Name: Rápida de un solo paso Síntesis enzimática y All-Purificación acuosa de trehalosa Análogos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-17T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 27 s
Description: Aprende la síntesis enzimática rápida de análogos de trehalosa mediante un método de un solo paso con purificación acuosa total. Esta técnica eficiente y ecológica facilita la producción de sondas para detectar micobacterias y diagnosticar tuberculosis.

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Este trabajo fue financiado por una subvención de los Institutos Nacionales de Salud (R15 AI117670) a B.M.S y P.J.W., así como un Premio Cottrell College Scholar de la Corporación de Investigación (20185) a P.J.W. L.M.M. fue apoyado por una beca del rector de CMU.

1. Expresión y purificación de tret del Top10 de E. coli NOTA: Por favor, póngase en contacto con los autores para solicitar la cepa de E. coli que expresan tret (plásmido pBAD tret, que contiene el gen tret T. tenax bajo el control de la proteína AraC, transformado en E. coli Top10 19) y el acuerdo de transferencia de material complementario . El siguiente protocolo normalmente da un rendimiento de proteína de aproximadamente 4 mg / L. <ol><li> Preparar un cultivo de una noche de 3 ml de Tret-expresión de E. coli. <ol><li> Streak Top10 de E. coli transformada con el vector de expresión pBAD-tret en un caldo de lysogeny (LB) placa de agar que contiene 100 mg / ml de ampicilina. </li><li> Incubar la placa a 37 ° C durante aproximadamente 48 horas. </li><li> Elija una única colonia de la placa e inocular 3 ml de medio líquido LB que contenía 100 mg / ml de ampicilina en un tubo de cultivo. </li><li> Colocar el tubo en una incubadora de agitación a 37 &amp; #176; C x 175 rpm durante la noche. </li></ol></li><li> Inducir la expresión de proteínas en Tret-expresión de E. coli. <ol><li> Añadir 750 ml de caldo Terrific suplementado con 100 mg / ml de ampicilina en un matraz de cultivo de 2.800 ml Fernbach. Transferencia de 1 ml de caldo del matraz a una cubeta para su uso posterior como un blanco. </li><li> Añadir el cultivo de una noche de 3 ml generada en el paso 1.1.4 para el frasco de cultivo, a continuación, colocar el matraz en una incubadora y agitar a 37 ° C x 200 rpm. Compruebe periódicamente la absorbancia del cultivo a 600 nm frente al blanco recogido en el paso 1.2.1. </li><li> Una vez que la absorbancia a 600 nm alcanza entre 0,5 a 1,0, inducir la expresión TRET mediante la adición de 750 l de solución 1 M arabinosa (1 mM de concentración final) a la cultura. Devolver el frasco a la incubadora y agitar durante la noche a 37 ° C x 200 rpm. </li></ol></li><li> Pellets y lisar las células de E. coli que expresan TRET. <ol><li> Transferir la cultura de un polipropileno bottle y centrifugar durante 15 minutos a 4000 xga 4 ° C. </li><li> Desechar el sobrenadante y resuspender el precipitado en 15 ml de solución salina tamponada con fosfato (PBS). </li><li> Transferir la suspensión celular a un tubo cónico de 50 ml y centrifugar durante 15 min a 4000 xg a 4 ° C. Descartar el sobrenadante y, o bien proceder a la lisis celular (paso 1.3.4) o almacenar el pellet indefinidamente a -80 ° C. </li><li> Disolver 1 inhibidor de la proteasa Mini tableta en 20 ml de tampón de lavado (50 mM NaH 2 PO 4, NaCl 500 mM, imidazol 20 mM, pH 8,0) en un tubo cónico de 50 mL. </li><li> Transferir el tampón de lavado que contiene inhibidor de proteasa al tubo cónico que contenía el sedimento. Vortex hasta que el sedimento se resuspendió. </li><li> Transferencia de las células resuspendidas a un vaso de precipitados de 100 ml y lisar las células por sonicación (secuencia de impulsos de 45 segundos en 45 segundos con un tiempo de ejecución de 2 min y 15 segundos a una amplitud de 75 por ciento). </li><li> Transferir el lisado a un tubo cónico de 50 ml de metaly se centrifuga durante 60 minutos a 15.000 xga 4 ° C. </li><li> Aclarar el lisado mediante el paso a través de un filtro de jeringa de 0,2-0,45 micras en un tubo cónico de 50 mL. NOTA: La concentración típica de lisado obtenido es 100 mg / ml. </li></ol></li><li> Purificar tret de E. coli lisado celular utilizando cromatografía líquida rápida de proteínas (FPLC). <ol><li> Configurar el FPLC con una columna de afinidad de níquel (5 ml de volumen de lecho). Lavar la columna con 10 ml de agua desionizada o hasta que la columna está limpio de cualquier contaminante. Equilibrar la columna utilizando 20 ml de tampón de lavado (50 mM NaH 2 PO 4, NaCl 500 mM, imidazol 20 mM, pH 8,0) a una velocidad de flujo de 1 ml / min. </li><li> Cargar el lisado (20 ml) obtenido de la etapa 1.3.8 en la columna y eluir las proteínas no marcadas con tampón de lavado a una velocidad de flujo de 1 ml / min hasta que la absorbancia alcanza los niveles de fondo (se requieren típicamente 80 a 100 ml de tampón de lavado) . </li><li> Eluir Su-etiquetados tret mediante el uso de un lineal gradient de tampón de elución (50 mM NaH 2 PO 4, NaCl 500 mM, imidazol 250 mM, pH 8,0) 1 a 100% durante 60 min a un caudal de 1 ml / min. Recoger fracciones de 4 mL hasta tret ha eluido y la absorbancia alcanza el nivel basal. NOTA: Por lo general, se requieren 60 ml de tampón de elución para eluir la proteína, y la proteína se eluye en el rango tampón de elución 60-100%. Se obtienen aproximadamente 10 a 15 ml de pura TRET en tampón de elución. </li><li> Determinar la concentración de TRET midiendo la absorbancia a 280 nm contra un blanco de tampón de elución. </li></ol></li><li> Cambio de TRET en tris (hidroximetil) aminometano (Tris) tampón por diálisis. <ol><li> Después de preparar los tubos de diálisis de acuerdo con las instrucciones del fabricante, el primer por aclarado con agua desionizada y luego tampón Tris (Tris 50 mM, NaCl 300 mM, pH 8,0). </li><li> Cargar la muestra tret en el tubo de diálisis usando una jeringa y aguja roma. Se dializa durante la noche unagainst 2 L de tampón de Tris. </li><li> Determinar la concentración de TRET midiendo la absorbancia a 280 nm frente a un blanco recogido del lavado de diálisis. </li><li> Transferir la solución tret a un tubo cónico de 50 ml y proceder a la síntesis de trehalosa analógica (paso 2) o almacenar la enzima a 4 ° C. NOTA: tret es una proteína termoestable. El TRET se almacenó en tampón Tris a 4 ° C durante varios meses sin observar una pérdida significativa de actividad. </li></ol></li></ol> 2.-Una etapa de síntesis de trehalosa Análogos Utilizando la Enzima tret NOTA: El protocolo siguiente se describe una escala de reacción basado en 4 ml de volumen, que puede suministrar aproximadamente 15 a 30 mg de análogo de trehalosa en función de eficacia de la reacción y el peso molecular del producto. Los componentes de la reacción se pueden escalar para obtener más o menos análogo trehalosa si se desea. <ol><li> Añadir análogo de la glucosa (0,080 mmol, masa dependerá del peso molecular), UDP-glucosa (0.160 mmol, 97,6 mg), y MgCl 2 (0,080 mmol, 16,3 mg) a un tubo cónico de 15 mL. Las concentraciones finales de estos componentes serán 20 mM, 40 mM, y 20 mM, respectivamente. </li><li> Añadir TRET en tampón Tris (obtenido de la etapa 1.5.4) y, si es necesario, un volumen apropiado de tampón Tris (Tris 50 mM, NaCl 300 mM, pH 8,0) para conseguir una concentración final de enzima de 300 mg / ml y una final volumen de 4 ml. Pipetear la mezcla arriba y abajo suavemente o invertir el tubo para disolver los sólidos. </li><li> Incubar la reacción a 70 ° C con agitación a 300 rpm durante 1 hora, a continuación, colocar el tubo en hielo para enfriar. </li></ol> 3. Purificación de trehalosa Análogos de mezcla bruta de reacción enzimática <ol><li> Pre-enjuague una unidad de filtro centrífugo (límite de peso molecular nominal (NWML) 10 kDa) para eliminar glicerol traza en la membrana mediante la adición de 3 ml de agua desionizada a la unidad de filtro de centrífuga y centrifugar a 3000 xg hasta que todo el líquido pasa a través del filtroen el tubo (aproximadamente 20 min). Repetir dos veces más. Complete este paso inmediatamente antes de o durante la reacción (paso 2.3). </li><li> Después de enfriar la mezcla de reacción enzimática (obtenido de la etapa 2.3), la transferencia a la unidad de filtro centrífugo pre-enjuagado. Enjuague el tubo de reacción con 1 ml de agua desionizada y traslado a la unidad de filtro centrífugo. Repetir el enjuague del tubo de reacción para la recuperación máxima de producto. </li><li> Centrifugar la unidad de filtro de centrífuga a 3.000 xg hasta que todo el líquido pasa a través del filtro en el tubo (aproximadamente 20 min). Enjuague la cámara superior de la unidad de filtro centrífugo con 3 ml de agua desionizada y se centrifuga a 3.000 xg hasta que todo el líquido pasa a través del filtro en el tubo (aproximadamente 20 min). Repita el enjuague para la recuperación máxima del producto. </li><li> Desechar la cámara superior de la unidad de filtro centrífugo. Añadir la resina de intercambio iónico de lecho mixto (3 g) al filtrado en la parte inferior del tubo (típico filtrado volume es 8-15 ml en función del número de aclarados). Se agita a temperatura ambiente durante 1 hora con una barra de agitación magnética a una velocidad suficiente para mantener las perlas de resina en suspensión en la solución. </li><li> Decantar el sobrenadante y filtrar para eliminar la resina. Añadir 5 ml de agua desionizada para enjuagar la resina restante. Decantar el sobrenadante y filtrarla, combinándola con la solución de producto de la primera decantación. Repetir el enjuague de la resina para la recuperación máxima de producto. </li><li> Analizar la reacción por cromatografía en capa fina (TLC) o HPLC para determinar si se consiguió la conversión completa del material de análogo de la glucosa al producto análogo de trehalosa de partida. Ver el paso 4.1 para el análisis de TLC y de paso 4.2 para el análisis por HPLC. </li><li> Eliminar el agua por liofilización o evaporación rotatoria para dar el producto seco. Si no se observó ningún análogo de la glucosa sin reaccionar durante TLC o el análisis de HPLC, la purificación por cromatografía es innecesario. Pesar el producto para obtener la reacción Yield y realizar de resonancia magnética nuclear (NMR) espectroscópica de análisis (paso 4.3) para confirmar la estructura del producto y la pureza. </li><li> Si se observó análogo de la glucosa que no ha reaccionado durante el análisis de TLC, separarlo del análogo de trehalosa usando una columna de exclusión de tamaño. <ol><li> Preparar una columna de 1 x 100 cm que contiene, medios P2 de poliacrilamida tamaño de las perlas de exclusión desionizada saturada con el agua extra-fina de acuerdo con las instrucciones del fabricante. NOTA: La columna de exclusión puede ser reutilizado después de lavar con agua desionizada. </li><li> Re-disolver el producto de la reacción enzimática se secaron (obtenido de la etapa 3.7) en 0,5 ml de agua desionizada. Aplicar la solución de producto a la columna de exclusión de tamaño de forma manual o mediante el uso de un adaptador de flujo de la columna. Enjuague el vial que contenía el producto en bruto con otros 0,5 ml de agua desionizada, y cargarlo en la columna de exclusión de tamaño. </li><li> Eluir el producto con agua desionizada por flujo de gravedad y recoger las fracciones de aproximadamente 2 mvolumen L. </li><li> Analizar las fracciones por TLC (paso 4.1). Se combinan las fracciones que contienen trehalosa pura analógica. </li><li> Eliminar el agua por liofilización o evaporación rotatoria para dar el producto seco. Pesar el producto para obtener el rendimiento de la reacción y proceder a análisis de RMN (véase el paso 4.3). </li></ol></li></ol> 4. Análisis de la trehalosa analógicos Productos <ol><li> Realizar un análisis de cromatografía en capa fina (TLC) de la reacción TRET. NOTA: Este procedimiento también se puede utilizar para analizar fracciones de la columna de exclusión por tamaño. Puede ser necesario concentrar las fracciones mezcla de reacción o de la columna antes del análisis TLC de observar la tinción de compuesto en la placa de TLC. <ol><li> Marca de carriles en la superficie de la placa de TLC con un lápiz y aplicar analito (s) y estándar (s) de interés para los carriles apropiados, incluyendo el estándar análogo de la glucosa, el estándar analógico trehalosa (si está disponible), la mezcla de reacción (o fracciones recogidas de tamaño de correopurificación XCLUSIÓN columna), y un co-punto. Después de aplicar cada muestra a la placa de TLC, dejar que la placa se seque. NOTA: Para el análisis de la reacción, típicamente de 2 l de muestra se aplica a la placa de TLC. </li><li> Desarrollar la placa de TLC utilizando n-butanol / etanol / agua desionizada (5: 3: 2). </li><li> Secar la placa de TLC desarrollada, luego sumergirlo en el 5% de H 2 SO 4 en etanol (tinción de azúcar) y el calor en una placa caliente a fuego alto hasta que las manchas que contienen azúcar pueden ser visualizados (típicamente 5 min). </li></ol></li><li> Realizar análisis de HPLC de TRET mezclas de reacción utilizando cualquier sistema de HPLC capaz de separar y detectar los hidratos de carbono. Este protocolo implica la separación de hidratos de carbono utilizando una columna de HPLC de aminopropilo y la detección mediante el índice de refracción. <ol><li> Adjuntar aminopropil columna (4,6 x 250 mm) que contiene un protector de pre-columna a la HPLC. </li><li> Equilibrar aminopropil columna con 80% de acetonitrilo en agua desionizada a una velocidad de flujo de 0,4mL / min. </li><li> Cargar la solución de producto de reacción (o estándar) en la columna de aminopropilo. </li><li> Eluir el producto (o estándar) con 80% de acetonitrilo en agua desionizada a una velocidad de flujo de 0,4 ml / min y una temperatura de columna de 50 ° C. Típicamente, el tiempo de ejecución utilizado es 40 min. NOTA: Tanto el material análogo de la glucosa de partida y el producto análogo trehalosa pueden ser detectados por el índice de refracción, aunque se podrían utilizar otros métodos tales como la detección de dispersión de luz evaporativo (ELSD). Usando las condiciones descritas, los análogos de glucosa típicamente eluyen entre 10 a 15 min y trehalosa análogos eluyen entre 15 a 25 min. </li></ol></li><li> El análisis de RMN de los análogos de trehalosa purificada. <ol><li> Disolver análogo de trehalosa purificada en D2O (700 l) y transferir la solución a un tubo de RMN. </li><li> Adquirir 1 H y 13 C espectros de NMR de acuerdo con los protocolos de las instalaciones de RMN correspondientes. </li></ol></li></ol><ol><li> Sintetizar, purificar y administrar de 6 TreAz de M. smegmatis (Msmeg). <ol><li> Añadir 6-azido-6-deoxi glucopiranosa (6-GlcAz, 0,020 mmol, 4,1 mg), UDP-glucosa (0,040 mmol, 24,4 mg), y MgCl 2 (0,020 mmol, 4,1 mg) a un tubo cónico de 15 mL. </li><li> Añadir TRET en tampón Tris (obtenido de la etapa 1.5.4) para conseguir una concentración final de enzima de 300 mg / ml y un volumen final de 1 ml. Pipetear la mezcla arriba y abajo suavemente o invertir el tubo para disolver los sólidos. </li><li> Incubar la reacción a 70 ° C con agitación durante 15 min. </li><li> Se diluye la mezcla de reacción enzimática con 3 ml de agua desionizada y la transfiere a una unidad de filtro centrífugo pre-lavado (NMWL 10 kDa). Centrifugar la unidad de filtro a 3.000 xg hasta que la mayor parte del líquido pasa a través del filtro en el tubo, aproximadamente 10 min. </li><li> º descartee cámara superior de la unidad de filtro centrífugo. Añadir resina de intercambio iónico de lecho mixto (0,75 g) al tubo y remover / batido a temperatura ambiente durante 25 min. Decantar el sobrenadante y filtrar para eliminar la resina. NOTA: Los pasos 5.1.1-5.1.5 proporcionan una solución acuosa de 6-azido-trehalosa (6-TreAz) a una concentración de aproximadamente 5 mM en menos de 1 hora. La concentración 5 mM se estima en base a la conversión cuantitativa de sustrato a producto y de la dilución que tiene lugar durante las etapas de purificación, suponiendo una pérdida mínima de producto durante estos pasos. La solución puede ser esterilizada por filtración antes de la adición a una muestra biológica, si se desea. </li><li> Añadir el volumen apropiado de solución de producto 6-TreAz a un cultivo en fase logarítmica de M. smegmatis (Msmeg), típicamente para conseguir un volumen de cultivo final de 100-1.000 l y una concentración final 6-TreAz de ~ 25 M. Se incuban las células a 37 ° C para la cantidad deseada de tiempo, típicamente 60 min. </li></ol></li><li> Realizar haga clic en la química para conjugar un fluoróforo a las células marcadas con azida. En este protocolo, utilizar catalizada por Cu cicloadición de azida-alquino (CuAAC) para entregar un fluoróforo a azidas de la superficie celular en Msmeg. <ol><li> Centrifugar las células a 3900 xg durante 5 min, y después se lavan las células con PBS que contenía 0,5% de albúmina de suero bovino. Repetir dos veces. </li><li> Vuelva a suspender las células sedimentadas en 4% para-formaldehído en PBS para solucionarlos. Después de incubar durante 10 min, repita el paso 5.2.1 para lavar las células. </li><li> Vuelva a suspender las células sedimentadas en 138 l de PBS. </li><li> Añadir 3 l de una solución madre 1 mM de alquino-carboxirodamina 110 (Alquino-488) en DMSO. </li><li> Añadir 3 l de una solución recién preparada de stock 60 mM de ascorbato de sodio en agua desionizada. </li><li> Añadir 3 l de una solución 6,4 mM de Tris [(1-bencil-1H-1,2,3-triazol-4-il) metil] amina (TBTA) en terc-butanol / dimetilsulfóxido (DMSO) 4: 1. </li><li> Añadir 3 y #956; L de una solución madre 50 mM de CuSO 4 en agua desionizada. </li><li> Pipetear la célula suspensión arriba y abajo, a continuación, se incuba en la oscuridad a temperatura ambiente durante 30 min. </li><li> Repita el paso 5.2.1 para lavar las células. Volver a suspender las células en 150 l de PBS. </li></ol></li><li> Realizar análisis de fluorescencia celular. En este protocolo, utilizar microscopía de fluorescencia para visualizar la fluorescencia celular de Msmeg etiquetado. <ol><li> Añadir 10 l de células bacterianas en suspensión en PBS a un portaobjetos de microscopio y ligeramente extender el líquido en una capa fina, utilizando el borde de un cubreobjetos. Dejar secar al aire en la oscuridad. </li><li> Añadir 10 l de medio de montaje sobre la muestra seca, a continuación, colocar la cubierta se desliza sobre la muestra y se aplica adhesivo (por ejemplo, esmalte de uñas) para inmovilizar. </li><li> Imagen de las diapositivas utilizando un microscopio de fluorescencia a un aumento de 100X. </li></ol></li></ol>

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<li>Urbanek, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemoenzymatic+synthesis+of+trehalose+analogues%3A+rapid+access+to+chemical+probes+for+investigating+mycobacteria%5BTitle%5D)+AND+%22ChemBioChem%22%5BJournal%5D)">Chemoenzymatic synthesis of trehalose analogues: rapid access to chemical probes for investigating mycobacteria.</a> ChemBioChem. 15, 2066-2070 (2014).</li>
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<li>Tornøe, C. W., Christensen, C., Meldal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peptidotriazoles+on+solid+phase%3A+%5B1%2C2%2C3%5D-triazoles+by+regiospecific+copper%28I%29-catalyzed+1%2C3-dipolar+cycloadditions+of+terminal+alkynes+to+azides%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Org.+Chem%22%5BJournal%5D)">Peptidotriazoles on solid phase: [1,2,3]-triazoles by regiospecific copper(I)-catalyzed 1,3-dipolar cycloadditions of terminal alkynes to azides.</a> J. Org. Chem. 67, 3057-3064 (2002).</li>
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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Análogos de trehalosa tienen el potencial de impactar en diversos campos, desde la conservación de alimentos y productos farmacéuticos para el diagnóstico y el tratamiento de infecciones microbianas 6. Existentes métodos de síntesis química de múltiples etapas son útiles para producir análogos de trehalosa complejas con múltiples sitios de modificación (por ejemplo, de origen natural glicolípidos micobacterianos complejos). Sin embargo, estos métodos son invariablemente largo e ineficien...

La trehalosa es un disacárido simétrico no reductor que consiste en dos fracciones de glucosa que están unidas por un 1,1-α, enlace α-glucosídico (Figura 1A). Mientras que la trehalosa está ausente de los seres humanos y otros mamíferos, que se encuentra comúnmente en las bacterias, los hongos, las plantas y los invertebrados 1. La función principal de trehalosa en la mayoría de los organismos es proteger contra el estrés ambiental, como la desecación 1. Además, algunos patógenos humanos requieren trehalosa para la virulencia, incluyendo la tuberculosis Mycobacterium tuberculosis que causa, que utiliza trehalosa como un mediador de la biosíntesis de envoltura celular y como un bloque de construcción para la construcción de glicolípidos inmunomoduladores 2. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54485/54485fig1.jpg"> Figura 1: La trehalosa y análogos de trehalosa. (A) Estructuras de trehalosa natural y un análogo no natural de trehalosa, en donde X es una modificación estructural. (B) Ejemplos de análogos de trehalosa en la literatura que tienen aplicaciones potenciales en biopreservación y bioimagen. Debido a su singular estructura y las funciones fisiológicas, trehalosa ha llamado la atención significativa para su uso en bio (tecno) lógico y aplicaciones biomédicas 3. Las propiedades protectoras de la trehalosa se observa en la naturaleza- por ejemplo, su capacidad de ataque para ayudar a mantener la vida en las plantas "resurrección" que se han sometido a la deshidratación extrema 4 -tienen estimuló su amplio uso en aplicaciones biopreservación. La trehalosa se ha utilizado para conservar una gran variedad de muestras biológicas, tales como ácidos nucleicos, proteínas, células y tejidos 3. Por ejemplo, la trehalosa se utiliza como un aditivo estabilizador en una serie de productos farmacéuticos tsombrero están en el mercado, incluyendo varios anticuerpos monoclonales anti-cáncer 3. Además, la trehalosa se usa como edulcorante en la industria alimentaria, y se utiliza ampliamente para la conservación del producto en las industrias de alimentos y cosméticos. La adopción de la trehalosa para estos tipos de aplicaciones comerciales se inicialmente limitada por la incapacidad de obtener grandes cantidades de trehalosa pura a partir de fuentes naturales o mediante síntesis. Sin embargo, un proceso enzimático eficaz para la producción económica de trehalosa a partir de almidón se ha desarrollado recientemente, que ha estimulado su uso comercial generalizado 5. Derivados de trehalosa químicamente modificado, denominado en este documento como análogos de trehalosa, han ganado cada vez más atención para diversas aplicaciones (estructura genérica muestra en la Figura 1A; ejemplos específicos de análogos de trehalosa que se muestran en la Figura 1B) 6. Por ejemplo, lacto-trehalosa es un análogo de trehalosa con una de sus unidades de glucosa sustituidos con galactosa, de este modo el grupo hidroxilo posición 4 tiene una configuración estereoquímica invertida. Lacto-trehalosa tiene las mismas propiedades estabilizantes como trehalosa, pero es resistente a la degradación por enzimas intestinales, por lo que es atractivo como un aditivo alimentario no calórico 6, 7. El interés de nuestro grupo de análogos de trehalosa se refiere principalmente a su valor como sondas y los inhibidores de micobacterias-específica. Los grupos Barry y Davis desarrollaron un análogo ceto-trehalosa conjugada con fluoresceína, llamada FITC-ceto-trehalosa, que se mostró para etiquetar metabólicamente la pared celular de M. tuberculosis vivo, lo que permite su detección por microscopía de fluorescencia 8. El laboratorio Bertozzi desarrollado más pequeño azido-trehalosa (TreAz) análogos que podría etiquetar metabólicamente la pared celular y, posteriormente, ser deteja usando química de clic y el análisis de fluorescencia 9. Estos avances apuntan a la posibilidad de utilizar sondas basadas en trehalosa como agentes de formación de imágenes de diagnóstico para la tuberculosis. Análogos de trehalosa se han perseguido también como inhibidores de M. tuberculosis debido a su potencial para perturbar vías en la bacteria que son esenciales para la viabilidad y virulencia 10, 11, 12. Hasta ahora, el principal obstáculo para el desarrollo de análogos de trehalosa para aplicaciones biológicas y biomédicas lógicos (tecno) es la falta de métodos sintéticos eficientes. Las dos rutas tradicionales a la producción de análogos de trehalosa se basan en la síntesis química (Figura 2). Una vía implica desimetrización / modificación de trehalosa natural, mientras que la otra consiste en partir de bloques de construcción de monosacáridos adecuadamente funcionalizados y la realización de glicosilación química paraforjar el 1,1-α, α-glucosídico vínculo. Estos enfoques, que recientemente han sido discutidos en artículos de revisión 13, 14, han demostrado ser útiles para llevar a cabo la síntesis de múltiples pasos de pequeñas cantidades de productos naturales que contienen trehalosa complejos, como sulfolípidos-1 de M. tuberculosis 15. Sin embargo, ambos enfoques son generalmente ineficientes, que consume tiempo, inaccesible a los no-químicos, y, además, no se consideran para ser amigable con el medio ambiente. Por lo tanto, para la síntesis de ciertos tipos de análogos de trehalosa, estas estrategias no son ideales. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/54485/54485fig2.jpg"> Figura 2: Enfoques para la síntesis de trehalosa analógica. Químicas para la síntesis de trehalosa analógica, que se muestra a la izquierda, utilice los procedimientos de varios pasos que implican difíciles protecciónpasos ción / desprotección, desimetrización, y / o glicosilación. Síntesis enzimática, que se muestra a la derecha, utiliza la enzima (s) para convertir estereoselectivamente sustratos simples, no protegidos a los análogos de la trehalosa en solución acuosa. El protocolo enzimática informado en el presente documento utiliza una enzima trehalosa sintasa (TRET) para convertir análogos de glucosa y UDP-glucosa en análogos de trehalosa en un solo paso. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54485/54485fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> Una ruta biocatalıtica eficiente a los análogos de trehalosa facilitaría la producción, evaluación y aplicación de esta prometedora clase de moléculas. Mientras que el proceso enzimático comercial para la producción de trehalosa 5 no es adaptable a la síntesis de análogos, ya que utiliza almidón como sustrato, hay otro camino biosintéticoformas en la naturaleza que pueden ser explotadas para la síntesis de trehalosa analógica. Sin embargo, la investigación en esta área, que ha sido recientemente revisado 6, ha sido limitado. En un informe se utiliza un método inspirado en la ruta de biosíntesis de trehalosa Escherichia coli acceder a un único análogo fluoro-trehalosa a partir del correspondiente fluoro-glucosa. Sin embargo, este enfoque requiere un sistema de tres enzimas que ha eficiencia y generalidad 8 limitado. Otro enfoque que se ha explorado es utilizar fosforilasa trehalosa (TREP) en la dirección inversa, que, en principio, permite la síntesis de una sola etapa de los análogos de trehalosa a partir de análogos de glucosa y glucosa-1-fosfato de 6, 16, 17. Aunque este enfoque puede tener un futuro prometedor, tanto la inversión y la retención Treps actualmente tienen inconvenientes para la síntesis analógica. Por ejemplo, Treps inversoras tienen una expe prohibitivamentemolécula nsive donante (β-D-glucosa 1-fosfato) y Treps de retención tienen pobres rendimientos de expresión enzima / estabilidad y la promiscuidad de sustrato limitada. Se necesitarán mejoras significativas (por ejemplo, a través de ingeniería de enzimas) antes de la síntesis analógica mediada por TREP es práctico. En la actualidad, el enfoque más práctico para la síntesis enzimática de los análogos de trehalosa es el uso de una enzima trehalosa sintasa (TRET), que convierte la glucosa y la uridina difosfato (UDP) -glucosa en trehalosa en un solo paso 6. Recientemente hemos informado de la utilización de Thermoproteus tenax TRET-una enzima termoestable y unidireccional 18: para sintetizar análogos de trehalosa a partir de análogos de glucosa y UDP-glucosa (Figura 3) 19. Esta enzima solamente opera en la dirección sintético y evita el problema de la degradación de trehalosa se encuentra en el sistema TREP. Este coul reacción de una etapad completará en 1 hora, y se accede a una amplia variedad de análogos de trehalosa con un alto rendimiento (hasta&gt; 99% según se determinó por cromatografía líquida de alta resolución (HPLC)) a partir de sustratos análogos de glucosa fácilmente disponibles (véase la Tabla 1 en los resultados representativos sección). <img alt="figura 3" src="/files/ftp_upload/54485/54485fig3.jpg"> Figura 3: catalizada por TRET síntesis de una sola etapa de los análogos de trehalosa. La enzima TRET de T. tenax puede unirse de manera estereoselectiva análogos de glucosa fácilmente disponibles y UDP-glucosa para formar análogos de trehalosa en un solo paso. R 1 -R 4 = modificación estructural variable, por ejemplo azido, fluoro-, desoxi-, tio-, estereoquímica, o modificaciones de etiquetas isotópicas; Y = heteroátomo variable, por ejemplo oxígeno o azufre, o heteroátomo marcado isotópicamente. Aquí, proporcionamos anuncioprotocolo etailed para el proceso de síntesis TRET, incluyendo la expresión y purificación de TRET de E. coli, optimizado las condiciones de reacción TRET, y un método de purificación mejorado que se lleva a cabo en su totalidad en la fase acuosa. Este protocolo modificado permite la síntesis conveniente y eficiente y la purificación de diversos análogos de trehalosa en una escala semi-preparativa (10-100 mg). También demostramos el uso de este protocolo para la preparación y administración de una sonda a base de trehalosa para micobacterias en menos de 1 hora, lo que permitió la detección de fluorescencia rápida de células micobacterianas.

<table><tbody><tr><td>Agar LB</td><td>Productos de Investigación Internacional</td><td>L24021</td><td></td></tr><tr><td>Sal sódica de ampicilina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9518</td><td></td></tr><tr><td>Caldo Luria</td><td>Productos de Investigación Internacional</td><td>L24045</td><td></td></tr><tr><td>Caldo Terrific Productos</td> de <td>Investigación Internacional</td><td>T15050</td><td></td></tr><tr><td>L-(+)-Arabinosa</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A3256</td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato</td><td>GE Healthcare</td><td>SH30256</td><td></td></tr><tr><td>Imidazol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>I5513</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de sodio</td><td>BDH</td><td>BDH9286</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato de sodio, monobásico</td><td>Fisher Scientific</td><td>S374</td><td></td></tr><tr><td>Filtro de jeringa, 0,45 y micro; m</td><td>Fisher Scientific</td><td>09719D</td><td></td></tr><tr><td>Minicomprimidos de inhibidor de la proteasa, sin EDTA</td><td>Thermo Scientific</td><td>88666</td><td></td></tr><tr><td>HisTrap HP columna de afinidad de níquel, 5 mL</td><td>GE Healthcare</td><td>17-5248-02</td><td></td></tr><tr><td>TRIS base ultrapure</td><td>Research Products International</td><td>T60040</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de diálisis, MWCO 12&ndash; 14,000</td><td>Fisher Scientific</td><td>21-152-16</td><td></td></tr><tr><td>Análogos de glucosa</td><td>CarboSynth, Sigma Aldrich, Santa Cruz Biotechnology, American Radiomarked Chemicals</td><td></td><td>Ejemplos de proveedores que ofrecen numerosos análogos de glucosa</td></tr><tr><td>6-Azido-6-desoxi glucopiranosa (6-GlcAz)</td><td>CarboSynth</td><td>MA02620</td><td></td></tr><tr><td>UDP-Glucosa</td><td>abcam Bioquímicos</td><td>ab120384</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de magnesio hexahidratado&nbsp;</td><td>Unidad</td> de filtro centrífugo <td>Fisher Scientific M33</td><td></td></tr><tr><td>Amicon Ultra-15</td><td>EMD Millipore</td><td>UFC901008</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rex RG 501-X8 resina de intercambio iónico de lecho mixto</td><td>Bio-Rad</td><td>444-9999</td><td></td></tr><tr><td>Extra-Fine Bio-Gel P2 media</td><td>Bio-Rad</td><td>150-4118</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cromatografía de capa fina de gel de sílice con respaldo de vidrio</td><td>EMD Millipore</td><td>1056280001</td><td></td></tr><tr><td>n-Butanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A399</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>S25310A</td><td></td></tr><tr><td>Ácido sulfúrico</td><td>Fisher Scientific</td><td>A300</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrilo</td><td>EMD Millipore</td><td>AX0145</td><td></td></tr><tr><td>Óxido de deuterio, 99,8%</td><td>Acros Organics</td><td>351430075</td><td></td></tr><tr><td>Columna de HPLC aminopropilo</td><td>Sigma Aldrich</td><td>58338</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>5470</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehído</td><td>Ted Pella</td><td>18505</td><td></td></tr><tr><td>Alkyne-488</td><td>Sigma Aldrich</td><td>761621</td><td></td></tr><tr><td>Ascorbato de sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A7631</td><td></td></tr><tr><td>Tris[(1-bencil-1H-1,2,3-triazol-4-il)metil]amina (TBTA)</td><td>Click Herramientas de química</td><td>1061</td><td></td></tr><tr><td>tert-Butanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>360538</td><td></td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido Sigma</td><td>Aldrich</td><td>W387520</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de cobre (II)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C1297</td><td></td></tr><tr><td>Medio de montaje Fluoromount-G</td><td>Southern Biotechnology</td><td>10001</td><td></td></tr></tbody></table>

rápida de un solo paso síntesis enzimática y all-purificación acuosa de trehalosa análogos

Rapid One-step Enzymatic Synthesis and All-aqueous Purification of Trehalose Analogues

versiones de trehalosa, o análogos de trehalosa químicamente modificado, tienen aplicaciones en la biología, la biotecnología y la ciencia farmacéutica, entre otros campos. Por ejemplo, los análogos de trehalosa que llevan etiquetas detectables se han utilizado para detectar Mycobacterium tuberculosis y pueden tener aplicaciones como agentes de formación de imágenes de diagnóstico de la tuberculosis. Las versiones estables frente a la hidrólisis de trehalosa también están siendo perseguidos debido a su potencial para su uso como edulcorantes no calóricos y agentes bioprotectivas. A pesar del atractivo de esta clase de compuestos para diversas aplicaciones, su potencial se ha cumplido debido a la falta de una ruta sólida para su producción. Aquí, se presenta un protocolo detallado para la síntesis de una sola etapa biocatalıtica rápida y eficaz de los análogos de trehalosa que no pasa por los problemas asociados con la síntesis química. Mediante la utilización de la enzima termoestable trehalosa sintasa (TRET) de Thermoproteus tenax, análogos de trehalosa puede ser geed en un solo paso a partir de análogos de glucosa y glucosa uridina difosfato con un alto rendimiento (hasta conversión cuantitativa) en 15 a 60 min. Un protocolo de purificación no cromatográfico simple y rápida, que consiste en diálisis giro y de intercambio de iones, puede entregar muchos análogos de trehalosa de concentración conocida en solución acuosa en tan poco como 45 min. En los casos en que no ha reaccionado análogo de la glucosa sigue siendo, purificación cromatográfica del producto análogo de trehalosa se puede realizar. En general, este método proporciona una plataforma biocatalıtica &quot;verde&quot; para la síntesis acelerada y purificación de análogos de trehalosa que sea eficiente y accesible a los no químicos. Para ejemplificar la aplicabilidad de este método, se describe un protocolo para la síntesis, todos acuoso purificación, y la administración de una sonda química clic a base de trehalosa micobacterias, todo lo cual llevó a menos de 1 hora y permitió la detección de fluorescencia de las micobacterias. En el futuro, prevemos que, entre OTHer aplicaciones, este protocolo se puede aplicar a la rápida síntesis de sondas a base de trehalosa para el diagnóstico de la tuberculosis. Por ejemplo, los análogos de corta duración trehalosa radionucleido-modificados (por ejemplo, 18 trehalosa F-modificados) pueden utilizarse para aplicar las técnicas de imagen clínicos avanzados como la tomografía computarizada, tomografía por emisión de positrones (PET-TC).

T. tenax TRET se obtuvo de E. coli con un rendimiento de aproximadamente 4 mg / L usando la expresión y purificación de proteínas técnicas estándar. Una etapa de cromatografía de afinidad de níquel sola era suficiente para purificar TRET de lisado de E. coli (una traza FPLC representativo se muestra en la Figura 4). Según se establece en nuestra publicación inicial en el proceso de síntesis tret, T. tenax recombinante tret es capaz de ...

Los análogos de la trehalosa están emergiendo como moléculas importantes para aplicaciones bio(tecnológicas) y biomédicas. Describimos un protocolo optimizado para sintetizar y purificar enzimáticamente análogos de trehalosa que es simple, eficiente, rápido y respetuoso con el medio ambiente. Se demuestra su aplicación a la producción y administración rápida de una sonda para la detección de micobacterias.

Rápida de un solo paso Síntesis enzimática y All-Purificación acuosa de trehalosa Análogos

Chemically modified versions of trehalose, or trehalose analogues, have applications in biology, biotechnology, and pharmaceutical science, among other ...

El objetivo general de este método es sintetizar y purificar rápidamente análogos de trehalosa que tienen posibles aplicaciones que van desde la detección de bacterias patógenas hasta la conservación de biomateriales. Este es un método rápido y de alto rendimiento que proporciona acceso a análogos del disacárido trehalosa. Estos compuestos tienen varias aplicaciones establecidas y emergentes en la investigación biomédica y biotecnológica.Este método consiste en una síntesis enzimática de un solo paso y una purificación totalmente acuosa. En conjunto, estos procedimientos ayudan a abordar algunos de los inconvenientes de las síntesis químicas tradicionales de análogos de la trehalosa, que pueden ser largas, de bajo rendimiento y desfavorables para el medio ambiente. Las implicaciones de este método pueden extenderse hacia el estudio y el diagnóstico de la tuberculosis porque se han utilizado análogos de trehalosa modificados para obtener imágenes de microbacterium tuberculosis, el agente causante de la tuberculosis.Este método también puede ayudar a acelerar la síntesis y evaluación de análogos de trehalosa para otras posibles aplicaciones, como la conservación de productos biológicos y su uso como edulcorantes no calóricos. Antes de comenzar el procedimiento, prepare un cultivo nocturno de E. coli que exprese TreT. Para comenzar el procedimiento de expresión de TreT, se colocaron 750 mililitros de medio de crecimiento de TB en un matraz de cultivo de Fernbach de 2.800 mililitros y se esterilizó en autoclave.Agregue ampicilina al caldo para lograr una concentración final de 100 microgramos por mililitro. Obtenga cubetas para espectroscopia UV-vis y llene una cubeta con caldo del matraz como un blanco en blanco. A continuación, añada al matraz tres mililitros del cultivo de E. coli que expresa TreT preparado durante la noche.Incubar el matraz a 37 grados centígrados mientras se agita a 200 rpm. Compruebe periódicamente la absorbancia del caldo a 600 nanómetros con respecto al caldo en blanco. Cuando el valor de absorbancia a 600 nanómetros esté entre 0,5 y 1,0, agregue 750 microlitros de arabinosa al matraz para inducir la expresión de TreT.Incubar el cultivo a 37 grados centígrados durante la noche mientras se agita a 200 rpm. A continuación, coloque el cultivo en una botella de centrífuga de polipropileno de un litro y centrifugue el cultivo a 4.000 veces G durante 15 minutos a cuatro grados centígrados. Deseche el sobrenadante y vuelva a suspender el pellet en solución salina tamponada con fosfato de 15 mililitros.Transfiera la suspensión a un tubo de centrífuga cónico y centrifugue en las mismas condiciones. A continuación, deseche el sobrenadante y, si es necesario, almacene el pellet a menos 80 grados centígrados. Disuelva una mini tableta inhibidora de proteasa en 20 mililitros de tampón de lavado.Agregue la solución inhibidora de la proteasa al pellet y agite la mezcla para resuspender el pellet. Transfiera la suspensión a un vaso de precipitados de 100 mililitros. A continuación, sonique la suspensión para lisar las células colocando la sonda a aproximadamente un centímetro de la parte inferior del vaso de precipitados.Coloque el lisado en un tubo cónico metálico y centrifugue el lisado a 15.000 veces G a cuatro grados centígrados durante 60 minutos. Filtre el lisado con un filtro de jeringa. Aísle TreT mediante cromatografía líquida rápida de proteínas y evalúe la pureza con la página SDS.A continuación, intercambie TreT en tampón Tris mediante diálisis durante la noche a cuatro grados centígrados para formar la solución de TreT para la síntesis de análogos de trehalosa. Recoja el blanco del lavado de diálisis. Determine la concentración de TreT mediante espectroscopia UV-vis frente al blanco de diálisis.Para comenzar la síntesis de 6-Azido-trehalosa usando TreT en la escala de 20 a 30 miligramos, coloque 0,08 milimoles de 6-Azido-glucosa, 0,16 milimoles de UDP-glucosa y 0,08 milimoles de dicloruro de magnesio en un tubo cónico de 15 milímetros. Agregue el búfer TreT y Tris. Diluya la mezcla con tampón Tris según sea necesario para lograr una concentración de enzima de 300 microgramos por mililitro en un volumen final de cuatro mililitros.Tape e invierta el tubo para disolver los sólidos. Incubar la mezcla de reacción durante una hora a 70 grados centígrados mientras se agita a 300 rpm. Durante la incubación, coloque tres mililitros de agua desionizada en una unidad de filtro centrífugo de 10 kilodalton y centrifugue a 3.000 veces G hasta que todo el líquido esté en el tubo.Repita el lavado dos veces más para garantizar un enjuague completo de la unidad de filtro. Cuando se complete la reacción, enfríe la mezcla a temperatura ambiente con hielo. A continuación, transfiera la mezcla de producto a la unidad de filtro centrífugo.Enjuague el tubo de reacción con un mililitro de agua desionizada tres veces y transfiera cada enjuague a la unidad de filtro centrífugo. Centrifugar la mezcla a 3.000 veces G hasta que todo el líquido haya pasado al tubo. Agregue tres mililitros de agua desionizada a la unidad de filtro y vuelva a centrifugar en las mismas condiciones.Repita el enjuague según sea necesario para maximizar la recuperación del producto. Añade tres gramos de resina de intercambio iónico de lecho mixto al filtrado. Revuelva la mezcla con una barra revolviendo a temperatura ambiente durante una hora.Después de remover, decantar y filtrar el sobrenadante. Enjuaga la resina con cinco mililitros de agua desionizada y filtra el enjuague. Repita según sea necesario para maximizar la recuperación del producto y combine todos los filtrados.Concentrar el filtrado combinado. Luego, para verificar si hay precursores de 6-GlcAz sin reaccionar, prepare una placa TLC de gel de sílice con manchas de 6-GlcAz, 6-TreAz, el producto concentrado y una mancha co. Revele la placa con una mezcla de n-butanol, etanol y agua desionizada.Una vez que la placa esté seca, visualice las manchas sumergiendo la placa en ácido sulfúrico al 5% y etanol y calentando la placa en una placa caliente a temperatura alta durante unos cinco minutos. Si se observa un precursor sin reaccionar, purifique la mezcla del producto en una columna de exclusión de tamaño y repita el análisis TLC. Una vez obtenido el análogo de trehalosa puro, se debe retirar el agua para obtener el producto 6-TreAz seco.La enzima TreT se une selectivamente al análogo de la glucosa y a la glucosa UDP para formar el análogo de trehalosa correspondiente. El alcance de la reacción incluye modificaciones estéreo químicas de desoxifluoro, tio y azido. Sin embargo, los sustituyentes en la posición cuatro del anillo son menos tolerados.Utilizando este procedimiento, el análogo de la glucosa 6-GlcAz se convirtió cuantitativamente en el análogo de la trehalosa 6-TreAz en menos de 60 minutos, según lo confirmado por TLC. El producto puro se aisló con el método de purificación de intercambio iónico de diálisis de espín no cromatográfico y se caracterizó por RMN en HPLC. A continuación, se utilizó la solución pura de 6-TreAz para realizar el marcaje con azida de la bacteria modelo M. smegmatis.El marcaje posterior de fluoróforos mediante una reacción química de clic con las azidas de la superficie celular mostró que M. smegmatis con un transportador de trehalosa funcional había sido marcado con éxito con azidas, mientras que la cepa sin ellas no lo estaba. Una vez dominado, la reacción de catalización de TreT y la posterior purificación se pueden realizar en una a cuatro horas, dependiendo del número de pasos de enjuague utilizados para maximizar la recuperación de la producción. Al intentar este procedimiento, es importante recordar que el producto de la reacción siempre debe analizarse mediante RMN y TLC o HPLC para confirmar su pureza y estructura.Siguiendo este procedimiento, el análogo de trehalosa sintetizado puede evaluarse o emplearse como sonda de imagen bacteriana, trazador metabólico, inhibidor de enzimas o agente estabilizador de biomoléculas. Este método proporciona una forma para que los investigadores preparen análogos de trehalosa con modificaciones como isótopos estables o marcadores de radioisótopos. En conjunto, los compuestos accesibles a través de este método deberían ser útiles en la investigación de la tuberculosis y otras áreas de investigación biomédica.Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo expresar y purificar la enzima TreT, usar TreT para sintetizar análogos de trehalosa en un solo paso y purificar los productos análogos de trehalosa.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

En este artículo, un método de alto rendimiento se presenta para la síntesis de oligosacáridos y su fijación a la superficie de las nanopartículas polianhídrido para su uso posterior en la orientación de receptores específicos en las células presentadoras de antígenos.

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Chemo-enzimático síntesis de N- glicanos para el desarrollo de la matriz y el anticuerpo del VIH perfiles

Un 2-azido-1-nitrato-éster se puede convertir en el correspondiente 2-azido-1-trichloroacetimidate en un procedimiento one-pot. El objetivo del manuscrito es demostrar la utilidad del reactor de microondas en la síntesis de hidratos de carbono.

One-pot asistida por microondas conversión de ésteres de nitrato anomérico en Trichloroacetimidates

Aquí, presentamos los protocolos para la síntesis de nucleósidos disacárido por el regioselectiva O- glicosilación de ribonucleosides a través de una protección temporal de sus 2', 3'-diol fracciones utilizando un éster borónico cíclico. Este método se aplica a varios nucleósidos desprotegidos tales como adenosina, guanosina, citidina, uridina, 5 methyluridine y 5-fluorouridine para dar los correspondientes nucleósidos de disacárido.

Regioselectiva O- glicosilación de nucleósidos a través de la temporal 2', 3'-Diol protección por un éster borónico para la síntesis de nucleósidos del disacárido

Este protocolo demuestra cómo utilizar el software Auto-CHO para la síntesis jerárquica y programable de oligosacáridos. También describe el procedimiento general para los experimentos de determinación de RRV y la glicosilación de una olla de SSEA-4.

Síntesis jerárquica y programable de oligosacáridos de una olla

Se presentan en detalle procedimientos experimentales representativos para la adición de nucleófilos de amina al hierro tricarbonílico (tropona) y posterior desmetallación de los complejos resultantes.

Preparación de 6-aminocyclohepta-2,4-dien-1-one Derivados a través de Tricarbonyl(tropone)hierro

Las transformaciones deCO2 se llevan a cabo en un procedimiento de dos pasos de una olla para la síntesis de moléculas complejas. La reducción selectiva 4 e- de CO2 con un reductante hidroborano ofrece un intermedio de bis(boryl)acetal reactivo y versátil que posteriormente participa en la reacción de condensación o en la generación de acoplamiento C-C mediada por carbebero.

Transformaciones versátiles de CO2 en productos complejos: una estrategia de dos pasos de un solo precio

Los oligonucleótidos 5′-trifosfatos son componentes ubicuos en vías biológicas esenciales y han visto un uso creciente en aplicaciones biotecnológicas. Aquí, describimos técnicas para la síntesis y purificación rutinaria de oligonucleótidos 5′-trifosfatos, a partir de oligonucleótidos preparados por técnicas de síntesis automatizadas estándar.

Trifosforilación química de oligonucleótidos

Aprende la síntesis enzimática rápida de análogos de trehalosa mediante un método de un solo paso con purificación acuosa total. Esta técnica eficiente y ecológica facilita la producción de sondas para detectar micobacterias y diagnosticar tuberculosis.

Rápida de un solo paso Síntesis enzimática y All-Purificación acuosa de trehalosa Análogos

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