Name: Imágenes en vivo para el Estudio de la inestabilidad dinámica de microtúbulos en los cánceres de mama resistentes a taxano (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 2 s
Description: Aprende a medir la inestabilidad dinámica de microtúbulos en células de cáncer de mama resistentes a docetaxel mediante microscopía de desconvolución con GFP-tubulina. Este protocolo permite visualizar el comportamiento microtubular en células vivas bajo tratamiento farmacológico.

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1. Preparación de las células de imágenes en vivo <ol><li> Cultivo de células y la siembra <ol><li> Utilice células MCF-7 de cáncer de mama seleccionados para la resistencia a docetaxel (MCF-7 TXT) y su línea celular parental no resistentes (MCF-7 CC). El proceso de selección detallada y la caracterización de estas líneas celulares seleccionadas se han descrito anteriormente 24. </li><li> Crecer todas las células en placas de cultivo de 10 cm a 37 ° C en un medio compuesto 90% de medio de Eagle modificado por Dulbecco (DMEM) y 10% de suero bovino fetal (FBS) y suplementado con aminoácidos no esenciales. Mantener el medio en una atmósfera de 5% de CO 2. Mantener las células MCF-7 TXT a 5 nM de docetaxel. </li><li> Se siembran las células en cubreobjetos de imágenes en vivo. Esterilizar cubreobjetos de vidrio recubiertos con poli-L-lisina 24 mm de un enjuague con alcohol 70% y luego exponerlas a radiación UV durante la noche. Coloque los cubreobjetos en una placa de cultivo de 6 pocillos de 35 mm. place un cubreobjetos en cada pocillo. </li><li> Retire el medio de la placa de cultivo de 10 cm y se lavan las células con PBS. Añadir 0,5 ml de tripsina-EDTA al plato para desprender las células del plato. Añadir 5 ml de medio de cultivo para el plato para neutralizar la tripsina tras el desprendimiento de las células. </li><li> Contar las células con un hemocitómetro para determinar el número de células por unidad de volumen. </li><li> Añadir aproximadamente 10 5 células a cada pocillo basado en el número de células por unidad de volumen. Después de agitarlo suavemente, coloque la placa de nuevo en la incubadora para permitir que las células se unan a los cubreobjetos. </li></ol></li><li> La expresión de GFP-etiquetados α-tubulina <ol><li> Para ensayar la dinámica de los microtúbulos, transducir las células con GFP-etiquetados α-tubulina con el control de la transducción de GFP comercial (por ejemplo, BacMam) de acuerdo con el protocolo del fabricante. </li><li> Cultivar las células en el pocillo durante 36 h en una incubadora de 37 ° C de cultivo celular para permitir que comadhesión completa y 60% de confluencia. </li><li> Calcular el volumen apropiado de GFP marcada con α-tubulina de añadir a cada pocillo, de acuerdo con la siguiente ecuación: <img alt="Ecuación" src="/files/ftp_upload/55027/55027eq1.jpg" /> El número de células es el número total estimado de células en el pocillo en el momento de etiquetado y de la PPC deseado es el número de partículas por célula. NOTA: siembra de las células MCF-7 debería haber doblado el recuento de células a partir de 10 5 a 2 x 10 5 con una PPC deseada de 20, el volumen necesario para cada cubreobjetos, por tanto, es de 40 l. Para las diferentes células, el volumen estimado a partir de la fórmula anterior puede no ser la mejor. El volumen debe ajustarse de acuerdo con el nivel de expresión real de GFP-tubulina. </li><li> Mezclar los alfa-tubulina varias veces GFP-etiquetados por inversión para asegurar una solución homogénea. No hacer vórtice. NOTA: Para el control, el (control) de reactivo nulo carece de cualquier genética de mamíferoselementos y se pueden utilizar para ayudar a determinar los posibles efectos de baculovirus mediada y la fluorescencia de fondo. Un control de la transducción de GFP no específica también se puede utilizar, que se iluminará toda la célula. </li><li> Vuelva a colocar el medio de cultivo con medio fresco. Añadir 2 ml de nuevo medio y 40 l de GFP marcada con α-tubulina a cada pocillo. </li><li> Agitar suavemente la placa para permitir la mezcla completa de GFP marcada con α-tubulina con el medio de cultivo. Devolver la placa a la incubadora de cultivo y se incuba durante 24 horas para permitir la expresión de GFP-tubulina. </li></ol></li><li> Tratar a las células con docetaxel NOTA: Este experimento es ensayar el efecto de docetaxel en microtúbulos inestabilidad dinámica. Por lo tanto, las células se tratan con la concentración deseada de docetaxel. <ol><li> Prepare un medio compuesto 90% de DMEM y 10% de FBS y complementado con aminoácidos no esenciales. Utilice DMEM sin rojo fenol rojo fenol porque puede interferir con la fluorescence de GFP-tubulina. Añadir la concentración deseada de docetaxel (que van desde 10 nM a 10 mM). La solución madre de docetaxel es de 10 mM en sulfóxido de dimetilo (DMSO). </li><li> Pre-calentar el medio que contiene docetaxel a 37 ° C en la incubadora de cultivo de tejidos. </li><li> Reemplazar el medio de cultivo normal con el medio que contiene docetaxel-e incubar durante 30 min en la incubadora de cultivo de tejidos. Debe haber al menos 3 cubreobjetos por pocillo para cada concentración de docetaxel. </li></ol></li></ol> 2. imágenes en vivo para examinar los microtúbulos inestabilidad dinámica <ol><li> Configuración del sistema <ol><li> Realizar experimentos en una cámara mantenida a 37 ° C y 5% de CO2. Adquirir imágenes de fluorescencia por el lapso de tiempo con un sistema de microscopio equipado con un 60X, 1,42 NA aceite de lente de objetivo en un microscopio de fluorescencia invertida y con una cámara CCD. </li><li> Configurar las células para la formación de imágenes en directo. Pre-caliente tanto el soporte de la muestra yel medio a 37 ° C. Elija un cubreobjetos para examinar. Montar el cubreobjetos de interés sobre un soporte de muestra y se incuba con 1 ml del medio que contiene docetaxel-preparada en el paso 1.3.1. </li></ol></li><li> Imágenes en vivo de los microtúbulos inestabilidad dinámica <ol><li> Identificar las células que se van a utilizar para la imagen. Ellos deben ser planos, tienen una alta intensidad de la fluorescencia de GFP expresado-tubulina, y tienen estructuras de microtúbulos claras. </li><li> Elija una célula del grupo de células identificadas a partir del paso 2.2.1 para examinar en primer lugar. Centrarse en la zona periférica de la célula identificada. Configurar el programa para el tiempo de exposición y la frecuencia de adquisición de imágenes. A medida que el tiempo de exposición es por lo general de 0,5 s, las imágenes se adquieren cada dos s. </li><li> Permitir un 20 minutos adicionales para los pasos de 1,33 a 2.2.3. Por lo tanto, exactamente 50 min después de la adición de docetaxel, como se describe en el paso 1.3.3, comenzar de formación de imágenes (esto es para la estandarización). </li><li> Registrar los microtúbulos dynamics durante 2 minutos, tomar una foto cada 2 s. En total, la adquisición de 60 imágenes para la célula identificada. </li><li> Pasar a la siguiente célula identificada y repita los pasos 2.2.2 a 2.2.4. Repetir el procedimiento hasta que se hayan reflejado 5 células. Es imperativo que hacer esto antes de que el tiempo llegue a 70 minutos después de la adición de docetaxel, tal como se describe en el paso 1.3.3. </li><li> Para cada condición de tratamiento, repita los pasos 2.2.1 a 2.2.5 para 3 cubreobjetos diferentes. En total, la imagen 15 células, que son datos suficientes para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos. </li></ol></li></ol> 3. Procesamiento de Imágenes y Análisis de Datos <ol><li> La deconvolución de imágenes <ol><li> Deconvoluir las imágenes adquiridas para lograr una alta calidad. Abrir el programa de deconvolución equipado con el sistema de microscopio. </li><li> Haga clic en &quot;Proceso&quot; y seleccione &quot;deconvoluir.&quot; Arrastre el archivo de imagen en la ventana de &quot;Entrada&quot; y haga clic en &quot;Do&quot; El archivo de imagen se deconvolved, y eldeconvolved archivo se guarda como un archivo nuevo de forma automática. </li></ol></li><li> Generación de vídeos <ol><li> Haga clic en el archivo de imagen deconvolved para abrir con el software equipada. </li><li> Haga clic en &quot;Archivo&quot; y seleccione &quot;Guardar como película&quot;. Seleccione la opción &quot;Formato de la película&quot; como &quot;AV&quot; y el &quot;estilo de animación&quot; como &quot;Adelante&quot;. Establecer la &quot;calidad de compresión&quot; a &quot;100%&quot; y la &quot;velocidad de fotogramas&quot; a &quot;5 / segundo.&quot; </li><li> Marque la casilla de &quot;Animación a través del tiempo&quot; y haga clic en &quot;Do it&quot;. Se generará el video. </li></ol></li><li> Medición de acortamiento de los microtúbulos y la tasa de crecimiento <ol><li> Identificar los microtúbulos que serán utilizados para la medición. Para cada celda, sólo unos pocos microtúbulos serán capaces de tener su acortamiento o crecimiento siguieron clara y completa. </li><li> Examine cada fotograma del vídeo para identificar el marco que muestra la longitud de partida de los microtúbulos unand el marco con los microtúbulos más extendida o acortada. Medir el cambio en longitud entre las dos microtúbulos y el tiempo transcurrido entre los dos marcos. </li><li> Calcular la tasa de crecimiento o acortamiento dividiendo el cambio en la longitud de tiempo (la unidad es m / s). Para cada condición de tratamiento, siga al menos 10 células y medir al menos 20 microtúbulos. </li><li> Calcular el promedio y el error estándar para cada condición de tratamiento. Analizar la diferencia estadística entre las condiciones utilizando el test de Student. Reportar los datos de una tabla y / o en un gráfico. </li></ol></li></ol>

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Hay dos métodos principales para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos in vitro y en vivo. En el método in vitro, la tubulina purificada se utiliza para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos con lapso de tiempo diferencial de interferencia de microscopía de contraste mejorado por computadora. En el método in vivo, microinyectó tubulina fluorescente, o se expresa GFP-tubulina, se incorpora en los microtúbulos. La dinámica (crecimiento y acortamiento) de los ...

<html> La causa principal de la mortalidad del cáncer de mama es a través de la metástasis 1, 2. Los taxanos, tales como docetaxel y paclitaxel, se utilizan actualmente como regímenes de primera línea en el tratamiento de cáncer de mama metastásico 2, 3, 4, 5, 6. Son parte de un grupo de agentes de microtúbulos orientación (MTA) que interrumpen la dinámica de los microtúbulos. Sin embargo, uno de los mayores desafíos para el uso de taxanos en el tratamiento curativo es el desarrollo de resistencia a taxanos en células cancerosas, lo que conduce a la recurrencia de la enfermedad 7. La resistencia a fármacos es responsable de más del 90% de todas las muertes entre los pacientes con cáncer de mama metastásico 7. Los microtúbulos se forman por la polimerización de heterodímeros alfa y beta tubulinaclass = &quot;xref&quot;&gt; 8, 9. La regulación precisa de la dinámica de microtúbulos es importante para muchas funciones celulares, incluyendo la polarización celular, progresión del ciclo celular, el transporte intracelular y la señalización celular. La desregulación de los microtúbulos y su dinámica va a alterar la función celular y provocar la muerte celular 10, 11. Dependiendo de la forma en que causan este desregulación, drogas MTA se pueden clasificar como agentes estabilizantes de microtúbulos (es decir, taxanos) o agentes de microtúbulos destabalizing (es decir, alcaloides de la vinca o la colchicina-sitio de agentes de unión) 20. A pesar de sus efectos opuestos sobre la masa de los microtúbulos, a una dosis suficiente, ambas clases pueden matar a las células cancerosas a través de sus efectos sobre la dinámica de los microtúbulos 21. Los taxanos funcionan principalmente mediante la estabilización de los microtúbulos del huso 12, que conduce adesalineación cromosómico. La activación perpetua posterior de la asamblea de control de huso (SAC) detiene el celular en la mitosis. Mitótico detención prolongada provoca entonces la apoptosis 13, 14. Taxano interactúa con los microtúbulos a través del sitio de unión de taxano en β-tubulina 8, 15, que sólo está presente en tubulina ensamblada 16. Se han propuesto múltiples mecanismos de resistencia taxano 9, 17. Estos mecanismos incluyen tanto resistencia a múltiples fármacos en general debido a la sobreexpresión de las proteínas y los taxanos específico resistencia 5, 9, 18, 19 de flujo de salida con las drogas. Por ejemplo, las células cancerosas resistentes a taxanos puede haber alterado la expresión y la función de determinadas β-bañeraUlin isotipos 5, 9, 19, 20, 21, 22, 23. Mediante el uso de un método in vivo para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos, se muestra que, en comparación con, células MCF-7 CC parentales no resistentes 17, la dinámica de los microtúbulos de células MCF-7 TXT docetaxel resistentes son insensibles al tratamiento con docetaxel. Para entender mejor la función de los ATM y el mecanismo exacto de taxano-resistencia en las células cancerosas, es esencial para medir la dinámica de microtúbulos. Aquí, se presenta un método in vivo de hacerlo. Mediante el uso de imágenes en vivo en combinación con la expresión de la tubulina marcado con GFP en las células, podemos medir la dinámica de los microtúbulos de las células MCF-7 TXT y células MCF-7 con CC y wiThout tratamiento con docetaxel. Los resultados pueden ayudar a diseñar fármacos más efectivos que puedan superar la resistencia taxano.

<table><tbody><tr><td>Medio de águila modificado de Dulbecco (DMEM)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>Aminoácidos no esenciales</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco, Invitrogen</td><td>12483</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Anti (100x)</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>docetaxel</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>01885-5mg-F</td><td></td></tr><tr><td>DMEM fenol sin rojo</td><td>Gibco, Invitrogen</td><td>21063</td><td></td></tr><tr><td>Reactivo CellLight *BacMam 2.0* GFP-tubulina</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>C10613</td><td>Reactivo clave para expresar tubulina GFP en células</td></tr><tr><td>Reactivo CellLight *BacMam 2.0* GFP</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>B10383</td><td>Control</td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich+B9:AA9</td><td>472301</td><td>para la deshidratación de decetaxel</td></tr><tr><td>Vidrio de 22 mm</td><td>Coveslip Fisher Scientifics</td><td>12-545-101</td><td></td></tr><tr><td>Placa de cultivo de 6 pocillos</td><td>Greiner Bio-One International</td> Placa <td></td>de <td>cultivo Celi de 6 pocillos</td></tr><tr><td>DeltaVision Sistemas de imágenes de microscopía</td><td>GE Health</td><td></td><td>Este sistema está equipado con una estación meteorológica para controlar la temperatura y el CO2. También está equipado con el software Worx para la deconvolución y el control de lapso de tiempo.</td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA (0,25 %), rojo de fenol</td> Juego <td></td> de hematiómetros <td>ThermoFisher Scientific</td> 25200056 <td></td></tr><tr><td>Bright-line, Hausser Scientific</td><td>Hausser Scientific, distribuido por VWR</td><td>Nº de proveedor: 1492 Nº VWR:15170-172</td><td></td></tr></tbody></table>

imágenes en vivo para el estudio de la inestabilidad dinámica de microtúbulos en los cánceres de mama resistentes a taxano

Live Imaging to Study Microtubule Dynamic Instability in Taxane-resistant Breast Cancers

Los taxanos como el docetaxel pertenecen a un grupo de agentes dirigidos a los microtúbulos (MTA) en los que se confía comúnmente para tratar el cáncer. Sin embargo, la resistencia a los taxanos en las células cancerosas reduce drásticamente la eficacia del uso a largo plazo de los fármacos. La evidencia acumulada sugiere que los mecanismos subyacentes a la resistencia a los taxanos incluyen tanto mecanismos generales, como el desarrollo de resistencia a múltiples fármacos debido a la sobreexpresión de proteínas de eflujo de fármacos, como mecanismos específicos de taxanos, como los que involucran la dinámica de los microtúbulos. 
Debido a que los taxanos se dirigen a los microtúbulos celulares, medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos es un paso importante para determinar los mecanismos de resistencia a los taxanos y proporciona información sobre cómo superar esta resistencia. En el experimento, se utilizó un método in vivo para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos. La α-tubulina marcada con GFP se expresó e incorporó a los microtúbulos en las células MCF-7, lo que permitió el registro de la dinámica de los microtúbulos mediante un lapso de tiempo utilizando una cámara sensible. Los resultados mostraron que, a diferencia de las células MCF-7CC parentales no resistentes, la dinámica de los microtúbulos de las célulasTXT MCF-7 resistentes a docetaxel es insensible al tratamiento con docetaxel, lo que causa la resistencia a la detención mitótica y la apoptosis inducidas por docetaxel. Este artículo describirá este método in vivo para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos.

Utilizando el protocolo presentado aquí, se estudiaron los efectos de docetaxel en la dinámica de los microtúbulos de normal (MCF-7 CC) y docetaxel resistentes (MCF-7 TXT) las células de cáncer de mama. Dos conjuntos de imágenes muestran los efectos de docetaxel (0,5 M) en el crecimiento de los microtúbulos y la manteca en MCF-7 CC y MCF-7 TXT células (Figura 1A). Ta...

En este artículo, presentamos un protocolo que describe un método in vivo para medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos en células de cáncer de mama resistentes a docetaxel (MCF-7TXT). En este método, se utiliza un sistema de imágenes de microscopía de deconvolución para detectar la expresión de GFP-tubulina en las células diana.

Imágenes en vivo para el Estudio de la inestabilidad dinámica de microtúbulos en los cánceres de mama resistentes a taxano

Taxanes such as docetaxel belong to a group of microtubule-targeting agents (MTAs) that are commonly relied upon to treat cancer. However, taxane ...

El objetivo general de este experimento es medir la inestabilidad dinámica de los microtúbulos en células de cáncer de mama resistentes a docetaxel. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la biología celular sobre la inestabilidad dinámica de los microtúbulos en condiciones fisiológicas y después de diversos tratamientos farmacológicos. Las principales ventajas de esta técnica son que proporciona un protocolo sencillo, fiable y fisiológicamente aplicable para estudiar la dinámica de los microtúbulos en células vivas.Antes de comenzar el procedimiento, cultive las células de cáncer de mama en un medio de cultivo completo en placas de cultivo de 10 centímetros a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono hasta el grado adecuado de confluencia. El día antes del experimento, enjuague las barbitas de vidrio recubiertas de poli L-lisina de 24 milímetros con 70% de alcohol y exponga las barbotina a la luz ultravioleta durante la noche. A la mañana siguiente, coloque un cubreobjetos en cada pocillo de una placa de seis pocillos.A continuación, lavar los cultivos con PBS, y separar las células de cada plato con 0,5 mililitros de tripsina EDTA. Cuando las c

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Un modelo experimental de ratón de las metástasis óseas se estableció después de la entrega intracardíaca de luciferasa que expresan las células del tumor mamario. El desarrollo de tumores y dio lugar a lesión osteolítica fueron controlados longitudinalmente con bioluminiscencia y micro TC.

Monitoreo metástasis tumorales y lesiones osteolíticas con bioluminiscencia y Micro Imágenes de TC

Imágenes de bioluminiscencia de inducible por hipoxia-1α factor de actividad se aplica al seguimiento del desarrollo de la hipoxia tumoral intracraneal en un modelo de ratón de cáncer de mama metástasis cerebrales.

Imágenes in vivo de tumores bioluminiscencia Dinámica hipoxia de la metástasis cerebral cáncer de mama en un modelo de ratón

Se describe un método para la formación de imágenes respuesta a tratamiento contra el...

Imágenes en directo de las respuestas de drogas en el microambiente tumoral en modelos de ratón de cáncer de mama

Imagen de lapso de tiempo se utiliza para evaluar el comportamiento de las células mamarias preneoplásicas primarias epiteliales derivadas de los modelos de ratón genéticamente modificadas de riesgo de cáncer de mama para determinar si existen correlaciones entre los parámetros de comportamiento específicas y distintas lesiones genéticas.

Time-lapse de imágenes de Primaria preneoplásicas células epiteliales mamarias derivadas de los modelos de ratones genéticamente modificados del cáncer de mama

Mediante el uso de ratones reporteros transgénicos y marcadores fluorescentes inyectables, la microscopía confocal de disco giratorio intravital a largo plazo permite la visualización directa del comportamiento de las células mieloides en el adenoma intestinal en el modelo de cáncer colorrectal ApcMin/+.

Imágenes en tiempo real de las células mieloides en Dinámica Apc Min / + Intestinal Tumores de Spinning disco microscopía confocal

Aquí, describimos un método de microscopía de lapso de tiempo a largo plazo para rastrear longitudinalmente células individuales en respuesta a terapias contra el cáncer.

A través del espejo: Microscopía de lapso de tiempo y de seguimiento longitudinal de las células individuales para el Estudio de la terapéutica contra el cáncer

Este protocolo describe el uso de la microscopía multifotónica para realizar extendida time-lapse de las interacciones multicelulares en tiempo real, en vivo a una resolución de una sola célula.

Prolongado lapso de tiempo intravital de imágenes de tiempo real multicelular Dinámica en el microambiente tumoral

Aquí, presentamos el seguimiento en tiempo real de la migración de la célula en un ensayo de cicatrización utilizando células epiteliales de mama MCF10A TIP60-agotado. La aplicación de técnicas de imagen de células vivas en nuestro protocolo nos permite analizar y visualizar sola célula movimiento en tiempo real y a través del tiempo.

Imágenes en vivo de la migración de células epiteliales de mama después del agotamiento transitorio de TIP60

Proyección de imagen de células vivas proporciona una riqueza de información en las células o poblaciones enteras que es inalcanzable por célula fija la proyección de imagen solamente. Aquí, se describen protocolos de células vivas para evaluar las decisiones de destino celular después del tratamiento con el fármaco anti-mitotic paclitaxel.

A largo plazo células vivas imágenes para evaluar el destino de la célula en respuesta a Paclitaxel

Aquí, se presenta un ensayo de reconstitución in vitro basado en microscopía TIRF para cuantificar y comparar simultáneamente la dinámica de dos poblaciones de microtúbulos. Se describe un método para ver simultáneamente la actividad colectiva de múltiples proteínas asociadas a microtúbulos en haces de microtúbulos reticulados y microtúbulos individuales.

Visualización simultánea de la dinámica de microtúbulos reticulados y únicos in vitro mediante microscopía TIRF

Informamos una técnica que permite obtener imágenes en vivo de la dinámica de los microtúbulos en células de glioblastoma (GBM) que invaden el tejido cerebral de un vertebrado. El acoplamiento de la inyección ortotópica de células GBM marcadas con fluorescencia en un cerebro transparente de pez cebra con imágenes intravitales de alta resolución permite la medición de la dinámica del citoesqueleto durante la invasión del cáncer in situ .

Imágenes en vivo de la dinámica de los microtúbulos en células de glioblastoma que invaden el cerebro del pez cebra

Aprende a medir la inestabilidad dinámica de microtúbulos en células de cáncer de mama resistentes a docetaxel mediante microscopía de desconvolución con GFP-tubulina. Este protocolo permite visualizar el comportamiento microtubular en células vivas bajo tratamiento farmacológico.

Imágenes en vivo para el Estudio de la inestabilidad dinámica de microtúbulos en los cánceres de mama resistentes a taxano

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