Name: Generación de células dendríticas derivadas de monocitos humanos de sangre entera (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Aprende a aislar monocitos de sangre periférica mediante separación magnética con microesferas CD14 y diferenciarlos en células dendríticas inmaduras. Este método de alta pureza impulsa estudios inmunológicos avanzados.

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Nos gustaría agradecer a nuestra técnica Karolin Thurnes, División de Higiene y Microbiología Médica, y a la Dra. Annelies Mühlbacher y al Dr. Paul Hörtnagl, del Instituto Central de Transfusión Sanguínea y Departamento de Inmunología, por su valiosa ayuda y apoyo con respecto a este manuscrito. Agradecemos al Fondo Austriaco para la Ciencia por apoyar este trabajo (P24598 a DW, P25389 a WP).

Ética declaración: Escrito se obtuvo el consentimiento de todos los donantes de sangre que participaron por el Instituto Central de Transfusión de Sangre y Departamento inmunológica, Innsbruck, Austria. El uso de las muestras sobrantes anónimos para fines científicos fue aprobado por el Comité de Ética de la Universidad de Medicina de Innsbruck. 1. enriquecimiento de células mononucleares de sangre periférica (PBMCs) <ol><li> La concentración de las PBMC por centrifugación. <ol><li> Abra la bolsa de sangre y la sangre dividida en tubos de centrífuga de 50 ml estériles de acuerdo con la cantidad de sangre recibida. </li><li> Si es necesario, ajustar el volumen a 50 ml por cada tubo con solución salina tamponada con fosfato estéril de Dulbecco (D-PBS). </li><li> Colocar los tubos en una centrífuga y centrifugar ellos a 400 xg durante 15 min a temperatura ambiente (RT) sin freno. </li><li> Trasvasar la capa superior que contiene el plasma y las plaquetas con una pipeta serológica de 10 ml estéril, dejando el boundary capa inalteradas. NOTA: Si el plasma autólogo en lugar de FCS se utiliza para complementar el medio de cultivo, el plasma debe ser recogida y inactivado por calor, en este paso. </li><li> Recoger las células mononucleares (capas) de contorno a partir de dos tubos de centrífuga de 50 ml y transferirlos en un tubo estéril de 50 ml utilizando una pipeta serológica de 10 ml estéril. </li><li> Ajuste el volumen a 50 ml para cada tubo estéril utilizando D-PBS. </li><li> Colocar los tubos en una centrífuga y centrifugar ellos a 400 xg durante 15 min a TA sin freno. </li><li> Trasvasar la capa superior que contiene el plasma y las plaquetas con una pipeta serológica de 10 ml estéril, dejando la capa límite no perturbado. </li><li> Recoger las células mononucleares (capas) de contorno de los tubos de 50 ml de centrífuga y transferirlos en dos tubos de 50 ml de recolección estériles usando una pipeta serológica de 10 ml estéril. </li><li> Ajuste el volumen a 50 ml por cada tubo con D-PBS estéril. </li></ol></li><li> Separaciónde PBMCs por centrifugación en gradiente de densidad (Figura 1). <ol><li> Preparar cuatro 50 ml tubos y pipetas de 15 ml de medio de gradiente de densidad en cada tubo. </li><li> Tomar 25 ml de agrupado células / sangre desde el tubo de recogida (paso 1.1.10) y superponer cuidadosamente el medio de gradiente de densidad. </li><li> Colocar los tubos en una centrífuga y centrifugar a 700 xg ellos durante 30 min a RT y sin freno. </li></ol></li><li> Recolección y purificación de CMSP. <ol><li> Trasvasar la capa superior que contiene el plasma y las plaquetas con una pipeta serológica de 10 ml estéril, dejando la capa de PBMC sin molestias. </li><li> Recoger la interfase PBMC de todos los tubos y poner en común las células en dos tubos de 50 ml estériles usando una pipeta serológica de 25 ml estéril. </li><li> Ajuste el volumen a 50 ml por cada tubo con D-PBS estéril. Colocar los tubos en una centrífuga y centrifugar ellos a 400 xg durante 15 min a 4 ° C con el freno. </li><li> Aspirar el sobrenadante y volver a suspender lacélulas en D-PBS estéril. Reunir las células de ambos tubos y ajustar el volumen a 50 ml con estéril D-PBS. </li><li> Colocar los tubos en la centrífuga y centrifugar ellos a 400 xg durante 10 min a 4 ° C con freno. </li><li> Aspirar el sobrenadante y resuspender las células en PBS estéril D-. Ajuste el volumen a 50 ml con PBS estéril y D-pipeta de 50 l a un tubo de 1,5 ml que contenía 450 l de D-PBS. </li><li> Vortex el tubo de 1,5 ml vigorosamente y recuento de las células en una cámara de Neubauer o cualquier otro instrumento de recuento celular. </li><li> Colocar los tubos de 50 ml en la centrífuga y centrifugar ellos a 400 xg durante 10 min a 4 ° C con freno. </li></ol></li></ol> 2. Aislamiento de monocitos por partículas magnéticas CD14 anti-humanos <ol><li> Etiquetado de las PBMC con partículas magnéticas. <ol><li> Ajustar la concentración de PBMC a 8 x 10 7 células / ml usando tampón de aislamiento. </li><li> Vortex las partículas magnéticas anti-CD14 humano thoroughlY y añadir 50 l de partículas por cada 1 x 10 7 PBMCs. </li><li> Mezclar la suspensión de células de partículas a fondo y se incuba a TA durante 30 min. </li></ol></li><li> La separación de las fracciones positivas y negativas. <ol><li> Ajuste el volumen hasta 12 ml usando tampón de aislamiento. </li><li> Preparar seis tubos de fondo redondo estériles y pipeta de 2 ml de la suspensión celular de partículas en cada tubo. </li><li> Inmediatamente colocar los tubos en el imán. Incubar durante 10 min a TA. </li><li> Mantener los tubos en el imán y cuidadosamente extrayendo el sobrenadante. El sobrenadante contiene la fracción negativa. </li><li> Retire el tubo del imán y añadir 2 ml de tampón de aislamiento. </li><li> Suavemente volver a suspender las células pipeteando arriba y abajo. </li><li> Colocar los tubos de nuevo en el imán. Incubar durante 5 min a TA. </li><li> Mantener los tubos en el imán y cuidadosamente extrayendo el sobrenadante. El sobrenadante contiene la fracción negativa. </li><li>Retire los tubos del imán y añadir 2 ml de tampón de aislamiento a cada tubo. Suavemente volver a suspender las células pipeteando arriba y abajo. </li><li> La transferencia de la fracción positiva a un tubo estéril de 50 ml y ajustar el volumen a 50 ml usando estéril D-PBS. </li></ol></li></ol> 3. La estimulación de monocitos aislados con IL-4 y GM-CSF <ol><li> Se coloca el tubo en la centrífuga y girar a 400 xg durante 10 min a 4 ° C con freno. </li><li> Aspirar el sobrenadante y resuspender las células en 50 ml de D-PBS. </li><li> Pipeta 50 l en un tubo de 1,5 ml que contenía 450 l de D-PBS. Vortex el tubo de 1,5 ml vigorosamente y recuento de las células en una cámara de Neubauer u otro instrumento de recuento celular. </li><li> Se coloca el tubo 50 ml en la centrífuga y girar a 400 xg durante 10 min a 4 ° C con freno. NOTA: Si la fracción negativa, que contiene linfocitos de sangre periférica (PBL), también es necesario, lleve a cabo el lavado y el recuento de pasos similares a tmanguera de la fracción positiva (pasos 3.1-3.5). </li><li> Ajustar la concentración celular a 1 x 10 6 / ml con medio de cultivo pre-calentado (RPMI 1640 suplementado con solución de L-glutamina FBS inactivado por calor y 1% 10%) y la pipeta 3 ml / pocillo en placas de 6 pocillos. NOTA: Si se usa plasma autólogo inactivado por calor, sustituir el FCS al 10% con plasma autólogo 1-5%, de acuerdo con el montaje experimental. </li><li> Estimular los monocitos con recombinante humano IL-4 (250 U / ml) y GM-CSF humano recombinante (1000 U / ml) pipeteando las citoquinas directamente en el medio de cultivo. Se incuba a 37 ° C y 5% de CO2. </li><li> Re-estimular las células con IL-4 (250 U / ml) y GM-CSF (1000 U / ml) después de 48 hr pipeteando las citoquinas directamente en el medio de cultivo. NOTA: Si hay algún signo de la acidificación mostrados por el indicador de pH en el medio, reemplace la mitad del medio con medio de cultivo pre-calentado. </li><li> Cosecha de las células dendríticas inmaduras en el día 5 deaguas abajo experimentos pipeteando las células cultivadas fuera de la placa de 6 pocillos y en un tubo de centrífuga de 50 ml después de pipetear el medio de cultivo arriba y abajo un par de veces. </li><li> Contar las células y manchar una muestra de monocitos aislados con anticuerpos anti-humanos contra CD11b, CD11c, y DC-SIGN / CD209, junto con un colorante de viabilidad celular. Para evitar la unión inespecífica de los anticuerpos durante la tinción de la superficie, el uso de receptor Fc bloquea reactivos o tampones albúmina de suero bovino (BSA) es muy recomendable. </li><li> Analizar la muestra usando el tinte de viabilidad celular, de acuerdo con el protocolo del fabricante, mediante la realización de la citometría de flujo para evaluar la pureza y la viabilidad de las SIRD generados. </li></ol>

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<li>Kapsenberg, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic-cell+control+of+pathogen-driven+T-cell+polarization%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Dendritic-cell control of pathogen-driven T-cell polarization.</a> Nat Rev Immunol. 3, 984-993 (2003).</li>
<li>Mills, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TLR-dependent+T+cell+activation+in+autoimmunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">TLR-dependent T cell activation in autoimmunity.</a> Nat Rev Immunol. 11, 807-822 (2011).</li>
<li>Banki, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complement+as+an+endogenous+adjuvant+for+dendritic+cell-mediated+induction+of+retrovirus-specific+CTLs%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Complement as an endogenous adjuvant for dendritic cell-mediated induction of retrovirus-specific CTLs.</a> PLoS Pathog. 6, e1000891(2010).</li>
<li>Posch, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibodies+attenuate+the+capacity+of+dendritic+cells+to+stimulate+HIV-specific+cytotoxic+T+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Allergy+Clin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Antibodies attenuate the capacity of dendritic cells to stimulate HIV-specific cytotoxic T lymphocytes.</a> J Allergy Clin Immunol. 130, e1362 1368-1374 (2012).</li>
<li>Posch, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complement-Opsonized+HIV-1+Overcomes+Restriction+in+Dendritic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Complement-Opsonized HIV-1 Overcomes Restriction in Dendritic Cells.</a> PLoS Pathog. 11, e1005005(2015).</li>
<li>Wilflingseder, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immediate+T-Helper+17+Polarization+Upon+Triggering+CD11b%2Fc+on+HIV-Exposed+Dendritic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Immediate T-Helper 17 Polarization Upon Triggering CD11b/c on HIV-Exposed Dendritic Cells.</a> J Infect Dis. 212, 44-56 (2015).</li>
<li>Grassi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monocyte-derived+dendritic+cells+have+a+phenotype+comparable+to+that+of+dermal+dendritic+cells+and+display+ultrastructural+granules+distinct+from+Birbeck+granules%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Monocyte-derived dendritic cells have a phenotype comparable to that of dermal dendritic cells and display ultrastructural granules distinct from Birbeck granules.</a> J Leukoc Biol. 64, 484-493 (1998).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este protocolo describe la generación de células dendríticas derivadas de monocitos (MDDCs) a través del aislamiento de los monocitos humanos de sangre anticoagulada utilizando un ensayo basado en nanopartícula magnética. En este protocolo, las etapas de centrifugación se llevan a cabo aguas arriba del procedimiento de aislamiento de células, lo que conduce a un enriquecimiento de la fracción de PBMC. Aunque las células se pierden durante la centrifugación, para superponer el contenido de una bolsa de sangre entera en u...

Las células dendríticas (DC) son las más importantes células presentadoras de antígeno especializadas de nuestro sistema inmune. Inmaduros países en desarrollo (IDC) residen en la piel o en los tejidos de las mucosas y son, por tanto, una de las primeras células inmunes para interactuar con los patógenos invasores. DCs representan el puente entre el innato y el sistema inmune adaptativo 1, ya que pueden activar células T y B respuestas después de la detección de patógenos. Además, contribuyen a la respuesta inmune pro-inflamatorias, debido a la secreción de grandes cantidades de citoquinas, tales como IL-1β, IL-6, y IL-12. DCs también activar las células NK y atraer otras células inmunes en el sitio de la infección por quimiotaxis. DCs se puede dividir en células inmaduras dendríticas (IDC) y células dendríticas maduras (PMD) 2 en función de su morfología y función. Tras el reconocimiento de antígenos extraños por uno de los muchos receptores de reconocimiento de patrones (por ejemplo, los receptores tipo toll, de tipo Clectinas, o receptores del complemento) abundantemente expresado en la superficie celular, SIRD sufren cambios importantes y empiezan a madurar. Durante este proceso de maduración, los receptores de captura de antígeno están regulados hacia abajo, mientras que las moléculas esenciales para la presentación de antígenos son regulados hasta 3. DC maduras hasta de regular los principales complejos de histocompatibilidad I y II (MHC I y II), las moléculas co-estimuladoras como CD80 y CD86, que son esenciales para la presentación del antígeno y la activación de los linfocitos T. Además, se induce la expresión de receptores de quimioquinas CCR7 en la superficie celular, que permite la migración de los DC de los tejidos periféricos a los ganglios linfáticos. La migración se facilita por el &quot;balanceo&quot; de las DC a lo largo de un ligando de quimiocina 19 (CCL19 / MIP-3b) y el gradiente de ligando de quimiocina 21 (CCL21 / SLC) a los ganglios linfáticos 4-6. Después de la migración, mDCs presentan el antígeno procesado a Naïve células CD4 + y CD8 +, por lo tanto ininego- una respuesta inmunitaria adaptativa contra el patógeno invasor 7. Esta interacción con las células T en los ganglios linfáticos también se asocia con la propagación del virus 8. Otros estudios in vitro revelaron que DCs captura y transferencia del VIH a las células T y que este resultado de la transmisión en una infección vigorosa 9-12 eficiente. Estos experimentos ponen de manifiesto que en vivo explota a los países en desarrollo VIH como un servicio de transporte desde la periferia hacia los ganglios linfáticos. Durante la presentación del antígeno, las DC secretan interleuquinas clave que dan forma a la diferenciación de las células efectoras T helper, y por lo tanto, el resultado de toda la respuesta inmune contra el microbio se determina en este mismo interacción. Además de tipo 1 (Th1) y de tipo 2 (Th2) T efectoras, otros subconjuntos de células T CD4 + helper (por ejemplo, tipo 17 (Th17) y tipo 22 (células Th22) T) se han descrito, y su inducción y la función se han investigado a fondo. DCs están implicados además enla generación de células T reguladoras (Tregs) 13,14. Estas células son inmunosupresores y pueden detener o regular a la baja la inducción o la proliferación de las células T efectoras y son por tanto cruciales para el desarrollo de la inmunidad y la tolerancia. DC convencionales Humanos (CDC) comprenden varios subconjuntos de células con un origen mieloide (es decir, células de Langerhans (CL) y dérmica y las CD intersticiales) o un origen linfoide (es decir, países en desarrollo plasmocitoide (PDC)). Para los experimentos in vitro o estrategias de vacunación DC, DCs derivadas de monocitos se utilizan habitualmente como modelo para DCs dérmicos. Estas células muestran similitudes en la fisiología, la morfología y la función a las células dendríticas mieloides convencionales. Se generan por la adición de interleucina 4 (IL-4) y de granulocitos y macrófagos, factor estimulante de colonias (GM-CSF) a monocitos aislados de donantes sanos 12,15-18. Las células dendríticas también pueden ser directamente aisladas de biopsias dérmicas o de las mucosas, o puede incluso be desarrolló a partir de células progenitoras hematopoyéticas aisladas de muestras de sangre de cordón umbilical obtenidas fuera del útero CD34 +. Aquí, demostramos cómo se aíslan y se estimularon a partir de sangre humana anti-coagulada después de células mononucleares de sangre periférica (PBMC) de enriquecimiento por centrifugación en gradiente de densidad de monocitos. Después de la incubación durante 5 días, los monocitos humanos bajo condiciones específicas se diferencian en SIRD y están listos para los procedimientos experimentales en un entorno no clínico.

<table><tbody><tr><td>Ratón APC Anti-Humano CD19 Clon HIB19 BD</td><td>Biosciences</td><td>555415</td><td></td></tr><tr><td>Ratón APC Anti-Humano CD83 Clon HB15e</td><td>BD Biosciences</td><td>551073</td><td></td></tr><tr><td>BD Imag Anti-Humano CD14 Partículas Magnéticas</td><td>BD Biosciences</td><td>557769</td><td></td></tr><tr><td>BD Imagnet</td><td>BD Biosciences</td><td>552311</td><td></td></tr><tr><td>BSA (Fracción de Albúmina V)</td><td>Carl Roth</td><td>EG-Nr 2923225</td><td></td></tr><tr><td>Costar 6 Well Clear TC-Treated Multiple Well Plate</td><td>Costar</td><td>3506</td><td></td></tr><tr><td>Medios de gradiente de densidad: Ficoll-Paque Premium</td><td>GE Healthcare Bio-Sciences</td><td>17-5442-03</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s Solución salina tamponada con fosfato (D-PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 10&nbsp; ml Pipeta Serológica</td><td>Corning</td><td>357551</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 25&nbsp; ml Pipeta Serológica</td><td>Corning 357525</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Falcon 50&nbsp; ml Tubo de centrífuga PP de alta claridad</td><td>Corning</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Tubos de fondo redondo</td><td>Corning</td><td>352054</td><td></td></tr><tr><td>FITC Ratón Anti-humano CD3 Clon HIT3a</td><td>BD Biosciences</td><td>555339</td><td></td></tr><tr><td>Ghost Dye Violet 510 (Reactivo de viabilidad celular)</td><td>Tonbo biosciences</td><td>13-0870</td><td></td></tr><tr><td>GM-CSF</td><td>MACS Miltenyi Biotec</td><td>130-093-862</td><td></td></tr><tr><td>FBS (suero fetal bovino) inactivado por calor, origen aprobado por la UE (América del Sur)</td><td>Gibco</td><td>10500-064</td><td></td></tr><tr><td>Hettich Rotanta 460R</td><td>Hettich</td><td>---</td><td></td></tr><tr><td>IL-4 CC</td><td>PromoKine</td><td>C-61401</td><td></td></tr><tr><td>Tampón de aislamiento: BD IMag Buffer (10x)</td><td>BD Biosciences</td><td>552362</td><td></td></tr><tr><td>solución de L-glutamina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de microcentrífuga, 1,5 ml, SuperSpin</td><td>VWR</td><td>211-0015</td><td></td></tr><tr><td>Ratón PE Anti-humano CD14 Clon M5E2</td><td>BD Biosciences</td><td>555398</td><td></td></tr><tr><td>PE Ratón Anti-Humano CD209 Clon DCN46</td><td>BD Biosciences</td><td>551265</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640 medio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R0883</td><td></td></tr><tr><td>UltraPure 0,5 M EDTA, pH 8,0</td><td>Invitrogen</td><td>15575020</td><td></td></tr></tbody></table>

generación de células dendríticas derivadas de monocitos humanos de sangre entera

Generation of Human Monocyte-derived Dendritic Cells from Whole Blood

Las células dendríticas (CD) reconocen estructuras extrañas de diferentes patógenos, como virus, bacterias y hongos, a través de una variedad de receptores de reconocimiento de patrones (PRRs) expresados en su superficie celular y, por lo tanto, activan y regulan la inmunidad. 
La función principal de las CD es la inducción de inmunidad adaptativa en los ganglios linfáticos mediante la presentación de antígenos a través de las moléculas MHC I y MHC II a los linfocitos T naïv. Por lo tanto, las CD tienen que migrar de la periferia a los ganglios linfáticos después del reconocimiento de patógenos en los sitios de infección. Para los experimentos in vitro o las estrategias de vacunación contra las CD, las CD derivadas de monocitos se utilizan de forma rutinaria. Estas células muestran similitudes en fisiología, morfología y función con las células dendríticas mieloides convencionales. Se generan mediante la estimulación de la interleucina 4 (IL-4) y del factor estimulante de colonias de granulocitos y macrófagos (GM-CSF) de monocitos aislados de donantes sanos. Aquí, demostramos cómo se aíslan y estimulan los monocitos a partir de sangre humana anticoagulada después del enriquecimiento de células mononucleares de sangre periférica (PBMC) mediante centrifugación en gradiente de densidad. Los monocitos humanos se diferencian en CD inmaduros y están listos para procedimientos experimentales en un entorno no clínico después de 5 días de incubación.

Después de la centrifugación de la sangre anticoagulada usando un colchón de sacarosa, las células mononucleares de sangre periférica (PBMCs) se enriquecen en una interfase en la parte superior del medio de gradiente de densidad (Figura 1). Después de que los PBMCs se extraen, el análisis FACS se realiza para caracterizar las diferentes poblaciones de células dentro de los PBMCs utilizando marcadores de linaje (por ejemplo, CD3 para los linfocitos T, CD14 para m...

Aquí, demostramos cómo se aíslan los monocitos mediante la separación magnética de perlas de las células mononucleares de sangre periférica después de la centrifugación en gradiente de densidad de la sangre humana anticoagulada. Después de la incubación durante 5 días, los monocitos humanos se diferencian en células dendríticas inmaduras y están listos para procedimientos experimentales en un entorno no clínico.

Generación de células dendríticas derivadas de monocitos humanos de sangre entera

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition ...

El objetivo general de esta técnica de separación de perlas magnéticas CD14 es aislar monocitos de la sangre para su posterior diferenciación en células dendríticas o macrófagos in vitro. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la inmunología sobre el reconocimiento, procesamiento y presentación de patógenos o antígenos por parte de las células dendríticas. La principal ventaja de este procedimiento de aislamiento es que se puede obtener una población de monocitos con una pureza del 98 al 99%.La demostración del procedimiento estará a cargo de Karolin Thurnes, una técnica de nuestro grupo de trabajo. Comience dividiendo el volumen de la bolsa de sangre entre tubos de centrífuga estériles de 50 mililitros de acuerdo con la cantidad de sangre recibida. Ajustar el volumen final de cada tubo a 50 mililitros con PBS estéril de Dulbecco según sea necesario y centrifugar las muestras.Con una pipeta serológica estéril de un mililitro conectada a una bomba de vacío de laboratorio, extraiga las capas de plasma y plaquetas dejando intactas las capas límite. A continuación, utilice una nueva pipeta de 25 mililitros para combinar las capas límite de las células monon

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

La presentación de antígenos en los órganos linfoides secundarios por las células dendríticas es fundamental para el inicio de la célula T mediada por la respuesta inmune adaptativa. Aquí se demuestra la cultura de la médula ósea procedentes de células dendríticas murinas, la activación, y el etiquetado de dos fotones de imágenes.

Generación de médula ósea procedentes de células murinas dendríticas para su uso en dos fotones de imágenes

Este video describe un protocolo para la generación de células dendríticas--células presentadoras de antígenos clave que activan las células T-- a partir de la médula ósea de un ratón adulto.

Generación de células dendríticas derivadas de la médula ósea: un método para generar células dendríticas a partir de médula ósea de ratón

Este video muestra la generación de células dendríticas inmaduras, maduras y tolerogénicas, o CD, a partir de monocitos humanos. La incubación de monocitos con factores de crecimiento y citocinas conduce a la producción de CD inmaduras. En respuesta a las moléculas inmunorreguladoras, las CD inmaduras se diferencian en CDs tolerogénicas y maduras.

Generación de células dendríticas inmaduras, maduras y tolerogénicas a partir de monocitos

Aquí presentamos un protocolo que genera grandes cantidades de monocitos murinos a partir de médula ósea heterogénea para aplicaciones traslacionales. En comparación con otros, este nuevo método ayuda a reducir el número de animales sacrificados y reduce los costos al evitar métodos costosos como la separación de células magnéticas (MACS) de alto gradiente.

Aislamiento y la inyección intravenosa de murino médula ósea derivados monocitos

Las células dendríticas inmaduras pueden diferenciarse selectivamente en células dendríticas tolerogénicas o maduras para regular el equilibrio entre inmunidad y tolerancia. Este trabajo presenta un medio para generar a partir de células dendríticas inmaduras derivadas de monocitos (moDCs), in vitro tolerogénicas y moDCs maduras que difieren en fenotipos metabólicos.

Generación de inmaduras, maduras y tolerogénico células dendríticas con diferentes fenotipos metabólico

Este estudio compara dos métodos diferentes de aislamiento de monocitos humanos para obtener células dendríticas (CD) in vitro. Los monocitos se seleccionan por adherencia o se enriquecen negativamente por separación magnética. Se comparará el rendimiento y la viabilidad de los monocitos junto con la viabilidad, la proliferación y la expresión de marcadores de superficie CD11c/CD14 entre ambos métodos.

Caracterización de las células dendríticas derivadas de monocitos humanos mediante imágenes de Citometría de Flujo: una comparación entre dos protocolos de aislamiento de monocitos

Aquí proporcionamos un método para la identificación y aislamiento de grandes cantidades de GM-CSF por células mieloides con clasificación de celda de alta velocidad. Pueden identificarse cinco poblaciones distintas (progenitores mieloides comunes, progenitores de granulocitos/macrófagos, monocitos, macrófagos derivados de monocitos y DCs derivados de monocitos) basado en la expresión Ly6C y CD115.

Generación de un gran número de progenitores mieloides y células dendríticas precursores de médula Murine usando una célula nueva clasificación estrategia

El dispositivo o placa de transimmunización (TI) y los protocolos relacionados se han desarrollado para replicar las características clave de la fotoquimioterapia extracorpórea (ECP), en un entorno experimental, lo que permite la producción de células (DCs) para la inmunoterapia oncológica.

Nuevo protocolo para la generación de células dendríticas inmunogénicas fisiológicas

La metodología describe la generación de células dendríticas derivadas de monocitos bovinos (MoDC) y su aplicación para la evaluación in vitro de candidatos antigénicos durante el desarrollo de posibles vacunas veterinarias en bovinos.

Determinación de la inmunogenicidad de la vacuna utilizando células dendríticas derivadas de monocitos bovinos

Se presenta un protocolo único y completo para generar células dendríticas derivadas de monocitos humanos desialiladas (mo-DC) a partir de células mononucleares aisladas de sangre periférica (PBMC) utilizando un tratamiento con siaridasa. Además, se describen métodos para evaluar la caracterización fenotípica y funcional de las mo-DC y evaluar cómo el tratamiento con sialidasa mejora el nivel de maduración de las mo-DC.

Generación de células dendríticas derivadas de monocitos con diferentes fenotipos sialilados

Describimos un procedimiento para evaluar la capacidad de los agentes farmacológicos para generar células dendríticas tolerogénicas a partir de células dendríticas derivadas de monocitos naïve in vitro y validar su potencia mediante la generación de células T reguladoras autólogas.

Un método simple y eficiente para probar agentes inmunomoduladores para la generación de células dendríticas tolerogénicas a partir de monocitos CD14+ humanos

Aprende a aislar monocitos de sangre periférica mediante separación magnética con microesferas CD14 y diferenciarlos en células dendríticas inmaduras. Este método de alta pureza impulsa estudios inmunológicos avanzados.

Generación de células dendríticas derivadas de monocitos humanos de sangre entera

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