Name: Método fiable para evaluar la germinación de semillas, dormancia y mortalidad en condiciones de campo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: Aprende a evaluar la germinación, dormancia y mortalidad de semillas en condiciones de campo usando tiras de semillas etiquetadas y cloruro de tetrazolio. Este protocolo flexible permite cuantificar la supervivencia y contribución de semillas a poblaciones futuras.

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Este trabajo fue financiado por el Programa de Subvenciones para la Evaluación de Riesgos de Biotecnología n.º 2006-39454-17438 a A. Snow, K. Mercer y H. Alexander del Instituto Nacional de Alimentación y Agricultura del Departamento de Agricultura de los Estados Unidos. Los experimentos que utilizaron este método se llevaron a cabo y contaron con el apoyo de la Estación de Campo de la Universidad de Kansas, una unidad de investigación de la Encuesta Biológica de Kansas y la Universidad de Kansas. Los autores desean agradecer a P. Jourdan y E. Regnier por sus útiles revisiones sobre versiones anteriores de este manuscrito. Además, este trabajo contó con la ayuda del personal de la Estación de Campo de la Universidad de Kansas, Waterman Farm de la Universidad Estatal de Ohio (OSU), el Centro de Germoplasma de Plantas Ornamentales del USDA en OSU y el Laboratorio de Biología de Semillas en el Departamento de Horticultura y Ciencias de Cultivos de OSU, especialmente E. Renze, S. Stieve, A. Evans, y E. Grassbaugh, por su apoyo técnico.

1. Reunir Semillas de Especies Múltiples o cruces controlados de una sola especie Nota: En este ejemplo se utiliza la semilla de 15 tipos cruzado dentro de la especie Helianthus annuus (girasol) usando salvaje, híbrido, y los tipos de cultivos como el (productores de semillas) matriz materna. <ol><li> Al final de la temporada de crecimiento, recoger cabezas de semillas maduras en bolsas etiquetadas. Semilla limpia de la paja y el lugar de semillas en sobres etiquetados con el tipo de cruz de los padres en formato estándar (es decir, x materna paterna). </li><li> semillas a granel juntos en sobres grandes usando cantidades iguales de semilla de un número igual de tipos idénticos transversales de los padres. Por ejemplo, 100 semillas de 10 tipos cruzados con los mismos padres maternos y paternos. Etiquetar los sobres con la información de identificación (tipo cruzado). Estos sobres grandes son maestros de semillas para su uso en el llenado de las tiras de enterramiento en la Sección 2. </li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody&gt; <tr><td></td><td colspan="3"> Padres materna </td></tr><tr><td> Padres paterna </td><td> Salvaje: WXW </td><td> F 1: WxC </td><td> Cultivo: CxC </td></tr><tr><td> Salvaje: WXW </td><td> 0% WXW </td><td> 25% F 1 xW † </td><td> 50% cxw † </td></tr><tr><td> BC: WxF1 o F1xW </td><td> 12,5% WxBC </td><td> 37,5% de F 1 XBC </td><td> 62,5% CxBC </td></tr><tr><td> F 1: WxC </td><td> 25% wxf 1 † </td><td> 50% F 1 1 xF </td><td> 75% CxF 1 † </td></tr><tr><td> F 2: F 1 1 xF </td><td> 25% wxf 2 </td><td> 50% F 1 2 xF </td><td> 75% CxF 2 </td></tr><tr><td> Cultivo: CxC </td><td> 50% WxC † </td><td> 75% F 1 xC † </td><td> 100% CxC </td></tr></tbody></table> Tabla 1. parental cruz tipos producidos a partir de polinización manual. Girasol tipos cruce híbrido de cultivos silvestres fueron producidos con la polinización manual para su uso en el experimento de enterramiento de semillas. Para todos los tipos cruzados, el padre de la madre aparece en primer lugar y el padre paterno aparece en segundo lugar. tipos cruzados marcados con † son parte de pares de tipo cruz de reciprocidad con los mismos alelos% de los cultivos, pero diferentes padres maternos. Tabla ha sido publicado previamente en: Pace, BA et al. (2015) 15. 2. Crear las tiras de entierro de semillas personalizados NOTA: Para este ejemplo, hemos tenido tres tratamientos fecha de remoción y 15 repeticiones, así que requerimos 45 tiras total. Este ejemplo utiliza 15 compartimentos por tira así, que requiere bastante tela de poliéster de malla fina o un mosquitero para albergar a 15, 7 x 10 cm compartimentos. Ver Figura 1. <ol><li> Comience por cortar una tira de 20 x 105 cm de tela para cada tira de semillas. </li><li> Medir y marcar compartimentos, luego doble la tela por la mitad. El uso de un higpistola de pegamento h-temperatura, sellar un extremo corto (10 cm). Una vez que el pegamento se enfría un poco, pero no completamente, presione los lados de la tela juntos para crear un sello. PRECAUCIÓN: pegamento y pegamento pistola para puntas de temperaturas altas pueden causar quemaduras si el contacto con la piel es prolongada. </li><li> líneas de cola desde el borde doblado de la parte corta abierta en cada marca compartimento. Presione los dos lados de la tela juntos a lo largo de las líneas de pegamento para asegurar juntas sin agujeros entre los compartimentos. Semillas que migran entre los compartimentos contribuyen a error experimental. NOTA: Ahora que los compartimentos se han creado, el borde desplegada debe permanecer abierta y lista para recibir la semilla y su información de identificación (nombre de tipo cruz). </li><li> Al azar asignar tipos de semillas cruzadas en los diferentes compartimentos para cada tira. <ol><li> Llenar los compartimientos de semillas con un número uniforme de semillas (20 por cada compartimento se utilizan en este ejemplo). Para las etiquetas, utilice marcadores permanentes industriales de corte para el montaje dardos de jardín de plástico de modo que sean capaces desoportar el entierro. NOTA: métodos de marcaje alternativos pueden ser utilizados. </li><li> Después de cada compartimiento se llena de semillas y su etiqueta, sellar el compartimento inmediatamente con la pistola de pegamento de alta temperatura. Continúe hasta que toda la tira de semillas está completamente sellado. Etiqueta de la tira en general en el primer compartimento con la réplica, bloquear y / o información sobre el tratamiento. NOTA: Para nuestro estudio, ya que teníamos el traslado temporal, bloques, tiras y se replican dentro de los bloques, que incluye toda esta información. </li><li> Compruebe si hay huecos entre compartimentos y pegamento localmente según sea necesario antes de pasar a la siguiente tira. </li></ol></li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54663/54663fig1.jpg" /> Figura 1. El entierro tira de semillas esquemática. Ejemplo de la tira que muestra el entierro de identificación de tipo cruz por compartimentos individuales. progenitor materno aparece en primer lugar con el progenitor paterno aparece segundo. Los colores indican diferentes filiación materna,con el amarillo de salvaje, azul para F 1 híbrido, y el rojo para los cultivos. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54663/54663fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> 3. Bury tiras semilla en el campo <ol><li> Cavar parcelas a la profundidad especificada a las tiras de las casas. Asignar tiras a los bloques individuales en los que las tiras están dispuestas al azar para permitir la fecha de retirada para ser utilizados como la trama principal y la identidad compartimento (en este ejemplo, tipo cruzado) como la subtrama en el análisis. </li><li> Cubra tiras con tierra. Corte de tela metálica de malla metálica para ser 10 cm más grande que las parcelas y el lugar más tiras enterrados. Utilice U-pins para asegurar los bordes y los bordes de tela cubierta con tierra. NOTA: Esta cubierta es de madriguera para excluir depredadores de semillas. Como otra opción, Mercer et al. 13 construidos y cajas de tela metálica que rodeaban las tiras de semillas debido a la presión intensa de Gopher en su loca campo enterradosción.) </li><li> Colocar banderas del topógrafo de color para distinguir la ubicación de Gaza y de eliminación de las fechas para complementar los registros escritos claros. </li></ol> 4. Excavar tiras y Evaluar Semilla <ol><li> Desenterrar tiras de semillas asignados a una fecha dada eliminación. Mantener las tiras en un ambiente húmedo y fresco hasta que llegan al laboratorio, donde se llevará a cabo la evaluación de la semilla. Esto puede lograrse envolviendo las tiras en papel de periódico mojado y colocarlos en un refrigerador para el transporte o envío de noche. </li><li> Enjuague el barro y la suciedad de las tiras en agua hasta que las tiras son lo suficientemente limpia que los desechos externo semillas no oscuros. </li><li> Use las tijeras para cortar abierto un compartimiento a la vez. Contar semillas germinadas y eliminarlos. Contar con claridad semillas muertas (por ejemplo, descomposición, o semillas podridas). Coloque las semillas germinadas en la etiqueta de papel secante, húmeda Petri de tamaño para distinguir aún más las semillas germinadas, latentes, y muertos. <ol><li> Colocar placas de Petri con sin germinarsemillas en un conjunto cámara de crecimiento durante las condiciones de germinación estándar: 25 ° C día / 10 ° C 12 hr / noche. Permitir que las semillas germinen una semana. Cualquiera que, contar estos como viable, pero sin germinar, ya que no germinan en condiciones de campo. </li></ol></li><li> Después del tratamiento cámara de crecimiento, prueba de semillas germinadas restante para la viabilidad usando cloruro de tetrazolio (TZ) 13. Para lograr esto, preparar una solución de TZ apropiada por ciento para las especies estudiadas utilizando el Manual de Pruebas de tetrazolio AOSA 14. Para este ejemplo, se utiliza una solución de 1%. <ol><li> Cortar las semillas germinadas por la mitad y colocar la mitad eran el embrión y el endospermo son visibles en una placa de Petri que contiene suficiente solución TZ para cubrir la semilla (semillas puedan flotar, esto está bien). </li><li> Coloque los platos de Petri TZ en una incubadora a 30 ° C y espere 3 horas. Nota: Las temperaturas más altas darán como resultado una reacción más rápida, si se desea, pero la sobretinción es un riesgo. </li></ol></li> &lt;li&gt; Eliminar placas de Petri de la incubadora y evaluar. Las semillas que han manchado rojo en sus embriones son germinar, mientras que las semillas no teñidas están muertas. Consultar el Manual de Pruebas de tetrazolio AOSA para más detalle en los casos marginales distintivas y especies particulares. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Aquí presentamos métodos para el uso de tiras de enterramiento de semillas para observar la germinación de semillas, la latencia y la mortalidad de las semillas diversas en períodos de tiempo preseleccionados en el campo. Las ventajas de usar las tiras en lugar de los paquetes individuales se encuentran en (1) la velocidad de la tira y la construcción compartimento sobre la creación de paquetes individuales; y (2) la facilidad y la velocidad de eliminación de múltiples compartimentos en un movimiento sin el peligro de o...

El objetivo general de este método es evaluar de forma fiable la supervivencia de semillas con el tiempo en condiciones de campo. Bancos de semillas son una reserva de semillas dispersadas, viables aún no germinadas distribuidos ya sea en la superficie del suelo, dentro de hojarasca superficial, o dentro del perfil del suelo, que pueden persistir de forma transitoria o durante muchos años 1,2. Cuando los métodos de enterramiento de semillas similares a los aquí presentados se aplicaron a un estudio de 17 años el uso de varias docenas de especies, se encontraron semillas viables en muchas de las especies ensayadas 3. Latencia de las semillas es un bloque de germinación de la semilla hasta que la combinación apropiada de las condiciones para la supervivencia de las plántulas surgen 4. Restante en estado latente puede permitir que las semillas para sobrevivir las duras condiciones, tales como las bajas temperaturas invernales, limitación de nutrientes, o la sequía estacional, hasta que un disparador externo para la latencia de liberación permite la germinación. Los disparadores para la latencia de liberación puede variar de la exposición al frío, compuestos izquierdo extendido por fira, o ataque físico en la cubierta de la semilla debido a la abrasión o el contacto con los ácidos del estómago de los animales 5. Como señales de germinación pueden ser géneros o especies específicas y, a menudo el resultado de la selección natural pasado, la germinación de semillas de mala adaptación es la que se produce en un momento inadecuado, y puede resultar en semillas o plántulas de mortalidad o pobre crecimiento de las plántulas. Mientras que la inactividad se ha clasificado en una serie de tipos basados en los mecanismos de liberación de la latencia (por ejemplo, la inactividad física, la latencia fisiológica), 6 latencia de las semillas sigue siendo uno de los menos entendidos en temas de biología vegetal. Por lo tanto, los estudios de campo que permiten la evaluación de la situación de las semillas o grupos de semillas en condiciones ecológicas pertinentes individuales tienen mayor poder explicativo que aquellos que simplemente se basan en las pruebas de germinación estándar en el laboratorio. La explotación de las características conocidas de semillas puede proporcionar información sobre los mecanismos de latencia. Control de la latencia de las semillas es complex, incluyendo el control genético de los factores fisiológicos y morfológicos. Mientras que una comprensión completa de la amplitud de mecanismos de latencia aún no se ha dilucidado, un modelo general ha surgido, que implica una relación de retroalimentación entre las dos hormonas de la planta de ácido giberélico (GA) y ácido abscísico (ABA) 7. En este modelo generalizado para semillas con un componente fisiológico a su inactividad, GA sirve como señal para la liberación de la latencia, mientras que ABA sirve para mantener el estado latente. Efectos genéticos maternos, así como el entorno de crecimiento materna puede influir en la latencia y otros rasgos de las semillas, como el tamaño, a través de los tejidos generados por vía materna y señales de desarrollo 8. Maternalmente generada estructuras externas (o cubiertas de semillas), podrá conservar la latencia, a veces en combinación con las señales fisiológicas. Desde revestimientos de semillas de origen materno son controlados por genes de la planta madre, que no siempre son representativas real nuclear genética de la semilla. Nosotros nos tenemosed los aquenios Helianthus annuus de una serie de híbridos de cultivos silvestres cruza para desentrañar estos efectos genéticos de embriones vs. materna sobre características de las semillas 9,10. Por lo tanto, los diseños de estudio que incluyen diversas especies, tipos de cruz, o genotipos pueden recoger información sobre el ecología y genética de latencia de las semillas, germinación y supervivencia. Un ejemplo importante de cómo la germinación de semillas y supervivencia fenotipos pueden afectar la dinámica de población se puede ver en zonas híbridas de cultivos silvestres. Selección durante la domesticación de plantas cultivadas elimina la mayor latencia y reduce la capacidad de una semilla para sobrevivir fuera de la temporada de crecimiento. Sin embargo, el flujo de genes, o hibridación, entre los tipos cultivadas y silvestres en zonas híbridas de cultivos silvestres pueden reintroducir alelos de los cultivos (o variantes genéticas) en una población silvestre, con posibles efectos sobre la dinámica del banco de semillas. Los híbridos entre parientes silvestres y cultivadas potencialmente encuentran en zonas híbridas de cultivos silvestres pueden poseeruna variedad de fenotipos intermedios de latencia, con sólo unos pocos fenotipos esperados para sobrevivir a condiciones fuera del cultivo (por ejemplo, los meses de invierno) 11. El objetivo de este manuscrito es mostrar cómo, utilizando el método de la tira de enterramiento de semillas, podemos evaluar la germinación, latencia, y la supervivencia de una amplia gama de tipos de semillas en diferentes periodos de tiempo para investigar su variación natural en condiciones de campo. En nuestro ejemplo, se emplearon semillas de girasol de 15 tipos cruce híbrido de cultivos silvestres, ya que estamos interesados ​​en los efectos genéticos maternos y de los embriones sobre características de las semillas.

<table><tbody><tr><td>Sobres de monedas pequeños</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sobres de monedas grandes</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>mosquitera de poliéster de malla fina</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pistola de pegamento de alta temperatura</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>recambio de barra de pegamento de alta temperatura</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>marcador permanente industrial</td><td>Cualquiera</td><td></td><td></td></tr><tr><td>etiquetas de jardín de plástico</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>tijera</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pala</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tela dura de malla metálica</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Banderas de topógrafo, varios colores</td><td>Cualquiera</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Periódico mojado</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>hielera</td><td>Cualquiera</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Papel secante</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>placa de Petri</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cámara de crecimiento controlado</td><td>a temperatura Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>hoja de afeitar</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>placa de Petri</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cloruro de tetrazolio</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>agua</td><td>Cualquier</td><td></td><td></td></tr><tr><td>calor incubadora</td><td>Cualquiera</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

método fiable para evaluar la germinación de semillas, dormancia y mortalidad en condiciones de campo

Reliable Method for Assessing Seed Germination, Dormancy, and Mortality under Field Conditions

Describimos técnicas para aproximar la dinámica de los bancos de semillas a lo largo del tiempo utilizando Helianthus annuus como especie de estudio de ejemplo. Las tiras de tela de poliéster permeable y pegamento se pueden doblar y pegar para construir una tira de compartimentos que albergan semillas e información de identificación, al tiempo que permiten el contacto con el lixiviado del suelo, el agua, los microorganismos y la temperatura ambiente. Las tiras pueden construirse con una amplia gama de números y tamaños de compartimentos y permiten al investigador albergar una variedad de genotipos dentro de una sola especie, diferentes especies o semillas que han experimentado diferentes tratamientos. A diferencia de los paquetes de semillas individuales, las tiras se recuperan más fácilmente como una unidad. Si bien los paquetes replicados se pueden incluir dentro de una tira, diferentes tiras pueden actuar como bloques o se pueden recuperar en diferentes momentos para observar el comportamiento de la semilla a lo largo del tiempo. Utilizamos una pistola de pegamento de alta temperatura para delinear los compartimentos y sellamos las tiras una vez que se insertaron la semilla y las etiquetas que identifican los tiempos de bloqueo y eliminación. A continuación, las tiras de semillas se enterraron en el campo a la profundidad deseada, con el lugar marcado para su posterior retirada. Los depredadores animales de madriguera se excluyeron eficazmente mediante el uso de una cubierta de tela metálica en la superficie del suelo. Después del intervalo de tiempo seleccionado para el entierro, se desenterraron las tiras y se evaluó la germinación, latencia y mortalidad de las semillas. Si bien las semillas muertas a menudo se pueden distinguir claramente de las vivas no germinadas a simple vista, las semillas inactivas se identificaron de manera concluyente utilizando una prueba colorimétrica estándar de cloruro de tetrazolio para la viabilidad de las semillas.

Tipos cruzadas con variadas porcentaje de filiación y de los cultivos alelo materno (Tabla 1) diferían través de las fechas de eliminación en porcentaje germinó, sin germinar, y semillas muertas (Fig. 2 y 3). El uso de pruebas de semillas germinadas de TZ, hemos encontrado algunas semillas de verdad latentes en la segunda extracción (primavera) (Tabla 2), mientras que todas las semillas germinadas en la tercera extracció...

Aquí se presenta un protocolo para evaluar la supervivencia de semillas, germinación y la latencia en condiciones de campo utilizando enterrados, tiras de semillas etiquetadas y pruebas de viabilidad cloruro de tetrazolio (TZ).

Método fiable para evaluar la germinación de semillas, dormancia y mortalidad en condiciones de campo

We describe techniques for approximating seed bank dynamics over time using Helianthus annuus as an example study species. Strips of permeable polyester ...

El objetivo general de este procedimiento es observar y cuantificar directamente la germinación, mortalidad y latencia de semillas en condiciones de campo a lo largo del tiempo. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la ecología de semillas, como la forma en que diferentes especies o ecotipos contribuyen con plántulas individuales a la población de la próxima generación, o semillas individuales al banco de semillas del suelo persistente.La principal ventaja de esta técnica es que cualquier número de diseños experimentales, especies, tratamientos o fechas de extracción puede desplegarse fácilmente en el campo y recuperarse como una réplica completa tras semanas o meses de enterramiento. Para comenzar, corte una tira de tela de 20 x 105 cm para cada tira de semillas. Utilizando una cinta métrica, marque compartimentos sobre la tira.Doble la tela por la mitad y utilice una pistola de pegamento de alta temperatura para aplicar pegamento en uno de los extremos cortos. Deje que el pegamento se enfríe ligeramente y luego presione ambos lados juntos para crear un sello. Coloque líneas de pegamento a lo largo de cada marca de compartimento, desde el borde doblad

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Proporcionamos un método para identificar moduladores de transpiración foliar mediante cribado a gran escala de una biblioteca compuesta.

Identificación de nuevos reguladores de la transpiración de plantas mediante el cribado térmico de imágenes a gran escala en Helianthus Annuus

Este estudio presenta metodologías para estudiar los mecanismos patomorfoológicos y moleculares subyacentes a la interacción entre garbanzo yrizoctonia bataticola. El método del papel hinchado es útil para estudiar rápidamente las respuestas del genotipo del garbanzo, mientras que el método de la olla enferma se puede utilizar para imponer simultáneamente la sequía y la infección por R. bataticola y la pantalla tolerante a los genotipos.

Ensayos de la enfermedad de ladrido de raíz seca en el garbanzo: una metodología detallada

Se proporciona un protocolo de alto rendimiento para la esterilización superficial de semillas de Arabidopsisthaliana (Arabidopsis), optimizando los pasos de manejo de líquidos con un dispositivo de succión simple construido con una bomba de vacío. Cientos de muestras de semillas pueden ser esterilizadas superficialmente en un día.

Método de alto rendimiento, robusto y altamente flexible en el tiempo para la esterilización superficial de semillas de Arabidopsis

Este protocolo tiene como objetivo proporcionar procedimientos detallados para recolectar, fijar y mantener muestras de plantas micoheterótrofas, aplicando diferentes técnicas de microscopía como microscopía electrónica de barrido y transmisión, microscopía de luz, confocal y fluorescencia para estudiar la colonización fúngica en tejidos vegetales y semillas germinadas con hongos micorrícicos.

Técnicas de microscopía para interpretar la colonización fúngica en tejidos de plantas micoheterótrofas y germinación simbiótica de semillas

Este protocolo combina la esterilización estandarizada de la superficie de la semilla con la germinación controlada para permitir el aislamiento reproducible de la microbiota asociada a la semilla de tomate durante la transición de la semilla a la plántula. El enfoque mejora la recuperación de microorganismos cultivables que están subrepresentados en semillas secas y apoya estudios culturales comparativos durante el desarrollo temprano de plántulas.

Aislamiento de la microbiota asociada a semillas de tomate mediante germinación controlada y cultivo comparativo

Aprende a evaluar la germinación, dormancia y mortalidad de semillas en condiciones de campo usando tiras de semillas etiquetadas y cloruro de tetrazolio. Este protocolo flexible permite cuantificar la supervivencia y contribución de semillas a poblaciones futuras.

Método fiable para evaluar la germinación de semillas, dormancia y mortalidad en condiciones de campo

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