Name: La observación y cuantificación de la conducta de apareamiento en el nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 55 s
Description: Aprende a observar y cuantificar la conducta de apareamiento en Bursaphelenchus xylophilus mediante la obtención de adultos vírgenes. Este protocolo facilita el estudio de la biología reproductiva de nematodos.

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Najie Zhu y Liqun Bai contribuyeron igualmente a este trabajo. Este trabajo fue apoyado financieramente por el Fondo Especial para la Investigación Científica Forestal en el Bienestar Público (201204501) y la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (31170604, 31270688, 31570638 y). Agradecemos al Dr. Gerrit Holighaus y el Dr. Danielle Hickford por sus útiles sugerencias sobre la escritura Inglés.

1. Adquisición de Vírgenes nematodos adultos <ol><li> Aislado nematodo del pino y condiciones de cultivo NOTA: El B. xylophilus aislar Nxy61 se extrajo originalmente de un massoniana Pinus enferma en la zona de Ningbo, provincia de Zhejiang en China. <ol><li> Preparar Papa Dextrosa Agar (PDA, consulte la Tabla de Materiales) placas para el cultivo de Botrytis cinerea. </li><li> Para la inoculación, perforar un pedazo de alfombra de hongos con diámetro de 10 mm a partir de una estera de B. cinerea y lo puso en medio de una nueva placa de PDA. Cultura del B. cinerea durante 5 días a 25 ° C en la oscuridad. </li><li> La cultura de los nematodos de madera de pino en la placa de Petri que contiene preparada B. cinerea a 25 ° C en la oscuridad. </li></ol></li><li> Adquisición de B. xylophilus huevos <ol><li> Colocar un tubo de goma sujeta por debajo de un embudo y sostenga el embudo dispuesto en un bastidor para montar elaparato de embudo Baermann. Colocar dos capas de papel de filtro en lugar de gasa en la boca del embudo. </li><li> La transferencia de los cultivos de hongos a la configuración de embudo y añadir agua hasta que está inmersa la flora fúngica. Esperar 2 h, y nematodos van a salir a partir del cultivo de hongos, cruce el papel de filtro, y establecerse en la parte más baja del embudo Baermann. </li><li> Reunir la primera par de gotas de agua de la parte inferior del tubo en un tubo de 15 ml y recoger los nematodos liberando lentamente la abrazadera sobre el tubo. </li><li> Centrifugar las colecciones anteriores a 3000 xg durante 2 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Eliminar la capa superior de agua con una pipeta y resuspender con 1 ml de estéril doblemente destilada (dd) H 2 O. </li><li> Con una pipeta, transferir la resuspensión de arriba para un plato de Petri nuevo vidrio (6 cm de diámetro). Añadir 3 ml de estéril dd H2O para la placa de Petri para asegurar que los nematodos son capaces de nadar libremente. </li><li> Mantenga los nematodos en los glass placa de Petri durante 10 min a 25 ° C en la oscuridad. Los huevos serán puestos por las hembras embarazadas. Debido a su superficie la glicoproteína, los huevos se adhieren a la parte inferior de la placa de Petri de vidrio. </li><li> Eliminar el agua y los gusanos con cuidado, sin molestar a los huevos. Añadir 3 ml de solución estéril de dd H 2 O a la placa de Petri de vidrio inmediatamente para evitar que los huevos se sequen. </li><li> Repita el paso 1.2.8 3x para eliminar todas las larvas y los adultos, y obtener los huevos puros. Añadir un extra de 2 ml (5 ml en total) de estéril dd H2O para la placa de Petri. </li></ol></li><li> La adquisición de los juveniles de Cuarta Etapa (larvas J4) <ol><li> Escotilla de los huevos recogidos durante 24 h en la oscuridad a 25 ° C para obtener larvas J2. </li><li> Transferir las larvas J2 con una pipeta en un tubo de 15 ml, se centrifuga a 3.000 g durante 2 min, y quitar la capa superior de agua. </li><li> Volver a suspender las larvas J2 con 200 l de estéril dd H2O, y luego transferirlos ala placa de PDA que contiene B. cinerea. </li><li> Cultura las larvas J2 durante 52 horas a 25 ° C en la oscuridad. En este punto de tiempo, la mayoría larvas J2 se habrá convertido en la primera etapa de larvas J4. </li></ol></li><li> Adquisición de nematodos adultos vírgenes <ol><li> Preparar una aguja para recoger nematodos mediante la elaboración de un capilar de vidrio después de haberlo calentado sobre un mechero de alcohol. NOTA: La punta de esta aguja capilar por lo general tiene que ser 50 micras de diámetro, más o menos la anchura del cuerpo de un nematodo adulto, de manera que se puede utilizar como una herramienta para recoger un solo nematodos. </li><li> Montar un embudo Baermann y extraer nematodos de los cultivos de hongos durante 2 h, tal como se describe en los pasos 1.2.1 - 1.2.3. </li><li> Transferir el J4 con agua en una placa Petri limpia. </li><li> Observar los nematodos bajo un estereomicroscopio y distinguir entre machos y hembras de la morfología genital, tal como se describe por Mamiya y Kiyohara 8 (Figura 1 </strong&gt;). Recoger un nematodo del sexo deseado con la aguja capilar preparado y transferirlo a la placa con hongos de cultivo apropiado para hombres o mujeres. NOTA: Hay más mujeres que hombres, con el porcentaje de hembras a 60 - El 70%. La vulva femenina es obviamente diferente de la espícula masculina. En comparación con el adulto, la espícula o la vulva en las primeras etapas del J4 es más pequeño, pero todavía pueden ser vistos y distinguida fácilmente. El nematodo está siempre en movimiento en el agua, que a veces aumenta la dificultad de distinguir machos y hembras. </li><li> Cultura J4 las larvas durante otras 24 horas a 25 ° C en la oscuridad. NOTA: Todos los nematodos deben convertirse en adultos, pero como son desacoplados, que son considerados como adultos vírgenes. </li><li> Montar dos embudos Baermann y extraer los adultos vírgenes procedentes de los cultivos de hongos durante 2 h, tal como se describe en los pasos 1.2.1 - 1.2.3, y transferir los machos adultos y hembras vírgenes en dos platos separados, limpios de Petri. </li></ol&gt; </li></ol> 2. La observación y grabación de vídeo de la conducta de apareamiento <ol><li> Preparar varias diapositivas cóncavas y añadir 200 l de estéril dd H2O a cada uno de sus pozos. </li><li> Recoger el macho adulto o preparados virgen y hembra con una aguja capilar y poner sólo un nematodo en el agua de cada diapositiva cóncava. </li><li> Mantenga los adultos vírgenes en el interior del pozo durante 1 hora para dejar que se adapten al nuevo entorno acuoso. </li><li> Par una virgen masculina y femenina mediante la transferencia de uno de ellos de un pozo a otro utilizando una pipeta. </li><li> Observar el comportamiento de apareamiento de la 1♀ + combinación 1♂ en la diapositiva cóncava bajo un microscopio estereoscópico. </li><li> Para analizar la eficiencia de acoplamiento de los adultos vírgenes, calcular su tasa de éxito de apareamiento (R) y compararlo con el de parejas de adultos seleccionados al azar. Calcular R como el porcentaje de repeticiones en el que se observó la cópula en comparación con el número total de repeticiones estudiados. </li><li&gt; Para investigar la elección de apareamiento y la competencia intrasexual, grupo y observar los nematodos vírgenes de dos combinaciones diferentes: 1♀ + 3♂ y 3♀ + 1♂. </li><li> Con el fin de recopilar datos para el análisis cualitativo y cuantitativo, filmar el comportamiento de apareamiento mediante microscopía de vídeo. Normalmente, todo el proceso de acoplamiento, desde el momento en el que los nematodos se colocan en el pozo de la corredera cóncava para el momento en que se alejan después de la copulación, se completa dentro de 2 h. Por lo tanto, el proceso de apareamiento grabar de forma continua durante al menos 2 h como una réplica. Completar al menos 30 repeticiones en total para cada combinación. NOTA: Añadir más estériles dd H2O (por lo general 50 l) cada 0,5 h al pozo para compensar la evaporación durante el proceso de grabación. </li></ol> 3. Recolección de Datos <ol><li> Ver todos los vídeos con cuidado sobre una pantalla de ordenador y caracterizar las sub-comportamientos cualitativamente. </li><li> Medir la duración de apareamiento usando THe fotograma a fotograma en función de la grabadora de vídeo. restar manualmente el tiempo de inicio desde el punto final. </li><li> Para la combinación 1♀ + 1♂, analizar cada grabación de vídeo y medir la duración de los eventos siguientes: <ol><li> Medir la duración de la búsqueda (es decir, el tiempo desde que la hembra y macho se introducen en el pozo de la corredera cóncava hasta el momento en que encuentran y en contacto entre sí). </li><li> Medir la duración de contacto (es decir, el tiempo desde el primer contacto hasta el momento en que el macho se coloca precisamente en la vulva de la mujer para la primera copulación). </li><li> Medir la duración de copulando (es decir, el tiempo desde cuando el macho se coloca precisamente en la vulva de la hembra hasta que se desliza hacia abajo del cuerpo de la hembra después de la eyaculación). Nota: Algunos nematodos pueden copular varias veces en 2 h. En tales casos, medir la duración de la copulación de la primera copulación hasta el final de la last uno, incluyendo el tiempo en el medio. </li><li> Medir la duración de persistente (es decir, el periodo después de la copulación hasta que el baño macho y hembra de distancia unos de otros y están separados por una distancia de más de la longitud del cuerpo los nematodos &#39;(normalmente 1 mm)). </li></ol></li><li> Contar la frecuencia de la cópula y la duración de cada copulación y la duración media de todas las copulaciones en 2 h para cada una de las diferentes combinaciones (es decir, 1♀ + 1♂, 3♀ + 1♂, y 1♀ + 3♂). </li><li> Calcular la tasa de éxito de apareamiento para el primer contacto (P) para las diferentes combinaciones como la tasa de éxito de apareamiento después de la primera toma de contacto, que se llevó a cabo de inmediato y sin ninguna interrupción. En la fase de contacto, varios contactos pueden ser observados antes de la copulación propiamente dicha. <ol><li> Cuando la distancia entre dos individuos es más que la longitud del cuerpo, considere uno de contactos de haber terminado. Para un replicado, ficha P como el 100% cuando la cópula is observó inmediatamente después de la primera toma de contacto, sin descanso, o 0.00%, si no se observó la cópula o si había copulación pero después de dos o más contactos. NOTA: Hubo 30 repeticiones para cada combinación descrita aquí. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Tokushige, Y., Kiyohara, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bursaphelenchus+sp.+in+the+wood+of+dead+pine+trees%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Jap.+For.+Soc%22%5BJournal%5D)">Bursaphelenchus sp. in the wood of dead pine trees.</a> J. Jap. For. Soc. 51, 193-195 (1969).</li>
<li>Sun, Y. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bursaphelenchus+xylophilus+was+discovered+in+Sun+Yet-sen%27s+mausoleum+in+Nanjing%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Jiangsu+Fore.+Sci.+Tech.+%28in+Chinese%29%22%5BJournal%5D)">Bursaphelenchus xylophilus was discovered in Sun Yet-sen's mausoleum in Nanjing.</a> J. Jiangsu Fore. Sci. Tech. (in Chinese). 4, 47(1982).</li>
<li>Mota, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+report+of+Bursaphelenchus+xylophilus+in+Portugal+and+in+Europe%5BTitle%5D)+AND+%22Nematology%22%5BJournal%5D)">First report of Bursaphelenchus xylophilus in Portugal and in Europe.</a> Nematology. 1, 727-734 (1999).</li>
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<li>Simon, J. M., Sternberg, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+of+a+mate+finding+cue+in+the+hermaphrodite+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Evidence of a mate finding cue in the hermaphrodite nematode Caenorhabditis elegans.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 99, 1598-1603 (2002).</li>
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<li>Shinya, R., Chen, A., Sternberg, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sex+attraction+and+mating+in+Bursaphelenchus+okinawaensis+and+B.+xylophilus%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Nematol%22%5BJournal%5D)">Sex attraction and mating in Bursaphelenchus okinawaensis and B. xylophilus.</a> J. Nematol. 47 (3), 176-183 (2015).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Pruebas de comportamiento son un aspecto fundamental de la ecología química, la neurobiología, la biología molecular y la genética. Nematodos, y en particular de C. elegans, se usan ampliamente para estudios en estas áreas. El comportamiento de apareamiento de C. elegans se ha investigado previamente 10-11. Sin embargo, B. xylophilus es gonochoristic y diferente de los hermafroditas C. elegans, y su proceso de apareamiento tiene diferentes características de comportamiento ...

El nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus (Steiner y Buhrer) Nickle, es una de las especies invasoras más destructivas, causando el marchitamiento y finalmente la muerte de los pinos. Se cree que este nematodo patógeno es originario de los EE. UU., pero fue transportado a varios países, incluidos China, Japón, Corea del Sur y Portugal. Recientemente, también se ha reportado en España, matando millones de pinos con enormes pérdidas económicas y amenazando la producción forestal y la estabilidad ecológica1-5.
Una vez que un pino huésped es infectado por nematodos del pino, miles de millones de descendientes se propagan rápidamente dentro del tronco. Esto causa disfunción del xilema, lo que resulta en marchitamiento y, finalmente, en la muerte del árbol huésped6. Sin embargo, en la actualidad no existe una forma eficiente de controlar esta enfermedad. El comportamiento de apareamiento podría jugar un papel importante en la alta fecundidad de este nematodo7. Por lo tanto, investigamos el comportamiento de apareamiento de B. xylophilus en el laboratorio, tratando de encontrar una forma efectiva de perturbar su apareamiento y disminuir su fecundidad. 
Este protocolo tiene como objetivo introducir los métodos detallados de cómo obtener los adultos vírgenes de B. xylophilus y cómo observar y analizar el comportamiento de apareamiento utilizando una grabadora de vídeo y un microscopio estereoscópico. Este protocolo también se puede utilizar como referencia para estudios de comportamiento de otros nematodos.

<table><tbody><tr><td>B. xylophilus aislado Nxy61</td><td></td><td></td><td>Extraído de Pinus massoniana en el área de Ningbo de China Cepa</td></tr><tr><td></td><td></td> de<td>moho gris</td><td>Obtenido de la Academia Forestal de China</td></tr><tr><td>Embudos Baermann</td> Tubos de halcón <td>Sengong</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td> Centrífuga <td>Sengong</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Sengong</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pipeta</td><td>Sengong</td><td></td><td></td></tr><tr><td>estéril dd H2O</td><td></td><td></td><td>Esterilizada por alta presión de vapor a 121 &00 grados; C durante 30 min.</td></tr><tr><td>Placas de Petri</td><td>Sengong</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PDA mediano</td><td>Huankai Bio.</td><td>021050</td><td></td></tr><tr><td>incubadora</td><td>Sengong</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flujo laminar</td><td>Sengong</td> capilar de vidrio Sengong <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Estereoscopio</td><td>Leica LED5000</td><td>RL</td><td></td></tr><tr><td>microscopio estereoscópico invertido</td><td>Zeiss</td><td>A1</td><td></td></tr><tr><td>portaobjetos cóncavos</td><td>Sengong</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

la observación y cuantificación de la conducta de apareamiento en el nematodo del pino, bursaphelenchus xylophilus

Observation and Quantification of Mating Behavior in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus

Un método para observar y cuantificar el comportamiento de apareamiento del nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus, se estableció bajo un microscopio estereoscópico. Para mejorar la eficiencia de acoplamiento de B. Xylophilus y para aumentar las posibilidades de observación de apareamiento, los adultos vírgenes se cultivaron y se utilizan para la investigación. Los huevos se obtuvieron manteniendo los nematodos en agua y permitiendo que las hembras ponen huevos para 10 min. Los juveniles de segunda etapa (J2) se sincronizaron mediante la incubación de los huevos durante 24 horas a 25 ° C en la oscuridad, y la temprana J4 se obtuvieron por cultivo de la J2 con el moho gris, Botrytis cinerea, por otra 52 h. En ese momento, la mayoría de los nematodos J4 podían distinguirse claramente como ser hombre o mujer usando su morfología genital. La hembra J4 macho y se recogieron y se cultivaron por separado en dos placas de Petri diferentes para 24 h para obtener nematodos adultos vírgenes. Un macho y una hembra virgen virgen fueron emparejados en una gota de water en el pozo de una diapositiva cóncava. El comportamiento de apareamiento fue filmado con un grabador de vídeo bajo un microscopio estereoscópico. todo el período del proceso de apareamiento fue del 82,8 ± 3,91 min (media ± DE) y se puede dividir en 4 fases distintas: la búsqueda, contacto, copulando, y persistentes. La media de minutos de duración fueron 21,8 ± 2,0, 28,0 ± 1,9, 25,8 ± 0,7 y 7,2 ± 0,5, respectivamente. Se describen once sub-comportamientos: crucero, se acerca, el encuentro, tocando, zunchado, la localización, adjuntando, eyacular, la separación, la quietud, y la itinerancia. Curiosamente, se observó obvia la competencia intra-sexual cuando una mujer se agrupó con 3 machos o un macho con 3 hembras. Este protocolo es útil y valiosa, no sólo en la investigación del comportamiento de apareamiento de B. xylophilus, sino también en que actúa como referencia para los estudios etológicos de otros nematodos.

La tasa de éxito de acoplamiento (R) de los adultos vírgenes era 86,67% de media, que fue significativamente mayor que la de los adultos seleccionados al azar: 13,33 ± 4,65% (F = 1301,71, df = 1, P = 0,0001) (Figura 2). Este hallazgo sugiere que es más fácil de observar el comportamiento de apareamiento de B. xylophilus con adultos vírgenes que con adultos seleccionados al azar. Cuan...

Se presenta un protocolo para investigar el comportamiento de apareamiento del nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus. Las características de comportamiento de B. xylophilus se describen en el proceso de apareamiento.

La observación y cuantificación de la conducta de apareamiento en el nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus

A method for observing and quantifying the mating behavior of the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, was established under a stereomicroscope. ...

El objetivo general de este procedimiento es observar el comportamiento de apareamiento del nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus. Este método puede ayudar a avanzar en los estudios psicológicos del nematodo. Se ocupa específicamente de la observación del comportamiento de apareamiento del nematodo del pino.La principal ventaja de esta técnica es que se pueden obtener adultos vírgenes, lo que hace que sea mucho más fácil observar el comportamiento de apareamiento de los adultos. Las implicaciones de esta técnica se extienden puramente hacia el estudio más amplio de los nematodos, ya que tienen comportamientos de ciclos de vida similares. Para la demostración de este método es fundamental, ya que la adquisición de nematodos adultos vírgenes es difícil porque las restricciones de los nematodos en desarrollo requieren práctica y no es fácil distinguir con precisión los machos de las hembras en los juveniles de la primera etapa temprana.Para cultivar nematodos de la madera de pino, primero prepare placas de agar papa dextrosa. Para inocular una placa, perfore un trozo de estera fúngica con un diámetro de 10 milímetros de una estera de betritus senaria y colóquela en el centro de una nueva placa PDA. Cultive la alfombra de hongos durante cinco días a 25 grados centígrados en la oscuridad.Después de cinco días, agregue los nematodos de la madera de pino a la placa de Petri preparada y cultívelos durante tres días a 25 grados centígrados en la oscuridad. Para aislar los nematodos del hongo, primero prepare una herramienta de recolección. Coloque un tubo de goma con abrazadera debajo de un embudo y sostenga el embudo preparado en una rejilla para ensamblar el aparato de embudo de Baermann.Luego, coloque dos capas de papel de filtro en lugar de gasa en la boca del embudo. Ahora, transfiera los cultivos de hongos a la configuración del embudo y agregue agua hasta que la alfombra de hongos esté sumergida. Después de dos horas, los nematodos saldrán del cultivo de hongos, atravesarán el papel de filtro y se asentarán en la parte más baja del embudo de Baermann.Recoja los nematodos colocando un tubo de 15 mililitros debajo del embudo, luego suelte lentamente la pinza para recolectar unas gotas de agua, que contendrá los nematodos. Centrifugar las colecciones de nematodos a 3.000 g durante dos minutos a temperatura ambiente. Luego separe el nivel superior de agua y vuelva a suspender los gusanos en un mililitro de agua.Transfiera la suspensión de los nematodos a un plato de vidrio de seis centímetros y agregue tres mililitros de agua para ayudar a los nematodos a nadar libremente. Ahora, recolecta huevos para hacer caldos vírgenes. Transfiera el plato a una incubadora oscura y deje que las hembras embarazadas pongan huevos durante 10 minutos.Debido a su superficie glicoproteica, los huevos se pegarán al vaso. A continuación, retire el agua con los gusanos con cuidado para evitar perturbar los huevos pegados al plato. Luego, agregue rápidamente 3 mililitros de agua al plato para evitar que los huevos se sequen.Repite este proceso de limpieza de huevos al menos tres veces, para eliminar todas las larvas y adultos y obtener los huevos puros. A la recolección de huevos puros lavados, agregue cinco mililitros de agua y proceda a desarrollar los huevos en la oscuridad a 25 grados centígrados. 24 horas después de comenzar el cultivo de huevos, recoja las larvas J2 eclosionadas.Transfiera con cuidado las larvas J2 a un tubo de 15 mililitros. A continuación, centrifugar la colección a 3.000 g durante dos minutos. Separe la capa superior de agua y agregue nuevamente 200 microlitros de agua.Luego, cultive las larvas J2 en una placa PDA preparada con una estera de hongos. Después de 52 horas, la mayoría de las larvas J2 se habrán convertido en larvas J4 en etapa temprana. Montar un embudo de Baermann, y extraer los nematodos de los cultivos fúngicos durante dos horas, como se ha descrito anteriormente.Mientras esperas, prepara una aguja para recoger los gusanos. Saque una punta de un capilar de vidrio calentado sobre un quemador de alcohol. La punta debe tener unas 50 micras de diámetro, aproximadamente el ancho del cuerpo de un nematodo adulto.Después de dos horas, transfiera las larvas J4 a una placa de Petri limpia como se describió anteriormente. Ahora, sexar los nematodos bajo un microscopio estereoscópico. Alrededor de dos tercios de las larvas suelen ser hembras.La vulva de la hembra es obviamente diferente de la anatomía del macho, pero debido a que los gusanos son muy activos, el sexado requerirá práctica. El paso más crítico de este protocolo es distinguir y separar con precisión a los machos de las hembras en la primera etapa temprana. De lo contrario, habrá mezcla y maldad, una vez que se conviertan en adultos.Y eso dificulta la observación del apareamiento. Poco a poco, recoja y transfiera los gusanos a una gota de agua en un tobogán para machos o hembras. Para garantizar el éxito, dos personas diferentes deben verificar dos veces la asignación de sexo.Ahora, transfiera la gota de agua que contiene los gusanos sexados a la placa de cultivo de hongos adecuada. Luego, cultiva a las vírgenes durante otras 24 horas antes de estudiar su comportamiento de apareamiento. Para observar el comportamiento de apareamiento de los nematodos del pino, primero prepare varios portaobjetos cóncavos agregando 200 microlitros de agua a cada uno de sus pozos.A continuación, elija un solo adulto virgen preparado y transfiéralo a un portaobjetos preparado. Mantenga a los adultos vírgenes dentro del pozo durante una hora para que se adapten al nuevo ambiente acuoso. Después de una hora, agregue un solo adulto virgen del sexo opuesto al pozo, usando una pipeta.A continuación, observe el comportamiento de apareamiento bajo un microscopio estereoscópico y filme el comportamiento para el análisis cuantitativo. Todo el proceso de apareamiento suele terminar en dos horas. Cada 30 minutos, añade 50 microlitros de agua para compensar la evaporación.Para investigar la elección de apareamiento y la competencia intersexual, agrupe y observe nematodos vírgenes de dos combinaciones diferentes. La tasa de éxito de apareamiento de los adultos vírgenes fue de alrededor del 87%, que fue mucho más alta que la de los adultos seleccionados al azar. Las parejas tardaron un promedio de 83 minutos en completar todo el proceso de apareamiento, que contiene cuatro fases diferentes.Buscando, contactando, copulando y permaneciendo. Dentro de estas fases, se pueden observar muchos patrones específicos de comportamiento. Cuando una hembra se encontraba con varios machos, había una elección obvia de apareamiento.La hembra generalmente usa su cabeza para contactar a un macho, generalmente en la cabeza, el cuerpo, la cola y la región genital. La hembra entonces copulaba con el macho, o lo dejaba rápidamente, y nadaba hacia otro macho. Se midieron las tasas de éxito de apareamiento después del primer contacto para las diferentes combinaciones de nematodos.También se produjo la competencia intersexual. Cuando una hembra virgen se mezclaba con tres machos vírgenes, los machos trataban de acercarse y contactar a la hembra tanto como fuera posible, para tener la oportunidad de aparearse con ella. Cuando la vulva estaba ocupada, los otros machos trataban de perturbar el proceso de apareamiento mediante violentos balanceos corporales o arrastrándolos para separarlos.Se observó que la competencia intersexual femenina era más o menos similar a la competencia intersexual masculina. Debido a la competencia intersexual, las frecuencias de cópula realizadas con las diferentes combinaciones fueron significativamente diferentes. Después de su desarrollo, esta técnica allanó el camino para la exploración de la ecología del comportamiento en nematodos.Una vez dominado, este procedimiento se puede completar en 12 días, si se realiza correctamente. Al intentar este procedimiento, es importante recordar separar con precisión a los machos de las hembras, los primeros cuatro juveniles en etapa para obtener adultos vírgenes.

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Biología

Nematodos entomopatógenos son gusanos redondos habitan en el suelo que parasitan una amplia gama de insectos. Demostramos métodos de muestreo utilizados para el aislamiento de estos nematodos del suelo mediante dos técnicas: la de cebado de insectos y la trampa de Blanco modificada, para la recuperación de nematodos de muestras de suelo y cadáveres de insecto infectadas, respectivamente.

Muestreo de suelos y aislamiento de nematodos entomopatógenos (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Los ensayos conductuales proporcionan herramientas poderosas para comprender la función neuronal. En este trabajo se presentan varios protocolos para cuantificar el comportamiento alimentario depredador encontrado en el nematodo modelo Pristionchus pacificus y sus parientes. Además, proporcionamos métodos para analizar las adaptaciones de alimentación de los depredadores, incluidas las estructuras de la boca y los dientes.

El ensayo de los comportamientos de alimentación depredadores en<em&gt; Pristionchus</em&gt; Y otros nematodos

Se demuestra un ensayo para analizar las señales ambientales y genéticas que influyen en el comportamiento de apareamiento en la mosca de la fruta Drosophila melanogaster .

Un método para probar el efecto de las señales ambientales sobre el comportamiento de apareamiento en<em&gt; Drosophila melanogaster</em

El uso de un chip olfativo de"adaptado" para la proyección de imagen del calcio eficiente de los machos de C. elegans se describe aquí. También se muestran estudios de exposición masculina a glicerol y una feromona.

Usando un Chip de microfluidos adaptado olfativo para la proyección de imagen de la actividad Neuronal en respuesta a las feromonas en las neuronas de cabeza de macho de C. Elegans

Mate-guardar comportamiento desempeña un papel importante en la reproducción de intermareales copépodos del género Tigriopus. Sin embargo, no se han descrito bien los métodos para el estudio de este comportamiento. Aquí describimos los métodos para: cultura 1) individual de animales de Tigriopus Virgen y 2) análisis cuantitativo de su comportamiento de protección mate.

Cultivo individual de Tigriopus copépodos y análisis cuantitativo de su comportamiento de protección Mate

En este protocolo, se describen métodos para la realización de cruzamientos de consanguinidad y para evaluar el éxito de esas cruces, de la hormiga Vollenhovia emeryi. Estos protocolos son importantes para experimentos para entender la base genética de los sistemas de determinación de sexo en himenópteros.

Inducción y evaluación de cruces de consanguinidad con la hormiga, Vollenhovia Emeryi

El esperma debe navegar con éxito a través del oviducto para fertilizar un ovocito. Aquí describimos un ensayo para medir la migración de espermatozoides dentro del útero hermafrodita de C. elegans . Este ensayo puede proporcionar datos cuantitativos sobre la distribución de espermatozoides dentro del útero después del apareamiento, así como sobre la velocidad, velocidades direccionales y frecuencia de reversión.

Medición de la orientación y la motilidad del esperma dentro del tracto reproductivo de la Caenorhabditis elegans hermafrodita

Aquí, presentamos un método detallado de remojo de interferencia de ARN en Bursaphelenchus xylophilus para facilitar el estudio de las funciones de los genes.

Aplicación de la interferencia de ARN en el nematodo de la madera de pino, Bursaphelenchus xylophilus

Este protocolo establece métodos para extraer y cuantificar las respuestas a la feromona sexual volátil en C. elegans, proporcionando herramientas para estudiar la comunicación química y la trayectoria de navegación.

Extracción de feromonas sexuales volátiles y ensayo de quimioatracción en Caenorhabditis elegans

El protocolo describe la infección in vivo e in vitro por el nematodo de la madera de pino Pinus pinaster y su análisis de volatiloma mediante cromatografía de gases (GC) y GC acoplada a espectrometría de masas (GC-MS).

Infección de pinos in vivo e in vitro con el nematodo del pino Bursaphelenchus xylophilus y aislamiento de volátiles inducidos

El presente protocolo describe un método para inducir la dispersión de juveniles de tercera etapa (juveniles pre-dauer, JIII.) de Bursaphelenchus xylophilus en criptobiosis a través de la regulación osmótica de los iones de cloruro de potasio (KCl). Este método puede proporcionar apoyo técnico para la investigación sobre los mecanismos de resistencia al estrés de B. xylophilus.

Inducción de la entrada de juveniles de dispersión de tercera etapa de Bursaphelenchus xylophilus en criptobiosis a través de la regulación osmótica

Aprende a observar y cuantificar la conducta de apareamiento en Bursaphelenchus xylophilus mediante la obtención de adultos vírgenes. Este protocolo facilita el estudio de la biología reproductiva de nematodos.

La observación y cuantificación de la conducta de apareamiento en el nematodo del pino, Bursaphelenchus xylophilus

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