterior con 30 minutos de esterilización a una temperatura de 121 ºC. NOTA: Secciones 4-11 deben llevarse a cabo en el día del experimento. </li></ol> 4. Preparación de Soluciones <ol><li> Preparar el tampón de lavado que contenía 2% enriquecida con hierro de suero de ternera (FISQ) en M199. Para imágenes, preparar 30 ml / ratón. </li><li> Preparar la solución de enzima (10 ml / muestra). Pesar 0,6 unidad / ml de dispasa y 1 mg / ml de colagenasa de tipo II en un tubo de 50 ml. Añadir M199 y rotar el tubo a 4 ºC durante 15 minutos. Filtrar a través de filtro de 0,2 micras en un nuevo tubo de 50 ml inside la campana y mantener a 4 ° C hasta su uso. </li><li> Preparar HBSS / HEPES con heparina. Añadir 10 ml de HBSS con HEPES 10 mM en 15 ml tubo. Añadir 100 ml de heparina al tubo y mantenerla en 4 ° C hasta su uso. </li></ol> 5. lavado de las perlas <ol><li> Sacar los tubos con los granos de la rotador a 4 ºC y llevar a la campana. Colocar los tubos en la placa magnética y agitar durante 1 min. Volcado de la solución y añadir tampón CD31 1 ml en cada tubo. </li><li> Tomar los tubos de la placa magnética y agitar vigorosamente 30 veces. Poner los tubos de nuevo en la placa magnética y repetir para un total de 3 lavados. Después de la terminación, poner los tubos de nuevo a 4 ° C y mantener girando hasta su uso. </li></ol> 6. La disección <ol><li> Inyectar los ratones por vía intraperitoneal con 0,1 ml de heparina para prevenir la coagulación de la sangre. Espere 10 minutos y, a continuación anestesiar a los ratones utilizando la inyección intraperitoneal de 0,01 ml de pentobarbital. Compruebe si el ratón está sintiendodolor por pinzamiento del pie. </li><li> Coloca el ratón sobre una placa de poliestireno con la cabeza hacia arriba y mantenga los brazos con alfileres. El uso de fórceps y duras cortadas tijeras para cortar la piel en la zona torácica superior hasta la garganta. </li><li> Hacer un corte en el centro de la caja torácica justo por encima del diafragma. Cortar el hueso hacia los lados y hacia arriba, hacia la garganta para hacer un triángulo exponer el corazón y los pulmones. Cortar la aorta justo por encima del diafragma. </li><li> Mantenga el timo con unas pinzas sin tirar y usar las tijeras para cortar cualquier tejido conectivo cuidadosamente para eliminar los pulmones y el corazón juntos. Coloque los tejidos en un vaso de precipitados con 1 × Krebs de, agitar con unas pinzas y se transfieren a placa de 6 cm con 1 × Krebs de. </li><li> Retire los lóbulos pulmonares utilizando tijeras y pinzas. Insertar un catéter estéril 20 G en la aorta. Enjuague la sangre en el sistema circulatorio coronario con HBSS / heparina. Hacer un pequeño corte en el ventrículo, agitar el corazón y transferir a un tubo de muestra de M199. Mantenga los tubos en hielo. </li></ol><p<html> class = &quot;jove_title&quot;&gt; 7. La digestión del tejido <ol><li> Transferir el corazón a una placa de 6 cm llena con 10 ml de solución de enzima y picar en trozos pequeños con tijeras. Colocar las cápsulas en la incubadora a 37 ° C durante 15 minutos. Agitar materiales digeridos por pipeteando arriba y abajo 30 veces a través de una punta con un extremo cortado para permitir que el tejido pase a través de más fácil. </li><li> Poner de nuevo en la incubadora de 37 ° C durante otros 15 minutos. Repita la agitación tres veces, cada vez utilizando puntas de pipeta de grandes aberturas para más estrecho y 15 minutos de incubación entre cada uno. </li><li> Después de la última incubación de 15 minutos, tomar muestras y en la campana. solución pipetear hacia arriba y hacia abajo 30 veces usando punta de la pipeta con la abertura más estrecha y pasar por un colador de 40 micras de células en un nuevo tubo de 50 ml. </li><li> Lavar el plato con tampón de lavado de 10 ml con una pipeta de 10 ml y transferir a células colador. Poner los tubos de 50 ml en la centrífuga y centrifugado a 400 g durante 10 min a TA. </li></ol>itle &quot;&gt; 8. Lavado y conjugación con los granos <ol><li> Extraer el sobrenadante sin perturbar el sedimento. Lavar las células con tampón de lavado 5 ml dos veces. </li><li> Consigue uno de los previamente preparados tubos de 1,5 ml con los granos y el trabajo sobre un tubo cada vez. Ponga un tubo de 1,5 ml en la placa magnética, agitar 3 veces y abrirlo. </li><li> Después de la última centrífuga, eliminar la mayor cantidad sobrenadante como sea posible sin perturbar el sedimento. Disociar los grupos de células con un movimiento rápido con vigor. </li><li> Añadir tampón de lavado 1 ml al tubo de 50 ml y mezclar las células con una pipeta de 1 ml. Volcado de la solución del tubo de 1,5 ml y se añade 1 ml de la suspensión celular del tubo de 50 ml a las perlas. Flick los tubos 30 veces y luego girar a 4 ºC durante 30 minutos. </li></ol> 9. Preparación de Cultivos Celulares / Imaging <ol><li> Preparar cámaras para el recubrimiento de las células. Añadir solución de gelatina (5% w / v, 300 l) a la cámara de bien para cubrir la superficie y se incuba durante 30 min a 37 ºC. Después de la incubación, remove gelatina y seca la superficie. </li><li> Sacar los tubos con perlas / células después de 30 minutos de rotación y poner en el plato magnético en el interior de la campana. Agitar durante 2 min, volcado y añadir tampón de lavado 1 ml. </li><li> Tome tubos fuera de la placa, agitar vigorosamente 30 veces y luego flick 30 veces. Ponerlos de nuevo en placa magnética y agitar durante 1 min. Repetir 4 veces para un total de 5 lavados, pero con 1 min agitando en el plato. </li><li> Después del último lavado, saque un tubo y trabajar en cada uno de los tubos a la vez. Agite 30 veces y luego chasquear 30 veces. Póngalo en la placa magnética y agitar durante 1 min. Volcar y se añade 1 ml de 20% de medio IFCS CE (pre-calentado a 37 ºC). </li><li> Agitar enérgicamente 30 veces y luego flick 30 veces. Ajustar la pipeta de 500 l y pipetear hacia arriba y hacia abajo 10 veces. Transferir 500 l de cada cámara. </li><li> Ponga a 37 ºC y dejar incubadora O / N. Al día siguiente, lavar las células con medio FBS 10% de la CE. </li></ol> 10. Preparación para la Blot Las muestras Western (WB) <ol><li> Take los tubos con perlas / células después de 1 h de rotación. Ponerlos en la placa magnética y agitar durante 2 min. Volcar sobrenadante y añadir 1 ml de HBSS frío. Agitar enérgicamente 30 veces y luego flick 30 veces. Repetir dos veces por 3 lavados, pero con 1 min agitando en el plato. </li><li> Tras el último lavado, poner los tubos en la placa magnética y agitar durante 1 min. Eliminar el tampón usando la pipeta y lisar las células para WB utilizando un método descrito previamente 11,12. lisado recopilada por lo general contiene alrededor de 30 g de proteína. </li></ol> 11. Imaging <ol><li> Lavar las células 3 veces con medios de comunicación, con un volumen final de 250 l para una cámara. Añadir 1,5 l de Dil-acLDL a las células. A partir de este punto, mantener las células en la oscuridad. </li><li> Incubar durante 3,5 horas a 37 ° C. Añadir 1,5 l de Hoechst, mezclar bien y se incuba durante 30 min a 37 células ˚C.Wash con PBS y fijar con 4% de paraformaldehído (PFA) durante 20 min a RT. </li><li> Lavar dos veces con PBS y bloquear con 5% BSA-PBS durante 30 min a TA. Lavar dos veces con 1% BSA-PBS. Diluir BS-lectina-FITC usando 1% BSA-PBS a una concentración de 2 mg / ml y añadir 300 l a cada cámara. </li><li> Ponga la cámara en el agitador orbital a temperatura ambiente durante 30 min. Lavar con PBS 3 veces. </li><li> Visualizar las células bajo el microscopio de fluorescencia con el tiempo de exposición de 200 ms para FITC (tinción de lectina, un marcador CE, excitación / emisión 488 nm / 519 nm), 30 ms para DAPI (Hoechst, una tinción, excitación / emisión nuclear a 358 nm / 461 nm), y 300 ms para TRITC (tinción acLDL, un marcador de la CE, excitación / emisión a 557 nm / 576 nm). Adquirir imágenes con una lente objetivo de 20X. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Las células endoteliales más ampliamente utilizado en la investigación son células humanas endoteliales de vena umbilical (HUVEC) debido a su comodidad y facilidad de cultivo. Sin embargo, una gran cantidad de investigación requiere la disponibilidad de un modelo fisiológico alcanzado por el aislamiento de células endoteliales de otros órganos específicos 10. Las células endoteliales forman una población muy minoritaria de las células en el tejido del corazón; su aislamiento y el cultivo puede llegar a ser mu...

Los modelos de ratón de diversas enfermedades cardiovasculares y los trastornos metabólicos tienen cambios fisiológicos y moleculares que son similares a los encontrados en pacientes. Por otra parte, la alteración genética de los ratones es una poderosa herramienta que nos permite investigar el papel patogénico de genes específicos en el desarrollo y progresión de enfermedades. Hoy en día, gen-knock-in célula de tipo específico o ratones salida privado se generan fácilmente en muchos laboratorios y la medición de los niveles de ARNm y de proteína en tipos específicos de células es el primer paso en la determinación de si los ratones fueron verdaderamente genéticamente modificados. El endotelio es una capa delgada única de las células endoteliales (EC) que recubre la pared vascular interior. Las células endoteliales juegan un papel crítico en la regulación de la tensión vascular, permeabilidad vascular, y la formación de nuevos vascular 1,2. La disfunción endotelial es una característica de muchas condiciones patológicas y los cambios en la función endotelial puede conducir a diversas cocheenfermedades cardiovascu- 3,4. Por tanto, es importante para estudiar la función de las células endoteliales en condiciones fisiológicas y fisiopatológicas. Hay varias maneras para aislar ECs 5-8 y el método de aislamiento tiene que ser optimizada en función de los cuales se utilizan tejidos y especies. Esto se debe a ECs de diferentes tejidos muestran un alto nivel de heterogeneidad con respecto a sus marcadores de superficie y la expresión de proteínas 9. éxito en el aislamiento de las células endoteliales a menudo puede ser difícil y requiere un cierto grado de entrenamiento y práctica. Una vez logrado, el método de aislamiento se propone en este protocolo resulta ser estable y eficiente. El objetivo general de este método es la obtención de ratón EC coronaria (MCECs) de alta calidad y la cantidad. A pesar de que la cantidad de las células recogidas de un corazón es menor que las células recogidas de otros tejidos que utilizan otras técnicas, esta técnica todavía proporciona apuestater calidad. La pureza de las células endoteliales en la población resultante es mayor que 90%. Por lo tanto, esta técnica sería ideal para aplicaciones que dependen de las células endoteliales puramente aislados, como imágenes de células.

<table><tbody><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A3311-10G</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Fisher</td><td>BP120-500</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Fisher SH3026801</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hepes</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4034-500G</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato de sodio&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Glucosa&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>G7021-1KG</td><td></td></tr><tr><td>DynaBeads perlas de IgG para ratón&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11035</td><td></td></tr><tr><td>Rata anti-ratón CD31 Anticuerpo</td><td>BD Biosciences</td><td>550274</td><td></td></tr><tr><td>IFCS&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>SH30072.04</td><td></td></tr><tr><td>M199</td><td>Fisher</td><td>MT10060-CV</td><td></td></tr><tr><td>Dispasa (Proteasa Neutra)</td><td>Worthington Biochemical Corp./Fisher</td><td>LS02109</td><td></td></tr><tr><td>Colagenasa Tipo II&nbsp;</td><td>Worthington Biochemical Corp./Fisher</td><td>LS004176</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>BP381-1</td><td></td></tr><tr><td>Igepal</td><td>Sigma</td><td>I3021-50 ml</td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de la fosfatasa</td><td>Sigma</td><td>P0044-1ml</td><td></td></tr><tr><td>Cóctel de inhibidores de la proteasa</td><td>Sigma</td><td>P8340-1 ml</td><td></td></tr><tr><td>Heparina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>H3149-100KU</td><td></td></tr><tr><td>FBS&nbsp;</td><td>Fisher/Mediatech</td><td>MT35010CV</td><td></td></tr><tr><td>D-Valina</td><td>Sigma</td><td>V1255-5G</td><td></td></tr><tr><td>EGS</td><td>Corning 356006</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Fisher/Mediatech</td><td>MT-30-002-CI</td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento de células endoteliales de ratón coronaria

Isolation of Mouse Coronary Endothelial Cells

Las células endoteliales revisten la pared interna de los vasos sanguíneos y juegan un papel importante en la regulación del tono vascular, la permeabilidad vascular y la formación de nuevos vascular. disfunción de la célula endotelial está implicada en el desarrollo y la progresión de muchas enfermedades cardiovasculares que incluyen la enfermedad cardíaca isquémica. Para examinar la función y caracterización de células endoteliales coronarias, aislamiento de células es el primer paso y requiere alta pureza y cantidad para llevar a cabo los experimentos posteriores. Este protocolo describe un método eficaz para aislar las células endoteliales coronarias de ratón adulto. El corazón de ratón se diseca y picada en trozos pequeños. Después de la digestión del corazón usando dispasa y colagenasa II, las células se lavaron y se incubaron con perlas magnéticas que están conjugados con el anticuerpo anti-CD31. Las perlas con las células endoteliales son lavados varias veces y están listos para usar en diversas aplicaciones, incluyendo formación de imágenes y EXPERIME biológica molecularNTS. Aislamiento eficaz rinde aproximadamente 10 4 células por un solo corazón con más del 90% de pureza.

El éxito en el aislamiento de las células endoteliales coronarias de un corazón de ratón produce normalmente alrededor de 10 4 células con más del 90% de pureza con una forma de adoquines. Para una población pura de células endoteliales, se debe tener cuidado durante todo el protocolo para asegurar un ambiente estéril libre de cualquier contaminación. La aparición de células alargadas o células ampliadas dentro de la población indica contaminación con otros tipos de células, c...

Este protocolo está preparado para compartir nuestro método de aislamiento de células endoteliales coronarias de ratón con fines de obtención de imágenes o para realizar experimentos de biología molecular.

Aislamiento de células endoteliales de ratón coronaria

Endothelial cells line the inner wall of blood vessels and play an important role in the regulation of vascular tone, vascular permeability, and new ...

El objetivo general de este experimento es obtener grandes cantidades de células endoteliales coronarias de ratón altamente purificadas y de alta calidad. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la investigación cardiovascular. La principal ventaja de esta técnica es que facilita la obtención de un alto rendimiento de células endoteliales de buena calidad.La demostración de este procedimiento estará a cargo de Shizhen Luo, especialista en investigación, y la Dra. Ayako Makino, nuestra investigadora principal. Hasta una semana antes del procedimiento, agregue un mililitro de tampón CD31 a un tubo microcentrífugo de 1,5 mililitros por cada muestra. A continuación, mezcle las perlas de IGG antioveja con pipeteo suave y agregue el volumen adecuado de perlas a cada tubo.Después de haber agregado todas las perlas, agite los tubos vigorosamente 30 veces y colóquelos en una placa magnética durante un minuto de agitación. Luego, con los tubos aún sujetos a la placa, deseche el tampón y agregue un mililitro de tampón CD31 fresco a cada tubo. Añada dos microlitros de anticuerpo rad anti-CD31 de ratón y coloque los tubos en un rotador a cuatro grados Celsius durante la noche.Al día siguiente, transfiera los tubos bajo una campana de flujo laminar y colóquelos nuevamente sobre la placa magnética con agitación durante un minuto. Luego, reemplace el sobrenadante con un mililitro de tampón CD31 fresco y agite los tubos enérgicamente a mano 30 veces. Después del tercer lavado, devuelva los tubos al rotador a cuatro grados Celsius.El día del procedimiento, comience inyectando al animal experimental 0,1 mililitros de heparina por vía intraperitoneal para prevenir la coagulación sanguínea. Después de diez minutos, anestesie al ratón con una inyección de 0,01 mililitros de pentobarbital. A continuación, confirme la ausencia de respuesta al pellizco en el dedo del pie.Después de extraer el corazón y el tejido pulmonar juntos, colóquelos en un vaso de precipitados con tampón de Krebs y enjuague los tejidos con agitación suave. A continuación, transfiera los tejidos a una placa de seis centímetros que contenga Krebs fresco, y utilice tijeras y pinzas para eliminar los lóbulos pulmonares. Ahora inserte un catéter de calibre 20 en la aorta y lave el sistema circulatorio coronario con HBSS suplementado con heparina.Cuando se haya eliminado toda la sangre, haga un pequeño corte en el ventrículo, enjuague el corazón con movimientos suaves de agitación y coloque el tejido cardíaco en un tubo de muestra sobre hielo. Después de digerir el tejido para liberar las células endoteliales coronarias, centrifugue y lave las células dos veces con cinco mililitros de tampón de lavado. A continuación, coloque un tubo con las perlas previamente preparadas sobre la placa magnética y agite el tubo tres veces para distribuir uniformemente las perlas.Después del segundo lavado, retire tanto sobrenadante como sea posible sin alterar el precipitado y separe las células mediante agitación enérgica con un golpe rápido. A continuación, re suspenda las células en un mililitro de tampón de lavado con mezcla suave y deseche el tampón CD31 de las perlas. Combine las células con las perlas y agite el tubo 30 veces con golpes rápidos.Luego, coloque la solución de células y perlas en el rotador a cuatro grados Celsius durante 30 minutos. Mientras las células incuban, recubra la superficie de un pocillo de cámara de siembra por muestra con solución de gelatina y coloque las cámaras a 37 grados Celsius durante 30 minutos. Una vez que la gelatina haya solidificado, elimine cualquier exceso de solución de gel y seque la superficie del pocillo de la cámara.Luego, transfiera las células conjugadas con perlas a la placa magnética bajo la campana extractora y agite durante dos minutos; deseche el tampón de lavado. Añada un mililitro de tampón de lavado fresco a las células y retire el tubo de la placa para realizar 30 agitaciones enérgicas, seguidas de 30 golpes bruscos. Vuelva a colocar el tubo en la placa durante un minuto más de agitación.Después de la última agitación, coloque nuevamente el tubo en la placa magnética durante un minuto final de agitación, y reemplace el tampón de lavado con un mililitro de medio para células endoteliales a 37 grados Celsius, suplementado con un 20 por ciento de suero de ternera enriquecido con hierro. Agite y golpee los tubos 30 veces más. Luego, use un pipeteador de un mililitro ajustado a 500 microlitros para agitar las células conjugadas diez veces, y transfiera alícuotas de 500 microlitros de células endoteliales coronarias a cada pocillo de la cámara de siembra para una incubación nocturna a 37 grados Celsius.Al día siguiente, lave las células en medio para células endoteliales, suplementado con diez por ciento de FBS. La pureza de las células endoteliales coronarias aisladas mediante este método puede confirmarse mediante tinción inmunohistoquímica contra los marcadores de superficie celular endotelial, BS lectina y AC LDL, con más del 90 por ciento de las células mostrando una expresión doble positiva para ambos marcadores en un cultivo típico de células endoteliales coronarias de ratón. Tras este procedimiento, como método, se pueden realizar diversos análisis de sangre, inmunodetección y obtención de imágenes fluorescentes para responder preguntas adicionales, como qué proteína puede modificarse durante diferentes estados de enfermedad.Después de su desarrollo, esta técnica proporciona las herramientas necesarias para que los investigadores amplíen sus estudios hacia el campo de las células endoteliales coronarias. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo aislar células endoteliales coronarias de ratón con alta cantidad y calidad. Existen varios puntos clave durante este procedimiento.Lo más importante es mantener un ambiente estéril durante todo el proceso de aislamiento. En segundo lugar, es necesario lavar completamente la sangre y lo más rápidamente posible para evitar la coagulación sanguínea en la red capilar. En tercer lugar, se debe medir el pH de todos los tampones, especialmente el tampón CD31.

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Biología

Aquí se describe un protocolo para el aislamiento y cultivo de las células endoteliales murinas pulmonar. Este método consiste en la disociación mecánica y enzimática del tejido pulmonar, así como un proceso de purificación de 2 pasos con anti-PECAM-1 y anti-ICAM-2 anticuerpos conjugados a perlas magnéticas, lo que produce una población pura de células endoteliales microvasculares su mayoría de origen.

Aislamiento y cultivo de células endoteliales pulmonares de ratones recién nacidos

La capacidad de aislar las células endoteliales de las válvulas cardíacas (VECs) es fundamental para comprender los mecanismos de desarrollo, mantenimiento y enfermedad de las válvulas.  En este trabajo describimos el aislamiento de VECs de ratones Tie2-GFP embrionarios y adultos utilizando FACS que permitirá realizar estudios que determinen la contribución de los VECs en los procesos de desarrollo y enfermedad.

Aislamiento de las células murinas de la válvula endoteliales

Las células endoteliales vasculares desempeñan un papel importante en muchos trastornos cardiovasculares importantes. Este artículo describe un método simple para aislar y expandir las células endoteliales de la aorta del ratón sin usar ningún equipo especial. Nuestro protocolo proporciona un medio eficaz para identificar mecanismos en la fisiopatología de las células endoteliales.

Aislamiento y cultivo primario de células endoteliales aórticas de ratón

El objetivo de este protocolo es demostrar las técnicas de aislamiento y cultivo de las células del músculo liso vascular primaria murino (CMLV) de la circulación coronaria. Una vez que se han aislado CMLV, que se pueden utilizar para muchas técnicas de cultivo estándar.

Aislamiento de murino coronaria células musculares lisas vasculares

Las células endoteliales microvasculares de los músculos esqueléticos (MMEC) forma la pared interna de los capilares musculares y regulan ambos, intercambio de moléculas de líquidos y migración de las células (inmunes) entre sangre y tejido muscular. Aislamiento de MMEC murino primario, como se describe aquí, permite completa investigaciones in vitro de la "unidad myovascular".

Aislamiento de las células endoteliales microvasculares primaria murinas músculo esquelético

Presentamos un protocolo para el aislamiento de células endoteliales endocardiales y coronarias de corazones de rata a través de la digestión secuencial del tejido en un tampón de digestión, la recolección celular de ciclos de centrífuga recurrentes y la purificación celular mediante microperlas CD31 anti-rata.

Aislamiento de células endoteliales endocardiales y coronarias de la pared libre ventricular del corazón de rata

Aquí describimos y demostramos un protocolo para el aislamiento primario de células endoteliales sinusoidales sinusoidales hepáticas (LSEC) del ratón. El protocolo se basa en la perfusión de colagenasa hepática, la purificación de células no parentales por centrifugación de baja velocidad y la selección de perlas magnéticas CD146. También fenotipo y caracterizamos estos LSEC aislados mediante citometría de flujo y microscopía electrónica de barrido.

Aislamiento y caracterización de células endoteliales sinusoidales sinusoidales hepáticas primarias de ratón

Presentamos un método para aislar células endoteliales y núcleos de la luz de arterias carótidas de ratón expuestas a condiciones de flujo estables o alteradas para realizar experimentos ómicos unicelulares.

Aislamiento de células endoteliales de la luz de arterias carótidas de ratón para experimentos multiómicos unicelulares

En este artículo, las células endoteliales pulmonares primarias se aislaron y cultivaron de ratones neonatos.

Aislamiento de células endoteliales pulmonares primarias de ratón

Este protocolo describe el aislamiento de células endoteliales de ratón de páncreas completo.

Aislamiento de células endoteliales pancreáticas de ratón

Aprende a aislar células endoteliales coronarias de ratón con alto rendimiento y pureza mediante este protocolo validado. Esta técnica robusta facilita experimentos de imagen y biología molecular para avanzar en la investigación cardiovascular.

Aislamiento de células endoteliales de ratón coronaria

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