Name: El intercambio de O bentónica 2, N 2 y nutrientes disueltos usando pequeños incubaciones Core (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-03T10:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 11 s
Description: Aprende a medir el intercambio de gases y solutos entre sedimentos y agua usando incubaciones de núcleos bentónicos. Este método eficiente permite estudiar procesos biogeoquímicos acuáticos con amplia cobertura espacial y temporal.

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Los autores desarrollaron este enfoque utilizando nuestras observaciones del trabajo llevado a cabo por Walter Boynton y Pete Sampou y el trabajo cooperativo en la desnitrificación con Todd Kana en la Universidad de Maryland Centro de Ciencia Ambiental. Desarrollo de nuestros enfoques de desnitrificación no habría sido posible sin el apoyo del Programa Sea Grant de Maryland y la Fundación Nacional de Ciencia. Los datos representativos utilizados aquí fueron recogidos con fondos de Maryland Sea Grant (R / AQ-5c) y la escritura de los esfuerzos fueron apoyados por Maryland Sea Grant (R / SV-2), la Oficina de NOAA Chesapeake Bay (NA13NMF4570210), la Asociación para la Recuperación de la ostra , la Fundación Nacional de Ciencia (OCE1427019), Exelon Corporation, y el Servicio de Medio Ambiente de Maryland / Maryland Administración de los Puertos.

Nota: La colección de núcleos con interfaces de sedimentos de aguas inalteradas es esencial para hacer buenas mediciones experimentales de intercambio; núcleos altamente perturbadas es probable que el intercambio de solutos agua de los poros con agua suprayacente y han mejorado la captación de oxígeno a través de la oxidación de Fe (II) y compuestos de azufre reducido. En este trabajo, hacemos hincapié en los procedimientos de incubación de sedimentos de sedimentos con sólo una somera inclusión de técnicas de muestreo de sedimentos y de los análisis químicos de los solutos y gases. Antes de la toma de muestras, o sobre la base de los resultados iniciales, determinar el grado de replicación de las necesidades generales del proyecto, el diseño estadístico o cantidad esperada de la variabilidad espacial pequeña escala. núcleos duplicados son el mínimo utilizado por muchos estudios y triplicados son útiles para permitir un mejor análisis estadístico. 1. Recolección y Manejo de Sedimentos Nota: La colección de sedimentos para los experimentos de cambio se lleva a cabo por medio de 1) la inserción manual de núcleos USIng buzos o en aguas poco profundas o humedales, vadeando, 2) polo de extracción de muestras utilizando una pértiga de aluminio con una válvula de cierre manual para retener sedimentos, o 3) Caja de extracción de muestras. <ol><li> En cada sitio, registrar la ubicación del sitio a través de GPS, determinar la parte inferior de oxígeno del agua, la temperatura, la salinidad y el uso de una sonda de calidad de agua, y determinar la radiación fotosintéticamente activa (PAR) en la superficie y el fondo usando un sensor de PAR / metro. <ol><li> Bajar la calidad del agua sonde a ~ 1 m por encima del sedimento y registrar las características del agua de fondo (profundidad, temperatura, oxígeno disuelto, temperatura y salinidad / conductividad). </li><li> Bajar un sensor PAR con una sonda submarina a la interfase agua-sedimento usando un marco de descenso. Comparar PAR lecturas cerca de la superficie del sedimento a las lecturas PAR inmediatamente por debajo de la interfase aire-agua para estimar la atenuación de la luz en las condiciones de luz ambiental. </li><li> Desplegar un nucleador de caja sobre el lado de la embarcación / nave, bajándolo lentamente para minimizar las perturbacionesal penetrar el sedimento. Examina la caja de machos correspondiente a la alteración visible o resuspensión excesiva. <ol><li> Para un nucleador de caja, insertar tubos centrales en el sedimento, y el uso de tapones de caucho butílico para cubrir la parte superior del núcleo. Para los experimentos de flujo, mientras que el equilibrio ideal sedimento / agua dentro del núcleo es de 15 cm de agua y 15 cm de sedimento, en grueso o sedimentos altamente compactados recogida de menos profundidad de sedimentos es un resultado aceptable. Si las tasas de agotamiento del oxígeno son excesivos, cambiar el equilibrio hacia una mayor altura de la columna de agua. </li><li> Típicamente utilizar de 6,35 cm de diámetro núcleos internos para estudios de aguas profundas y de los sedimentos con microalgas bentónicas o grandes poblaciones de animales, utilizar 10 cm núcleos de identificación. El límite principal para el tamaño del núcleo es la capacidad de limitar la parte inferior del núcleo. </li><li> Tapar el fondo con una placa de fondo de acrílico que tiene una junta tórica incrustada. Repita este proceso hasta que se recogen suficientes repeticiones. Con el extractor de polos, en primer lugar la placa de fondo de acrílico en el núcleo de liner, retire el núcleo de la descorazonador, y añadir el tapón. </li></ol></li></ol></li><li> Coloque los núcleos en un enfriador de agua con aislamiento de altura que se inunda con agua a temperatura ambiente desde el sitio; esto ayuda a mantener las temperaturas in situ. Asegúrese de que el refrigerador permanece en posición vertical. Desechar núcleos que están perturbados durante el transporte. </li><li> Bombear el agua residual tomada cerca de la superficie del sedimento en 20 bombonas L para su uso en los experimentos. Utilice una bomba de diafragma con 10-20 L / min o capacidad de una bomba peristáltica de alta velocidad. <ol><li> En aguas poco profundas no estratificado, llenar la bombona de &quot;mojar&quot; en el agua. La filtración del agua de fondo utilizando un filtro de cartucho en línea de alta capacidad puede ser útil en sitios con altas tasas de captación de columna de agua de oxígeno o la fotosíntesis (a la luz), lo que minimiza la corrección de la columna de agua sólo núcleos de control. </li></ol></li><li> Transportar los núcleos lo más rápidamente posible a la instalación de incubación. En el caso del transporte prolongado, aerOBIC núcleos pueden llegar a ser burbujeo o circulación anóxica y artificial son necesarios. </li></ol> 2. Configuración inicial <ol><li> En las instalaciones de incubación, lugar núcleos en una bañera de incubación o bien en una sala de ambiente con temperatura controlada, o en un incubador de doble pared con control de temperatura a través de un circulador de calefacción / refrigeración. Ajuste la temperatura a la temperatura del agua de fondo medidos en 1.1.1. </li><li> Añadir agua del fondo de la incubadora, sumergiendo completamente los núcleos de sedimentos. También añadir agua a 5 L bombonas con grifos que serán utilizados para dispensar agua de repuesto. </li><li> Añadir un núcleo de sólo agua (sin sedimento) a la incubadora. El uso de espacios en blanco de columna de agua es importante en la mayoría de los entornos para compensar cualquier procesos de columna de agua que afectan a los gases y los solutos. Para la medición de la desnitrificación, estas piezas en bruto pueden reflejar no sólo los procesos de columna de agua, pero el intercambio de gases con las paredes de acrílico del núcleo. </li><li> núcleos de burbujas waire ITH durante un mínimo de 2 horas para asegurar el equilibrio térmico y completo oxigenación de agua situada por encima. Ellos pueden mantenerse durante la noche y cursos de tiempo iniciaron la mañana siguiente. Largos períodos de preincubación no han sido evaluadas para la eficacia. <ol><li> Para la aireación, utilizar una pequeña burbujeador de &quot;T&quot; que consiste en ½ &quot;tubo de PVC con un acoplador de tres vías; un&quot; tubo de 1/8 insertado a la parte inferior de los resultados T en el arrastre de agua hacia arriba durante el burbujeo y no solamente asegura la oxigenación, pero la circulación del agua en el núcleo con el agua en la bañera de incubación. </li></ol></li></ol> 3. Procedimientos de incubación de sedimentos de aguas <ol><li> Después de comprobar la temperatura para asegurarse de que coincide con las condiciones de campo, adjuntar trompos a las copas de los núcleos. En este punto, sellar el núcleo desde el tanque de agua. Deje la válvula de toma de muestras en el núcleo abierto durante este proceso. barrer manualmente las burbujas de aire suavemente desde el lado inferior de la peonza. </li><li> Elevados el agua de reemplazo bombona ~ 30-40 cm más alto que las copas de los núcleos de incubación y purga de los conductos hacia abajo para eliminar el aire de la línea. Mientras que aún fluye, fije las líneas a la parte superior del núcleo y cerrar las válvulas. </li><li> Girar en el plato giratorio de agitación central y ajustar la velocidad de rotación de modo que los núcleos giran ~ 40 veces por minuto, o a una velocidad que es suficiente para mezclar la columna de agua, pero no volver a suspender el sedimento. </li><li> Aproximadamente 5 minutos después de todos los núcleos están selladas, abra la válvula de agua de reposición y la válvula de la muestra, y luego coloque un trozo corto de tubo a la válvula de muestra usando un adaptador Luer. Coloque este tubo de muestreo en la parte inferior de un tubo de vidrio 7 ml, que se llena a rebosar. Antes de tapar el tubo, añadir 10 l de 30 g L -1 HgCl 2 como conservante. <ol><li> Almacenar estas muestras bajo el agua a temperaturas cercanas a la temperatura de incubación. Otros laboratorios han utilizado con éxito 12 ml &quot;exeteiners&quot; para sample de almacenamiento. </li></ol></li><li> Para el muestreo de soluto, adjuntar un tubo de la jeringa 20 ml a la válvula de muestra y abrir la válvula de agua de repuesto. El cuerpo de la jeringa llena hasta la total utilizando sólo la gravedad. Adjuntar un émbolo y un disco de filtro, y luego filtrar las muestras en viales. Estas muestras para análisis de nutrientes se congelan a -20 ° C hasta su análisis. Nota: El curso del tiempo de toma de muestras en la oscuridad implica típicamente 4 periodos de muestreo con los intervalos entre muestreo que van desde 0,5 a&gt; 2 hr, dependiendo de la tasa de consumo de oxígeno. Con bajas tasas de consumo de oxígeno, los intervalos de tiempo son largos; en los sedimentos con altas tasas de respiración, los intervalos deben ser breves. Excesivamente grandes volúmenes de muestra tomadas en cada punto de muestra puede resultar en un muestreo demasiado grande una proporción de todo el volumen de la muestra; en nuestro trabajo estos volúmenes de muestra dan lugar a una corrección insignificante. Si es necesario un mayor volumen de la muestra, núcleos de mayor diámetro o una mayor altura de columna de aguapuede ser necesario. </li><li> No continúe con un curso de tiempo de muestreo por debajo de un umbral de agotamiento del oxígeno del 50%, con agotamiento de oxígeno del 25% por lo general proporcionan suficiente señal en las concentraciones de nutrientes. A continuación, utilice optodes calibrados para el análisis directo de las concentraciones de oxígeno y la saturación de oxígeno. <ol><li> Si los sedimentos son de ambientes de poca profundidad, sistema de iluminación, en la 4ª toma de muestras, encender las luces y tomar 3 muestras posteriores. Tenga en cuenta que en los sedimentos altamente fotosintéticos, la sobresaturación de O 2 y la formación de burbujas limita la medición de los flujos de gases en algunos casos. El monitoreo continuo de oxígeno es una alternativa cada vez más viable y valiosa, con la tecnología de medición de fibra óptica que tiene relativamente pequeñas sondas que son altamente confiable y precisa. </li></ol></li><li> Al término de las incubaciones de sedimentos, ya sea medir la altura de la columna de agua o un sifón en la columna de agua a un cilindro graduado para determ directamenteINE el volumen de agua, y tomar fotos de cada núcleo. </li></ol> Análisis 4. Muestra <ol><li> Muestras de bombeo para el análisis de N2, O2 y Ar en una membrana de entrada espectrómetro de masas, y determinar las proporciones de N 2: Ar y O2: Ar a &lt;0,03% de precisión 12,23. <ol><li> Pareja de un espectrómetro de masas de cuadrupolo a una entrada de la membrana. Empuje la muestra en el tubo de membrana usando una bomba peristáltica. Recoger los residuos de la muestra en un bidón de plástico y el tratamiento como residuos químicos debido a la conservación de Hg. Calibrar con agua desionizada equilibrada con aire a la temperatura de incubación. </li></ol></li><li> Realizar análisis de nutrientes en forma manual ≤ 5 ml de muestras o en volúmenes más pequeños usando analizadores automatizados. Tras la descongelación de la muestra, inicio analiza inmediatamente. La elección del procedimiento de análisis de nutrientes debe ceder una precisión suficiente para observar los cambios en la concentración de nutrientes durante la incubación. detección típicalímites son &lt;tendencias 0,05 mol L -1 y transcurso del tiempo pueden ser difíciles de observar en ambas concentraciones extremadamente bajas y muy altas de nutrientes. <ol><li> Para los análisis colorimétricos de fósforo reactivo soluble, utilizar la técnica de fosfomolibdato ácido ascórbico. Para los análisis de amonio, utilizar un desarrollo de color durante la noche utilizando un reactivo de hipoclorito de fenol 24. Automatizado de análisis colorimétricos, ya sea utilizando el flujo segmentado o un analizador discreto, son una gran alternativa y utilizar un volumen de muestra menor. </li><li> Para los análisis de nitrato más nitrito, utilizar el desarrollo de color durante la noche utilizando cloruro de vanadio como un reductor 25, o utilizar un analizador automático </li><li> Comparación de absorbancias determinaron en un espectrofotómetro UV / VIS a las curvas de calibración y determinar las concentraciones de una regresión de las concentraciones de normalización y absorbancias. </li></ol></li></ol> 5. Cálculo de intercambio agua-sedimento tarifas <ol><li> Una regresión de las concentraciones de gas o de nutrientes en función del tiempo de forma independiente para ambas incubaciones oscuridad como de iluminación, con la pendiente expresada en mol L -1 -1 hr. Corregir las laderas de los núcleos de incubación para la pendiente de los núcleos de la columna de sólo agua. Sólo utilice regresiones significativas (P &lt;0,05) para los cálculos; identificar los datos no significativos en las hojas de cálculo de datos finales. </li><li> Calcular las tasas de cambio de agua y sedimento de la pendiente del cambio de las concentraciones de constituyentes químicos en el agua suprayacente: <img alt="Ecuación 1" src="/files/ftp_upload/54098/54098equation1.jpg" /> Donde F es el flujo (mol m -2 -1 hr),? C / Dt es la pendiente del cambio de concentración en el agua suprayacente (mol L -1 hr -1), V es el volumen del agua suprayacente (L) y A es el área del núcleo se incubaron (m -2) .Para estimar el flujo diario, multiplicar la tasa iluminada por las horas de luzy añadir a la tasa oscuro multiplicado por las horas de oscuridad. </li></ol> 6. Presentación de informes <ol><li> Al informar sobre los resultados de las mediciones de cambio de sedimento-agua, proporcionar información suficiente para que otros científicos a entender el ambiente que ha sido muestreada. La información esencial incluye: 1) la ubicación del sitio y de la profundidad del agua, 2) las características físicas, tales como el campo y la temperatura de incubación, y el PAR, 3) las características del agua de fondo, como el oxígeno, la concentración de nutrientes y salinidad, y 4) las características del sedimento, como el tamaño de grano, las concentraciones de materia orgánica, y la presencia de animales bentónicos. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

La técnica descrita aquí se ha aplicado a numerosos tipos de sistemas acuáticos, tanto superficiales y profundas, y hemos encontrado que funciona bien en la mayoría de las circunstancias. Este enfoque fue adaptado de los enfoques utilizados por los colegas y presentados en la literatura; que está optimizado para la medición de desnitrificación a través de membrana de espectrometría de masas de entrada. Uno de los puntos fuertes de este método es la capacidad de manejar un gran número de núcleos de forma simultánea. Replicación de cada sitio con duplicado o triplicado núcleos aumenta la confianza en las mediciones, aunque un enfoque alternativo es el de maximizar los sitios con menos de replicación, bajo estas circunstancias, el valor medio para un segmento del medio ambiente puede ser más representativo de la variabilidad en la naturaleza. Para dilucidar las diferencias estacionales, una serie de tiempo de medición en un menor número de sitios puede ser una estrategia útil. En este protocolo, hay varios pasos críticos. De suma importancia para hacer smediciones Uccessful es la colección de núcleos con una interfaz agua-sedimento intactos. Aunque el rechazo de los núcleos que no cumplan este criterio en el campo puede ser agotador, núcleos pobres conducirán a una mala exactitud y precisión. Mantener núcleos aeróbicas airea y cerca de la temperatura colección original reducirá al mínimo los artefactos y mantener las poblaciones microbianas y metazoos sanas, intactas. Por último, para O 2 y N 2 muestras, la adición de conservante cloruro de mercurio es crítica. Hemos observado que la preservación inadecuada de las muestras de gas, incluyendo el calentamiento excesivo y el enfriamiento de los viales, puede poner en peligro estas mediciones de flujo. Otros laboratorios han empleado con éxito 7.0 M ZnCl2 como conservante menos tóxico que tiene menores costes de eliminación de residuos; para un 7 ml de muestra de una adición de 30 l es la adecuada. El análisis preciso y exacto de la relación de N 2 y Ar es clave para la determinación de la N 2 </sub&gt; fundentes. Observada N 2: Ar proporciones cambian en función de la concentración de oxígeno que lleva a algunos investigadores a abogar por la eliminación de oxígeno antes del análisis, en general, el uso de cobre calentada 28. La instrumentación utilizada en nuestro laboratorio se utilizó para determinar el efecto del oxígeno en N 2: Ar relaciones 23 y se encontró que el efecto sea muy pequeño, &lt;0,03% para el agotamiento del oxígeno modesto. Las diferencias en el enfoque para evaluar el oxígeno &quot;efecto&quot; parecen conducir a conclusiones diferentes por diferentes investigadores 23,28,29. Una gran efecto del oxígeno en N 2: relaciones Ar erróneamente conducirían a altas tasas de flujo de salida de N 2 N; en nuestra experiencia, tenemos muchas observaciones de N 2 insignificante -N flujo de salida a alta tasa de agotamiento de oxígeno. En los laboratorios en los que el efecto del oxígeno en N 2: relaciones de Ar aparecen grande, una alternativa útil es la medición independiente de las concentraciones de oxígeno usando electrodos o optodes y oxígenola eliminación a partir del análisis de espectrometría de masas utilizando Cu climatizada en línea. Solución de problemas de esta técnica es posible sólo después de un examen de los datos de flujo de sedimentos. Los factores clave a considerar cuando se regresiones son pobres si están agitación fue continua, se tomaron muestras y se conservan correctamente, y si el tiempo cursos eran demasiado corto para permitir la estimación de las tasas bajas. La longitud de experimentos generalmente se establece mediante el curso temporal de oxígeno, con bajas tasas de metabolismo que requiere incubaciones más largas para aumentar la relación señal a ruido incorporado en las regresiones del curso de tiempo. Las altas tasas de producción de oxígeno que producen O 2 burbujas hacen que los flujos de gases difícil, pero los flujos de soluto no pueden ser afectados. Es necesario comprender las limitaciones de este enfoque. Los pequeños núcleos cubren el 0,3% de un metro cuadrado y los núcleos más grandes cubren el 0,6%. En sitios con una heterogeneidad significativa en la escala del medidor, las distribuciones heterogéneas de animELA o plantas pueden sugerir que uno o dos núcleos pueden no ser una representación suficiente. También hay algunos entornos que presentan dificultades de medición. Para la medición de la desnitrificación, la presencia de metano o de oxígeno burbujas puede invalidar la técnica, con N 2: relaciones de Ar influenciados por la incorporación diferencial de los gases en las burbujas. En sedimentos colonizados por microalgas bentónicas, la formación de los resultados de burbujas de oxígeno en un decapado preferencial de N 2 con respecto a Ar, y la disminución de la N 2: relación de Ar. En general, no podemos medir la desnitrificación en el punto donde se forman burbujas. ambientes anaeróbicos plantean diferentes desafíos, y la aireación de núcleos cambia la dinámica redox en la interfase agua-sedimento. Sellamos hasta núcleos con las tapas de agitación inmediatamente después de la recolección y comenzamos los flujos sin tener que reemplazar la columna de agua por completo 30. Nuestros experimentos con sedimentos iluminados típicamente han saturación o casi saturacing niveles de iluminación 31, y por lo tanto maximizar el efecto de microalgas bentónicas. mediciones de cambio de sedimentos de agua son una medida del flujo neto de materiales a través de la interfaz agua-sedimento. Sin embargo, estas mediciones solo a menudo no pueden identificar los mecanismos que controlan estos intercambios interfaciales. Si la pregunta de investigación implica la comprensión de los mecanismos, otra información sobre la reactividad de la materia orgánica, la terminal de zonificación receptor de electrones, bioirrigation y bioturbación y organismos fotosintéticos que sean necesarias. Modelado esfuerzos 7 pueden requerir la determinación de la composición química del agua de los poros, las mediciones directas de la reactividad de la materia orgánica de 32 años, el número de poblaciones de animales, los sedimentos bio-irrigación, la acumulación de sedimentos, o manipulaciones experimentales de redox o que recubre la química del agua 13. En nuestros estudios, el intercambio de datos buena sedimento-agua es un componente clave de la comprensión de la química de los sedimentos acuáticos,y en conjunción con otras mediciones, se identifica el papel de los procesos de reciclaje de sedimentos en los ciclos biogeoquímicos acuáticos. Con el cuidado con respecto a la manipulación de sedimentos, control de temperatura, y la mezcla de columna de agua, las incubaciones núcleo son un enfoque útil para la estimación de la intercambio de solutos y gases en la interfase agua-sedimento. Sin embargo, las técnicas utilizadas aquí pueden necesitar modificaciones para algunos ambientes y para la logística difíciles, como los períodos de tiempo prolongados antes de la incubación. Hasta el momento, hemos aplicado con éxito este enfoque, a las desembocaduras de incubación,, humedal, lago, embalse, río y laguna de retención ambientes costeros con modificaciones mínimas.

Los sedimentos son componentes críticos biogeoquímicos de los ecosistemas acuáticos y, a menudo son importantes sumideros de nutrientes y contaminantes. Estudios pioneros de nutrientes, el gas y la biogeoquímica de metales de transición en los sedimentos lacustres revelan el intercambio de sedimentos de solutos y gases con agua suprayacente que había diferentes condiciones redox 1,2. Para los elementos de nutrientes, los sedimentos pueden ser una fuente de fósforo y nitrógeno fijado después de la remineralización de la materia orgánica, y un sumidero de oxígeno en ambientes no fotosintéticos 3,4. La fotosíntesis de los macrófitos sumergidos, macroalgas y microalgas bentónicas puede tener una profunda influencia sobre el intercambio de sustancias disueltas a través de la interfase agua-sedimento 5,6. Las mediciones del intercambio de solutos y gases a través de la interfase agua-sedimento se llevan a cabo tanto para la ciencia básica y ciencia aplicada propósitos, incluyendo la calibración de la ingeniería y científica water modelos de calidad 7,8. El objetivo de estos métodos, en la mayor medida posible, es proporcionar los tipos de cambio de sedimentos de agua fiable y precisa. Una amplia variedad de enfoques se han utilizado para evaluar intercambio químico en la interfase agua-sedimento. La acumulación de agua de fondo de los gases y solutos en sistemas estratificados puede ser útil 9, pero no es válido para el intercambio de sedimento-agua por encima de la termoclina o pycnoclines. correlación Eddy requiere mediciones de alta frecuencia de los gases, generalmente oxígeno, en combinación con la medición de alta frecuencia de las velocidades verticales de agua; esta técnica tiene una enorme promesa, pero actualmente no pueden proporcionar datos para estudios de intercambio de nutrientes. En cúpulas situ o cámaras son un método muy preferida, con la ventaja de cubrir una mayor superficie de los sedimentos y el mantenimiento de las temperaturas in situ, las presiones de aguas profundas y los niveles de luz 10. En la práctica, se trata de medidas muy costosas que requieren tiempo extensoen los buques de investigación más grandes; la mayoría de las aplicaciones son las zonas costeras o en los sedimentos oceánicos profundos. Utilizando técnicas de incubación núcleo flujo a través de las cámaras que alcanzan el estado estacionario son excelentes para mantener la química del agua suprayacente relativamente constante, incluyendo oxígeno, durante las incubaciones 11. Debido a que la tasa se determina en estado estacionario por las diferencias de concentración entre entrante y el agua que fluye hacia fuera, y por los tipos de cambio de agua, estas incubaciones pueden tomar una cantidad considerable de tiempo. El enfoque básico de incubación del curso del tiempo utilizado por nuestro laboratorio fue adaptado de enfoques utilizados por un número de diferentes laboratorios en América del Norte y Europa, y hay una cantidad considerable de la literatura sobre la base de este enfoque general. Se adaptó este método para la medición de los flujos de N 2 N 12, a menudo referida como la desnitrificación, y hemos aplicado a entornos fotosintéticos y sedimentos no fotosintética, incluyendo estuaries 13, lagos, embalses y humedales 14. A través de estos estudios hemos encontrado muchos entornos en los que nuestro enfoque general funciona bien, y algunos en los que no ocurre. La medición de la desnitrificación se ha realizado en muchos entornos terrestres y acuáticos diferentes porque este proceso representa una pérdida clave de nitrógeno a los ecosistemas. Numerosos enfoques se han utilizado para realizar mediciones de desnitrificación, algunos directa y algunos indirecta 15. Mediciones de flujo N 2 directos son muy difícil debido a la alta contenido atmosférico N 2, y altas concentraciones posteriores disueltos en agua 16. Dos enfoques han surgido como tener la mejor representación de las tasas relativas al medio ambiente: el emparejamiento de isótopos usando N isótopos 17 y la N proporción de 2: Ar utilizado en nuestro laboratorio. El método de isótopos de emparejamiento se ha utilizado con éxito en muchos entornos y tiene una sensibilidad muy alta a tasas bajas. Empleamos el N2: Enfoque Ar relación debido a su simplicidad, y porque es lo suficientemente sensible en los entornos afectados a menudo estudio. En este trabajo se describe el enfoque técnico que hemos utilizado durante las últimas dos décadas para hacer la medición del cambio de agua-sedimento de gases y solutos. Cualquier medida de intercambio de agua-sedimento deben tener en cuenta las condiciones de campo y una serie de parámetros experimentales. Estos factores incluyen la temperatura, condiciones de luz / oscuridad de 18, el flujo de la mezcla / física en la interfase agua-sedimento 19, 20 concentraciones de oxígeno disuelto, y otros factores que son elementos clave de la toma de buenas mediciones. Por ejemplo, si los núcleos son recogidos de las zonas que reciben la suficiente iluminación para el crecimiento de microalgas bentónicas, es necesario diseñar experimentos que incluyen tanto condiciones de luz y oscuridad de 21. Del mismo modo, la adición de agua oxigenada al suprayacente anóxica núcleosno replica las condiciones del campo. Recinto experimental de cualquier parte de los ecosistemas acuáticos pueden dar lugar a artefactos inevitables 22; es fundamental que los enfoques utilizados en un programa de medición de intercambio agua-sedimento 1) reconocen los factores que controlan el intercambio de agua-sedimento en cada ecosistema y 2) reducir al mínimo los artefactos derivados de la manipulación experimental.

<table><tbody><tr><td>Sonda multiparamétrica: temperatura, oxígeno, salinidad</td><td>YSI</td><td>"</td><td>Cualquier equipo de alta calidad será suficiente</td></tr><tr><td>Medición PAR</td><td>Li-Cor</td><td>6050000</td><td></td></tr><tr><td>Núcleo</td><td></td><td></td> de postes <td>Construido por un taller mecánico</td></tr><tr><td>Núcleo de cajas</td><td>DK-Dinamarca</td><td>Núcleo HAPS</td><td>También utilizamos equipos de extracción de núcleos de caja</td></tr><tr><td>ligera Tubos de núcleo pequeños con fondo ajustado con junta tórica, 3' OD, 2.5' ID.</td><td>varias empresas</td><td></td> de plásticos <td>Acrílico transparente</td></tr><tr><td>Tubos de núcleo medio con junta tórica, 4.5 "OD, 4" ID</td><td>varias compañías de plásticos</td><td></td><td>Acrílico transparente</td></tr><tr><td>Tapón de butilo tamaño 13.5</td><td>genérico</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plato</td><td></td><td></td> giratorio de agitación <td>Construido por un taller mecánico</td></tr><tr><td>Tina</td><td></td><td></td> de incubación <td>Construido por un taller mecánico</td></tr><tr><td>Agua de reemplazo garrafa</td><td>Nalgene</td><td>2320-0050</td><td></td></tr><tr><td>tubo con tapón de vidrio de 7 ml</td><td>Chemglass</td><td>no está en el inventario</td><td>"Exetainers" utilizado por otros laboratorios</td></tr><tr><td>jeringa de plástico de 20 ml</td><td>genérico</td><td></td><td></td></tr><tr>Filtros <td></td><td></td><td></td>de<td>jeringa</td></tr><tr><td>Tubo de plástico</td><td>Tygon</td><td>ACF00004-CP</td><td></td></tr><tr><td>Luces fluorescentes compactas</td><td>Apollo Horticulture</td><td>CFL 8U 250W</td><td></td></tr></tbody></table>

el intercambio de o bentónica<sub&gt; 2</sub&gt;, n<sub&gt; 2</sub&gt; y nutrientes disueltos usando pequeños incubaciones core

The Benthic Exchange of O2, N2 and Dissolved Nutrients Using Small Core Incubations

La medición del intercambio de gases y solutos entre los sedimentos acuáticos y el agua proporciona datos valiosos para comprender el papel de los sedimentos en los ciclos de nutrientes y gases. Después de recolectar los núcleos con interfaces sedimento-agua intactas, se sumergen en tanques de incubación y se mantienen en condiciones aeróbicas a temperaturas in situ. Para iniciar un curso de tiempo de la química del agua superpuesta, los núcleos se sellan sin burbujas mediante una tapa superior con un agitador suspendido. Se utilizan cursos de tiempo de 4-7 puntos de muestra para determinar la tasa de intercambio de agua y sedimentos. La iluminación artificial simula las condiciones diurnas de los sedimentos fotosintéticos poco profundos y, junto con las incubaciones oscuras, puede proporcionar intercambios netos a diario. La medición neta de N2 es posible gracias al muestreo de un curso temporal de las concentraciones de gases disueltos, con un análisis espectrométrico de masas de alta precisión de las relaciones N2:Ar que proporciona un medio para medir las concentraciones de N2. Hemos aplicado con éxito este enfoque a lagos, embalses, estuarios, humedales y estanques de aguas pluviales, y con cuidado, este enfoque proporciona información valiosa sobre los equilibrios biogeoquímicos en los ecosistemas acuáticos.

Los resultados de las mediciones de flujo de sedimentos cerca de una instalación de acuicultura en el río Choptank (Chesapeake Bay, MD) se muestran en la Figura 1 y la interpretación de estos resultados en el contexto del ecosistema se presentan en otro lugar 26. Las incubaciones se llevaron a cabo durante 7 horas, con incubaciones oscuro seguido de datos incubaciones iluminados. Los datos de los dos núcleos se muestran, así como la columna de agua solamente a controlar. La rápida disminución de oxígeno en la oscuridad fue atenuada en cierta medida por la iluminación; la tasa de fotosíntesis de la producción de microalgas no fue tan alta como la respiración, con el principal efecto de la iluminación de ser una disminución de la tasa de cambio de oxígeno. El núcleo de control experimentó una pequeña disminución en la concentración de oxígeno en la oscuridad y pequeños aumentos en la luz. Las concentraciones de N 2 se determinaron por el N 2: relación de Ar y lavalores de la literatura saturación calculados Ar para la temperatura y la salinidad observada 27. En una precisión típica de 0,02% para el N 2: relación de Ar, estos datos son precisos a ~ 0,1 mol L -1 N 2. Los núcleos de sedimentos y los núcleos en blanco la columna de agua tuvieron aumentos en N2 a través del tiempo, con tasas mucho más altas de aumento de los núcleos. Bajo iluminación, pistas fueron generalmente similares a la tasa oscura de N2 cambio. Flujos de disuelto NH 4 + eran bastante alto en este sitio, con aumento oscuro de&gt; 20 mol L -1 para un núcleo. Iluminadas NH 4 + flujos eran mucho más bajos. Ambos núcleos y en blanco la columna de agua habían disminución de NOx - concentración con el tiempo, la nivelación durante la iluminación. Para todos los flujos, los datos de concentración y los datos sobre el volumen del núcleo y otros parámetros relevantes se muestran en la <st<html> rong&gt; Tablas 1 y 2. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54098/54098fig1.jpg" /> Figura 1. Tiempo de datos de cursos de un sitio de aguas poco profundas en el río Choptank que estaba cubierto con flotadores que contienen ostras cultivadas. Los datos proceden de núcleos repetidas (A y B) y los datos de una columna en blanco de agua se muestran. Las concentraciones de oxígeno N 2, NH 4 + y NO x - (la suma de NO 3 - y NO 2 - se presentan tanto para la parte oscura de la incubación (área sombreada) y para la parte iluminada de la incubación, el cuarto tiempo. punto de la incubación oscura es también el primer punto de la serie temporal iluminada tiempo; las luces se encendieron en el momento de la toma de muestras las líneas son regresiones lineales y las pendientes se presentan en la Tabla 1..98 / 54098fig1large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td fo:width="1.8in" style="width:220px"> Oxígeno - Dark </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 0 </td><td> 235.1 </td><td> 221,7 </td><td> 235.2 </td></tr><tr><td></td><td> 1.3 </td><td> 204.3 </td><td> 170,6 </td><td> 235.3 </td></tr><tr><td></td><td> 2.32 </td><td> 162,7 </td><td> 138,9 </td><td> 232 </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 145,3 </td><td> 77.9 </td><td> 222,2 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,943 </td><td> 0,999 </td><td> 0,836 </td></tr><tr><td> Pendiente (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -23.5 </td><td> -35.9 </td><td> -3,4 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -20.1 </td><td> -32.5 </td><td></td></tr><tr><td> Tasa (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> -3095 </td><td> -4875 </td><td></td></tr><tr><td> Oxígeno - Luz </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 145,3 </td><td> 77.9 </td><td> 222,2 </td></tr><tr><td></td><td> 4.88 </td><td> 133,5 </td><td> 68.8 </td><td> 224.3 </td></tr><tr><td></td><td> 5.88 </td><td> 122,8 </td><td> 40.3 </td><td> 221,6 </td></tr><tr><td></td><td> 6.88 </td><td> 116 </td><td> 49.2 </td><td> 230,5 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,981 </td><td> 0,999 </td><td> 0,994 </td></tr><tr><td> Pendiente (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -10.1 </td><td> -9.8 </td><td> 2.9 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -13 </td><td> -12.7 </td><td></td></tr><tr><td> Tasa (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> -2.000 </td><td> -1905 </td><td></td></tr><tr><td> N 2 - Dark </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 0 </td><td> 466.46 </td><td> 466,40 </td><td> 466,62 </td></tr><tr><td></td><td> 1.3 </td><td> 466,74 </td><td> 467,49 </td><td> 466,11 </td></tr><tr><td></td><td> 2.32 </td><td> 467,55 </td><td> 468,18 </td><td> 466,74 </td></tr><tr><td&gt; </td><td> 3.97 </td><td> 468,24 </td><td> 468,98 </td><td> 467,12 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,963 </td><td> 0.98 </td><td> 0,854 </td></tr><tr><td> Pendiente N 2 (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 0,471 </td><td> 0,645 </td><td> 0.12 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida N2 (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 0,351 </td><td> 0,525 </td><td></td></tr><tr><td> La dosis de N 2 -N (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> 108.1 </td><td> 157,5 </td><td></td></tr><tr><td> N 2 - Luz </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 468,24 </td><td> 468,98 </td><td> 467,12 </td></tr><tr><td></td><td> 4.88 </td><td> 468,84 </td><td> 469,21 </td><td> 467,26 </td></tr><tr><td></td><td> 5.88 </td><td> 469,39 </td><td> 469,71 </td><td> 467,47 </td></tr><tr><td></td><td> 6.88 </td><td> 469,62 </td><td> 470,04 </td><td> 467,41 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0.96 </td><td> 0,987 </td><td> 0,967 </td></tr><tr><td> Pendiente N 2 (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 0,481 </td><td> 0,378 </td><td> 0,096 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida N2 (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 0,386 </td><td> 0,282 </td><td></td></tr><tr><td> La dosis de N 2 -N (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> 118,9 </td><td> 84.6 </td><td></td></tr><tr><td> Núcleo Superficie (m 2) </td><td></td><td> 0.003165 </td><td> 0.003165 </td><td></td></tr&gt; <tr><td> Volumen del núcleo (L) </td><td></td><td> 0.4874 </td><td> 0.4747 </td><td></td></tr></tbody></table> . Tabla 1. Datos del campo Tiempo de O 2 y N 2 de los sedimentos por debajo de los flotadores de ostras de la acuicultura en el río Choptank, un subestuary de la Bahía de Chesapeake Las concentraciones de gas se derivan de O 2: Ar y N2: Ar proporciones determinadas por la entrada de membrana espectrometría de masas. Los valores de tiempo de 2 curso de regresión R son significativas para valores&gt; 0.9025 (P &lt;0,05). Las pendientes son determinados por regresión lineal y las pendientes corregidas se determinan restando la velocidad de cambio de la columna de agua solamente en blanco. tasas positivas son flujos netos fuera de los sedimentos, las tasas negativas indican flujo en el sedimento. Los datos de flujo N 2 se expresan como N 2 -N, haciendo compaRison en NH 4 + y NO x - flujos más fácil. Este sitio tenía sedimentos que consiste principalmente de limo y arcilla con las condiciones de la columna de agua totalmente aeróbicas. El área de los núcleos fue 31,65 cm -2 y las profundidades de columna de agua fueron de 15,4 cm de núcleo A y 15,0 para el núcleo B. Todas las concentraciones de N2 y O2 son mol L -1. La tasa final de N2 flujo se expresa en N 2 -N. <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td fo:width="1.8in" style="width:220px"> NH4 + - Dark </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 0 </td><td> 10.84 </td><td> 14.09 </td><td> 6.91 </td></tr><tr><td></td><td> 1.3 </td><td> 16.19 </td><td> 20.26 </td><td> 5.83 </td></tr><tr><td></td><td> 2.32 </td><td> 17.07 </td><td> 24.93 </td><td> 5.42 </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 22.83 </td><td> 35.43 </td><td> 4.67 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,968 </td><td> 0,993 </td><td> 0,853 </td></tr><tr><td> Pendiente (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 2.88 </td><td> 5.36 </td><td> -0.53 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 3.41 </td><td> 5.89 </td><td></td></tr><tr><td> Tasa (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> 525 </td><td> 884 </td><td></td></tr><tr><td> NH4 + - Luz </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 22.83 </td&gt; <td> 35.43 </td><td> 4.67 </td></tr><tr><td></td><td> 4.88 </td><td> 24.05 </td><td> 36.45 </td><td> 4.13 </td></tr><tr><td></td><td> 5.88 </td><td> 25.00 </td><td> 37.60 </td><td> 3.79 </td></tr><tr><td></td><td> 6.88 </td><td> 26.96 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,978 </td><td> 1 </td><td> 0,966 </td></tr><tr><td> Pendiente (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 1.37 </td><td> 1.13 </td><td> -0.55 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> 1.92 </td><td> 1.68 </td><td></td></tr><tr><td> Tasa (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> 296 </td><td> 252 </td><td></td></tr><tr><td> NO x - - Dark </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 0 </td><td> 4.12 </td><td> 4.01 </td><td> 4.53 </td></tr><tr><td></td><td> 1.3 </td><td> 3.82 </td><td> 3.58 </td><td> 4.43 </td></tr><tr><td></td><td> 2.32 </td><td> 3.70 </td><td> 3.25 </td><td> 4.28 </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 3.19 </td><td> 2.64 </td><td> 4.19 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,976 </td><td> 0,992 </td><td> 0,967 </td></tr><tr><td> Pendiente (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -0,229 </td><td> -0,345 </td><td> -0,089 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -0.14 </td><td> -0,256 </td><td></td></tr><tr><td> Tasa (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> -21.6 </td><td> -38.4 </td><td></td></tr><tr><td> NO x - - Luz </td><td> Tiempo (h) </td><td> Core A </td><td> núcleo B </td><td> Controlar </td></tr><tr><td></td><td> 3.97 </td><td> 3.19 </td><td> 2.64 </td><td> 4.19 </td></tr><tr><td></td><td> 4.88 </td><td> 3.06 </td><td> 2.59 </td><td> 4.06 </td></tr><tr><td></td><td> 5.88 </td><td> 3.18 </td><td> 2.41 </td><td> 4.02 </td></tr><tr><td></td><td> 6.88 </td><td> 2.95 </td><td> 2.35 </td><td> 4.2 </td></tr><tr><td> R 2 </td><td></td><td> 0,934 </td><td> 0,909 </td><td> 0,9 </td></tr><tr><td> Pendiente (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -0,078 </td><td> -0,103 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> Pendiente corregida (mol L -1 h -1) </td><td></td><td> -0,078 </td><td> -0,103 </td><td></td></tr><tr><td> Tasa (mol m -2 h -1) </td><td></td><td> -12 </td><td> -15.5 </td><td></td></tr><tr><td> Núcleo Superficie (m 2) </td><td></td><td> 0.003165 </td><td> 0.003165 </td><td></td></tr><tr><td> Volumen del núcleo (L) </td><td></td><td> 0.4874 </td><td> 0.4747 </td><td></td></tr></tbody></table> Tabla 2. Datos de evolución en el tiempo de NH 4 + y NO x - a partir de los mismos núcleos de sedimentos utilizados para la Tabla 1. El tiempo del curso de regresión R 2 valores son significativos para valores&gt; 0.9025 (P &lt;0,05). Las pendientes son determinados por regresión lineal y las pendientes corregidas se determinan restando la velocidad de cambio de la columna de agua solamente en blanco. tasas positivas son flujos netosde los sedimentos, las tasas negativas indican flujo en el sedimento. Todas las concentraciones de NH 4 + y NO 2 - son mol L -1.

Aquí, presentamos pequeñas incubaciones de núcleo para la medición del intercambio de sedimentos-agua, gas y solutos. Estos proporcionarán mediciones fiables del intercambio sedimento-agua que evalúan el papel de los sedimentos en la influencia de los procesos biológicos y biogeoquímicos en los ecosistemas acuáticos.

El intercambio de O bentónica<sub&gt; 2</sub&gt;, N<sub&gt; 2</sub&gt; y nutrientes disueltos usando pequeños incubaciones Core

The measurement of sediment-water exchange of gases and solutes in aquatic sediments provides data valuable for understanding the role of sediments in ...

El objetivo general de este experimento biogeoquímico en sedimentos es realizar mediciones realistas del intercambio de solutos y gases entre la superficie del sedimento y el agua sobreyacente, con el fin de perfeccionar los balances de masa acuáticos y aportar información para los esfuerzos de modelado biogeoquímico. Este método podría ayudar a responder preguntas clave en biogeoquímica acuática, como qué tan importantes son nuestros sedimentos como sumideros y fuentes de elementos nutrientes y oxígeno. Está optimizado para la medición de la desnitrificación acuática, un sumidero importante en el ciclo del nitrógeno acuático.La principal ventaja de esta técnica es que es altamente eficiente y nos permite tener una cobertura espacial y temporal considerable de los procesos biogeoquímicos en los sedimentos. Comience anotando la ubicación del sitio de muestreo mediante GPS. Luego, determine el oxígeno, la temperatura y la salinidad del agua del fondo utilizando un sensor de calidad del agua YSI.Bájelo a aproximadamente un metro por encima del sedimento y tome una lectura. A continuación, tome lecturas con un medidor de PAR y un marco de descenso en la superficie y en el fondo para estimar la atenuación de la luz en el agua. Ahora, prepare el corona perforadora.Para estudios de aguas profundas, utilice un testigo con un diámetro interno de 6,35 centímetros, y para sedimentos con microalgas bentónicas o poblaciones grandes de animales, utilice un testigo con un diámetro interno de 10 centímetros. Ahora, despliegue el tomamuestras desde el costado del barco y bájelo lentamente para minimizar las perturbaciones al penetrar el sedimento. Después de recuperar el tomamuestras tipo caja, inserte los tubos de testigo dentro de la caja.Inserte un tapón de butilo en la parte superior de cada tubo de testigo, luego sujete una placa de acrílico con una junta tórica en cada extremo inferior. Para un corredor de polo, coloque la placa inferior de acrílico dentro del forro del testigo antes de retirar el testigo del corredor. Después del muestreo, examine el testigo de flujo y la caja de testigos en busca de perturbaciones visibles o resuspensión excesiva.Para experimentos de flujo, el equilibrio ideal entre sedimento y agua dentro del testigo es de 15 centímetros de cada uno, pero en sedimentos gruesos o altamente compactados, es aceptable recolectar menos sedimento. Sin embargo, si las tasas de agotamiento de oxígeno son excesivas, modifique el equilibrio hacia más agua. Almacene los testigos en una nevera isotérmica inundada con agua ambiente del sitio para mantener las temperaturas in situ.Asegúrese de que el refrigerador permanezca en posición vertical. A continuación, recoja agua de fondo de los lugares de muestreo en bidones de 20 litros utilizando una bomba de diafragma. Por lo general, llene dos o tres bidones, y recoja muestras de varios sitios si se prevé que la química del agua cambie entre ellos.Si no hay una bomba disponible en aguas poco profundas y no estratificadas, se puede llenar manualmente un matraz aforado. Ahora, transporte rápidamente los testigos aeróbicos hasta la instalación de incubación antes de que se vuelvan anóxicos. Una vez en la instalación, inspeccione los testigos y deseche cualquiera que haya sido perturbado durante el transporte.Luego coloque los testigos, incluyendo el blanco de la columna de agua, en un incubador con baño y ajuste la temperatura a la temperatura medida del agua de fondo. Rellene el incubador con el agua de fondo recolectada, sumergiendo completamente los testigos de sedimento. Un testigo en blanco, un testigo sin sedimento, también se rellena con agua de fondo.Además, agregue agua de fondo a garrafones de cinco litros con grifos que se utilizarán para dispensar el agua de reemplazo. Para la aireación, use un difusor en T pequeño fabricado con tubo de PVC de 1/2 pulgada y un acoplador de tres salidas. Cubra el tubo de 1/8 de pulgada con un tubo de PVC, y drene el agua proporcionando circulación y aireación.Ahora, deje que los testigos se equilibren durante al menos dos horas hasta toda la noche, en la oscuridad, antes del muestreo. Una vez que los testigos hayan equilibrado, coloque tapones giratorios en los testigos. Con la válvula de muestreo abierta, retire suavemente cualquier burbuja de aire debajo del tapón giratorio y selle el testigo del agua del tanque.A continuación, eleve un bidón de repuesto con agua a 30-40 centímetros por encima de los núcleos de incubación, luego inicie las líneas de drenaje desde el bidón y, una vez que estén fluyendo, conecte las líneas a las tapas superiores de los núcleos. A continuación, cierre las válvulas. Ahora, encienda la plataforma giratoria central y ajuste la velocidad de rotación para mezclar la columna de agua sin resuspender el sedimento.Generalmente funciona con 40 revoluciones por minuto. Después de aproximadamente cinco minutos, abra la válvula de agua de reemplazo y la válvula de muestra. Luego, conecte un trozo corto de tubo a la válvula de muestra utilizando un acoplamiento de cierre rápido.Coloque este tubo de muestreo en un tubo de muestra de vidrio de siete mililitros y llénelo en exceso con agua. Luego agregue 10 microlitros de cloruro de mercurio a la muestra y tape el tubo. Para el muestreo de solutos, conecte un cuerpo de jeringa de 20 mililitros a la válvula de muestra y abra la válvula de agua de reemplazo.Luego, coloque un émbolo y un disco de filtro en la jeringa cargada y filtre la muestra en viales de recolección. El curso temporal del muestreo en la oscuridad generalmente comprende cuatro períodos de muestreo con intervalos de media hora a dos horas o más, dependiendo de la tasa de consumo de oxígeno. Utilizando optodos calibrados, controle los niveles de oxígeno en el agua muestreada.En general, la disminución del 25 % del oxígeno permite la medición de los cambios en la concentración de nutrientes. Es posible realizar un muestreo más prolongado, pero no muestree después de que el oxígeno se haya reducido en un 50 %. Si los sedimentos provienen de ambientes iluminados y poco profundos, encienda las luces después de la cuarta muestra y tome tres muestras adicionales.Guarde las muestras recogidas bajo agua a la temperatura de incubación. Después de tomar las muestras, mida el volumen restante de agua en el testigo mediante la altura de la columna de agua, o vaciando toda el agua en un cilindro graduado. Las mediciones de flujo de sedimentos se realizaron cerca de una instalación de acuicultura en el río Choptank.La rápida disminución de oxígeno fue atenuada en cierta medida por la iluminación, pero la tasa de fotosíntesis no fue tan alta como la de respiración. Los niveles de oxígeno en el núcleo de control cambiaron solo ligeramente. Las concentraciones de nitrógeno se determinaron utilizando las proporciones de nitrógeno respecto al argón, con una precisión de 0,02 % o aproximadamente 100 nanomoles por litro de nitrógeno.En condiciones de oscuridad o luz, los testigos de sedimento aumentaron mucho más en contenido de nitrógeno que los aumentos observados en el blanco de agua. Los flujos de amonio disuelto fueron bastante altos durante la oscuridad. Se observó un aumento de 20 micromoles por litro en un testigo.Incluso bajo iluminación, los testigos presentaron concentraciones crecientes de amonio. Tanto los testigos como el blanco de la columna de agua mostraron una concentración decreciente de nitrato más nitrito a lo largo del tiempo, con tasas de disminución más bajas durante la iluminación. Una vez dominados, estos procedimientos de incubación pueden realizarse eficientemente por dos científicos, típicamente en un período de seis a ocho horas, dependiendo de las tasas de respiración del sedimento.Al intentar este procedimiento, es importante recordar recolectar una interfase agua-sedimento intacta y mantener una temperatura constante similar a la observada en el campo. Tras completar la incubación, estos testigos pueden utilizarse para muestrear el contenido de clorofila, el tamaño de grano, la química del agua intersticial y la reactividad específica por masa del sedimento. Tras su desarrollo, el uso de las relaciones de gas nitrógeno a argón para medir la desnitrificación proporcionó un enfoque alternativo para la medición de la desnitrificación y los flujos netos de dinitrógeno.Los científicos han aplicado esta técnica de relación de gases a la medición de la denitrificación en humedales, lagos, embalses, estuarios y sedimentos costeros someros, proporcionando una alternativa útil a la metodología isotópica.

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