Name: Preparación y caracterización de lipofílico Doxorrubicina micelas profármaco (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Aprende a preparar y caracterizar micelas lipofílicas de pro-fármaco doxorrubicina. Este método mejora la carga y estabilidad del fármaco, facilitando la entrega dirigida a tumores y reduciendo toxicidades en tratamientos oncológicos.

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Este trabajo fue financiado por las siguientes subvenciones: beca NIH-SC3, beca NSF-PREM, beca de investigación de la facultad de la Universidad de Hampton. Nos gustaría agradecer a la Sra. Michele A. Cochran del Instituto de Ciencias Marinas de Virginia (VIMS) por el uso del analizador de tamaño de partículas. También nos gustaría agradecer a la Sra. Corinne R. Ramaley por revisar el manuscrito.

1. Síntesis de DOX-PA <ol><li> Pesar 390 mg de doxorrubicina y 243 mg de hidrazida de ácido palmítico, y transferir a un matraz de fondo redondo. </li><li> Añadir 150 ml de metanol anhidro al matraz con una jeringa de vidrio. Añadir 39 l de ácido trifluoroacético (TFA) con una pipeta. El uso de un agitador magnético, se agita la mezcla de reacción durante 18 horas a RT en la oscuridad. NOTA: Las cantidades de materiales de reacción se pueden escalar hacia arriba o hacia abajo para obtener diferentes cantidades de DOX-PA. La relación de los reactivos debe mantenerse en las mismas proporciones. Las reacciones que utilizan cantidades de DOX en el intervalo de 78 mg a 1170 mg se pueden realizar en un laboratorio de química regular. </li><li> Purificación de DOX-PA utilizando una columna de gel de sílice. 17 <ol><li> Eliminar el disolvente en la mezcla de reacción con un evaporador rotatorio. Añadir 3 g de gel de sílice después de la volumen de la mezcla se reduce a alrededor de 20 ml. Continuar evaporación giratoria para producir polvos secos y para permitir tque la adsorción de los productos en el gel de sílice. Mantenga la muestra bajo un vacío durante 30 minutos más después de que se formaron los polvos secos. </li><li> Paquete de 50 g de gel de sílice en una columna utilizando diclorometano como disolvente. añadir con cuidado la muestra de gel de sílice que contiene el producto adsorbido a la columna. </li><li> Eluir la columna con una mezcla de diclorometano y metanol, al tiempo que aumenta gradualmente el porcentaje de metanol, lo que aumenta la polaridad del disolvente (Tabla 1). </li><li> Recoger fracciones de eluyente en tubos de ensayo (25 ml / tubo) y controlar el progreso por cromatografía de capa fina (TLC). </li><li> Combinar todas las fracciones que contienen puro DOX-PA y eliminar el disolvente utilizando un evaporador rotatorio hasta que se forma de polvo seco. secar aún más el producto bajo un vacío de O / N. </li></ol></li><li> Análisis de DOX-PA por TLC. <ol><li> Corte una sección cm x 8 cm 4 de la placa de TLC. soluciones de muestras puntuales, 0,5 cm desde la parte inferior de la placa de TLC con capilares manchado utilizando cumplenHanol como disolvente. </li><li> Coloque la placa de TLC en una cámara de revelado que contiene una mezcla de diclorometano y metanol (3/1, v / v). La profundidad de disolvente debe ser un poco menos de 0,5 cm. </li><li> Retirar la placa de la cámara de revelado cuando el frente del disolvente alcance la parte superior de la placa. Marque la ubicación del frente de disolvente con un lápiz y dejar que la placa se seque. Coloque la placa de TLC en una cámara de tinción que contiene vapor de yodo saturada con el fin de visualizar las muestras. </li></ol></li><li> Análisis de DOX-PA con 1 H-Nuclear Espectroscopía de Resonancia Magnética (1 H-NMR). 18 <ol><li> Disolver 15 mg de DOX-PA en 1 ml de metil sulfóxido-d6 (DMSO) y la transferencia de la muestra en un tubo de RMN. </li><li> Insertar el tubo de RMN en el imán del instrumento de RMN. Medir el espectro de protón, la selección de DMSO como disolvente. Retire el tubo de RMN del imán. Analizar el resultado de RMN 18. </li></ol></li></ol> 2. Preparación de DOX-PA micelas por el Método de Cine de dispersión <ol><li> Disolver DSPE-PEG (40 mg) y DOX-PA (4 mg) con 2 ml de metanol en un vial de vidrio de 10 ml. </li><li> Eliminar el disolvente orgánico bajo vacío usando un evaporador rotatorio hasta que se forme una fina película en el vial. NOTA: Como alternativa, se evaporan los disolventes orgánicos bajo gas inerte (por ejemplo, gas argón o nitrógeno) para formar una película y mantener el vial en un desecador de vacío para eliminar adicionalmente el disolvente residual. </li><li> Transferencia de 2 ml de solución salina de Dulbecco tamponada con fosfato (pH 7,4, DPBS) al vial de vidrio. </li><li> Colocar el vial en un baño de ultrasonidos durante 3 minutos a temperatura ambiente para generar micelas. NOTA: La energía ultrasónica varía entre los diferentes modelos de baños de ultrasonidos. Seleccione una unidad que puede generar energía ultrasónica suficiente para dispersar a la película de polímero / fármaco delgada. La potencia de salida del baño de ultrasonidos utilizado en este protocolo es de 110 W. </li><li> Mantenga micelas a 4 ° C para el almacenamiento a corto plazo y -20 ° C durante largo-term de almacenamiento. NOTA: Como alternativa, las micelas también pueden ser liofilizado y reconstituido con agua antes de su uso. Por lo general, no se necesita ningún crioprotector o lioprotector para esta formulación. </li></ol> 3. Caracterización de DOX-PA micelas <ol><li> Determinación de la concentración de DOX-PA en micelas y la eficiencia de encapsulación de drogas <ol><li> Disolver DOX-PA sintetizado en los pasos anteriores en DMSO para preparar soluciones de DOX-PA de cinco concentraciones diferentes: 1 g / ml, 5 mg / ml, 20 mg / ml, 50 mg / ml, y 100 mg / ml. Medir la absorción de las soluciones de DOX-PA con un espectrómetro de UV-VIS a 490 nm. Generar una curva estándar en base a las concentraciones de fármaco DOX-PA y su correspondiente absorción a 490 nm. </li><li> Diluir 25 l de micela cargada de fármaco con 500 l de DMSO. Medir la absorción a 490 nm con un espectrómetro UV-VIS. Calcular las concentraciones de fármaco con la curva estándar generada en el punto 3.1.1. </li><li> Calcular la eficiencia de encapsulación usando la siguiente ecuación: Eficiencia de encapsulación de Drogas (%) = (cantidad de fármacos en micelas) / (cantidad de fármaco añadido) x 100% </li></ol></li><li> Caracterización del tamaño de partícula con dispersión de luz dinámica (DLS) <ol><li> Diluir micelas con DPBS (pH 7,4) a una concentración final DSPE-PEG de 1 mg / ml. Analizar una muestra de 2 ml con un analizador de tamaño de partícula para obtener el tamaño y la polidispersidad índice promedio Z (PDI). </li></ol></li><li> Evaluación de la actividad contra el cáncer in vitro NOTA: Utilice una técnica estéril apropiada y operar dentro de una cabina de bioseguridad. <ol><li> Retirar el medio de cultivo de células de un matraz de cultivo celular (por ejemplo, T25) que contiene DU-145 células de cáncer de próstata humano y enjuagar las células con 2 ml de DPBS (pH 7,4). </li><li> Aspirar DPBS, añadir 1 ml de solución de tripsina (0,25%), y se incuba durante 2 min a 37 ° C para separar las células. </li><li> Añadir 10 ml de medio de cultivo celular (RPMI 1640 + 10% de suero fetal bovino + 1% de antibiótico-antimicótico), cuando la mayoría de las células se separaron del matraz. La transferencia de células a un tubo de centrífuga de 15 ml y centrifugar las células a 1.000 xg durante 5 min. </li><li> Vuelva a suspender el sedimento celular con 5 ml de medio de cultivo celular y retirar una muestra para contar el número de células con un hemocitómetro. Diluir las células con medio de cultivo celular a una densidad de 50.000 células / ml. Añadir las suspensiones de células se diluyeron en una placa de cultivo celular de 96 pocillos (100 l / pocillo). Se incuban las células en un incubador de cultivo celular (37 ° C, 5% de CO 2) durante 18 horas para permitir la unión celular. </li><li> Diluir DOX dimetil sulfóxido solución (DMSO) y solución de DOX-PA DMSO con medio de cultivo celular para obtener las concentraciones finales de fármaco de 0,1 M, 0,5 M, 2 M, 5 M, y 10 mM, respectivamente. Mantener la concentración final de DMSO en todas las muestras anteriores a 0,5%. Diluir micela DOX-PA con medio de cultivo celular para obtener co fármaco finalncentrations de 0,1 M, 0,5 M, 2 M, 5 M, y 10 micras, respectivamente. Utilizar el medio de cultivo celular en blanco un control. </li><li> Retire la placa de cultivo celular de 96 pocillos de la incubadora y reemplazar el medio de cultivo celular con 100 l de medio que contienen diferentes agentes de tratamiento preparados en la etapa 3.3.5 (n = 4 para cada grupo). Se incuban las células en la incubadora de cultivo celular (37 ° C, 5% de CO 2) para un 72 hr adicional. </li><li> Aspirar el medio y añadir 100 l de medio que contenía 0,5 mg / ml de 3- (4,5-dimetil-tiazol-2-il) -2,5-difenil tetrazolio (MTT). </li><li> Se incuban las células en la incubadora de cultivo celular para 2 h adicionales. Retirar con cuidado el medio y añadir 100 l de DMSO para disolver los cristales de formazán. </li><li> Medir la absorbancia con el espectrofotómetro de microplacas a una longitud de onda de 570 nm y una longitud de onda de referencia de 670 nm. </li><li> Calcular la viabilidad celular usando la siguiente ecuación: <strong&gt; Viabilidad celular (%) = (A Prueba / A de control) x 100% NOTA: Comparación de la viabilidad celular entre diferentes grupos usando un análisis unidireccional de la varianza (ANOVA) prueba estadística. Calcular el IC 50 basado en la viabilidad celular frente a los datos de concentración del fármaco. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

En este trabajo se describe un método película de dispersión sencilla, rápida para la preparación de las micelas. Este método utiliza las propiedades de autoensamblaje de un polímero anfifílico (por ejemplo, DSPE-PEG) para formar micelas de núcleo-envuelta estructurados en un entorno acuoso. Este método de preparación de micelas tiene varias ventajas. 1. Se trata de un proceso de formulación simple, que evita el uso de pasos de reducción de tamaño complicadas (tales como la extrusión u homogeneización) usados ​...

La quimioterapia se utiliza comúnmente para tratar varias formas de cáncer. La mayoría, si no todos, los medicamentos de quimioterapia tienen efectos secundarios tóxicos que pueden variar de leves condiciones manejables, tales como náuseas y diarrea, a las condiciones que amenazan la vida más. Debido a que la mayoría de los medicamentos contra el cáncer son tóxicos, la exposición no selectiva de estos fármacos para el tejido normal inevitablemente causa toxicidad. Por lo tanto, hay una gran necesidad de un enfoque terapéutico que puede ofrecer selectivamente fármacos en células cancerosas. Otro de los desafíos con la administración de medicamentos contra el cáncer es su escasa solubilidad en agua. Por lo general, se necesitan agentes solubilizantes para formular estos fármacos poco solubles. Sin embargo, la mayoría de agentes solubilizantes, tales como sulfóxido de dimetilo (DMSO), Cremophor EL, y polisorbato 80 (Tween 80) puede causar toxicidad hepática y renal, hemólisis, reacciones de hipersensibilidad agudas y neuropatías periféricas. 1 Por lo tanto, se necesitan formulaciones seguras y biocompatibles para el uso clínico de pobremedicamentos contra el cáncer Ly solubles. Nanoportadores son prometedores sistemas de administración de fármacos para hacer frente a los retos anteriores. Estos nanoportadores incluyen liposomas, nanopartículas 2, 3, 4-7 micelas conjugados polímero-fármaco, 8 y materiales inorgánicos. 9 Varios productos de nanomedicina (por ejemplo, Doxil, Abraxane, y Genexol) han sido aprobados por las agencias reguladoras para el tratamiento de pacientes con cáncer. 10 Las micelas poliméricas son prometedores portadores de administración de fármacos a nanoescala, que se han utilizado con éxito para el suministro de fármacos contra el cáncer. 4-7,11,12 micelas poliméricas típicos se preparan a partir de polímeros anfífilos a través de un proceso de autoensamblaje. Las micelas poliméricas estructurados de núcleo-envoltura incluyen una vaina hidrófila y un núcleo hidrofóbico. La envoltura hidrofílica puede estabilizar estéricamente micelas y prolongar su circulación en el torrente sanguíneo. El núcleo hidrofóbico puede resumir eficazmente d hidrófoboalfombras. Debido al pequeño tamaño de las micelas (normalmente menos de 200 nm) y las propiedades de circulación largo, se cree que las micelas poliméricas para lograr tumor de orientación a través de efectos de retención (EPR) (tumor pasiva focalización) aumento de la permeabilidad y. estabilidad carga de fármaco es crítica para el tumor capacidad de las micelas de orientación. Para lograr la orientación óptima del tumor, micelas deben tener fugas mínimas de drogas antes de llegar al sitio del tumor, sin embargo, la liberación rápida del fármaco después de entrar en las células cancerosas. Además, estabilidad de la formulación es también un requisito esencial para el desarrollo de productos, porque la estabilidad formulación determina la viabilidad de desarrollo de productos, así como la vida útil de los productos desarrollados. Recientemente, se han hecho muchos esfuerzos para mejorar la carga de fármacos en vehículos de entrega. El enfoque de profármaco lipófilo es una estrategia que ha sido explorado para mejorar la carga de fármaco en nanopartículas lipídicas y emulsiones. 13,14 El conjugation de lípidos con fármacos puede mejorar significativamente su lipofilia y mejorar la carga y la retención de los componentes lipófilos de nanoportadores. A continuación, se describe un protocolo para la preparación de doxorrubicina lipofílica micelas cargadas de profármaco. En primer lugar, se describe el procedimiento para la síntesis de doxorrubicina lipofílica profármaco. A continuación, se introduce un protocolo para generar micelas con un método de película de dispersión. Este método ha sido utilizado con éxito en nuestros estudios anteriores. 5 DSPE-PEG fue seleccionado como el material de soporte para la preparación de micelas, ya que ha sido utilizado con éxito para la administración de fármacos micela. 15,16 Finalmente, se describen varios ensayos in vitro utilizados para caracterizar micela formulaciones y para evaluar la actividad contra el cáncer.

<table><tbody><tr><td>DSPE-PEG2K</td><td>Cordenpharm</td><td>LP-R4-039</td><td>>95%</td></tr><tr><td>Doxorrubicina</td><td>LC Laboratories</td><td>D-4000</td><td>>99%</td></tr><tr><td>Hidrazida de ácido palmítico</td><td>TCI AMERICA&nbsp; &nbsp;</td><td>P000425G</td><td>>98.0%</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>ACROS Organics</td><td>610981000</td><td></td></tr><tr><td>cloruro de metileno anhidro&nbsp;</td><td>PESCADOR&nbsp;</td><td>D151-4</td><td>99.90%</td></tr><tr><td>Sulfóxido de metilo-d6</td><td>ACROS Orgánicos</td><td>AC320760075</td><td>solvente de RMN</td></tr><tr><td>Ácido trifluoroacético&nbsp;</td><td>ACROS Organics</td><td>AC293811000</td><td>99.50%</td></tr><tr><td>Gel de sílice</td><td>FISHER&nbsp;</td><td>L-7446</td><td>230-400 malla</td></tr><tr><td>Baker Flex TLC Placas FISHER</td><td>&nbsp;</td><td></td><td></td>NC9990129</tr><tr><td>DPBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>DU 145&nbsp; Células de cáncer de próstata</td><td>ATCC</td><td>HTB-81</td><td></td></tr><tr><td>MTT</td><td>ACROS Organics</td><td>158990050</td><td>98%</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Medio</td><td>MEDIATECH INC&nbsp;</td><td>10041CV</td><td></td></tr><tr><td>Antibiótico-Antimicótico&nbsp;</td><td>TECNOLOGÍAS LIFE&nbsp;</td><td>15240062</td><td>solución madre 100x</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>LIFE TECHNOLOGIES&nbsp;</td><td></td><td></td>10437077</tr><tr><td>Espectroscopía de Resonancia Magnética Nuclear</td><td>Varian, Inc</td><td></td><td>300 NMR&nbsp;</td></tr><tr><td>B&uuml; chi R-3 Rotavapor</td><td>Buchi</td><td>1103022V1&nbsp;</td><td>Evaporador rotativo</td></tr><tr><td>Baño ultrasónico</td><td>BRANSON ULTRASONICS CORPORATION&nbsp;</td><td></td><td></td>CPX952318R</tr><tr><td>espectrómetro UV-VIS Biomate 3</td><td>Thermo Spectronic</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zetasizer Nano ZS90&nbsp;</td>Espectrofotómetro de microplaca <td>analizador de tamaño de partícula</td>de <td>Malvern Instruments</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Rio-Rad</td><td>Benchmark Plus&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>incubadora de cultivos celulares</td><td>Napco</td><td>CO2 6000</td><td></td></tr><tr><td>cabina de seguridad biológica</td><td>Nuaire</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SigmaPlot&nbsp;</td><td>Systat Software, Inc.</td><td></td><td>software analítico</td></tr> placa <tr><td>de cultivo celular de 96 pocillos</td><td>Becton Dickinson</td><td>353072</td><td></td></tr><tr><td>tripsina&nbsp; 0.25%</td><td>Corning Cellgro</td><td>25-053-CI</td><td></td></tr></tbody></table>

preparación y caracterización de lipofílico doxorrubicina micelas profármaco

Preparation and Characterization of Lipophilic Doxorubicin Pro-drug Micelles

Micelles se han utilizado con éxito para la administración de fármacos contra el cáncer. Los polímeros anfifílicos forman micelas estructuradas en un entorno acuoso a través del autoensamblaje. El núcleo hidrofóbico de las micelas funciona como un reservorio de fármacos y encapsula los fármacos hidrofóbicos. La cubierta hidrofílica evita la agregación de micelas y también prolonga su circulación sistémica in vivo. En este protocolo, describimos un método para sintetizar un profármaco lipofílico de doxorrubicina, el ácido doxorrubicina-palmítico (DOX-PA), que mejorará la carga del fármaco en las micelas. Se utilizó un enlazador de hidrazona sensible al pH para conjugar la doxorrubicina con el lípido, lo que facilita la liberación de doxorrubicina libre dentro de las células cancerosas. El DOX-PA sintetizado se purificó con una columna de gel de sílice utilizando diclorometano/metanol como eluyente. El DOX-PA purificado se analizó con cromatografía en capa fina (TLC) yespectroscopía de resonancia magnética nuclear 1 H (RMN 1H). Se utilizó un método de dispersión de película para preparar micelas DSPE-PEG cargadas con DOX-PA. Además, se describen varios métodos para caracterizar las formulaciones de micelas, incluida la determinación de la concentración de DOX-PA y la eficiencia de encapsulación, la medición del tamaño y la distribución de las partículas, y la evaluación de las actividades anticancerosas in vitro. Este protocolo proporciona información útil sobre la preparación y caracterización de micelas cargadas de fármacos y, por lo tanto, facilitará la investigación y el desarrollo de nuevos nanomedicamentos contra el cáncer basados en micelas.

La Figura 1 muestra el esquema de síntesis de DOX-PA. DOX-PA fue sintetizado mediante conjugación de ácido palmítico con doxorubicina a través de un enlace hidrazona sensible al pH. Un ligero exceso de hidrazida de ácido palmítico se utilizó para facilitar la finalización de la reacción. Este método de reacción tiene una eficacia muy alta y sólo una pequeña cantidad de doxorrubicina se mantuvo después de una reacción de 18 h (Figura 2). El rendimiento fu...

Un protocolo para la preparación y caracterización de doxorrubicina lipofílica profármaco cargado 1,2-sn distearoyl- glicero-3-phosphoethanolamine- N - [amino (polietilenglicol) -2000] se describe (DSPE-PEG) micelas.

Preparación y caracterización de lipofílico Doxorrubicina micelas profármaco

Micelles have been successfully used for the delivery of anticancer drugs. Amphiphilic polymers form core-shell structured micelles in an aqueous ...

El objetivo general de este protocolo es describir los procedimientos para la preparación y caracterización de formulaciones de micelas cargadas con un profármaco lipofílico de doxorubicina. Este método ofrece un enfoque sencillo y confiable para la formulación de micelas. La síntesis de un profármaco lipofílico de doxorubicina puede mejorar la carga de fármaco y la estabilidad, abordando así un desafío importante en el desarrollo de formulaciones micelares.La formulación en micelas puede mejorar la administración dirigida de fármacos a tumores y, por lo tanto, reducir las toxicidades del tratamiento contra el cáncer. Además de la aplicación descrita en este proyecto, esta técnica también puede utilizarse para preparar nanomedicinas con agentes. Para sintetizar el profármaco lipofílico de doxorrubicina DOX-PA, pese 390 miligramos de doxorrubicina y 243 miligramos de hidroxazida de ácido palmítico, y transfiera ambos a un matraz redondo de fondo plano.Añada 150 mililitros de metanol anhidro al matraz con una jeringa de vidrio. Luego, añada 39 microlitros de ácido trifluoroacético, o TFA, con una pipeta. Utilizando un agitador magnético, agite la mezcla de reacción durante 18 horas a temperatura ambiente y en la oscuridad.Para purificar el DOX-PA utilizando una columna de gel de sílice, primero elimine el disolvente en la mezcla de reacción con un evaporador rotatorio. Añada tres gramos de gel de sílice después de que el volumen de la mezcla se haya reducido a aproximadamente 20 mililitros. Continúe con la evaporación rotatoria para obtener polvos secos y permitir la absorción de los productos en el gel de sílice.Mantenga la muestra bajo vacío durante 30 minutos adicionales después de que se formen los polvos secos. Empaquete 50 gramos de gel de sílice en una columna utilizando diclorometano como disolvente. Añada cuidadosamente la muestra de gel de sílice que contiene el producto absorbido a la columna.Eluir la columna con una mezcla de diclorometano y metanol aumentando gradualmente el porcentaje de metanol, aumentando así la polaridad del disolvente. Recoger fracciones del eluyente en tubos de ensayo a 25 mililitros por tubo, y monitorear el progreso mediante cromatografía en capa fina, o TLC. Combinar todas las fracciones que contengan DOX-PA puro y eliminar el disolvente utilizando un evaporador rotatorio hasta que se forme un polvo seco.Seque el producto adicionalmente bajo vacío durante la noche. Para preparar micelas, disuelva 40 miligramos de DSPE-PEG y cuatro miligramos de DOX-PA con dos mililitros de metanol en un vial de vidrio de 10 mililitros. Elimine el disolvente orgánico bajo vacío utilizando un evaporador rotatorio, hasta que se forme una película delgada en el vial.A continuación, transfiera dos mililitros de solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco, pH 7.4, al vial de vidrio. Seleccione un baño ultrasónico que pueda generar suficiente potencia ultrasónica para dispersar la película delgada de fármaco polimérico. La potencia de salida del baño ultrasónico utilizado en este protocolo es de 110 vatios.Coloque el vial en un baño ultrasónico durante tres minutos a temperatura ambiente para generar micelas. Mantenga las micelas a cuatro grados Celsius para almacenamiento a corto plazo y a menos 20 grados Celsius para almacenamiento a largo plazo. Una vez preparadas las micelas, realice diversas caracterizaciones para determinar la concentración del fármaco en las micelas, los tamaños de las partículas y las actividades anticancerígenas in vitro.Para determinar la concentración de DOX-PA y la eficiencia de encapsulación del fármaco, diluya 25 microlitros de micelas cargadas con fármaco en 500 microlitros de DMSO. Mida la absorción a 490 nanómetros con un espectrómetro UV-VIS y calcule las concentraciones de fármaco y la eficiencia de encapsulación según se describe en el protocolo del texto. Para evaluar la actividad anticancerígena in vitro, agregue las suspensiones celulares diluidas en una placa de cultivo celular de 96 pozos a 100 microlitros por pozo.Incube las células en una incubadora de cultivo celular durante 18 horas para permitir la adhesión celular. A continuación, diluya una solución de DOX en DMSO y una solución de DOX-PA en DMSO con medio de cultivo celular para obtener concentraciones finales del fármaco. Mantenga la concentración final de DMSO en todas las muestras al 0,5 %. Luego, diluya los micelos de DOX-PA con medio de cultivo celular para obtener concentraciones finales del fármaco.Utilice el medio de cultivo celular sin células como control. Retire la placa de cultivo celular de 96 pocillos del incubador y reemplace el medio de cultivo celular con 100 microlitros de medio que contenga diferentes agentes de tratamiento. Incube las células en el incubador de cultivo celular durante 72 horas adicionales.A continuación, aspire el medio y agregue 100 microlitros de medio que contenga 0,5 miligramos por mililitro de MTT. Incube las células en la incubadora de cultivo celular durante dos horas adicionales. Retire cuidadosamente el medio y agregue 100 microlitros de DMSO para disolver los cristales de formazán.Mida la absorbancia con el espectrofotómetro de microplacas a una longitud de onda de 570 nanómetros y una longitud de onda de referencia de 670 nanómetros. Finalmente, calcule la viabilidad celular según se describe en el protocolo del texto. El esquema de síntesis del DOX-PA se muestra aquí.El ácido palmítico se conjuga con doxorrubicina a través de un enlazador de hidrazina sensible al pH. La estructura de DOX-PA se confirmó además mediante un espectro de RMN de protones. Se observan picos característicos de RMN provenientes tanto de la doxorrubicina como del ácido palmítico.Las letras indican los picos y su grupo correspondiente dentro de la estructura. Los micelos de DSPE-PEG sin fármaco aparecen como un líquido transparente, mientras que los micelos de DOX-PA DSPE-PEG aparecen como un líquido rojo, debido a la carga de DOX-PA en los micelos. El tamaño medio de las partículas para los micelos de DSPE-PEG sin fármaco es de aproximadamente 17,0 nanómetros.La carga de DOX-PA aumentó ligeramente el tamaño de las partículas micelares, con un tamaño medio de partícula de aproximadamente 25,7 nanómetros para las micelas de DOX-PA DSPE-PEG. Se logró una reducción dependiente de la concentración en la viabilidad celular al tratar las células DU145 con doxorrubicina libre, DOX-PA libre o micelas de DOX-PA. Aunque la doxorrubicina libre es más eficaz que el DOX-PA libre o las micelas de DOX-PA a concentraciones bajas, los grupos de DOX-PA mostraron una mayor reducción en la viabilidad celular que la doxorrubicina libre a concentraciones altas.Además, parece que no hay diferencias significativas entre las micelas de DOX-PA y DOX-PA en concentraciones tanto altas como bajas. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo preparar formulaciones micelares mediante el método de dispersión de película. Es importante recordar que el método descrito puede utilizarse para preparar micelas con diferentes fármacos y materiales portadores.El diseño del material portador es fundamental para mejorar el rendimiento de la formulación. Tras seguir este procedimiento, la formulación micelar puede evaluarse posteriormente in vivo mediante modelos animales de tumor para comprobar su actividad anticancerígena.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingeniería

El objetivo de este protocolo es describir la preparación y caracterización de fármacos físicamente atrapados y poco solubles en agua en sistemas micelares de administración de fármacos compuestos por copolímeros de bloques anfifílicos.

Preparación y Caracterización de Individual y Multi-fármaco cargado físicamente atrapado poliméricos micelas

Informamos sobre una aplicación inteligente de nanotubos de carbono para la estabilización cinética de partículas lipídicas que contienen nanoestructuras autoensambladas en sus núcleos. La preparación de partículas lipídicas requiere concentraciones bastante bajas de nanotubos de carbono, lo que permite su uso en aplicaciones biomédicas, como la administración de fármacos.

Preparación fácil del ensamblado autónomos Internamente Lípidos Las partículas estabilizadas por nanotubos de carbono

Se describen los pasos clave de polimerización aniónica viviente de fenilglicidiléter (PheGE) de metoxi-polietilenglicol (mPEG b -PPheGE). Las micelas de copolímero de bloque resultante (BCMS) fueron cargados con doxorrubicina 14% (% en peso) y la liberación sostenida de fármaco durante 4 días bajo fisiológicamente se obtuvieron condiciones pertinentes.

La polimerización aniónica de un copolímero anfífilo para la Preparación de micelas de copolímeros de bloques estabilizados por interacciones de apilamiento π-pi

Para administrar fármacos contra el cáncer a sitios tumorales con alta especificidad y efectos secundarios reducidos, se requieren nuevos métodos basados en nanopartículas. Aquí, describimos micelas reticuladas de disulfuro que se pueden preparar fácilmente mediante oxidación mediada por peróxido de hidrógeno y son capaces de disociarse de manera eficiente en un entorno tumoral reductor para liberar cargas útiles.

Un enfoque Facile y eficiente para la producción de micelas reticuladas reversible disulfuro

Una nanopartícula de cristal líquido (LCNP) nanotransportador es explotado como un vehículo para la administración controlada de una carga hidrofóbica en la membrana plasmática de las células vivas.

Targeted membrana plasmática Entrega de cargo encapsulado hidrofóbico en un cristal líquido portador de nanopartículas

Proyección de imagen de células vivas es una poderosa herramienta para visualizar procesos dinámicos. El examen de las células fijas proporciona sólo imágenes estáticas, que pueden conducir a malas interpretaciones y confusión sobre el proceso. Este trabajo presenta un método para estudiar la absorción, liberación de fármaco y localización intracelular de la nanopartículas en las células vivas.

Usando In Vitro células vivas imágenes para explorar quimioterápicos entregado por nanopartículas basadas en lípidos

Este protocolo describe un proceso analítico eficaz y práctico de la extracción de muestra y determinación simultánea de múltiples fármacos, doxorrubicina (DOX), mitomycin C (MMC) y un metabolito DOX cardio tóxico, doxorubicinol (DOXol), en lo biológico muestras de un modelo de tumor de mama preclínicos tratadas con nanopartículas formulaciones de combinación de fármacos sinérgicos.

Extracción de muestras y cuantificación cromatográfica simultánea de doxorrubicina y mitomicina C siguiendo la combinación del fármaco en nanopartículas en ratones con tumores

Este estudio describe la hidratación clásica utilizando el método de película lipídica delgada para la preparación de nanoliposomas seguido de caracterización de nanopartículas. Una proteína hidrofílica y globular de 47 kDa, la alcina, se encapsula con éxito como una estrategia para mejorar la estabilidad, evitar el aclaramiento rápido y promover la liberación controlada. El método se puede adaptar a la encapsulación de moléculas hidrofóbicas.

Preparación y caracterización de nanoliposomas para el atrapamiento de proteínas globulares hidrofílicas bioactivas

El protocolo presenta los parámetros optimizados para preparar liposomas termosensibles utilizando el dispositivo de microfluidos de micromezcladores de espiga escalonado. Esto también permite la co-encapsulación de doxorubicina y verde indocyanina en los liposomas y la liberación fototérmica-activada de doxorubicina para la liberación controlada / desencadenada de fármacos.

Producción microfluídica de liposomas sensibles a la temperatura que contienen lysolipido

En este protocolo, las nanopartículas de oro modificadas con doxorrubicina AS1411-g-PEI-g-PEG se sintetizan a través de reacciones de amida de tres pasos. Luego, la doxorrubicina se carga y se administra a las células cancerosas diana para el tratamiento del cáncer.

Síntesis De Aptamer-PEI-g-PEG Nanopartículas De Oro Modificadas Cargadas Con Doxorrubicina Para La Administración De Fármacos Dirigidos

Aprende a preparar y caracterizar micelas lipofílicas de pro-fármaco doxorrubicina. Este método mejora la carga y estabilidad del fármaco, facilitando la entrega dirigida a tumores y reduciendo toxicidades en tratamientos oncológicos.

Preparación y caracterización de lipofílico Doxorrubicina micelas profármaco

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