11 de noviembre de 2016
Aquí, describimos los ajustes para monitorear en paralelo la bioluminiscencia circadiana y la actividad secretora de las células de los islotes humanos y los miotubos primarios. Para ello, empleamos la administración de genes lentivirales de un indicador de reloj central de luciferasa, seguido de sincronización in vitro y recolección del medio de salida por perifusión celular continua.
El objetivo general de este procedimiento es la evaluación paralela de la bioluminiscencia circadiana y la actividad secretora de células endocrinas primarias humanas cultivadas y sincronizadas in vitro. Este método puede ayudar a investigar el patrón temporal de la secreción celular y cómo puede ser regulada por relojes circadianos autónomos de las células. La principal ventaja de esta técnica es que nos permite monitorizar las luciferinas circadianas como actividad reportera y, al mismo tiempo, recoger el medio de salida para medir los niveles de hormonas secretadas y mioquinas. Para introducir los reporteros de bioluminiscencia circadiana en las células primarias por transducción lentiviral, primero transfiera las placas de Petri de 3,5 cm que contienen mioblastos humanos con una confluencia del 30% al 50% a una cabina de flujo laminar. Reemplace el medio de mioblasto humano con 2 mL de medio de crecimiento. A continuación, transducir el cultivo celular primario pipeteando la solución de lentivirus en la placa para obtener una multiplicidad de infección igual a tres. Incubar las células durante la noche en una incubadora de cultivo de tejidos. Cambie el medio al día siguiente. Para lograr la sincronización in vitro, añadir 10 micromolares de adenilil ciclasa activador en 2 mL de medio por placa de Petri de 3,5 cm que contenga las células primarias previamente transfectadas. Incubar las células durante 60 minutos a los 37
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Este estudio describe métodos para monitorear la bioluminiscencia circadiana junto con la actividad secretora de células de islotes humanos y miotubos primarios. El enfoque implica la entrega génica lentiviral de un reportero del reloj central de luciferasa, seguido de sincronización in vitro y perfusión celular continua para la recolección del medio.
Parallel measurement of circadian clock gene expression and hormone secretion in human primary cell cultures enables direct interrogation of temporal regulation in human endocrine and muscle systems. This approach enhances predictive confidence in target validation by linking molecular circadian oscillators to functional secretory outputs. Integrating these measurements at the discovery stage supports risk-adjusted advancement of metabolic and chronobiology programs across the portfolio.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling hypothesis testing of circadian regulation in human primary cells, supporting both target validation and translational continuity.