1 de noviembre de 2016
Los ácidos nucleicos son analitos comunes para evaluar sistemas biológicos; sin embargo, el sesgo de la manipulación enzimática puede causar preocupación. Aquí se describe un método para la detección sin marcadores de ácidos nucleicos utilizando polianilina. Esta tecnología de sensores sensible y rentable puede distinguir las diferencias de un solo nucleótido entre moléculas.
El objetivo general de este procedimiento es sintetizar polianilina dispersa en agua que podría usarse para detectar ácidos nucleicos de una manera libre de etiquetas. Esta técnica es un método rentable para detectar ácidos nucleicos. Los laboratorios que lo adopten lo encontrarán fácil, robusto y sensible.
La principal ventaja de la técnica es que no contiene marcadores y se puede utilizar para detectar directamente ARN y ADN, sin necesidad de manipulación enzimática. Esta técnica tiene potencial para nuevas tecnologías de diagnóstico y, dado que no utiliza una etiqueta, se puede utilizar para procesar muestras de pacientes con poca manipulación. La demostración visual ayudará a desmitificar el sensor.
Esta plataforma incluye la ciencia y la biología de los polímeros, que parecen muy exóticas, pero que, de hecho, son extraordinariamente fáciles de implementar. Disolver completamente la anilina en 60 ml de cloroformo en un matraz de fondo redondo de 250 ml. Después de remover a 600 RPM durante cinco minutos, enfríe de cero a cinco grados centígrados con hielo.
Esto suele tardar de 15 a 20 minutos. A continuación, agregue dodecilbencenosulfonato de sodio a la solución de anilina en un matraz de fondo redondo mientras revuelve a 600 RPM. Disuelva el persulfato de amonio en 20 ml de agua y agréguelo gota a gota durante 30 minutos para evitar sobrecalentar la reacción.
Lleve a cabo la reacción a cero a cinco grados centígrados durante 24 horas. Observe que la mezcla de reacción inicialmente se vuelve de color blanco lechoso después de 15 minutos, luego marrón oscuro después de dos horas y finalmente a verde oscuro después de 24 horas. Luego deje que alcance la temperatura ambiente durante otras 24 horas.
Filtre la solución de dodecilbencenosulfonato de sodio PANI con un embudo buchner. Mezclar el filtrado con 80 ml de cloroformo y 120 ml de agua en un embudo de separación. Incubar la solución durante 24 horas a temperatura ambiente y luego recoger el PANI verde oscuro del embudo de separación, dejando sin reaccionar el dodecilbencenosulfonato de sodio y el APS en el sobrenadante acuoso.
Diluya la solución de PANI 10 X con agua de cloroformo, luego mezcle 200 microlitros de PANI diluido con 6,4 micromoles de oligonucleótidos de ADN de sonda meciendo suavemente durante 15 minutos en un tubo de microfuga. Irradie la solución de ADN PANI con 1200 microjulios por centímetro cuadrado de UV en un reticulante durante dos minutos. Es fundamental que la exposición a los rayos UV se limite a la cantidad indicada.
La exposición prolongada a los rayos UV compromete el cambio de fluorescencia en el PANI, probablemente debido a la fuga cruzada covalente de PANI y ADN. Complejos de pellets por centrifugación a 17.000 x g durante seis minutos y lavado con solución salina tamponada con fosfato o PBS. Después de peletizar por segunda vez, vuelva a suspender en PBS.
Agregue ocho microlitros de 100 micromoles de oligonucleótidos de ADN complementarios o ácidos nucleicos objetivo a 200 microlitros de complejos de sonda PANI. Realice la hibridación meciendo la mezcla de solución durante 15 minutos a 40 grados centígrados. Después de peletizar los complejos PANI por centrifugación a 17.000 x g durante seis minutos, lavar con PBS y volver a suspender en agua.
Agregue PANI de diferentes tratamientos en una microplaca de 96 pocillos y mida la fluorescencia de emisión en el rango de 270 a 850 nanómetros por excitación a 250 nanómetros. Un pico de emisión para el PANI debería observarse alrededor de 500 nanómetros. Para realizar la medición de microscopía de fluorescencia del dúplex hibridado, aplique una capa de PANI sobre una cubierta de vidrio de borosilicato y séquela a 40 grados centígrados durante 48 horas.
Agregue ocho microlitros de sonda de 100 micromoles en una película PANI seca y luego irradie con luz ultravioleta durante dos minutos. Después de la radiación, lave la película de la sonda PANI con PBS y seque a 40 grados centígrados durante 48 horas. Realice la hibridación durante 15 minutos mediante la adición de ácidos nucleicos objetivo.
Puede tratarse de una muestra biológica o de un oligonucleótido objetivo controlado. Siga con un lavado PBS. Obtenga las imágenes fluorescentes con un aumento de 40x con un filtro de paso largo de 500 nanómetros.
Aquí se muestra la interacción electrostática de PANI y las sondas de ADN mejorada por la irradiación UV. La hibridación del ácido nucleico objetivo desencadena la formación de dúplex, cambiando la confirmación estructural, lo que resulta en la disociación del objetivo de la sonda de la superficie PANI. Esta figura muestra el cambio en la fluorescencia de PANI en ausencia o presencia de sonda, tanto en solución como en medio de recubrimiento sólido.
El aumento de la fluorescencia se debe al flujo de electrones del ADN cargado negativamente, lo que aumenta la densidad de electrones del polímero. Tras la hibridación de oligonucleótidos diana complementarios, las sondas se desprenden, lo que lleva a la restauración de la fluorescencia de la albahaca. Por el contrario, la hibridación con oligonucleótidos objetivo no coincidentes no da lugar a esta restauración de la fluorescencia de la albahaca.
La principal novedad de esta técnica es que utiliza rayos UV suaves para una interacción exacta y eso le ayuda a distinguir la interacción inespecífica de la luz. Una vez dominada, esta técnica podía tardar hasta dos horas, excluyendo el tiempo de los sentidos y el tiempo de secado de los recubrimientos. Al probar este procedimiento, es importante recordar que el ADN se disuelve en agua y el té ácido en realidad cambia la propiedad electrónica del PANI.
Después de ver este video, los espectadores deben tener una buena comprensión de cómo sintetizar polianilina dispersa en agua y usar sus propiedades fluorescentes para detectar ácidos nucleicos. Serán capaces de inmovilizar el ADN de la sonda y realizar la hibridación para detectar objetivos. Al trabajar con el monómero, es importante recordar que esta síntesis es peligrosa y debe realizarse en una capucha con equipos de protección como gafas de seguridad, guantes y batas de laboratorio.
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Este artículo presenta un método para la detección libre de marcadores de ácidos nucleicos utilizando polianilina. La técnica es rentable y sensible, lo que permite distinguir diferencias de un solo nucleótido sin manipulación enzimática.
La detección sin etiqueta de ácidos nucleicos aborda un cuello de botella clave en el desarrollo de diagnósticos al eliminar pasos enzimáticos que introducen variabilidad y costo. El sensor basado en polianilina permite la detección directa y sensible de diferencias de un solo nucleótido, lo que apoya la validación temprana de dianas y la evaluación de la especificidad del ensayo. Este enfoque mejora la confianza predictiva en la identificación de compuestos activos al proporcionar una plataforma robusta y de bajo costo para la desactivación mecanicista de terapéuticos dirigidos a ácidos nucleicos.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la validación del blanco hasta la optimización del ensayo y el perfilado preclínico, ofreciendo una plataforma reutilizable para la detección de ácidos nucleicos en diversas modalidades.