Name: Un sensor basado en polianilina de ácidos nucleicos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-01T10:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Aprende a sintetizar polianilina dispersa en agua para detectar ácidos nucleicos sin etiquetas. Este método económico y sensible distingue diferencias de un solo nucleótido en ARN y ADN, facilitando diagnósticos rápidos con mínima manipulación de muestras.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Los autores no tienen nada que revelar.

1. Síntesis procesable PANI <ol><li> Disolver anilina (1 ml, 11 mmol) completamente en 60 ml de cloroformo en un matraz de 250 ml de fondo redondo. Se agita a 600 rpm durante 5 min y se enfría a 0-5 ° C con hielo. Esto suele tardar 15-20 minutos (Figura 2A). </li><li> Añadir sodio dodecil benceno sulfonato (NaDBS) (7,44 g, 21 mmol) a la solución de anilina en un matraz de fondo redondo mientras se agitaba a 600 rpm. </li><li> Disolver persulfato de amonio (APS) (3,072 g, 13,5 mmol) en 20 ml de agua y añadir todos de la misma gota a gota durante 30 minutos para evitar el sobrecalentamiento de la reacción. </li><li> Llevar a cabo la reacción a 0-5 ° C durante 24 horas, y permita que alcance la temperatura ambiente durante otras 24 horas. </li><li> Observar la mezcla de reacción encender inicialmente de color blanco lechoso después de 15 minutos, a continuación, de color marrón oscuro después de 2 horas, y finalmente a verde oscuro después de 24 horas (Figura 2B-F). </li><li> Filtrar la solución PANI-NaDBS con un embudo Buchner. Mezclar con 80 ml de cloroformo y 120 ml de agua en taneparation embudo (Figura 2G). </li><li> Incubar la solución durante 24 horas a temperatura ambiente y recoger el PANI verde oscuro desde el embudo de separación, dejando NaDBS sin reaccionar y APS en el sobrenadante acuoso. </li></ol> 2. Mezcla PANI-sonda y la irradiación UV <ol><li> Diluir solución PANI 10x con cloroformo-agua (1: 3 v / v) y mezclar 200 l de PANI diluye con 6,4 mol de oligonucleótidos de ADN de la sonda por agitación suave durante 15 min en un tubo de microcentrífuga. </li><li> Irradiar la solución PANI-ADN con 1200 mu J / cm 2 de UV en un agente de reticulación para 2 min. Es crítico que la exposición UV se limita a la cantidad indicada. La exposición prolongada a los rayos UV compromete el cambio de fluorescencia en el PANI, probablemente debido a la reticulación covalente del PANI y el ADN. </li><li> complejos de pellets por centrifugación a 17.000 xg durante 6 minutos, y se lavan con solución salina tamponada con fosfato (PBS). Se precipitan de nuevo y volver a suspender en PBS. </li></ol> 3. Hybridization del PANI-sonda <ol><li> Añadir 8 l de 100 mM oligonucleótidos de ADN complementario o ácidos nucleicos diana de 200 l de complejos PANI-sonda. </li><li> Realizar la hibridación por balanceo mezcla en solución durante 15 minutos a 40 DO. </li><li> Se precipitan los complejos PANI por centrifugación a 17.000 xg durante 6 minutos. Lavar con PBS y resuspender en agua. </li></ol> 4. Emisión Steady Estado Medición de fluorescencia <ol><li> Añadir PANI de diferentes tratamientos en una microplaca de 96 pocillos y medir la fluorescencia de emisión en el rango de 270 a 850 nm mediante excitación a 250 nm. Un pico de emisión para el PANI se debe observar alrededor de 500 nm. </li></ol> 5. microscopía de fluorescencia Medición de Hibridada Duplex <ol><li> Caída de PANI abrigo en un cubreobjetos de vidrio de borosilicato y se seca a 40 ° C durante 48 horas. </li><li> Añadir la sonda (8 l de 100 mM) en una película de PANI seca e irradiar con luz UV (1.200 mu J / cm2 </sup&gt;) durante 2 min. </li><li> Se lava la película de PANI-sonda con PBS y se seca a 40 ° C durante 48 horas. </li><li> Realizar la hibridación durante 15 min mediante la adición de ácidos nucleicos diana. Esto podría ser una muestra biológica o un oligonucleótido objetivo de control (8 l de 100 mM). Siga con un lavado PBS. </li><li> Obtener las imágenes fluorescentes en un aumento de 40X, con un filtro de paso largo 500 nm. </li></ol>

<ol><li>Hahm, J. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+polymers+in+protein+detection+platforms%3A+optical%2C+electrochemical%2C+electrical%2C+mass-sensitive%2C+and+magnetic+biosensors%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Functional polymers in protein detection platforms: optical, electrochemical, electrical, mass-sensitive, and magnetic biosensors.</a> Sensors (Basel). 11 (3), 3327-3355 (2011).</li>
<li>Rahman, M. M., Li, X. B., Lopa, N. S., Ahn, S. J., Lee, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrochemical+DNA+hybridization+sensors+based+on+conducting+polymers%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Electrochemical DNA hybridization sensors based on conducting polymers.</a> Sensors (Basel). 15 (2), 3801-3829 (2015).</li>
<li>Sengupta, P. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utilizing+Intrinsic+Properties+of+Polyaniline+to+Detect+Nucleic+Acid+Hybridization+through+UV-Enhanced+Electrostatic+Interaction%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Utilizing Intrinsic Properties of Polyaniline to Detect Nucleic Acid Hybridization through UV-Enhanced Electrostatic Interaction.</a> Biomacromolecules. 16 (10), 3217-3225 (2015).</li>
<li>Song, E., Choi, J. -W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conducting+Polyaniline+Nanowire+and+Its+Applications+in+Chemiresistive+Sensing%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomaterials%22%5BJournal%5D)">Conducting Polyaniline Nanowire and Its Applications in Chemiresistive Sensing.</a> Nanomaterials. 3 (3), 498(2013).</li>
<li>Liu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyaniline+nanofibres+for+fluorescent+nucleic+acid+detection%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Polyaniline nanofibres for fluorescent nucleic acid detection.</a> Nanoscale. 3 (3), 967-969 (2011).</li>
<li>Oliveira Brett, A. M., Chiorcea, A. -M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+Force+Microscopy+of+DNA+Immobilized+onto+a+Highly+Oriented+Pyrolytic+Graphite+Electrode+Surface%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Atomic Force Microscopy of DNA Immobilized onto a Highly Oriented Pyrolytic Graphite Electrode Surface.</a> Langmuir. 19 (9), 3830-3839 (2003).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poly%28m-Phenylenediamine%29+Nanospheres+and+Nanorods%3A+Selective+Synthesis+and+Their+Application+for+Multiplex+Nucleic+Acid+Detection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Poly(m-Phenylenediamine) Nanospheres and Nanorods: Selective Synthesis and Their Application for Multiplex Nucleic Acid Detection.</a> PLoS ONE. 6 (6), e20569(2011).</li>
<li>Namgoong, H., Woo, D. J., Lee, S. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-chemical+structure+of+polyaniline+synthesized+by+self-stabilized+dispersion+polymerization%5BTitle%5D)+AND+%22Macromol+Res%22%5BJournal%5D)">Micro-chemical structure of polyaniline synthesized by self-stabilized dispersion polymerization.</a> Macromol Res. 15 (7), 633-639 (2007).</li>
<li>John, A., Palaniappan, S., Djurado, D., Pron, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-step+preparation+of+solution+processable+conducting+polyaniline+by+inverted+emulsion+polymerization+using+didecyl+ester+of+4-sulfophthalic+acid+as+multifunctional+dopant%5BTitle%5D)+AND+%22J+Polym+Sci+A%3A+Polym+Chem%22%5BJournal%5D)">One-step preparation of solution processable conducting polyaniline by inverted emulsion polymerization using didecyl ester of 4-sulfophthalic acid as multifunctional dopant.</a> J Polym Sci A: Polym Chem. 46 (3), 1051-1057 (2008).</li>
<li>El-Dib, F. I., Sayed, W. M., Ahmed, S. M., Elkodary, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+polyaniline+nanostructures+in+micellar+solutions%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Polym+Sci%22%5BJournal%5D)">Synthesis of polyaniline nanostructures in micellar solutions.</a> J Appl Polym Sci. 124 (4), 3200-3207 (2012).</li>
<li>Tsotcheva, D., Tsanov, T., Terlemezyan, L., Vassilev, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+Investigations+of+Polyaniline+Prepared+in+the+Presence+of+Dodecylbenzenesulfonic+Acid%5BTitle%5D)+AND+%22J+Therm+Anal+Calorim%22%5BJournal%5D)">Structural Investigations of Polyaniline Prepared in the Presence of Dodecylbenzenesulfonic Acid.</a> J Therm Anal Calorim. 63 (1), 133-141 (2001).</li>
<li>Jia, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyaniline-DBSA%2Forganophilic+clay+nanocomposites%3A+synthesis+and+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Synthetic+Met%22%5BJournal%5D)">Polyaniline-DBSA/organophilic clay nanocomposites: synthesis and characterization.</a> Synthetic Met. 128 (1), 115-120 (2002).</li>
<li>Kim, B. -J., Oh, S. -G., Han, M. -G., Im, S. -S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+Polyaniline+Nanoparticles+in+Micellar+Solutions+as+Polymerization+Medium%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Preparation of Polyaniline Nanoparticles in Micellar Solutions as Polymerization Medium.</a> Langmuir. 16 (14), 5841-5845 (2000).</li>
<li>Scales, C. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corona-Stabilized+Interpolyelectrolyte+Complexes+of+siRNA+with+Nonimmunogenic%2C+Hydrophilic%2FCationic+Block+Copolymers+Prepared+by+Aqueous+RAFT+Polymerization%E2%80%A0%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Corona-Stabilized Interpolyelectrolyte Complexes of siRNA with Nonimmunogenic, Hydrophilic/Cationic Block Copolymers Prepared by Aqueous RAFT Polymerization†.</a> Macromolecules. 39 (20), 6871-6881 (2006).</li>
<li>Kadashchuk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localized+trions+in+conjugated+polymers%5BTitle%5D)+AND+%22Phys+Rev+B%22%5BJournal%5D)">Localized trions in conjugated polymers.</a> Phys Rev B. 76 (23), 235205(2007).</li>
<li>Chang, H., Yuan, Y., Shi, N., Guan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrochemical+DNA+Biosensor+Based+on+Conducting+Polyaniline+nanotube+Array%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Electrochemical DNA Biosensor Based on Conducting Polyaniline nanotube Array.</a> Anal. Chem. 79, 5111-5115 (2007).</li>
<li>Zhu, N., Chang, Z., He, P., Fang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrochemically+fabricated+polyaniline+nanowire-modified+electrode+for+voltammetric+detection+of+DNA+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Eletrochim.+Acta%22%5BJournal%5D)">Electrochemically fabricated polyaniline nanowire-modified electrode for voltammetric detection of DNA hybridization.</a> Eletrochim. Acta. 51, 3758-3762 (2006).</li>
</ol>

El trabajo fue apoyado por la Facultad de Ciencia y Tecnología de la Universidad del Sur de Mississippi y la Facultad de Ciencia y Tecnología de Mississippi y el programa Mississippi INBRE (Premio Número P204M103476 del Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales).

Un sensor basado en PANI de los ácidos nucleicos requiere la solubilización del polímero en agua con el fin de interactuar con el ADN y el ARN. La dispersión de la PANI en el agua se logra usando agentes tensioactivos, que forman micelas como se informó anteriormente 8. Además de los NaDBS utilizados aquí otros tensioactivos aniónicos, tales como éster de dodecilo de ácido 4-sulfoftálico, tensioactivos no iónicos como los etoxilatos de nonilfenol, o tensioactivos catiónicos tales como bromuro de cetiltrimetil...

Los polímeros conjugados ofrecen muchas opciones para los sensores moleculares. Esto incluye respuestas de fluorescencia, electrónicas y colorimétricas1. Ha habido muchos esfuerzos para incorporar polímeros conjugados en sensores de ácido nucleico. Sin embargo, la mayoría de los sistemas requieren detección secundaria, lo que limitalas opciones de detección. Recientemente, reportamos una plataforma de sensores basada en polímeros conjugados construidos en polianilina (PANI) que explota las propiedades de este polímero, creando un sistema libre de etiquetas3. El PANI es un polímero electroactivo ampliamente conjugado con propiedades como la fluorescencia y la resistencia que son adecuadas para medir sistemas biológicos4. Los excitones dentro de la estructura no están localizados, lo que lleva a la movilidad de la carga positiva entre subunidades monoméricas. Esto proporciona un andamiaje flexible de cargas positivas que pueden interactuar con la columna vertebral cargada negativamente del ADN5,6. Es importante destacar que el ADN unido electrostáticamente está orientado de tal manera que las bases nitrogenadas pueden participar en el emparejamiento de bases. La asociación con el ADN altera las propiedades electrónicas de PANI, un efecto que puede ser potenciado por la irradiación UV (Figura 1)3. Con este sistema, los oligonucleótidos complementarios a los ácidos nucleicos diana pueden inmovilizarse en PANI. Múltiples estudios han demostrado que, tras la hibridación, los oligonucleótidos adsorbidos electrostáticamente se disocian de PANI u otras matrices catiónicas debido a cambios conformacionales causados por el cambio a una estructura de ADN bicatenario3,5,7.
En un sistema de sensores donde la fijación de la sonda modula las propiedades del polímero conjugado, los eventos de hibridación se pueden transducir sin etiquetas ni modificación enzimática de las sondas o ácidos nucleicos objetivo. Los polímeros conjugados ofrecen una gran flexibilidad en los métodos de detección, uno de los cuales es la fluorescencia. A través del monitoreo de la fluorescencia de PANI, se pueden detectar concentraciones de ácidos nucleicos objetivo tan bajas como 10-11 M (10 pM)3. La detección es rápida, se produce a los 15 minutos de la hibridación y es específica cuando se puede diferenciar un solo desajuste en una molécula objetivo3. 
La fabricación de sensores PANI es sencilla. Se puede generar PANI de alto peso molecular que se dispersa bien en agua utilizando procedimientos de síntesis estándar que involucran monómero de anilina, surfactante y adición controlada de un oxidante. El rendimiento puede ser muy alto y el oxidante no reaccionado se elimina mediante el lavado con agua, lo que garantiza que no haya más crecimiento de Pani. La asociación PANI-sonda se produce espontáneamente tras la mezcla, y la formación de complejos se ve reforzada por una exposición leve a los rayos UV. La hibridación se puede llevar a cabo de inmediato, y los cambios en la fluorescencia de PANI se pueden analizar después de una incubación corta. La simplicidad de esta tecnología la hace muy accesible para muchos laboratorios.

<table><tbody><tr><td>Anilina&nbsp;</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>A7401-500&nbsp;</td><td>ACS, líquido, refrigerado</td></tr><tr><td>Peroxidisulfato de amonio</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>A682-500&nbsp;</td><td>ACS, cristalino</td></tr><tr><td>Sultonato de dodecilbenceno sódico</td><td>Pfaltz & Bauer&nbsp;</td><td>D56340&nbsp;</td><td>95% sólido</td></tr><tr><td>Cloroformo</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>MCX 10601&nbsp;</td><td>líquido</td></tr><tr><td>cebadores de ADN</td><td>MWG operón</td><td>n/a</td><td>secuencia de ADN personalizada ~20&nbsp; </td></tr><tr><td>Microplaca bps&nbsp;</td><td>Científico de EE. UU.&nbsp;</td><td>1402-9800&nbsp;</td><td>96 pozo, el polipropileno, ya que no reacciona al cloroformo</td></tr><tr><td>Película adhesiva de microplaca</td><td>EE. UU. Scientific&nbsp;</td><td>2920-0000&nbsp;</td><td>Reduce la contaminación de pozo a pozo, el derrame de muestras y la evaporación</td></tr><tr><td>Cubierta de vidrio para microscopio</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>12-544-D&nbsp;</td><td>Recubrimiento PANI sobre cubreobjetos irradiado UV</td></tr><tr><td>Reticulante UV&nbsp;</td><td>UVP&nbsp;</td><td>HL-2000&nbsp;</td><td>Energía: x100 &mu; J/cm2; Tiempo: 2 min</td></tr><tr><td>Horno de hibridación</td><td>VWR</td><td>01014705 T</td><td>Temperatura: 400&nbsp; &#176; C; con balanceo durante 15 min</td></tr><tr><td>Aparato de vidrio&nbsp;</td><td>Matraz</td> de <td>fondo redondo de tres cuellos de Fisher Scientific para reacción; embudo de caída, tapones, condensador, embudo de separación</td>Microscopio Leica Microsystems&nbsp;<td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>Leica IMC S80</td><td>Aumento 20X; Pseudo color 536 nm; Exposición: 86 mseg; Ganancia 1.0x; Lector de microplacas Gamma 1.6</td></tr><tr><td></td><td>Dispositivos moleculares&nbsp;</td><td>89429-536</td><td></td></tr></tbody></table>

un sensor basado en polianilina de ácidos nucleicos

A Polyaniline-based Sensor of Nucleic Acids

La detección de ácidos nucleicos está en el centro de las tecnologías de diagnóstico utilizadas en la investigación y la clínica. Los enfoques estándar utilizados en estas tecnologías se basan en la modificación enzimática que puede introducir sesgos y artefactos. Un elemento crítico de las plataformas de detección de próxima generación será la detección molecular directa, evitando así la necesidad de amplificación o etiquetas. Los nanomateriales avanzados pueden proporcionar las modalidades químicas adecuadas para realizar sensores sin etiquetas. Los polímeros conjugados son ideales para la detección biológica, poseen propiedades compatibles con las biomoléculas y exhiben una alta sensibilidad a los cambios ambientales localizados. En este artículo se presenta un método para la detección de ácidos nucleicos utilizando el polímero electroconductor polianilina. Los oligonucleótidos "sonda" de ADN simples complementarios a los ácidos nucleicos objetivo se unen electrostáticamente al polímero, creando un sistema de sensores que puede diferenciar las diferencias de un solo nucleótido en las moléculas objetivo. Fuera de la naturaleza específica e imparcial de esta tecnología, es altamente rentable.

Figura 2A captura la configuración de la reacción en el comienzo del proceso de polimerización, es decir, antes de la adición de APS. La formación de micelas es el paso inicial en la reacción se produce la síntesis de proceso de PANI en la interfase micelar. La Figura 2B muestra una solución lechosa después de 5 min. 30 min después de APS se añade la reacción se convierte en un color ligeramente marrón. Figura 2C muestra el camb...

Los ácidos nucleicos son analitos comunes para evaluar sistemas biológicos; sin embargo, el sesgo de la manipulación enzimática puede causar preocupación. Aquí se describe un método para la detección sin marcadores de ácidos nucleicos utilizando polianilina. Esta tecnología de sensores sensible y rentable puede distinguir las diferencias de un solo nucleótido entre moléculas.

Un sensor basado en polianilina de ácidos nucleicos

Detection of nucleic acids is at the center of diagnostic technologies used in research and the clinic. Standard approaches used in these technologies ...

El objetivo general de este procedimiento es sintetizar policloruro de anilina disperso en agua que pueda utilizarse para detectar ácidos nucleicos de forma libre de marcado. Esta técnica es un método rentable para la detección de ácidos nucleicos. Los laboratorios que la adopten la encontrarán sencilla, robusta y sensible.La principal ventaja de la técnica es que es libre de marcado y puede utilizarse para detectar directamente ARN y ADN sin necesidad de manipulación enzimática. Esta técnica tiene potencial para nuevas tecnologías diagnósticas y, como no utiliza marcado, puede emplearse para procesar muestras de pacientes con mínima manipulación. La demostración visual ayudará a desmitificar el sensor.Esta plataforma incluye ciencia de polímeros y biología, que parecen muy exóticas pero de hecho son extraordinariamente fáciles de implementar. Disuelva completamente anilina en 60 ml de cloroformo en un matraz redondo de 250 ml. Después de agitar a 600 RPM durante cinco minutos, enfríe a entre cero y cinco grados Celsius con hielo.Esto generalmente toma de 15 a 20 minutos. A continuación, agregue dodecilbencenosulfonato de sodio a la solución de anilina en un matraz redondo mientras agita a 600 RPM. Disuelva persulfato de amonio en 20 ml de agua y añádalo gota a gota durante 30 minutos para evitar el sobrecalentamiento de la reacción.Realice la reacción a entre cero y cinco grados Celsius durante 24 horas. Observe que la mezcla de reacción inicialmente se vuelva de color blanco lechoso tras 15 minutos, luego marrón oscuro tras dos horas y finalmente verde oscuro tras 24 horas. A continuación, déjela alcanzar la temperatura ambiente durante otras 24 horas.Filtre la solución de dodecilsulfonato de sodio de polianilina con un embudo Buchner. Mezcle el filtrado con 80 ml de cloroformo y 120 ml de agua en un embudo de separación. Incube la solución durante 24 horas a temperatura ambiente, luego recoja la polianilina de color verde oscuro del embudo de separación, dejando el dodecilsulfonato de sodio sin reaccionar y el APS en la fase acuosa sobrenadante.Diluya la solución de PANI 10 veces con cloroformo y agua, luego mezcle 200 microlitros de PANI diluido con 6,4 micromoles de oligonucleótidos de ADN sonda mediante agitación suave durante 15 minutos en un tubo para microcentrífuga. Irradie la solución de PANI-ADN con 1200 microjoules por centímetro cuadrado de luz UV en un cruzador durante dos minutos. Es fundamental que la exposición a UV se limite a la cantidad indicada.La exposición prolongada a UV compromete el cambio de fluorescencia en PANI, probablemente debido a la fuga de enlaces covalentes entre PANI y ADN. Pelar los complejos mediante centrifugación a 17.000 × g durante seis minutos y lavar con solución salina tamponada con fosfato o PBS. Tras realizar una segunda centrifugación, resuspender en PBS.Agregue ocho microlitros de oligonucleótidos de ADN complementario o ácidos nucleicos diana de 100 micromolar a 200 microlitros de complejos de sonda PANI. Realice la hibridación agitando suavemente la mezcla de solución durante 15 minutos a 40 grados Celsius. Después de sedimentar los complejos PANI mediante centrifugación a 17.000 × g durante seis minutos, lávelos con PBS y resuspenda en agua.Agregue PANI de diferentes tratamientos en una placa microtituladora de 96 pocillos y mida la fluorescencia de emisión en el rango de 270 a 850 nanómetros mediante excitación a 250 nanómetros. Se debe observar un pico de emisión para PANI alrededor de 500 nanómetros. Para realizar la medición de microscopía de fluorescencia del dúplex hibridado, coloque una gota de PANI sobre un cubreobjetos de vidrio borosilicato y seque a 40 grados Celsius durante 48 horas.Agregue ocho microlitros de sonda de 100 micromolar sobre una película seca de PANI y luego irradíela con luz UV durante dos minutos. Después de la irradiación, lave la película de sonda de PANI con PBS y seque a 40 grados Celsius durante 48 horas. Realice la hibridación durante 15 minutos agregando ácidos nucleicos diana.Esto podría ser una muestra biológica o un oligonucleótido diana controlado. Llevar a cabo un lavado con PBS. Obtener las imágenes fluorescentes a 40 x de magnificación con un filtro de paso largo de 500 nanómetros.Se muestra aquí la interacción electrostática de los sondas de PANI y ADN potenciada por irradiación UV. La hibridación del ácido nucleico diana desencadena la formación de un dúplex, cambiando la confirmación estructural, lo que resulta en la disociación de la sonda diana de la superficie de PANI. Esta figura muestra el cambio en la fluorescencia de PANI en ausencia o presencia de la sonda, tanto en medio de solución como de recubrimiento sólido.El aumento en la fluorescencia se debe al flujo de electrones procedente del ADN con carga negativa, lo que incrementa la densidad electrónica del polímero. Tras la hibridación con oligonucleótidos diana complementarios, las sondas se separan, lo que lleva a la recuperación de la fluorescencia basal. Por el contrario, la hibridación con oligonucleótidos diana con una única desaparición no da lugar a esta recuperación de la fluorescencia basal.La principal novedad de esta técnica es que utiliza UV suave para una interacción precisa y que en realidad ayuda a distinguir las interacciones no específicas y débiles. Una vez dominada, esta técnica podría llevar hasta dos horas, excluyendo el tiempo de sensado y el tiempo de secado de los recubrimientos. Al intentar este procedimiento, es importante recordar que el ADN se disuelve en agua y que el té ácido cambia en realidad la propiedad electrónica del PANI.Después de ver este video, los espectadores deberían tener una buena comprensión de cómo sintetizar policoluanilina dispersa en agua y utilizar sus propiedades fluorescentes para detectar ácidos nucleicos. Serán capaces de inmovilizar ADNs de sonda y realizar hibridación para detectar dianas. Al trabajar con el monómero, es importante recordar que esta síntesis es peligrosa y debe realizarse en una campana extractora con equipos de protección como gafas de seguridad, guantes y batas de laboratorio.

a-polyaniline-based-sensor-of-nucleic-acids

Research

Investigación

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

"ADN electrónico" sensores, reagentless, biosensores electroquímicos que funcionan bien, incluso cuando son desafiados directamente en la sangre y otras matrices complejas, se han adaptado a la detección de una amplia gama de ácidos nucleicos, proteínas y los analitos de moléculas pequeñas. Aquí se presenta un procedimiento general para la fabricación y el uso de este tipo de sensores.

Fabricación de ADN electroquímico biosensores para la detección Reagentless de ácidos nucleicos, proteínas y moléculas pequeñas

Este video muestra un ensayo de biosensor conductimétrico para estudiar la interacción de un anticuerpo con un antígeno objetivo inmovilizado en un chip transductor. El biosensor está diseñado para tener una proteína quimérica bifuncional: una enzima β-lactamasa con un sitio catalítico funcional fusionado a un nanocuerpo para unirse al antígeno objetivo inmovilizado. Al unirse, la hidrólisis catalítica de un sustrato antibiótico por la enzima β-lactamasa genera una señal eléctrica que confirma...

Ensayo de biosensores conductimétricos basado en β-lactamasas para interacciones proteína-proteína

La síntesis de especies asimétricas de ferroceno es un desafío utilizando técnicas de solución.  Este informe se centra en los métodos llevados a cabo para producir un bioconjugado de ferroceno-biotina utilizando reacciones fáciles y limpias realizadas mediante síntesis en fase sólida.  Se ha demostrado que la incorporación de una fracción tiolato imparte la capacidad de inmovilización en superficies de oro.

Metodología sintética para asimétrica Ferroceno derivados Sistemas de Bio-conjugadas vía sólida metodología a base de resina de fase

Describimos los pasos clave para la biodetección mediante el uso de transistores de efecto de campo de nanocables de polisilicio, incluida la preparación del dispositivo y la inmovilización y confirmación de una sonda molecular de ADN en la superficie del nanocable, así como las condiciones para la detección de ADN.

Preparación de silicio de nanocables de transistor de efecto de campo de químicos y biosensores Aplicaciones

Presentamos un protocolo para diseñar la fase corona de nanotubos de carbono fluorescentes de pared simple (SWNT) de infrarrojo cercano utilizando polímeros anfifílicos y ADN para desarrollar sensores para objetivos moleculares sin elementos de reconocimiento conocidos.

Ingeniería Molecular Recognition con polímeros biomiméticos en una sola pared nanotubos de carbono

En este trabajo se presenta un nuevo método para estudiar las interacciones de la proteína-proteína usando un biosensores conductimétricos basados en la tecnología híbrida de β-lactamasa. Este método se basa en la liberación de protones al producirse la hidrólisis de β-lactámicos.

El uso de un análisis de biosensores conductimétricos β-lactamase-base para detectar las interacciones biomoleculares

Se presenta un protocolo para el desarrollo de un biosensor electroquímico de ADN que comprende un electrodo de carbono nanopartículas modificadas, serigrafiados oro, estabilizado con ácido del poliláctico para la detección de Vibrio parahaemolyticus .

Desarrollo de un Biosensor de ADN electroquímico para la detección de un patógeno de transmisión alimentaria

Este protocolo describe la fabricación de una cinta pequeña, lista para usar que se puede aplicar para detección visual de varios ácidos nucleicos en una prueba individual, que es fácil de operar. En este enfoque, una gama capilar fue utilizada para la detección multiplex y altamente eficiente de los objetivos de la OMG.

Detección visual de los ácidos nucleicos múltiples en un arreglo de capilares

Aquí, Divulgamos el protocolo para la fabricación de un sensor de pH micro de chemiresistive de óxido grafeno recubierto de Nafion, polianilina funcionalizados, reducidos electroquímicamente. Este sensor de estado sólido, basada en chemiresistor pH micro puede detectar cambios de pH en tiempo real durante un proceso de fermentación de Lactococcus lactis .

Fabricación de una cubierta de Nafion, reduce el óxido/polianilina Chemiresistive Sensor de pH Monitor en tiempo real durante la fermentación microbiana

Aquí, describimos un protocolo para crear nanoestructuras inorgánicas discretas y precisas en sustratos utilizando formas de origami de ADN como plantillas guía. El método se demuestra mediante la creación de antenas plasmónicas en forma de pajarita de oro en un sustrato transparente (zafiro).

Nanopatrón de nanopatrón de nanopatrón de sustrato mediado por origami de ADN para aplicaciones de cizallamiento

Las nanomáquinas basadas en DNAzyme se pueden utilizar para la detección altamente selectiva y sensible de ácidos nucleicos. Este artículo describe un protocolo detallado para el diseño de nanomáquinas basadas en DNAzyme con un núcleo 10-23 utilizando software libre y su aplicación en la detección de un fragmento de virus de Epstein-Barr como ejemplo.

DNAzyme 10-23 - Nanomáquinas basadas en el reconocimiento de ácidos nucleicos

Aprende a sintetizar polianilina dispersa en agua para detectar ácidos nucleicos sin etiquetas. Este método económico y sensible distingue diferencias de un solo nucleótido en ARN y ADN, facilitando diagnósticos rápidos con mínima manipulación de muestras.

Un sensor basado en polianilina de ácidos nucleicos

Explorar más videos