Name: Estudio del retículo endoplasmático y las mitocondrias por Interacciones In Situ Proximidad ligadura de ensayo en células fijadas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: Aprende a visualizar y cuantificar interacciones entre el retículo endoplasmático y mitocondrias en células fijadas mediante ensayo de ligadura de proximidad in situ. Este método de alta sensibilidad permite estudiar complejos proteicos en la interfaz de membranas asociadas a mitocondrias.

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Agradecemos a todas las personas en nuestro laboratorio que han contribuido a optimizar y validar el protocolo. Este trabajo fue apoyado por el INSERM y la Agencia Nacional de Investigación (ANR-09-jcjc-0116 Y ANR-11-BSV1-033-02). ET fue apoyado durante su doctorado por una beca de investigación del ministerio francés de educación superior y la investigación.

1. Preparación de soluciones <ol><li> Preparar 10% de formaldehído en PBS (baja en sal) diluyendo 5,5 ml de formaldehído al 37% en 14,5 ml de PBS. Preparar 1 M de glicina, pH 8,0, mediante la disolución de 3,8 g de glicina en 50 ml de PBS; diluir esta solución para obtener glicina 100 mM en 1 x PBS. </li><li> Preparar 0,1% de Triton-X100 en 1x PBS. Preparar 20x Saline citrato de sodio (SSC) utilizando cloruro de 3,0 M de sodio y citrato trisódico 0,30 M preparado en un tampón de agua desionizada con pH 7,0 a 25 ° C. Diluir esta memoria intermedia a 1x y 0,01x usando agua desionizada. </li></ol> 2. La fijación de las células NOTA: Se utilizó la línea celular de hepatocarcinoma HuH7 en este estudio, pero este método es aplicable a otros cultivos de células adherentes. <ol><li> células de la placa Huh7 (cultivadas en DMEM 1 g / l de glucosa, suplementado con suero de ternera fetal al 10% y 0,01% stock de penicilina-estreptomicina) a 150.000 células por placa de fondo de vidrio sin recubrimiento de 35 mm. Cuando se trabaja en la célula primariaculturas, utilizan platos revestidos con colágeno. </li><li> Al día siguiente, retire el medio de cultivo. Lavar las células con 1 ml de PBS y aspirar. Fijar las células mediante la adición de 1 ml de formaldehído al 10% y se incuba durante 10 min a temperatura ambiente (RT) con agitación. </li><li> Detener la reacción con 1 ml de 1 M de glicina y mezclar por rotación. Eliminar la solución de reacción de parada y se lavan las células mediante la adición de 1 ml de 1x PBS; agitar por rotación y aspirado. Añadir 1 ml de glicina 100 mM a las células e incubar durante 15 min a TA bajo agitación, y después aspirado. NOTA: El protocolo se puede parar aquí y los siguientes pasos se puede posponer a otro día. En ese caso, añadir 1 ml de glicina 100 mM y mantener a 4 ° C, si es necesario. </li></ol> 3. La permeabilización de las células <ol><li> Añadir 1 ml de 0,1% de Triton-X100 en 1x PBS, incubar durante 15 min a TA bajo agitación, y después aspirado. Este tiempo de incubación puede aumentarse hasta 15 - 20 min cuando se trabaja en Cultur célula primariaES (por ejemplo, hepatocitos primarios ratones). Lavar las células mediante la adición de 1 ml de 1x PBS; aspirar. </li></ol> 4. Bloqueo <ol><li> Añadir 40 l de solución a cada muestra (proporcionado por el kit) de bloqueo; este volumen se puede aumentar con el fin de cubrir la muestra. Incubar los platos de 30 min a 37 ° C en una cámara de humedad. </li><li> Toque en la solución de bloqueo fuera de los platos. Trate de obtener volúmenes residuales iguales para cada diapositiva, ya que esto afectará la reproducibilidad. No permita que las muestras se sequen! </li></ol> 5. Anticuerpos primarios <ol><li> Diluir los anticuerpos primarios en 1x PBS y añadir la solución a las cápsulas (anticuerpo de ratón VDAC1: 1/100, anticuerpo de conejo IP3R1: 1/500). Alternativamente, los anticuerpos o GRP75 CypD (ambos anticuerpos de ratón utilizadas en 1/500) se pueden utilizar en lugar de VDAC1. </li><li> Incubar toda la noche en una cámara de humedad a 4 ° C. Lavar los portaobjetos dos veces con solución salina tamponada con Tris con 0,01% de Tween (TBS-T). </li></ol><pclass = &quot;jove_title&quot;&gt; 6. Ligadura de proximidad ensayo Sondas <ol><li> sondas de ensayo de ligadura de proximidad son proporcionados por el kit. Elija sondas de acuerdo con las especies de anticuerpos primarios. </li><li> Preparar las dos sondas de ensayo de proximidad ligadura de 1: 5 en diluyente de anticuerpo. Dejar que la mezcla repose durante 20 minutos a temperatura ambiente. Añadir la solución de sonda de ensayo de ligamiento por proximidad diluida. Incubar los platos en una cámara de humedad pre-calienta durante 1 hora a 37 ° C. Lavar los platos dos veces con TBS-T. </li></ol> 7. La ligación <ol><li> Utilizar el reactivo de detección in situ kit rojo Texas. </li><li> Diluir la ligadura de la 5x (proporcionado por el kit) 1: 5 en agua de alta pureza y mezclar bien. Diluir la ligasa en la solución 1x ligadura (proporcionado por el kit) 01:40 y vórtice. Esperar para agregar la ligasa hasta inmediatamente antes de la adición a las muestras. </li><li> Añadir esta solución a cada muestra (40 l para los platos con fondo de vidrio de 35 mm) e incubar los portaobjetos en una Cham humedad precalentadoBER durante 30 min a 37 ° C. Lavar los portaobjetos dos veces con TBS-T. </li></ol> 8. amplificación NOTA: Sea cuidadoso reactivos sensibles, luz. <ol><li> Diluir el Stock de amplificación de 5x (proporcionado por el kit) 1: 5 en agua de alta pureza. Retire la polimerasa del congelador usando el bloque de congelación (-20 ° C). Diluir la polimerasa (proporcionado por el kit) 1:80 en la solución de amplificación 1x y vórtice. Añadir la polimerasa inmediatamente antes de usar la mezcla. </li><li> Añadir esta solución a cada muestra (40 l para los platos con fondo de vidrio de 35 mm). Incubar los portaobjetos en una cámara húmeda precalentada durante 100 minutos a 37 ° C. Toque en la solución de amplificación de la polimerasa-off de las diapositivas. </li></ol> 9. Lavado final <ol><li> Se lavan los portas en tampón de lavado 1x SSC durante 2 minutos. Se lavan los portas en tampón de lavado SSC 0,01x durante 2 min. Deje secar los platos a temperatura ambiente en la oscuridad. </li></ol> 10. Preparación de la Imagen <ol&gt; <li> Montar las diapositivas utilizando un volumen mínimo de medio de montaje que contiene DAPI (acuoso y se solidifique), asegurándose de que no hay burbujas de aire atrapadas debajo de la hoja de la cubierta. El esmalte de uñas se puede utilizar para sellar los bordes. Esperar unos 15 minutos antes de analizar el uso de un microscopio confocal de fluorescencia o (excitación: 594 nm, emisión: 624 nm, la ampliación: 63X). </li><li> Después de formación de imágenes, guardar las diapositivas a -20 ° C en la oscuridad. </li></ol>

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<li>de Brito, O. M., Scorrano, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitofusin+2+tethers+endoplasmic+reticulum+to+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mitofusin 2 tethers endoplasmic reticulum to mitochondria.</a> Nature. 456, 605-610 (2008).</li>
<li>Soderberg, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+observation+of+individual+endogenous+protein+complexes+in+situ+by+proximity+ligation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+methods%22%5BJournal%5D)">Direct observation of individual endogenous protein complexes in situ by proximity ligation.</a> Nature methods. 3, 995-1000 (2006).</li>
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</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

En conjunto, nuestros estudios indican que el ensayo de ligadura de proximidad in situ es realmente una estrategia relevante para seguir y cuantificar las interacciones endógenas ER-mitocondrias en células fijas, sin la necesidad de utilizar fluoróforos específicos de orgánulos o proteínas fluorescentes. El uso específico de anticuerpos VDAC1 / IP3R1 se ha adaptado para estudiar las interacciones ER-mitocondrias en células HuH7. Sin embargo, se pueden usar isoformas alternativas de VDAC e IP3R, según el tipo de ...

Las mitocondrias y del retículo endoplásmico (ER) no son orgánulos independientes en la célula, pero que interactúan estructural y funcionalmente en los sitios de contacto definidas como las membranas del retículo endoplásmico mitocondrias-asociado (MAM). De hecho, MAM corresponden a regiones en las que las membranas de la ER y mitocondrias están estrechamente yuxtapuestas, permitiendo interacciones entre las proteínas de ambos lados. No obstante, las membranas de estos orgánulos no se fusionan dentro de estas regiones, por lo que mantienen sus entidades separadas. Los MAM juegan un papel crucial en calcio (Ca2 +) y la transferencia de fosfolípidos de ER a las mitocondrias, lo que afecta el metabolismo energético y la supervivencia celular 1-3. La asociación entre el RE y las mitocondrias se visualizó por primera vez en la década de 1970 con el microscopio electrónico. Desde entonces, la microscopía electrónica de transmisión de 4,5, 6,7 o tomografía electrónica inmuno-localización de ER y mitocondrias específica fluoróforos / proteínas fluorescentes 8 fueron utilizados clásicamente para estudiar las interacciones ER-mitocondrias. Otra herramienta útil para el análisis de MAM se basa en el uso de fraccionamiento subcelular. Se permite el aislamiento de fracciones de MAM por ultracentrifugación diferencial acoplado a un gradiente de Percoll 9. Sin embargo, el producto final contiene fracciones enriquecidas MAM, en lugar de fracciones puras. En conjunto, estas estrategias no son particularmente sensibles y / o cuantitativa, y no son fácilmente susceptibles de gran proyección. Como alternativa, utilizando enfoques genéticos fluorescentes engarces entre orgánulos inducible con las drogas han surgido, pero no permitir que el análisis de las interacciones de los orgánulos en los niveles de expresión endógena de proteínas 10. Basado en el descubrimiento de Szabadkai del complejo IP3R / GRP75 / VDAC en el MAM 11, hemos desarrollado un método cuantitativo para analizar las interacciones ER-mitocondrias. Se utilizó la proximidad situ en ligatien ensayo para detectar y cuantificar las interacciones entre VDAC1 y IP3R1, dos proteínas orgánulo de superficie implicadas en la -channeling complejo Ca2 + en la interfaz de MAM en células fijadas 12. En pocas palabras, que probaron VDAC1 en la membrana externa mitocondrial (ratón anti-VDAC1 anticuerpo primario) y IP3R1 en la membrana ER (conejo anti-IP3R1 anticuerpo primario) (Figura 1, panel a). Entonces, de acuerdo con el ensayo, hemos añadido tanto anti-ratón y anti-IgG de conejo (sondas de ensayo de ratón y conejo proximidad ligadura), que se conjuga con extensiones de oligonucleótidos complementarios. Si las dos proteínas específicas, son a una distancia por debajo de 40 nm, los oligonucleótidos pueden hibridar con los oligos de conectores añadidos posteriormente para permitir la formación de una plantilla circular de ADN (Figura 1, panel B). Esta molécula de ADN circular se liga y se amplifica, la creación de un producto de ADN de cadena sencilla unido covalentemente a una de las sondas de proximidad (Figura 1, panel C) </strong&gt;. Dado que la distancia entre el ER y las mitocondrias en la interfaz de MAM se extiende de 10 nm a 25 nm 6, la ligadura de proximidad y la amplificación se pueden realizar, lo que lleva a la detección posterior debido a la hibridación de Tejas oligonucleótidos rojo marcado sondas (Figura 1, panel D ). Cada punto representa fluorescente interacciones entre VDAC1 / IP3R1, lo que permite la cuantificación de las interacciones in situ ER-mitocondrias en las células individuales. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54899/54899fig1.jpg" /> Figura 1: ilustración esquemática de la detección de las interacciones retículo endoplásmico-mitocondrias por In Situ proximidad ligadura de ensayo. a) un anticuerpo primario de ratón dirigido contra VDAC1 y un anticuerpo primario de conejo dirigido contra IP3R1 puede unirse a sus epítopos en la proximidad a la interfaz de MAM, b) la adición de un par de sondas de ligación de proximidaddirigida contra ratón y IgG de conejo. Estas sondas se han unido las hebras de ADN que pueden formar plantillas para la ligación de oligonucleótidos de conector. c) La cadena de ADN circular formada después de la ligadura se puede amplificar y d) se visualizaron por microscopía fluorescente como un punto mediante el uso de oligonucleótidos de Texas rojo marcado. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54899/54899fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> Similares en los experimentos de ensayo situ proximidad de ligación se puede realizar con el par GRP75 / IP3R1 de anticuerpos, así como la ciclofilina D (CypD) / anticuerpos IP3R1, teniendo en cuenta que CypD ha demostrado interactuar con el complejo de IP3R / GRP75 / VDAC en la interfaz MAM 12-14.

<table><tbody><tr><td>Formaldehído</td><td>Sigma</td><td>F-8775</td><td></td></tr><tr><td>Glicina</td><td>Sigma</td><td>G-8898</td><td></td></tr><tr><td>Triton</td><td>Sigma</td><td>T8532</td><td></td></tr><tr><td>35 mm Placas de cultivo con fondo de vidrio</td><td>MatTeK corporation</td><td>P35G-0-14-C</td><td></td></tr><tr><td>Solución de bloqueo</td><td>Sigma</td><td>DUO-92004 o DUO-92002</td><td>suministrada en las sondas PLA Duolink, anticuerpo Sigma</td></tr><tr><td>VDAC1</td><td>Abcam</td><td>ab14734</td><td></td></tr><tr><td>IP3R1-H80 anticuerpo</td><td>Santa Cruz</td><td>sc28614</td><td></td></tr><tr><td>CypD anticuerpo</td><td>Abcam</td><td>ab110324</td><td></td></tr><tr><td>Grp75 anticuerpo</td><td>Santa Cruz</td><td>sc13967</td><td></td></tr><tr><td>TBS 10x</td><td>euromedex</td><td>ET220</td><td>Diluir para obtener 1x</td></tr><tr><td>Tween 100x</td><td>euromedex</td><td>2001-B</td><td>diluido en TBS para obtener 0,01%</td></tr><tr><td>Sondas PLA Ratón MINUS</td><td>Sigma</td><td>DUO-92004</td><td>Duolink, Sigma</td></tr><tr><td>Sondas PLA Conejo PLUS</td><td>Sigma</td><td>DUO-92002</td><td>Duolink, Sigma</td></tr><tr><td>Reactivos de detección Duolink rojo</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Duolink,</td></tr><tr><td>Sigma Solución de ligadura</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Parte de los reactivos de detección Duolink rojo, Sigma</td></tr><tr><td>Ligasa</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Parte de los reactivos de detección Duolink rojo, Sigma</td></tr><tr><td>Solución de amplificación</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Parte de los reactivos de detección Duolink rojo, Sigma</td></tr><tr><td>Polimerasa</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Parte de los reactivos de detección Duolink rojo, Sigma</td></tr><tr><td>Duolink Medio de montaje</td><td>Sigma</td><td>DUO80102</td><td>Duolink, Sigma</td></tr><tr><td colspan="4">Softwares</td></tr><tr><td>BlobFinder</td><td></td><td></td><td>es un software de libre distribución que puede realizar cálculos en células a partir de imágenes de microscopía de fluorescencia. Este software se puede descargar de forma gratuita desde el Centro de Análisis de Imágenes de la Universidad de Uppsala, que ha desarrollado el software, y el trabajo ha sido apoyado por el proyecto ENLIGHT del 6PM de la UE y Olink Bioscience. http://www.cb.uu.se/~amin/BlobFinder/index_files/Page430.htm</td></tr><tr><td>software</td><td></td><td></td> ImageJ <td>se puede descargar gratuitamente desde: http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html</td></tr></tbody></table>

estudio del retículo endoplasmático y las mitocondrias por interacciones<em&gt; in situ</em&gt; proximidad ligadura de ensayo en células fijadas

Study of Endoplasmic Reticulum and Mitochondria Interactions by In Situ Proximity Ligation Assay in Fixed Cells

Las interacciones estructurales entre las membranas reticulares endoplásmicas (RE) y mitocondriales, en dominios conocidos como membranas asociadas a mitocondrias (MAM), son centros cruciales para la señalización celular y el destino celular. En particular, estos sitios de contacto entre orgánulos permiten la transferencia de calcio del RE a las mitocondrias a través del complejo de canalización de calcio del canal aniónico dependiente de voltaje (VDAC)/proteína 75 regulada por glucosa (GRP75)/inositol 1,4,5-receptor de trifosfato (IP3R). Si bien este compartimento subcelular está bajo una intensa investigación tanto en condiciones fisiológicas como patológicas, no existe un método simple y sensible para cuantificar la cantidad endógena de contacto ER-mitocondrias en las células. Del mismo modo, los MAM son estructuras altamente dinámicas, y no existe un enfoque adecuado para seguir las modificaciones de las interacciones ER-mitocondrias sin la sobreexpresión de proteínas. Aquí, reportamos un protocolo optimizado basado en el uso de un ensayo de ligadura de proximidad in situ para visualizar y cuantificar las interacciones endógenas ER-mitocondrias en células fijas mediante el uso de la proximidad entre las proteínas de la membrana mitocondrial externa (VDAC1) y de la membrana RE (IP3R1) en la interfaz MAM. También se pueden realizar experimentos similares de ligadura de proximidad in situ con los pares de anticuerpos GRP75/IP3R1 y ciclofilina D/IP3R1. Este ensayo ofrece varias ventajas sobre otros procedimientos de imagen, ya que es altamente específico, sensible y adecuado para pruebas de múltiples condiciones. Por lo tanto, el uso de este ensayo de ligadura de proximidad in situ debería ser útil para comprender mejor las regulaciones fisiológicas de las interacciones entre el RE y las mitocondrias, así como su papel en contextos patológicos.

Sobre la base de nuestra experiencia en el uso de este protocolo, con seguridad podemos recomendar este método para la visualización y cuantificación de las interacciones ER-mitocondrias en las células fijadas. Imágenes representativas de en las interacciones in situ de ligación proximidad de ensayo-visualizado ER-mitocondrias en la línea celular de hepatocarcinoma HuH7, utilizando varios pares de anticuerpos, se muestran. Como se muestra en la Figura 2...

A continuación, describimos un procedimiento para visualizar y cuantificar con alta sensibilidad las interacciones endógenas entre el retículo endoplasmático y las mitocondrias en las células fijadas. El protocolo cuenta con una optimizada en el ensayo de ligamiento por proximidad situ la orientación del inositol receptor / proteína 1,4,5-trifosfato regulada por glucosa 75 / D compleja canal de aniones / ciclofilina dependiente de la tensión en la interfase membrana de la mitocondria asociada.

Estudio del retículo endoplasmático y las mitocondrias por Interacciones<em&gt; In Situ</em&gt; Proximidad ligadura de ensayo en células fijadas

Structural interactions between the endoplasmic reticular (ER) and mitochondrial membranes, in domains known as mitochondria-associated membranes (MAM), ...

El objetivo general de este experimento es visualizar y cuantificar las interacciones entre el retículo endoplásmico y las mitocondrias utilizando un ensayo de ligación por proximidad in situ en células fijadas. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo biomédico para analizar mejor las interacciones entre el retículo endoplásmico y las mitocondrias en células fijadas, mediante una técnica sencilla de inmunofluorescencia. Esperamos que esto sugiera nuevas estrategias de tratamiento. La principal ventaja de esta técnica es que permite visualizar y cuantificar las interacciones entre el retículo endoplásmico y las mitocondrias en células fijadas, y puede aplicarse también a biopsias de tejido embebido en parafina de pacientes. Utilizando el ensayo de ligación por proximidad in situ mostrado en este video, un anticuerpo primario de ratón dirigido contra VDAC1 en la membrana externa mitocondrial y un anticuerpo primario de conejo dirigido contra IP3R1 en la membrana del retículo endoplásmico se unen a sus epítopos cercanos en la interfaz de la membrana asociada a mitocondrias. Se añaden sondas de ligación por proximidad que tienen colas de ADN unidas y que recono

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Aquí se describe un método para visualizar retículo endoplasmático asociados mRNAs en células de cultivo de tejidos de mamíferos. Esta técnica implica la permeabilización selectiva de la membrana plasmática con digitonina para eliminar el contenido citoplásmico seguido por...

La visualización de los ARNm retículo endoplásmico localizados en células de mamíferos

Se describen los métodos de formación de imágenes que utilizamos para investigar la distribución y la movilidad de las proteínas fluorescentes transfectadas residentes en el retículo endoplásmico (RE) por medio de la imagen confocal de células vivas. También analizamos ultraestructuralmente el efecto de su expresión en la arquitectura de este compartimento subcelular.

Visualización del retículo endoplasmático subdominios en células cultivadas

Un método de microscopía electrónica correlativos (CLEM) se aplica a estructuras intracelulares inducida por virus de imagen mediante microscopia electrónica (EM) en las células que son previamente seleccionadas por microscopía de luz (LM). EM y LM se combinan como un enfoque de imagen híbrida para lograr una visión integrada de las interacciones virus-huésped.

Correlativos luz microscopia electrónica (CLEM) para el seguimiento y proyección de imagen proteína Viral asociada a estructuras en las células inmovilizadas de Cryo

Presentamos un protocolo para estudiar la distribución de mitocondrias y retículo endoplasmático en células enteras después de la modificación genética utilizando microscopía electrónica correlativa de luz y volumen incluyendo ascorbato peroxidasa 2 y tinción de peroxidasa de rábano picante, seccionamiento en serie de células con y sin el gen objetivo en la misma sección, y la toma de imágenes en serie a través de microscopía electrónica.

Mitocondrias y endoplasmática retícula imagen por microscopía electrónica de luz y volumen correlativa

Este protocolo describe el método crioAPEX, en el que una proteína de membrana etiquetada con APEX2 puede ser localizada por microscopía electrónica de transmisión dentro de la ultraestructura celular óptimamente conservada.

El método CryoAPEX para el análisis de microscopía electrónica de la localización de proteínas de membrana dentro de células ultraestructuralmente conservadas

Un protocolo simple y completo para adquirir detalles tridimensionales de los sitios de contacto de membrana entre orgánulos en hepatocitos del hígado o células en otros tejidos.

Caracterización tridimensional de sitios de contacto interorgánicos en hepatocitos mediante microscopía electrónica de sección serie

La necesidad de nuevos enfoques para estudiar los sitios de contacto de membrana (MCS) ha crecido debido al creciente interés en el estudio de estas estructuras celulares y sus componentes. Aquí, presentamos un protocolo que integra tecnologías de microscopía previamente disponibles para identificar y cuantificar complejos de proteínas intra-orgánulos e inter-orgánulos que residen en los SQM.

Visualización y cuantificación de las interacciones endógenas de proteínas intraorgánulas en los sitios de contacto ER-mitocondrias mediante ensayos de ligadura de proximidad

Aquí, presentamos un protocolo para la microscopía correlativa de luz-electrónica optimizada en sección basada en el marcaje endógeno y fluorescente como herramienta para investigar la localización de proteínas raras en relación con la ultraestructura celular. El poder de este enfoque se demuestra mediante la localización ultraestructural de LC3 endógena en células hambrientas sin tratamiento con bafilomycina.

Localización ultraestructural de LC3 endógena mediante microscopía óptica correlativa en sección

Hemos establecido un ensayo de reensamblaje de luciferasa dividida para monitorear los contactos entre el retículo endoplásmico y las mitocondrias en células vivas. Con este ensayo, describimos un protocolo para medir cuantitativamente el nivel de estos acoplamientos interorgánulos en HEK293T células, bajo la condición de tratamiento químico.

Ensayo de reensamblaje de luciferasa dividida para medir los contactos entre el retículo endoplásmico y las mitocondrias en células vivas

Este protocolo describe un mecanismo para utilizar la microscopía óptica y electrónica correlativa para visualizar la interacción de mitocondrias y lisosomas marcados con mEosEM y APEX2, respectivamente.

Microscopía correlativa de luz y electrónica de doble color para la visualización de interacciones entre mitocondrias y lisosomas

Aprende a visualizar y cuantificar interacciones entre el retículo endoplasmático y mitocondrias en células fijadas mediante ensayo de ligadura de proximidad in situ. Este método de alta sensibilidad permite estudiar complejos proteicos en la interfaz de membranas asociadas a mitocondrias.

Estudio del retículo endoplasmático y las mitocondrias por Interacciones In Situ Proximidad ligadura de ensayo en células fijadas (Video) | JoVE Journal

Estudio del retículo endoplasmático y las mitocondrias por Interacciones

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