28 de julio de 2016
Este protocolo describe el enriquecimiento rápido de leucocitos a partir de pequeñas muestras de sangre para una posterior determinación específica de la actividad de la peroxidasa halogenante dentro de las células. El método puede aplicarse a material humano y no humano y puede contribuir a la evaluación de nuevos marcadores inflamatorios.
El objetivo general de este método de depleción de eritrocitos es lograr un enriquecimiento rápido y sencillo de leucocho a partir de una pequeña muestra de sangre. Muchas de las ventajas de esta técnica son que es barata, fiable y rápida. Además, se puede aplicar a muestras de sangre humanas y no humanas.
Antes de comenzar el procedimiento de lisis, ajuste la pipeta para la administración de agua a dos mililitros y la pipeta para PBS a cinco mililitros. A continuación, coloque matraces abiertos de agua y PBS bajo una campana de flujo laminar a temperatura ambiente. Como la lisis hipotónica es un proceso en el que el tiempo es crítico, todo debe prepararse previamente.
Además, el procedimiento de lisis siempre debe realizarse de la misma manera, para tener resultados compatibles. A continuación, transfiera 100 microlitros de cada muestra de sangre a un tubo cónico de 15 mililitros. Y agregue dos mililitros de agua destilada a cada muestra con vórtice en la configuración del medio.
Descanse las células durante 60 segundos, luego agregue cinco mililitros de PBS. Y mezclar las muestras por vórtice. Ahora, recoja las células por centrifugación y decante los sobrenadantes.
Invierta los tubos y golpee las aberturas con una toalla de papel para eliminar la mayor cantidad de líquido posible. A continuación, repita el procedimiento de lisis hipotónica como se acaba de demostrar. Después de obtener un pellet seco por segunda vez, vuelva a suspender cada muestra en 500 microlitros de HBSS, hasta obtener una solución homogénea.
Y transfiera las células a tubos de microcentrífuga de 1,5 mililitros sobre hielo. Para comprobar la especificidad de la peroxidasa de las muestras después de la tinción con aminofenol fluoresceína, o APF, primero se añadan cinco microlitros del inhibidor de la peroxidasa hemo, 4-ABAH, a las muestras adecuadas para una incubación de 15 minutos a 37 grados Celsius. A continuación, agregue cinco microlitros de solución de trabajo APF a cada tubo y vórtice suavemente las células en la configuración de medio.
Incuba todas las muestras a 37 grados centígrados durante 30 minutos. A continuación, añada cinco microlitros de solución de trabajo de peróxido de hidrógeno a cada muestra y agite suavemente los tubos. Después de 60 minutos a 37 grados centígrados, centrifugar las células y eliminar con cuidado el sobrenadante sin alterar los gránulos.
Finalmente, vuelva a suspender las células en 250 microlitros de HBSS y almacene las muestras en la oscuridad hasta su análisis, para evitar el fotoblanqueo. Aquí, se muestra un ejemplo representativo de las poblaciones de leucocitos después de la lisis hipotónica y la tinción de APF como se acaba de demostrar. Al trazar el tamaño de las células frente a la granularidad, se puede observar el agotamiento robusto de los eritrocitos, con la población de glóbulos rojos y desechos representando solo el 22% de los eventos.
Además, la distribución de la intensidad de la fluorescencia derivada de APF facilita una clara discriminación de los eritrocitos y linfocitos peroxidasa negativos, observándose una oxidación moderada de APF, para los monocitos y eosinófilos peroxidasa positivos, y una oxidación robusta de la peroxidasa exhibida por los neutrófilos. Una vez dominada, esta técnica se puede aplicar a hasta 50 muestras de sangre en paralelo si se realiza correctamente. Después de este procedimiento, se pueden realizar otros métodos, como la tinción de anticuerpos, para identificar los subconjuntos de células de interés.
Después de su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo de los estudios de animales pequeños exploraran el papel de la actividad halogenante de MPO y EPO en modelos animales para enfermedades inflamatorias crónicas.
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Este protocolo describe un método rápido y sencillo para enriquecer leucocitos a partir de muestras pequeñas de sangre, aplicable tanto a materiales humanos como no humanos. La técnica es rentable y confiable, facilitando la evaluación de nuevos marcadores inflamatorios.
Este protocolo permite un enriquecimiento rápido y estandarizado de leucocitos a partir de muestras pequeñas de sangre, apoyando los esfuerzos iniciales de descubrimiento en la investigación de enfermedades inflamatorias. Al cuantificar la actividad peroxidasa halogenante de la MPO y la EPO, proporciona una lectura mecanicista para la validación de dianas y la reducción de riesgos en las vías. La compatibilidad del método con la citometría de flujo y la tinción con anticuerpos facilita su integración en flujos de trabajo de cribado y traslación.
El método se encaja dentro del continuo de descubrimiento, desde la prueba inicial de hipótesis sobre dianas hasta la validación preclínica, particularmente en programas de inmunología y enfermedades inflamatorias.