6 de marzo de 2017
Aquí se presenta un protocolo para medir la fuerza de las interacciones entre una superficie inorgánica bien definido y, o bien péptidos o aminoácidos mediante medidas de espectroscopia de fuerza de una sola molécula usando un microscopio de fuerza atómica (AFM). La información obtenida de la medición es importante para entender mejor la interfase material peptídico-inorgánico.
El objetivo general de la técnica de espectroscopia de fuerza de una sola molécula es determinar la fuerza de adhesión y la naturaleza de las interacciones entre aminoácidos o péptidos con diferentes superficies. Este material puede ayudar a responder preguntas clave en el área de la química de superficies y ser utilizado para el desarrollo de nuevos compuestos y cordados. La principal ventaja de esta técnica es que proporciona información sobre la interacción entre la molécula deseada y las superficies a nivel de una sola molécula.
Para comenzar, compre voladizos AFM de nitruro de silicio equipados con puntas de silicio con un radio de voladizo nominal de dos nanómetros. Monte la punta en el soporte. Limpie cada uno de los voladizos AFM sumergiéndolos en etanol durante 20 minutos y luego séquelos a temperatura ambiente.
A continuación, coloque las puntas en una cámara de plasma y trate los voladizos exponiéndolos al plasma de oxígeno durante cinco minutos. Prepare una solución que contenga 15 partes de metiltrietoxisilano y una parte de tres aminoácidos propiltrietoxisilano y suspenda los voladizos tres centímetros por encima de la solución mientras se encuentra bajo una atmósfera inerte. Es importante que las puntas y el soporte no toquen la mezcla de silano.
Además, el silano es muy sensible a la humedad y, por lo tanto, estas puntas deben realizarse en una atmósfera inerte. Una vez sellado, conecte el desecador a una bomba de vacío y aplique vacío durante dos horas para formar una monocapa de los dos tipos de compuestos de silano mezclados en la superficie de los voladizos. Retire con cuidado las puntas y colóquelas en una placa caliente precalentada a 70 grados centígrados.
Deja que las puntas se sequen durante 10 minutos. Enfríe las puntas a temperatura ambiente antes de sumergirlas en una solución de Fmoc-PEG-NHS durante una hora a temperatura ambiente. A continuación, sumerja las puntas en cloroformo durante cinco minutos y luego en DMF durante cinco minutos más.
Después de la incubación en DMF, desproteja los grupos Fmoc de las moléculas de PEG unidas sumergiendo las puntas en una solución de piperidina al 20% en DMF durante 30 minutos. Nuevamente, sumerja las puntas en DMF durante cuatro minutos y luego en N-metil-2-pirrolidona durante cuatro minutos adicionales. Para acoplar los aminoácidos en las puntas, sumergirlas durante una hora y media en una solución de acoplamiento de aminoácidos con una concentración total de 30 milimolares y cinco mililitros de N-metil-2-pirrolidona.
Para proteger los residuos restantes de PEG libres o no reactivos por el grupo acetilo, sumerja las puntas durante 30 minutos en una mezcla molar de 0,65 de cuatro partes de anhídrido acético y una parte de diisopropiletilamina y N-metil-2-pirrolidona. A continuación, sumerja secuencialmente las puntas funcionalizadas con aminoácidos peptídicos durante cuatro minutos cada una en NMP, cloroformo, etanol al 50% y agua antes de secar finalmente la punta al aire. Fije la superficie de prueba deseada a un soporte metálico del AFM con epoxi disponible en el mercado.
Luego, coloque el soporte metálico en el soporte de vidrio del AFM, que tiene la forma de una pequeña placa de Petri. Llene el portavasos con tampón TRIS. Y luego coloque el soporte metálico en la etapa AFM debajo del soporte de la punta.
A continuación, monte la punta del AFM en el cristal óptico del AFM. Coloque el bloque de vidrio óptico en el cabezal AFM. Y poner la cabeza de AFM en el escenario.
A continuación, calibre los voladizos AFM con constantes de resorte que oscilen entre 10 y 30 piconewtons por nanómetro. Una medición de fuerza típica da como resultado una curva de fuerza-distancia como las que se muestran aquí. El primer vistazo indica interacciones no específicas entre la punta y la superficie y el segundo vistazo se refiere al evento de adhesión específico.
A partir de varios cientos de curvas de fuerza-distancia, es posible construir un histograma trazando el número de eventos de adhesión frente a la fuerza. La aplicación de un ajuste gaussiano en estos histogramas determinará la fuerza más probable. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo modificar químicamente las puntas de AFM con aminoácidos o péptidos y cómo realizar espectroscopia de fuerza de una sola molécula usando AFM.
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Este artículo presenta un protocolo para medir la fuerza de las interacciones entre superficies inorgánicas y péptidos o aminoácidos utilizando espectroscopia de fuerza de una sola molécula con un microscopio de fuerza atómica (AFM). Comprender estas interacciones es fundamental para avanzar en el conocimiento en química de superficies y desarrollo de materiales.
Comprender las interacciones a nivel molecular entre biomoléculas y superficies inorgánicas apoya la validación de objetivos en el desarrollo de biomateriales y reduce la incertidumbre mecanicista en las etapas iniciales del descubrimiento. La espectroscopía de fuerza a nivel de molécula individual permite la evaluación cuantitativa de las fuerzas de adhesión, proporcionando confianza predictiva en el cribado de biocompatibilidad de materiales. Este enfoque ayuda a reducir los riesgos asociados a hipótesis relacionadas con el ensuciamiento biológico, el diseño de compuestos y la funcionalización de superficies antes de realizar inversiones traslacionales.
El método se integra en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano, donde la reducción de riesgos mecanicistas de las interacciones entre el blanco y la superficie precede al desarrollo del ensayo y a la optimización del fármaco líder.