Name: Ingeniería genética de un levaduras no convencionales para biocombustible renovable y producción bioquímica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-20T08:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 10 s
Description: Aprende a realizar transformación genética y deleción dirigida de genes en Yarrowia lipolytica mediante recombinación homóloga. Este protocolo eficiente utiliza el sistema Cre/LoxP para ingeniería de cepas en biocombustibles.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Agradecemos el apoyo financiero de la Agencia Nacional de Medio Ambiente de Singapur (ETRP 1.201.102), el Programa de Investigación Competitiva de la Fundación Nacional de Investigación de Singapur (NRF-CRP5-2009-03), la Agencia para la Ciencia, Tecnología e Investigación de Singapur ( 1324004108), Global I + D Programa de Proyectos, el Ministerio de Economía del conocimiento, la República de Corea (N0000677), la Agencia de Reducción de Amenazas a la Defensa (DTRA, HDTRA1-13-1-0037) y la Iniciativa de la biología sintética de la Universidad Nacional de Singapur ( DPRT / 943/09/14).

1. Generación de la Y. La cepa lipolytica KU70 Supresión <ol><li> Construcción de la casete de interrupción Nota: Véase la Tabla 1 para todos los cebadores utilizados en las amplificaciones de reacción en cadena de la polimerasa (PCR). <ol><li> Cebadores de diseño 20 para amplificar por PCR el casete de expresión LEU2 (véase la Tabla 1) a partir de una Y. vector de expresión lipolytica y introducir sitios LoxP en el 5 &#39;y 3&#39; de la casete LEU2 con un cebador hacia adelante largo (# 1, Tabla 1) y un cebador inverso de largo (# 2, Tabla 1), respectivamente. Para introducir un sitio de restricción adicional para las etapas posteriores del proceso de clonación, añadir un sitio de restricción BamHI en el cebador # 1. </li><li> Realizar PCR utilizando un ADN polimerasa de alta fidelidad como se detalla en la Tabla 2. </li><li> Se purifica el producto de PCR LoxP-promotor-LEU2-terminador-LoxP casete utilizando un Purificatio PCRn kit de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Añadir voladizos 3&#39;-A para el producto de PCR purificado de acuerdo con las instrucciones del fabricante 21. El uso de ADN ligasa de T4 para ligar el producto de PCR A-cola en un vector de clonación TA para dar el plásmido T-LEU2 según la Tabla 3. </li><li> Amplificar por PCR el 1 kb 5 &#39;secuencia arriba del gen KU70 usando los cebadores # 3 / # 4 de la Y. lipolytica Po1g ADN genómico 22 según la Tabla 2. Se purifica el producto de PCR usando un kit de purificación de PCR de acuerdo con las instrucciones del fabricante. <ol><li> Doble digerir tanto el producto de PCR purificado y el plásmido T-LEU2 con enzimas Sac II y Bam HI según la Tabla 4. Se purifica la mezcla de digestión usando un kit de purificación de PCR según las instrucciones del fabricante. Utilice ADN T4 ligasa para ligar el purificado y digerido producto de la PCR a la Sac II / sitios Bam HI de T-LEU2 para dar elplásmido T-LEU2-5E según la Tabla 3. </li></ol></li><li> Amplificar por PCR el 1 kb 3 &#39;secuencia abajo del gen KU70 utilizando los cebadores # 5 / # 6 de la Y. lipolytica Po1g ADN genómico 22 según la Tabla 2. Se purifica el producto de PCR usando un kit de purificación de PCR de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Doble digerir tanto el producto purificado de PCR y el plásmido T-LEU2-5E con Not I y Nde I enzimas según la Tabla 4. <ol><li> Se purifica la mezcla de digestión usando un kit de purificación de PCR según las instrucciones del fabricante. Entonces, ligar el digerido y purificado producto de PCR con el Not I / Nde I sitios de T-LEU2-5E para dar lugar al plásmido T-KO usando ADN ligasa de T4 según la Tabla 3. </li></ol></li><li> Digerir el plásmido T-KO con Sac II y Nde I enzimas según la Tabla 4 para producir el módulo de fragmentación (Figura 1 </strong&gt;). Se purifica los fragmentos de ADN digerido usando un kit de purificación de PCR según las instrucciones del fabricante. </li></ol></li><li> Preparación de células competentes y la transformación de Y. cepa lipolytica Po1g <ol><li> preparación de células competentes <ol><li> Se inocula una colonia de Y. cepa lipolytica Po1g de una placa de levadura fresca extracto-peptona-dextrosa (YPD) en 10 ml de medio YPD (1% de extracto de levadura, 2% de peptona, 2% de dextrosa y 50 mM de tampón de citrato de pH 4,0) en un matraz de 100 ml. Incubar en una incubadora de agitación 30 ° C a 225 rpm durante 20 h hasta saturación (un OD 600 de aproximadamente 15, medido utilizando un espectrofotómetro). </li><li> Sedimentar las células por centrifugación durante 5 min a 5000 xg a temperatura ambiente. Se lavan las células con 20 ml de Tris-EDTA (TE) tampón (Tris 10 mM, EDTA 1 mM, pH 7,5), y sedimentar las células como se describe en el paso 1.2.1.2. Resuspender las células en 1 ml de acetato de 0,1 M de litio (pH 6,0, ajustado con ácido acético), y se incuba durante 10 min a tempe habitaciónratura. </li><li> Alícuota de las células competentes (100 mu l) en tubos de 1,5 ml estériles. Continúe con los pasos de transformación por debajo de inmediato, o añadir glicerol a una concentración final de 25% (v / v) y se almacena a -80 ° C para el almacenamiento a largo plazo. </li></ol></li><li> Transformación <ol><li> Mezclar suavemente 10 l de ADN desnaturalizado de esperma de salmón (10 mg / ml) y 1 a 5 g de la casete de interrupción purificada junto con 100 l de células competentes, y se incuba a 30 ° C durante 15 min. </li><li> Añadir 700 l de glicol 40% de polietileno (PEG) -4000 (disuelto en 0,1 M de litio de acetato de pH 6,0), se mezcla bien y se incuba en un incubador con agitación a 30 ° C a 225 rpm durante 60 min. Nota: Es importante utilizar PEG con peso molecular medio de 4000, en lugar de PEG-3350 (utilizado normalmente en la transformación de la levadura convencional). </li><li> Choque térmico de la mezcla de transformación colocando el tubo en un baño de agua a 39 ° durante 60 minutos. </li><li> Añadir 1 ml de medio YPD yrecuperar durante 2 horas a 30 ° C y 225 rpm. Centrifugar a 9000 xg durante 1 min a temperatura ambiente, eliminar el sobrenadante y resuspender el sedimento en 1 ml de tampón TE. </li><li> Repellet las células por centrifugación a 9000 xg durante 1 min a temperatura ambiente y descartar el sobrenadante. Resuspender el precipitado en 100 l de tampón TE y la placa en placas selectivas (por ejemplo, placas de leucina deficientes), y se incuba a 30 ° C durante 2-3 días. </li><li> Pick 4 a 10 colonias individuales y inocular por separado en 2 ml de medio YPD. Incubar toda la noche en una incubadora de agitación 30 ° C a 225 rpm. Identificar las colonias positivas por análisis de PCR de ADN genómico de los transformantes 22 según la Tabla 5 usando dos conjuntos de cebadores # 55 / # 56, y # 56 / # 57, respectivamente. Nota: El no me linealizado pYLEX1 vector se transforma en Y. lipolytica Po1g células competentes con el fin de determinar la eficiencia de transformación contando el númerode unidades formadoras de colonias (UFC) por g de ADN plásmido utilizado 23. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Marcador de rescate <ol><li> Construcción del plásmido de expresión Cre <ol><li> Construcción de pYLEX1-CRE y pYLEX1-HPH <ol><li> Cebadores de diseño 20 para amplificar por PCR los marcos de lectura abierta de la CRE y HPH. Añadir un nucleótido de adenina extra de aguas arriba de los codones de inicio en los cebadores hacia adelante # 82 y # 84, e insertar sitios de restricción Kpn I aguas abajo de los codones de terminación en los cebadores inversos # 83 y # 85. amplificar por PCR los marcos de lectura abierta de la CRE y HPH de pSH69 (número de acceso HQ412578) 24, como se indica en la Tabla 2. </li><li> Purificar tanto cre y fragmentos HPH utilizando un kit de purificación de PCR de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Recopilación tanto los fragmentos cre y HPH purificadas con Kpn I enzima según Table 4. doble digestión del plásmido con las enzimas pYLEX1 Pml I y Kpn I según la Tabla 4. Se purifica la mezcla de digestión usando un kit de purificación de PCR según las instrucciones del fabricante. </li><li> Utilice ADN ligasa de T4 según la Tabla 3 para ligar los fragmentos de CRE y HPH purificados y digeridos a sitios Pml I / Kpn I de la Y. vector de expresión lipolytica, produciendo pYLEX1-CRE y pYLEX1-HPH, respectivamente. </li></ol></li><li> Construcción de pSL16-CRE-HPH <ol><li> Amplificar por PCR el casete de promotor-gen-terminador de cre de pYLEX1-CRE utilizando los cebadores # 86 / # 87 que flanquean los sitios de restricción Sal I / Pst I según la Tabla 2. Se purifica el producto de PCR usando un kit de purificación de PCR de acuerdo con las instrucciones del fabricante . <ol><li> Doble digerir tanto el producto de PCR purificado y pSL16-CEN1-1 (227) plásmido 25 con Sal I yPst I enzimas según la Tabla 4. Purificar la mezcla de digestión usando un kit de purificación de PCR según las instrucciones del fabricante. Entonces, ligar el producto de PCR purificado y digerido en pSL16-CEN1-1 (227) en los sitios correspondientes para crear pSL16-CRE utilizando ADN ligasa de T4 según la Tabla 3. </li></ol></li><li> Amplificar por PCR el casete de promotor-gen-terminador de hph de pYLEX1-HPH utilizando los cebadores # 88 / # 89 que flanquean los sitios de restricción Xho I / Bgl II según la Tabla 2. Se purifica el producto de PCR usando un kit de purificación de PCR de acuerdo con las instrucciones del fabricante . <ol><li> Doble digerir tanto el producto purificado de PCR y el plásmido pSL16-CRE con las enzimas Xho I y Bgl II según la Tabla 4. Se purifica la mezcla de digestión usando un kit de purificación de PCR según las instrucciones del fabricante. Entonces, ligar el producto de PCR purificado y digerido en pSL16-CRE en el correspondientesitios para generar pSL16-CRE-HPH utilizando ADN ligasa de T4 según la Tabla 3. Nota: El plásmido de expresión Cre resultante, pSL16-CRE-HPH, alberga un marcador de higromicina B seleccionable y es un vector episomal centromérica y replicación (Figura 2). </li></ol></li><li> Verificar todas las construcciones de la digestión con enzimas de restricción apropiadas (por ejemplo, Sal I / Pst I, para cortar el inserto del vector) según la Tabla 4. </li></ol></li></ol></li><li> Cre recombinasa mediada por rescate de marcador <ol><li> Transformar pSL16-CRE-HPH en células competentes de la cepa knockout KU70 siguiendo el protocolo de transformación descrito en el apartado 1.2 anterior. células de la placa transformado Onto YPD más higromicina B (YPDH) placas (que contiene 400 mg / ml de higromicina B), y se incuba a 30 ° C durante 2-3 días. </li><li> Llevar a cabo la PCR de colonias según la Tabla 5 utilizando los cebadores # 84 / # 85 para identificar positivolas colonias que contienen el plásmido pSL16-CRE-HPH después de la transformación. Nota: El cebador directo # 84 y el cebador inverso # 85 están situados dentro de la región codificante del gen HPH (Tabla 1). Sólo clones positivos generan un producto de PCR específico en la reacción de PCR. </li><li> Elija un clon positivo e inocular en 2 ml de medio YPDH, e incubar en una incubadora de agitación 30 ° C a 225 rpm durante la noche a la saturación. Medir la OD de células 600 con un espectrofotómetro. Recoger las células a una densidad óptica de 600 ~ 15. Centrifugar a 5000 xg durante 5 min a temperatura ambiente, y se lava una vez con 2 ml de agua estéril. </li><li> Células Re-inocular en 2 ml de medio YPD con una DO inicial 600 de 0,1 y permiten a las células crecer en una incubadora de agitación 30 ° C a 225 rpm durante la noche. Pasar la noche a la mañana el cultivo de células en placas de YPD para aislar colonias individuales 23. Colonias de placa Replica Onto YPD, YPDH, y placas de leucina deficientes 23 </sarriba&gt;. Nota: Las colonias que han perdido tanto el marcador LEU2 y pSL16-CRE-HPH plásmido sólo puede crecer en placas de YPD (Figura 3). </li></ol></li></ol> 3. Supresión de la alcohol deshidrogenasa y alcohol oxidasa Genes <ol><li> Realizar una búsqueda en la Y. la base de datos del genoma lipolytica utilizando la herramienta de alineación de búsqueda local Básica (BLAST) para identificar los genes candidatos para su eliminación 26. Introduzca la secuencia de la proteína de S. alcohol deshidrogenasa cerevisiae I en la herramienta de búsqueda BLAST (http://www.genome.jp/tools-bin/search_sequence?prog=blast&amp;db=yli&amp;seqid=aa). Nota: La herramienta de búsqueda BLAST devuelve las secuencias de proteínas más similares en el Y. la base de datos del genoma lipolytica. </li><li> Construir los casetes de deleción por PCR con los cebadores # 7 al # 56 (Tabla 1), y llevar a cabo la digestión con enzimas de restricción y reacciones de ligación utilizando los mismos métodos que se describe en el apartado 1.1 anterior. </li><li> Deberesson células competentes de la cepa knockout KU70, llevar a cabo transformaciones y llevar a cabo la PCR para identificar las colonias positivas con los cebadores # 55, # 58 y # 81 (Tabla 1), siguiendo el protocolo descrito en el apartado 1.2 anterior. Nota: Como ejemplo, el procedimiento para la deleción del gen YALI0E17787g se describe en las figuras 4 y 5. Se informaron los efectos de 1 kb y 2 kb región homóloga larga en la tasa de recombinación homóloga. </li></ol>

<ol><li>Jiménez-Bremont, J. F., Rodrìguez-Hernández, A. A., Rodrìguez-Kessler, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aJim%C3%A9nez-Bremont%2C+JF+%22Development+and+dimorphism+of+the+yeast+Yarrowia+lipolytica.+Dimorphic+fungi%3A+Their+importance+as+models+for+differentiation+and+fungal+pathogenesis%22">Development and dimorphism of the yeast Yarrowia lipolytica. Dimorphic fungi: Their importance as models for differentiation and fungal pathogenesis</a>. J, R. uiz-H. errera , 58-66 (2012).</li>
<li>Coelho, M., Amaral, P., Belo, I. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCoelho%2C+M+%22Yarrowia+lipolytica%3A+an+industrial+workhorse.+Current+research%2C+technology+and+education+topics+in+applied+microbiology+and+microbial+biotechnology%22">Yarrowia lipolytica: an industrial workhorse. Current research, technology and education topics in applied microbiology and microbial biotechnology</a>. Méndez-Vilas, A. , 930-940 (2010).</li>
<li>Martinez-Vazquez, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+transcription+factor+Znc1p%2C+which+regulates+the+yeast-to-hypha+transition+in+the+dimorphic+yeast+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Identification of the transcription factor Znc1p, which regulates the yeast-to-hypha transition in the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica.</a> Plos One. 8 (6), e66790(2013).</li>
<li>Richard, M., Quijano, R. R., Bezzate, S., Bordon-Pallier, F., Gaillardin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tagging+morphogenetic+genes+by+insertional+mutagenesis+in+the+yeast+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Tagging morphogenetic genes by insertional mutagenesis in the yeast Yarrowia lipolytica.</a> J. Bacteriol. 183 (10), 3098-3107 (2001).</li>
<li>Flores, C. L., Martìnez-Costa, O. H., Sánchez, V., Gancedo, C., Aragòn, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dimorphic+yeast+Yarrowia+lipolytica+possesses+an+atypical+phosphofructokinase%3A+characterization+of+the+enzyme+and+its+encoding+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology%22%5BJournal%5D)">The dimorphic yeast Yarrowia lipolytica possesses an atypical phosphofructokinase: characterization of the enzyme and its encoding gene.</a> Microbiology. 151 (5), 1465-1474 (2005).</li>
<li>Domìnguez, Á, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-conventional+yeasts+as+hosts+for+heterologous+protein+production%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Non-conventional yeasts as hosts for heterologous protein production.</a> Int. Microbiol. 1 (2), 131-142 (1998).</li>
<li>Zinjarde, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Food-related+applications+of+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Chem%22%5BJournal%5D)">Food-related applications of Yarrowia lipolytica.</a> Food Chem. 152, 1-10 (2014).</li>
<li>Finogenova, T., Morgunov, I., Kamzolova, S., Chernyavskaya, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organic+acid+production+by+the+yeast+Yarrowia+lipolytica%3A+a+review+of+prospects%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Biochem.+Micro%2B%22%5BJournal%5D)">Organic acid production by the yeast Yarrowia lipolytica: a review of prospects.</a> Appl. Biochem. Micro+. 41 (5), 418-425 (2005).</li>
<li>Groguenin, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+engineering+of+the+%CE%B2-oxidation+pathway+in+the+yeast+Yarrowia+lipolytica+to+increase+the+production+of+aroma+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Catal.+B-Enzym%22%5BJournal%5D)">Genetic engineering of the β-oxidation pathway in the yeast Yarrowia lipolytica to increase the production of aroma compounds.</a> J. Mol. Catal. B-Enzym. 28 (2), 75-79 (2004).</li>
<li>Meng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodiesel+production+from+oleaginous+microorganisms%5BTitle%5D)+AND+%22Renew.+Energ%22%5BJournal%5D)">Biodiesel production from oleaginous microorganisms.</a> Renew. Energ. 34 (1), 1-5 (2009).</li>
<li>Papanikolaou, S., Aggelis, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid+production+by+Yarrowia+lipolytica+growing+on+industrial+glycerol+in+a+single-stage+continuous+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresource+Technol%22%5BJournal%5D)">Lipid production by Yarrowia lipolytica growing on industrial glycerol in a single-stage continuous culture.</a> Bioresource Technol. 82 (1), 43-49 (2002).</li>
<li>Tai, M., Stephanopoulos, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+the+push+and+pull+of+lipid+biosynthesis+in+oleaginous+yeast+Yarrowia+lipolytica+for+biofuel+production%5BTitle%5D)+AND+%22Metab.+Eng%22%5BJournal%5D)">Engineering the push and pull of lipid biosynthesis in oleaginous yeast Yarrowia lipolytica for biofuel production.</a> Metab. Eng. 15, 1-9 (2013).</li>
<li>Liu, H. H., Ji, X. J., Huang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biotechnological+applications+of+Yarrowia+lipolytica%3A+Past%2C+present+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Adv%22%5BJournal%5D)">Biotechnological applications of Yarrowia lipolytica: Past, present and future.</a> Biotechnol. Adv. 33 (8), 1522-1546 (2015).</li>
<li>Liu, L., Alper, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Draft+genome+sequence+of+the+oleaginous+yeast+Yarrowia+lipolytica+PO1f%2C+a+commonly+used+metabolic+engineering+host%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Announc%22%5BJournal%5D)">Draft genome sequence of the oleaginous yeast Yarrowia lipolytica PO1f, a commonly used metabolic engineering host.</a> Genome Announc. 2 (4), e00652-e00614 (2014).</li>
<li>Dujon, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+evolution+in+yeasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genome evolution in yeasts.</a> Nature. 430 (6995), 35-44 (2004).</li>
<li>Chen, D. C., Beckerich, J. M., Gaillardin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-step+transformation+of+the+dimorphic+yeast+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Microbial.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">One-step transformation of the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica.</a> Appl. Microbial. Biotechnol. 48 (2), 232-235 (1997).</li>
<li>Wang, J. H., Hung, W., Tsai, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+efficiency+transformation+by+electroporation+of+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">High efficiency transformation by electroporation of Yarrowia lipolytica.</a> J. Microbiol. 49 (3), 469-472 (2011).</li>
<li>Matsuoka, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+regions+essential+for+the+function+of+chromosomal+replicator+sequences+from+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Gen.+Genet%22%5BJournal%5D)">Analysis of regions essential for the function of chromosomal replicator sequences from Yarrowia lipolytica.</a> Mol. Gen. Genet. 237 (3), 327-333 (1993).</li>
<li>Kretzschmar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+homologous+integration+frequency+in+Yarrowia+lipolytica+strains+defective+in+non-homologous+end-joining%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Genet%22%5BJournal%5D)">Increased homologous integration frequency in Yarrowia lipolytica strains defective in non-homologous end-joining.</a> Curr. Genet. 59 (1-2), 63-72 (2013).</li>
<li>Lorenz, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymerase+Chain+Reaction%3A+Basic+Protocol+Plus+Troubleshooting+and+Optimization+Strategies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Polymerase Chain Reaction: Basic Protocol Plus Troubleshooting and Optimization Strategies.</a> J. Vis. Exp. (63), e3998(2012).</li>
<li>Kobs, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cloning+blunt-end+DNA+fragments+into+the+pGEM-T+Vector+Systems%5BTitle%5D)+AND+%22Promega+Notes%22%5BJournal%5D)">Cloning blunt-end DNA fragments into the pGEM-T Vector Systems.</a> Promega Notes. 62, 15-18 (1997).</li>
<li>JoVE Science Education Database. Isolating Nucleic Acids from Yeast. Essentials of Biology 1: yeast, Drosophila and C. elegans. , JoVE. Cambridge, MA. Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.jove.com/science-education/5096/isolating-nucleic-acids-from-yeast">http://www.jove.com/science-education/5096/isolating-nucleic-acids-from-yeast</a> (2016).</li>
<li>Sanders, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aseptic+laboratory+techniques%3A+plating+methods%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Aseptic laboratory techniques: plating methods.</a> J. Vis. Exp. (63), e3064(2012).</li>
<li>Hegemann, J. H., Heick, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delete+and+repeat%3A+a+comprehensive+toolkit+for+sequential+gene+knockout+in+the+budding+yeast+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Delete and repeat: a comprehensive toolkit for sequential gene knockout in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae.</a> Methods Mol. Biol. 765, 189-206 (2011).</li>
<li>Yamane, T., Sakai, H., Nagahama, K., Ogawa, T., Matsuoka, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+centromeric+DNA+from+yeast+Yarrowia+lipolytica+and+identification+of+protein-binding+site+required+for+plasmid+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biosci.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Dissection of centromeric DNA from yeast Yarrowia lipolytica and identification of protein-binding site required for plasmid transmission.</a> J. Biosci. Bioeng. 105 (6), 571-578 (2008).</li>
<li>McGinnis, S., Madden, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BLAST%3A+at+the+core+of+a+powerful+and+diverse+set+of+sequence+analysis+tools%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">BLAST: at the core of a powerful and diverse set of sequence analysis tools.</a> Nucleic Acids Res. 32 ((Web Server issue)), W20-W25 (2004).</li>
<li>Madzak, C., Tréton, B., Blanchin-Roland, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strong+hybrid+promoters+and+integrative+expression%2Fsecretion+vectors+for+quasi-constitutive+expression+of+heterologous+proteins+in+the+yeast+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Microbiol.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Strong hybrid promoters and integrative expression/secretion vectors for quasi-constitutive expression of heterologous proteins in the yeast Yarrowia lipolytica.</a> J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2 (2), 207-216 (2000).</li>
<li>Nicaud, J. M., Le Clainche, A., Le Dall, M. T., Wang, H., Gaillardin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yarrowia+lipolytica%2C+a+yeast+model+for+the+genetic+studies+of+hydroxy+fatty+acids+biotransformation+into+lactones%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Catal.+B-Enzym%22%5BJournal%5D)">Yarrowia lipolytica, a yeast model for the genetic studies of hydroxy fatty acids biotransformation into lactones.</a> J. Mol. Catal. B-Enzym. 5 (1), 175-181 (1998).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Nuestro objetivo para este estudio es permitir la generación rápida y eficiente de los knockouts de genes dirigidos en el Y. lipolytica cepa Po1g. Varias consideraciones deben ser abordados para lograr esto. En primer lugar, se requiere una alta eficacia de transformación. Por lo tanto, un protocolo de transformación química eficiente y conveniente para el Y. cepa lipolytica Po1g se describió en este estudio. El uso de PEG-4000 es un factor crítico para la transformación exitosa de es...

A diferencia de Saccharomyces cerevisiae, Yarrowia lipolytica, una levadura convencional, puede crecer en forma de levadura o micelio en respuesta a cambios en las condiciones del medio ambiente 1,2. Por lo tanto, esta levadura dimórfica se puede utilizar como un buen modelo para el estudio de la diferenciación de hongos, la morfogénesis y la 3,4,5 taxonomía. Generalmente se considera como una caja fuerte especies de levadura (GRAS), que se utiliza ampliamente para producir una variedad de aditivos de alimentos tales como ácidos orgánicos, polialcoholes, compuestos de aroma, emulsionantes y agentes tensioactivos 6,7,8,9. Es un aerobio obligado y una levadura oleaginosa conocido capaz de acumular naturalmente lípidos en altas cantidades, es decir, hasta el 70% del peso seco de células 10. También se puede utilizar un amplio espectro de fuentes de carbono para el crecimiento, incluyendo diferentes tipos de residuos en los recursos de los residuos como nutrientes 11,12,13. Todas estas características únicas hacen Y. lipolytica muy atractivo paradiversas aplicaciones biotecnológicas. Aunque toda la secuencia del genoma de la Y. lipolytica ha sido publicada 14,15, la manipulación genética de esta levadura no convencional es más compleja que otras especies de levadura. En primer lugar, la transformación de esta especie de levadura es mucho menos eficiente debido a la ausencia de un sistema de 16,17 transformación genética estable y eficiente. En segundo lugar, la integración genómica laborioso de casetes de expresión lineales se utiliza comúnmente para la expresión de genes de interés ya que ningún sistema plásmido episomal natural se ha encontrado en esta levadura 18. En tercer lugar, la generación de genéticos knock-outs y knock-ins están limitados debido a que el gen de la eficiencia de la focalización mediante recombinación homóloga precisa en esta levadura es baja y la mayoría de los eventos de integración se produce a través de extremos no homólogos (NHEJ) 19. En este estudio, se presenta un protocolo de transformación optimizada para la Y. lipolytica </em&gt; Po1g cepa, que es fácil, rápido, eficiente y reproducible. Para mejorar la frecuencia de recombinación homóloga precisa, hemos suprimido el gen KU70, que codifica una enzima clave en la vía NHEJ. Al utilizar el protocolo de transformación optimizada y la transformación de un casete nocaut lineal que contiene regiones de homología flanqueantes de 1 kb, el gen de la KU70 Y. lipolytica Po1g se ha eliminado correctamente. La robustez de esta metodología de supresión de genes se demostró posteriormente por la orientación de la alcohol deshidrogenasa y los genes de alcohol oxidasa en la cepa Po1g KU70 Δ. Se observó que la supresión cepa KU70 exhibió una considerablemente mayor eficiencia de la recombinación de genes mediada homóloga de orientación que la de la cepa de tipo salvaje Po1g. Además, un plásmido replicativo expresión Cre que lleva el marcador de resistencia a higromicina B fue construido para llevar a cabo rescate de marcador. El rescate de marcador facilita múltiples rondas de mutagénesis dirigida en THe obtuvo supresión de genes mutantes. Además de la supresión de genes, nuestro protocolo para la transformación genética y la deleción del gen descrito aquí se puede aplicar para insertar genes a loci específicos, y para introducir mutaciones específicas de sitio en el Y. lipolytica genoma.

<table><tbody><tr><td><reactivo>fuerte/material</cebadores ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>oligonucleótidos integrados</td><td>Tecnologías</td><td></td> de ADN <td>integradas 25 nmoles de ADN oligos</td></tr><tr><td>Y. lipolytica cepa Po1g</td><td>Yeastern Biotech</td><td></td><td>leucina auxotrófico derivado de la cepa de tipo salvaje W29 (ATCC 20460)</td></tr><tr><td>Vector pYLEX1</td><td>Yeastern Biotech</td><td>FYY203-5MG</td><td>Y. lipolytica vector de expresión</td></tr><tr><td>E. coli TOP10</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Para la clonación y propagación de plásmidos</td></tr><tr><td>pGEM-T vector&nbsp;</td><td>Promega</td><td>A3600</td><td>TA vector de clonación</td></tr><tr><td>QIAprep Spin Miniprep Kit</td><td>Qiagen</td><td>27106</td><td>Para el aislamiento de plásmidos</td></tr><tr><td>Wizard SV Gel y sistema de limpieza de PCR</td><td>Promega</td><td>A9282</td><td>Extraiga fragmentos de ADN de geles de agarosa y purifique los productos de PCR de una reacción de amplificación</td></tr><tr><td>La ADN polimerasa de alta fidelidad </td><td>iProof Bio-Rad</td><td>172-5302</td><td>ADN polimerasa de alta fidelidad</td></tr><tr><td>BamHI&nbsp;</td><td>New England Biolabs</td><td>R0136S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>BglII&nbsp;</td><td>New England Biolabs</td><td>R0144L</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>KpnI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0142S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>NdeI&nbsp;</td><td>New England Biolabs</td><td>R0111S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>NotI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0189L</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>PmlI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0532S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>PstI&nbsp;</td><td>New England Biolabs</td><td>R0140S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>SacII</td><td>New England Biolabs</td><td>R0157S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>SalI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0138S</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>XhoI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0146L</td><td>Enzima de restricción</td></tr><tr><td>T4 ADN ligasa</td><td>New England Biolabs</td><td>M0202L</td><td></td></tr><tr><td>Taq ADN polimerasa& nbsp;</td><td>Bio-Rad</td><td>M0267L</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilina</td><td>Gibco-Life Technologies</td><td>11593-027</td><td>Antibióticos</td></tr><tr><td>Higromicina B</td><td>PAA</td><td>P21-014</td><td>Antibióticos</td></tr><tr><td>GeneRuler 1 kb escalera de ADN</td><td>Thermo Scientific</td><td>SM0312</td><td>1 kb escalera de ADN</td></tr><tr><td>PEG4000</td><td>Sigma</td><td>95904-F</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>Promega</td><td>H5135</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0729</td><td></td></tr><tr><td>Esperma de salmón ADN</td><td>Invitrogen</td><td>15-632-011</td><td></td></tr><tr><td>Acetato de litio</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ácido acético</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Perlas de vidrio (425-600 y micro; m)</td><td>Sigma</td><td>G8772</td><td></td></tr><tr><td>RNAse A</td><td>Thermo Scientific</td><td>EN0531</td><td></td></tr><tr><td>Colorante de carga de ADN</td><td>Thermo Scientific</td><td>R0611</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Extracto de levadura</td><td>BD</td><td>212750</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Peptona</td><td>BD 211677</td><td></td><td></td></tr><tr><td>D-Glucosa</td><td>1ª Base</td><td>BIO-1101</td><td></td></tr><tr><td>YNB sin aminoácidos</td><td>Sigma</td><td>Y0626</td><td></td></tr><tr><td>DO Suplemento-Leu</td><td>Clontech</td><td>630414</td><td></td></tr><tr><td>Glicerol</td><td>Sigma</td><td>G5516</td><td></td></tr><tr><td>Difco LB Caldo</td><td>BD</td><td>244620</td><td></td></tr><tr><td>Difco LB Agar</td><td>BD</td><td>244520</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Agar</td><td>BD</td><td>214010</td><td></td></tr><tr><td><fuerte>Equipo</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Máquina de PCR</td><td>Biorad</td><td>T100 Termociclador</td><td></td></tr><tr><td>Baño de agua</td><td>Memmert</td><td>WNB 14</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora estacionaria/agitadora</td><td>Yihder</td><td>LM-570RD</td><td></td></tr><tr><td>Termo-agitador</td><td>Allsheng</td><td>MS-100</td><td></td></tr><tr><td>Micro centrífuga</td><td>Eppendorf</td><td>5424R</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga</td><td>Eppendorf</td><td>5810R</td><td></td></tr><tr><td>Espectrofotómetro</td><td>Eppendorf&nbsp;</td><td>BioFotómetro más</td><td></td></tr><tr><td>generador de imágenes en gel</td><td>GE</td><td>Amersham Imager 600</td><td></td></tr></tbody></table>

ingeniería genética de un levaduras no convencionales para biocombustible renovable y producción bioquímica

Genetic Engineering of an Unconventional Yeast for Renewable Biofuel and Biochemical Production

Yarrowia lipolytica es una especie de levadura no patógena, dimórficos y estrictamente aerobios. Debido a sus características fisiológicas distintivas y características metabólicas, esta levadura no convencional no sólo es un buen modelo para el estudio de la naturaleza fundamental de la diferenciación de hongos pero es también una plataforma microbiana prometedor para la producción bioquímica y diversas aplicaciones biotecnológicas, que requieren extensas manipulaciones genéticas. Sin embargo, las manipulaciones genéticas de Y. lipolytica han sido limitados debido a la falta de un sistema de transformación genética eficiente y estable, así como tasas muy altas de recombinación no homóloga que se puede atribuir principalmente al gen KU70. Aquí, se presenta un protocolo de fácil y rápido para la transformación genética eficiente y para la deleción del gen de Y. lipolytica Po1g. En primer lugar, un protocolo para la transformación eficiente de ADN exógeno en Y. lipolytica Po1g se estableció. Second, para lograr la tasa de recombinación homóloga de doble cruce mejorado para una mayor eliminación de los genes diana, el gen KU70 se eliminó mediante la transformación de una casete de interrupción que lleva 1 brazos kb de homología. En tercer lugar, para demostrar la mayor eficiencia de la supresión de genes después de la supresión del gen KU70, hemos suprimido de forma individual 11 genes diana que codifican la alcohol deshidrogenasa y alcohol oxidasa utilizando los mismos procedimientos en la cepa plataforma nocaut KU70. Se observó que la tasa de recombinación homóloga precisa aumentó sustancialmente de menos de 0,5% para su eliminación del gen KU70 en Po1g al 33% -71% para la sola supresión de genes de los 11 genes diana en Po1g KU70 Δ. Un plásmido de replicación que lleva el marcador de resistencia a higromicina B y el sistema Cre / loxP se construyó, y el gen marcador de selección en las cepas de levadura knockout se eliminó finalmente mediante la expresión de la recombinasa Cre para facilitar múltiples rondas de TargeTED manipulaciones genéticas. Los mutantes de deleción de un solo gen resultantes tienen aplicaciones potenciales en la producción de biocombustibles y bioquímicos.

La Y. linealizado vector de expresión lipolytica se insertó en la plataforma de acoplamiento pBR en el genoma de Y. lipolytica Po1g cepa mediante la realización de una sola recombinación de cruce 27. Al utilizar el procedimiento de transformación química rápida establecido en este estudio, la Y. linealizado vector de expresión lipolytica se transformó con éxito en la cepa de tipo salvaje Po1g a una eficiencia de transformación de&gt...

En este trabajo informamos sobre métodos sobre la manipulación genética molecular de la cepa Po1g de Yarrowia lipolytica para mejorar la eficiencia de la deleción de genes. Las cepas de Y. lipolytica modificadas resultantes tienen aplicaciones potenciales en la producción de biocombustibles y bioquímicos.

Ingeniería genética de un levaduras no convencionales para biocombustible renovable y producción bioquímica

Yarrowia lipolytica is a non-pathogenic, dimorphic and strictly aerobic yeast species. Owing to its distinctive physiological features and metabolic ...

El objetivo general de este procedimiento es desarrollar métodos efectivos de ingeniería genética para una especie de levadura no convencional, incluyendo la construcción de ADN transformante, la transformación del ADN, la selección de transformantes y la eliminación dirigida de genes mediante recombinación homóloga. Hemos establecido una técnica altamente eficiente de eliminación de genes en la cepa Yarrowia lipolytica PO1G con posibles aplicaciones en la producción de biocombustibles y productos bioquímicos. La principal ventaja de esta técnica frente a métodos existentes como la interrupción génica mediada por PCR es que se dispone de grandes cantidades de fragmentos para la eliminación génica y de una amplia gama de marcadores seleccionables.En este estudio, describimos un protocolo de transformación genética para la cepa Yarrowia lipolytica PO1G que es eficiente, sencillo, confiable y reproducible. La cepa con deleción de KU70 en Yarrowia lipolytica PO1G construida en este estudio muestra una frecuencia muy eficiente de recombinación homóloga, lo que permite cribados más rápidos y sencillos de deleciones génicas dirigidas. El primer paso de este procedimiento consiste en amplificar, mediante PCR, el casete de expresión LEU2 a partir de un vector de expresión de Y. lipolytica e introducir sitios LoxP en los extremos 5-primo y 3-primo del casete LEU2.Un sitio de restricción BamHI también se introduce en el cebador uno para pasos posteriores del proceso de clonación. Después de purificar el casete LoxP promotor LEU2 terminador LoxP, se añaden prolongaciones de adenina en el extremo tres prima al producto de PCR purificado. El producto de PCR con cola de adeninas luego se liga a un vector de clonación TA para obtener el plásmido T-LEU2.El segundo paso de la PCR consiste en amplificar la secuencia ascendente de un kilobase en el extremo 5-prima del gen KU70 utilizando los cebadores tres y cuatro a partir del ADN genómico de Y.lipolytica PO1G. A continuación, se realiza una doble digestión con las enzimas SacII y BamHI del producto de PCR purificado y del plásmido T-LEU2, y se liga el producto de PCR purificado y digerido a los sitios SacII y BamHI del plásmido T-LEU2 para obtener el plásmido T-LEU2-5E. El tercer paso de la PCR consiste en amplificar la secuencia descendente de un kilobase en el extremo 3-prima del gen KU70 utilizando los cebadores cinco y seis a partir del ADN genómico de Y.lipolytica PO1G.Luego, digiera doblemente tanto el producto de PCR purificado como el plásmido T-LEU2-53 con las enzimas NotI y NdeI, y ligue el producto de PCR purificado y digerido a los sitios NotI-NdeI de T-LEU2-5E para obtener el plásmido T-KO. Por último, digiera el plásmido T-KO con las enzimas SacII y NdeI para producir el casete de interrupción. Comience este procedimiento preparando células competentes de Y.lipolytica PO1G.Inocular una colonia de la cepa Y.lipolytica PO1G de una placa fresca de extracto de levadura, peptona y dextrosa, o medio YPD, en 10 mililitros de medio YPD en un matraz de 100 mililitros. Incubar en un incubador agitador a 30 grados Celsius y 225 RPM durante 20 horas hasta alcanzar la saturación. Al día siguiente, pelotar las células mediante centrifugación durante cinco minutos a 5000 × g a temperatura ambiente.Lave las células con 20 mililitros de tampón TE y vuelva a centrifugar para obtener el sedimento celular. Después de eliminar el sobrenadante, re suspenda las células en un mililitro de acetato de litio 0,1 molar y incube durante 10 minutos a temperatura ambiente. Divida las células competentes en alícuotas de 100 microlitros en tubos estériles de 1,5 mililitros.Proceda inmediatamente al procedimiento de transformación mezclando suavemente 10 microlitros de ADN de esperma de salmón desnaturalizado y de uno a cinco microgramos del casete de interrupción purificado junto con 100 microlitros de células competentes. Incube a 30 grados Celsius durante 15 minutos. Añada 700 microlitros de polietilenglicol al 40% para 1000.Mezcle bien e incube en un incubador con agitación a 30 grados Celsius a 225 RPM durante 60 minutos. A continuación, caliente la mezcla de transformación colocando el tubo en un baño de agua a 39 grados Celsius durante 60 minutos. Después de 60 minutos, agregue un mililitro de medio YPD al tubo y permita que las células se recuperen durante dos horas a 30 grados Celsius a 225 RPM.Centrifugar a 9000 × g durante un minuto a temperatura ambiente. Eliminar el sobrenadante y resuspender el sedimento en un mililitro de tampón TE. Volver a centrifugar las células y desechar el sobrenadante.ReSuspender el precipitado en 100 microlitros de tampón TE y sembrar en una placa deficiente en leucina. Incubar la placa a 30 grados Celsius durante dos o tres días. Antes de realizar el rescate del marcador mediado por recombinasa CRE, se construye el plásmido de expresión de CRE como se describe en el protocolo escrito.Algunas de las características de este plásmido que se replica episomalmente incluyen un gen de recombinasa CRE, un marcador de resistencia a la higromicina B y un gen de resistencia a la ampicilina. Para comenzar este procedimiento, transforme el plásmido de expresión de CRE en células competentes de la cepa con eliminación de KU70 siguiendo el protocolo de transformación mostrado anteriormente. Siembre las células transformadas en placas de YPD más higromicina B e incube a 30 grados Celsius durante dos o tres días.Después de realizar la PCR de colonias, como se describe en el protocolo escrito para identificar colonias positivas, seleccione un clon positivo para inocular dos mililitros de medio YPDH e incubarlo durante la noche a 30 grados Celsius en un incubador con agitación a 225 RPM hasta alcanzar la saturación. Al día siguiente, mida la DO 600 del cultivo con un espectrofotómetro. Cuando las células alcancen una DO 600 de aproximadamente 15, recójalas por centrifugación a 5000 × g durante cinco minutos a temperatura ambiente.Elimine el sobrenadante, agregue dos mililitros de agua estéril y centrifugue nuevamente. Retire el sobrenadante y re suspenda las células en medio YPD. Reinocule las células en dos mililitros de medio YPD con un OD 600 inicial de 0,1. Incube las células en un incubador a 30 grados Celsius a 225 RPM durante la noche.Al día siguiente, raye el cultivo celular nocturno en placas de YPD para aislar colonias individuales. Incube a 30 grados Celsius hasta que aparezcan colonias. Replica las colonias en placas de YPD, YPDH y placas deficientes en leucina.Incubar las placas a 30 grados Celsius durante dos días. Se muestra un esquema del plásmido de eliminación de KU70. La digestión del plásmido con las enzimas SacII y NdeI produce el casete de interrupción.La electroforesis en gel confirma la presencia de una banda de 4,3 kilobases, que es el tamaño esperado del casete de interrupción. La eliminación del gen KU70 en Y.lipolytica PO1G se confirma mediante PCR. Las calles uno a diez contienen productos de PCR amplificados a partir del ADN genómico de los transformantes, y la calle 11 contiene productos de PCR de la cepa silvestre.La banda siete ilustra un knockout positivo, mientras que la banda uno muestra un falso positivo. El gen marcador de selección en la cepa knockout de KU70 se eliminó finalmente mediante la expresión de la recombinasa CRE. Los transformantes positivos libres de marcador se verificaron por su crecimiento únicamente en una placa YPD.Para verificar el aumento de la tasa de eliminación génica, tras la eliminación del gen KU70, se eliminaron individualmente 11 genes diana utilizando el mismo procedimiento en la cepa con eliminación de KU70. Cada interrupción génica se confirmó mediante PCR y aquí se muestra un resultado representativo con las bandas uno, dos y cuatro identificadas como eliminaciones positivas. La cepa platino de eliminación de KU70 en Yarrowia lipolytica PO1G proporciona un sistema más eficiente y una mejor opción para aplicaciones en ingeniería de vías metabólicas y optimización de cepas al construir otros mutantes cromosómicos por eliminación.Después de ver este video, debería tener una comprensión completa de la estrategia de eliminación dirigida de un solo gen mediante recombinación homóloga en las células de Yarrowia lipolytica PO1G.

genetic-engineering-an-unconventional-yeast-for-renewable-biofuel

Research

Investigación

JoVE Journal

Genetics

Genética

El método monstruo verde permite el montaje rápido de deleciones múltiples marcados con un gen reportero que codifica la proteína verde fluorescente. Este método se basa en la conducción de las cepas de levadura a través de ciclos repetidos de surtido sexual de las deleciones y de enriquecimiento basado en la fluorescencia de las células que llevan más deleciones.

El Proceso de Monstruo Verde para la generación de cepas de levadura que llevan deleciones múltiples genes

Se presenta aquí una descripción unificada de las técnicas que se pueden utilizar para desarrollar, transformar, administrar y poner a prueba la expresión de proteínas heterólogas de la levadura probiótica Saccharomyces boulardii.

Transformación de la levadura probiótica y su recuperación de tejidos gastrointestinales inmune después de alimentación forzada oral en ratones

Presentamos un protocolo detallado para construir y cribar bibliotecas de mutantes para campañas de evolución dirigida en Saccharomyces cerevisiae.

Dirigida Método Evolución en<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt;: Mutant Biblioteca Creación y Proyección

Técnicas de evolución y de aislamiento de adaptación se describen y se demostraron para producir derivados de la cepa Scheffersomyces stipitis NRRL Y-7124 que son capaces de consumir rápidamente azúcares hexosa y pentosa mixtos en enzima sacarificadas hidrolizados undetoxified y acumular más de 40 g / L de etanol.

Las técnicas para la Evolución de la robusta levaduras que fermentan la pentosa para la bioconversión de lignocelulosa en etanol

Un cuello de botella en el ciclo de ingeniería microbiana en el ciclo de "diseño-construcción-prueba" es la velocidad a la que podemos realizar pantallas funcionales de cepas. Describimos un método de alto rendimiento para el cribado de deformación unitaria aplicado a cientos a miles de células de levadura por experimento que utiliza la secuenciación de ARN basada en gotas.

Fenotipado de tensión de levadura de alto rendimiento con secuenciación de ARN basada en gotas

El control optogenético del metabolismo microbiano ofrece un control dinámico flexible sobre los procesos de fermentación. El protocolo aquí muestra cómo configurar fermentaciones reguladas por luz azul para la producción química y de proteínas a diferentes escalas volumétricas.

Fermentaciones controladas por la luz para la producción química microbiana y de proteínas

Este protocolo emplea un reportero bioluminiscente, lo que permite mediciones de la actividad transcripcional en Saccharomyces eubayanus para monitorear la transición de glucosa a maltosa, lo que permite el análisis en tiempo real de las adaptaciones metabólicas y apoya la optimización de la cepa para la fermentación industrial en diversas condiciones.

In vivo Monitorización de la actividad transcripcional durante la transición metabólica mediante un reportero bioluminiscente en levadura

Una metodología de alto rendimiento, la producción de protoplastos de tabaco automatizado y se describe la transformación. El sistema robótico permite la expresión de genes masivamente paralelo y el descubrimiento en el sistema modelo BY-2 que debe ser traducible a los cultivos no modelo.

Una plataforma robótica para de alto rendimiento de protoplastos aislamiento y Transformación

Métodos para la generación de bibliotecas de gRNA a gran escala deben ser simple, eficiente y rentable. Se describe un protocolo para la producción de bibliotecas de gRNA basado en la digestión enzimática del ADN diana. Este método, CORALINA (gRNA integral generación de biblioteca a través de la actividad de nucleasa controlados) presenta una alternativa a la síntesis de oligonucleótidos de encargo costosos.

Un protocolo Universal para la gRNA a gran escala de producción de la biblioteca de cualquier fuente de ADN

En este protocolo, baculovirus es producida por transitorios de la transfección del plásmido de baculovirus en células Sf9 y amplificado en una cultura de suspensión libre de suero. El sobrenadante es purificado por cromatografía de afinidad de heparina y más concentrado por ultracentrifugación. Este protocolo es útil para la producción y purificación de baculovirus para el uso de la terapia génica.

Producción y purificación de Baculovirus para la aplicación de la terapia génica

Aprende a realizar transformación genética y deleción dirigida de genes en Yarrowia lipolytica mediante recombinación homóloga. Este protocolo eficiente utiliza el sistema Cre/LoxP para ingeniería de cepas en biocombustibles.

Ingeniería genética de un levaduras no convencionales para biocombustible renovable y producción bioquímica

Explorar más videos