Name: Las células dendríticas humanas de pulmón: distribución espacial y fenotípica de identificación en endobronquial biopsias mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 2 s
Description: Aprenda a procesar biopsias endobronquiales para estudiar células dendríticas pulmonares mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo. Este protocolo permite analizar la respuesta inmune en tejido humano.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Los autores desean agradecer a los voluntarios que han contribuido con material clínico de este estudio. También estamos agradecidos al personal del Departamento de Salud Pública y Medicina Clínica, División de Medicina Medicina / Respiratoria del Hospital Universitario de Umea (Norrlands universitetssjukhus) para la recogida de todo el material clínico. Este trabajo fue apoyado por becas de AS-S desde el Consejo Sueco de Investigación, la Fundación Sueca de Corazón y Pulmón, la Fundación Sueca para la Investigación Estratégica, y el Instituto Karolinska.

NOTA: Esta investigación fue aprobado por la Junta de Revisión Ética regional en Umea, Suecia. 1. La broncoscopia para el muestreo endobronquial biopsias de sujetos humanos <ol><li> Obtener el consentimiento informado de todos los participantes. </li><li> El tratamiento de sujetos con midazolam oral (4-8 mg) y glicopirronio intravenosa (0,2 a 04 mg) 30 minutos antes de la broncoscopia. Aplicar anestesia tópica con lidocaína en la laringe y bronquios. Dejar que el haga gárgaras con objeto ~ 3 ml de lidocaína al 4% y se aplican 3 ml de la base de la lengua y de la laringe a través de una jeringa laringe. Optimizar la anestesia tópica con 8-10 dosis de lidocaína en aerosol. Llevar a cabo este paso con el objeto de estar. </li><li> Inserte un broncoscopio flexible de vídeo a través de la boca a través de una boquilla de plástico con el sujeto en posición supina. Utilizar un catéter de pulverización a tales efectos para completar la anestesia tópica de la tráquea y los bronquios distales a través del broncoscopio. Aquí, utilizar una dosis de aproximadamente5-10 ml de lidocaína al 2%. </li><li> Tome 6-9 biopsias de la mucosa endobronquiales de la carina principal y las principales divisiones bronquiales utilizando fórceps fenestrada (Figura 1). Tras la broncoscopia y antes de abandonar el hospital, dejar que el resto sujeto durante 2-4 horas y proveer él / ella con una comida ligera. </li></ol> 2. Incorporación de las biopsias en glicol metacrilato (GMA) Resina NOTA: El protocolo inmunotinción GMA fue desarrollado originalmente en la Universidad de Southampton, Unidad de Investigación histoquímica 17. <ol><li> Fijación: Para la inmunohistoquímica, retire las biopsias de las pinzas y colocarlos directamente en viales de vidrio que contienen 3 ml de inhibidores de la acetona y la proteasa deshidratados enfriado con hielo (fluoruro de fenilmetilsulfonilo (35 mg / 100 ml de acetona) y yodoacetamida (370 mg / 100 ml de acetona )). Fijar el tejido durante la noche a -20 ° C (Figura 2). NOTA: Los siguientes pasos deben ser performó en una campana extractora con guantes de nitrilo apropiado. El kit de incrustación contiene componentes que pueden causar reacciones de sensibilización, irritación y / o de la piel alérgica. Todos los residuos deben eliminarse como residuos peligrosos. </li><li> Deshidratación: eliminar la acetona con inhibidores y reemplazar con acetona deshidratada fresco (sin inhibidores) durante 15 minutos a temperatura ambiente (RT). Eliminar la acetona y reemplazarlo con benzoato de metilo durante 15 minutos. </li><li> Infiltración: Preparar una solución de procesamiento de la solución de benzoato de metilo 5% en monómero de metacrilato de glicol; 10 ml es suficiente para un vial. El uso de pipetas Pasteur de plástico, de aspiración de la solución de benzoato de metilo y reemplazar con 3 ml de solución de procesamiento. Incubar las biopsias y solución de procesamiento en exceso a 4 ° C durante 2 horas; pipetas Pasteur se pueden utilizar para todos los cambios de soluciones posteriores, incluyendo la solución de inclusión. </li><li> Intercambiar la solución de procesamiento de cada 2 horas (3 x 2 incubaciones hr), por lo que el tiempo total de la infiltración de la biopsies en la solución de elaboración es de al menos 6 horas. Insertar etiquetas de papel en el extremo superior de las cápsulas de incrustación para identificar las biopsias. </li><li> Preparar una solución de incrustación de peróxido de benzoilo 75 mg en 10 ml de monómero de metacrilato de glicol. Añadir 0,25 ml de N, N dimetilanilina poli (óxido de etileno) (acelerador) a la solución de incrustación para comenzar la reacción de polimerización. Eliminar la solución de procesamiento y coloque una biopsia en la cápsula incrustación relevante el uso de fórceps. </li><li> llenar lentamente la incorporación de la cápsula en la parte superior con una solución de la incrustación y cerrar la tapa. Evitar molestar a la biopsia y la creación de grandes burbujas de aire. Incubar las cápsulas a 4 ° C hasta que la resina se ha polimerizado por completo. </li><li> Almacenar las biopsias incorporados a -20 ° C en un tubo de 50 ml que contenía aproximadamente 5 g de gel de sílice. </li></ol> 3. La sección del biopsia endobronquial incrustados-GMA <ol><li> recubrimiento del portaobjetos del microscopio: Lavar los portaobjetos de microscopio en unalavavajillas en un ciclo normal. Tapar los portaobjetos y dejar que se sequen al aire. </li><li> Preparar una solución de recubrimiento de la solución de 10% de poli-L-lisina (PLL) en agua destilada. Sumergir los portaobjetos en solución de revestimiento durante 5 minutos, y luego dejar secar al aire. Almacenar diapositivas PLL recubiertos en seco en sus cajas originales. </li><li> Lavar las tiras de vidrio de hoja con 0,1% de Tween 20 en agua destilada. Enjuague el vaso con 70% de etanol y secar con toallas de papel. Cortar láminas de vidrio de la tira de cristal utilizando un fabricante de cuchillos. Almacenar las cuchillas en un recipiente que impide el movimiento para asegurar que el borde de corte no se dañe o mellado. </li><li> La biopsia de corte: Coloque la cápsula de biopsia en un divisor de la cápsula y reducir cada lado con una hoja de un solo filo de acero al carbono. Retire la biopsia incrustado-GMA y colocarlo firmemente en un tornillo de banco. Recorte el exceso de GMA de todo el biopsia utilizando la hoja de acero. </li><li> seccionamiento GMA. <ol><li> Preparar una solución de amoniaco 0,05% con agua destilada. Coloque la cuchilla de vidrio y biopsia en THe microtomo. alinear cuidadosamente el bloque de biopsia con la hoja mediante el ajuste del soporte de la cuchilla y el ángulo del bloque de biopsia de modo que la cuchilla se apoya plana contra la superficie del bloque. </li><li> Cortar 2 micras de grosor utilizando el microtomo en una velocidad de corte lento y el uso de fórceps para transferir y flotar las secciones en el agua amoniacal. Flotar las secciones de 45-90 seg, lo que permite la recuperación de antígenos suave y despliegue de la sección. </li><li> Recoge secciones con portaobjetos de microscopio. Compruebe la histología de la biopsia mediante tinción con azul de toluidina rápidamente. </li><li> Secar los portaobjetos en un conjunto de placa caliente a 50 ° C y aplicar 500 l de toluidina filtrado mancha azul a una sección usando una pipeta de plástico Pasteur. Se calienta la sección sobre la placa caliente hasta un anillo verde comienza a emerger en el borde de la mancha, y luego lavar con agua. </li><li> El uso de un microscopio de luz, compruebe la histología de la biopsia. Secciones utilizados para inmunohistoquímica deben contener buenas zonas de la lámina sin dañospropia y el epitelio, con el menor número de glándulas y tan poco músculo liso como sea posible. </li><li> Al igual que en la sección 3.4.2, cortar secciones que tienen buena histología y recogerlos con portaobjetos de microscopio recubiertos de PLL para la tinción inmunohistoquímica. Corte al menos dos secciones de cada biopsia para su análisis. secar los portaobjetos durante al menos 1 hora. Después del secado, las secciones pueden ser envueltos en papel de aluminio y se almacenaron a -20 ° C durante un máximo de 2 semanas, o pueden ser inmunoti~neron inmediatamente. </li></ol></li></ol> 4. La tinción inmunohistoquímica de biopsias endobronquiales incrustados-GMA NOTA: La azida sódica es tóxica. Preparar la solución de azida de sodio al 0,1% dentro de una campana de ventilación y lejos de ácidos. El contacto con ácidos libera gas tóxico. <ol><li> Dibujar alrededor de secciones usando un lápiz con punta de diamante y organizar las diapositivas sobre un estante de tinción. </li><li> Cabo un bloqueo de la peroxidasa. Preparar una solución de bloqueo de peroxidasa de peróxido de hidrógeno 0,3% en solución de azida de sodio 0,1%. Apply 1 ml de la peroxidasa bloque con las secciones y se incuba durante 30 min. </li><li> Preparar una solución de lavado de solución salina tamponada con Tris 0,05 M (TBS), pH 7,6. Se lavan los portas en TBS, 3x 5 min. </li><li> Preparar una solución de bloqueo BSA 1% en DMEM. Haga esto con antelación y en volúmenes grandes, alícuota y congelarlo hasta que se necesite. Escurrir las diapositivas e incubar las secciones en solución de bloqueo durante 30 minutos para bloquear la unión no específica de anticuerpos. Si se sigue produciendo la unión inespecífica, incluir una etapa de incubación de 30 min con el bloque 5% de suero de la misma especie como el anticuerpo secundario. </li><li> Diluir el anticuerpo primario (CD45 o CD1a) en TBS hasta la concentración deseada (CD45 diluido a 1: 1.000; CD1a diluido a 1: 1,00) y aplicarlo a las diapositivas. Cubreobjetos las secciones y se incuba durante la noche a RT. </li><li> Lavar los portaobjetos en TBS tres veces. Diluir anticuerpo secundario biotinilado (dirigido contra la especie huésped anticuerpo primario, en este caso de conejo anti-ratón F (ab &#39;2)) en TBS a la concentración deseada (1:300 dilución) y aplicarlo a las diapositivas. Incubar durante 2 horas a RT. </li><li> Preparar una estreptavidina biotina-peroxidasa complejo al menos 30 min antes de su uso. Asegúrese de que no es suficiente para cubrir todas las diapositivas. Se lavan los portas en TBS tres veces. Aplicar la solución a los portaobjetos y se incuba durante 2 horas a temperatura ambiente. </li><li> Se lavan los portas en TBS tres veces. Preparar 3-amino-9-etilcarbazol solución de sustrato de peroxidasa (AEC) (hecho por las instrucciones del fabricante). Aplicarlo a las diapositivas y se incuba durante 20-30 minutos o hasta que la intensidad de la mancha deseada desarrolla. </li><li> Enjuague los portaobjetos en agua corriente del grifo durante 5 minutos. CONTRATINCIÓN las secciones con solución de hematoxilina de Mayer filtrada durante 2 min. Se lavan los portas en agua corriente durante 5 minutos. </li><li> Escurrir las diapositivas y cubrir las secciones con medio de montaje acuoso permanente. Secar los portaobjetos a 80 ° C en un horno de secado. Deje que los portaobjetos se enfríen, y luego se montan con DPX y colocar un cubreobjetos. </li></ol> 5. StAnálisis aining <ol><li> Analizar las secciones a un aumento de 40X utilizando un microscopio de luz con una cámara montada conectado a un ordenador. NOTA: Para el análisis celular, cuente con tinción positiva, las células nucleadas dentro de la lámina propia y el epitelio bronquial intacta, excluyendo las áreas de músculo liso, glándulas, vasos sanguíneos grandes, y el tejido no coinciden o dañado. </li><li> La media de los recuentos de células y corregir el recuento de células promedio para el área de la lámina propia y la longitud del epitelio. El área de la lámina propia y la longitud del epitelio se puede calcular utilizando un programa de análisis de imagen. </li></ol> 6. La digestión enzimática de las biopsias endobronquiales <ol><li> Biopsias de lavado: El uso de pinzas estériles, lugar biopsias intactas en un tubo cónico de 15 ml que contiene 10 ml de solución salina tamponada de Hank (HBSS) (Figura 3). Incubar durante 5 min a temperatura ambiente en una plataforma oscilante a 30 rpm. La transferencia de las biopsias a un d estérilish por decantación el contenido del tubo de 15 ml con HBSS. </li><li> La interrupción de la mucosidad con TDT: Sustituir el HBSS en el tubo con 10 ml de HBSS conteniendo 5 mM de 1,4-ditiotreitol (DTT). La transferencia de las biopsias de nuevo en el tubo de 15 ml usando pinzas estériles. Incubar durante 15 minutos a temperatura ambiente en una plataforma oscilante a 30 rpm. </li><li> Vortex el tubo suavemente durante 15 segundos. La transferencia de las biopsias en una placa estéril por decantación el contenido del tubo de 15 ml con HBSS y DTT. </li><li> La transferencia de las biopsias al medio de cultivo: Sustituir el HBSS y TDT en el tubo con 10 ml de RPMI 1640 medio de cultivo. La transferencia de las biopsias de nuevo en el tubo de 15 ml usando pinzas estériles. Incubar durante 10 min a RT en una plataforma oscilante a 30 rpm. </li><li> La digestión de las biopsias con colagenasa y DNasa. <ol><li> Preparar una solución de digestión de la colagenasa II (0,25 mg / ml) y ADNasa (0,2 mg / ml) en RPMI precalentado que contiene solución 1 M HEPES. Añadir 500 l de solución de digestión por pocillo en un culto de tejido de 48 pocillosplaca de Ure. </li><li> Coloca 1 biopsia por pocillo en una solución de digestión. Se incuba la placa en una plataforma de agitación durante 60 minutos a 37 ° C a 220 rpm. Pipeta hacia arriba y abajo después de 30 minutos para volver a dispersar las biopsias, y después de 60 minutos, al desagregar por completo el tejido. </li></ol></li><li> Preparación de suspensiones de células individuales. <ol><li> Piscina juntos las biopsias digeridos de los pocillos en un tubo de 50 ml pasándolo a través de un filtro de células de 40 micras. Recoger las células restantes por lavado de los pocillos con tampón de FACS enfriado con hielo (solución salina tamponada con fosfato (PBS) que contenía suero bovino fetal al 2%). </li><li> Exprimir el tejido restante en el filtro de células usando la parte posterior del émbolo de una jeringa. Centrifugar las células digeridas a 400 xg durante 5 min a 4 ° C. Retirar con cuidado el sobrenadante y resuspender el precipitado en 5 ml de tampón FACS enfriado con hielo. Contar las células de forma manual utilizando un hemocitómetro y tinción de azul de tripán para evaluar la viabilidad de las células. </li></ol></li></ol><ol><li> Resuspender el sedimento celular a aproximadamente 1 x 10 6 células en 200 l de tampón de FACS. </li><li> Añadir un colorante de viabilidad celular para la exclusión de células muertas de acuerdo con el protocolo del fabricante. </li><li> Añadir 5 l de FcR reactivo de bloqueo y se incuba durante 5 min a 4 ° C. </li><li> Añadir anticuerpos de superficie celular contra CD45 (2 l), el linaje (CD3, CD20, CD56, CD66abce, y CD14; 2 l cada una), CD16 (0,5 l), HLA-DR (3 l), CD11c (5 l), CD123 (5 l), CD1c (3 l), y CD103 (2 l) y se incuba durante 15 min a 4 ° C. Los detalles de anticuerpos se pueden encontrar en la sección de métodos, pero titulan y optimizar los anticuerpos para el flujo preciso citómetro en uso. Lavar el exceso de anticuerpos con PBS durante 5 minutos a 400 x g. Adquirir las nuevas muestras en un citómetro de flujo o fijar las células en paraformaldehído al 1% antes de la tarde acquisition. </li><li> Identificar países en desarrollo humano en biopsias pulmonares utilizando un ensayo de citometría de flujo 18 (Figura 4). NOTA: El uso de un software de análisis de citometría de flujo, las células inmunes se distinguen de otras células pulmonares colocando puertas de CD45. Las células muertas se pueden excluir como células que son positivas para el colorante LIVE / DEAD. De todos CD45 + células en vivo, las células de linaje (células B, células T, células NK, neutrófilos y monocitos) se puede excluir el uso de un cóctel de anticuerpos frente a CD20, CD3, CD56, CD66abce, CD14, y CD16 en un canal. Después de que las células, HLA-DR + permitirán la identificación de todos los países en desarrollo humano. MDC se pueden distinguir de PDC sobre la base de la expresión de CD11c o la falta de CD11c, respectivamente. MDC se pueden dividir en CD1c + MDC o CD141 +. </li></ol>

<ol><li>Kopf, M., Schneider, C., Nobs, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+and+function+of+lung-resident+macrophages+and+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">The development and function of lung-resident macrophages and dendritic cells.</a> Nat Immunol. 16 (1), 36-44 (2015).</li>
<li>Condon, T. V., Sawyer, R. T., Fenton, M. J., Riches, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+dendritic+cells+at+the+innate-adaptive+immune+interface%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Lung dendritic cells at the innate-adaptive immune interface.</a> J Leukoc Biol. 90 (5), 883-895 (2011).</li>
<li>Lambrecht, B. N., Hammad, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+of+lung+dendritic+cells+at+the+origin+of+asthma%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Biology of lung dendritic cells at the origin of asthma.</a> Immunity. 31 (3), 412-424 (2009).</li>
<li>Schlitzer, A., McGovern, N., Ginhoux, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+and+monocyte-derived+cells%3A+Two+complementary+and+integrated+functional+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells and monocyte-derived cells: Two complementary and integrated functional systems.</a> Semin Cell Dev Biol. 41, 9-22 (2015).</li>
<li>Ziegler-Heitbrock, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nomenclature+of+monocytes+and+dendritic+cells+in+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Nomenclature of monocytes and dendritic cells in blood.</a> Blood. 116 (16), e74-e80 (2010).</li>
<li>Demedts, I. K., Brusselle, G. G., Vermaelen, K. Y., Pauwels, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+human+pulmonary+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Cell+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of human pulmonary dendritic cells.</a> Am J Respir Cell Mol Biol. 32 (3), 177-184 (2005).</li>
<li>Donnenberg, V. S., Donnenberg, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+rare-event+detection+and+analysis+of+dendritic+cell+subsets+in+broncho-alveolar+lavage+fluid+and+peripheral+blood+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci%22%5BJournal%5D)">Identification rare-event detection and analysis of dendritic cell subsets in broncho-alveolar lavage fluid and peripheral blood by flow cytometry.</a> Front Biosci. 8, s1175-s1180 (2003).</li>
<li>Masten, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+myeloid+and+plasmacytoid+dendritic+cells+in+human+lung%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Characterization of myeloid and plasmacytoid dendritic cells in human lung.</a> J Immunol. 177 (11), 7784-7793 (2006).</li>
<li>Ten Berge, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+isolating+dendritic+cells+from+human+bronchoalveolar+lavage+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">A novel method for isolating dendritic cells from human bronchoalveolar lavage fluid.</a> J Immunol Methods. 351 (1-2), 13-23 (2009).</li>
<li>Yu, C. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+CD1c%2B+dendritic+cells+drive+the+differentiation+of+CD103%2B+CD8%2B+mucosal+effector+T+cells+via+the+cytokine+TGF-beta%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Human CD1c+ dendritic cells drive the differentiation of CD103+ CD8+ mucosal effector T cells via the cytokine TGF-beta.</a> Immunity. 38 (4), 818-830 (2013).</li>
<li>Nicod, L. P., Lipscomb, M. F., Toews, G. B., Weissler, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+potent+and+poorly+functional+human+lung+accessory+cells+based+on+autofluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Separation of potent and poorly functional human lung accessory cells based on autofluorescence.</a> J Leukoc Biol. 45 (5), 458-465 (1989).</li>
<li>Sertl, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+with+antigen-presenting+capability+reside+in+airway+epithelium%2C+lung+parenchyma%2C+and+visceral+pleura%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells with antigen-presenting capability reside in airway epithelium, lung parenchyma, and visceral pleura.</a> J Exp Med. 163 (2), 436-451 (1986).</li>
<li>van Haarst, J. M., de Wit, H. J., Drexhage, H. A., Hoogsteden, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+and+immunophenotype+of+mononuclear+phagocytes+and+dendritic+cells+in+the+human+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Cell+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Distribution and immunophenotype of mononuclear phagocytes and dendritic cells in the human lung.</a> Am J Respir Cell Mol Biol. 10 (5), 487-492 (1994).</li>
<li>Schlitzer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IRF4+transcription+factor-dependent+CD11b%2B+dendritic+cells+in+human+and+mouse+control+mucosal+IL-17+cytokine+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">IRF4 transcription factor-dependent CD11b+ dendritic cells in human and mouse control mucosal IL-17 cytokine responses.</a> Immunity. 38 (5), 970-983 (2013).</li>
<li>Yu, Y. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+Cytometric+Analysis+of+Myeloid+Cells+in+Human+Blood%2C+Bronchoalveolar+Lavage%2C+and+Lung+Tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Cell+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Flow Cytometric Analysis of Myeloid Cells in Human Blood, Bronchoalveolar Lavage, and Lung Tissues.</a> Am J Respir Cell Mol Biol. , (2015).</li>
<li>Haniffa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+tissues+contain+CD141hi+cross-presenting+dendritic+cells+with+functional+homology+to+mouse+CD103%2B+nonlymphoid+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Human tissues contain CD141hi cross-presenting dendritic cells with functional homology to mouse CD103+ nonlymphoid dendritic cells.</a> Immunity. 37 (1), 60-73 (2012).</li>
<li>Britten, K. M., Howarth, P. H., Roche, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistochemistry+on+resin+sections%3A+a+comparison+of+resin+embedding+techniques+for+small+mucosal+biopsies%5BTitle%5D)+AND+%22Biotech+Histochem%22%5BJournal%5D)">Immunohistochemistry on resin sections: a comparison of resin embedding techniques for small mucosal biopsies.</a> Biotech Histochem. 68 (5), 271-280 (1993).</li>
<li>Perfetto, S. P., Chattopadhyay, P. K., Roederer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seventeen-colour+flow+cytometry%3A+unravelling+the+immune+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Seventeen-colour flow cytometry: unravelling the immune system.</a> Nat Rev Immunol. 4 (8), 648-655 (2004).</li>
<li>Baharom, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+Cells+and+Monocytes+with+Distinct+Inflammatory+Responses+Reside+in+Lung+Mucosa+of+Healthy+Humans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Dendritic Cells and Monocytes with Distinct Inflammatory Responses Reside in Lung Mucosa of Healthy Humans.</a> J Immunol. 196 (11), 4498-4509 (2016).</li>
<li>Salvi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+inflammatory+responses+in+the+airways+and+peripheral+blood+after+short-term+exposure+to+diesel+exhaust+in+healthy+human+volunteers%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Acute inflammatory responses in the airways and peripheral blood after short-term exposure to diesel exhaust in healthy human volunteers.</a> Am J Respir Crit Care Med. 159 (3), 702-709 (1999).</li>
<li>Schon-Hegrad, M. A., Oliver, J., McMenamin, P. G., Holt, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+the+density%2C+distribution%2C+and+surface+phenotype+of+intraepithelial+class+II+major+histocompatibility+complex+antigen+%28Ia%29-bearing+dendritic+cells+%28DC%29+in+the+conducting+airways%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Studies on the density, distribution, and surface phenotype of intraepithelial class II major histocompatibility complex antigen (Ia)-bearing dendritic cells (DC) in the conducting airways.</a> J Exp Med. 173 (6), 1345-1356 (1991).</li>
<li>Saeys, Y., Gassen, S. V., Lambrecht, B. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Computational+flow+cytometry%3A+helping+to+make+sense+of+high-dimensional+immunology+data%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Computational flow cytometry: helping to make sense of high-dimensional immunology data.</a> Nat Rev Immunol. 16 (7), 449-462 (2016).</li>
</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

En este documento se describe cómo generar una caracterización espacial y fenotípica detallada de las CD pulmonares de tejido residentes en los seres humanos sanos mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo en biopsias de la mucosa endobronquiales recogidos durante la broncoscopia. En los párrafos siguientes pasos críticos en el protocolo se discuten en detalle. Los pasos críticos con el Protocolo Seccionamiento e inmunohistoquímica: Es fundamental para mante...

Los pulmones están en contacto continuo con el medio externo y están muy expuestas a ambas partículas inofensivas y microbios con la capacidad de causar la enfermedad. Por lo tanto, es crítico para el sistema inmune para montar respuestas inmunes potentes contra los patógenos invasores, pero es igualmente importante para mantener la tolerancia a los antígenos inhalados que no causan enfermedad. Para proporcionar la vigilancia inmune potente, el sistema respiratorio se alinea con una red de células inmunes, incluyendo células dendríticas (DC). DC son células presentadoras de antígeno profesionales con la capacidad única de activar las células T vírgenes. En los pulmones humanos, DCs residentes encuentran un antígeno y entonces el proceso y lo transportan a los ganglios linfáticos pulmonares de drenaje para su presentación a y activación de células T 1, 2, 3. En el sistema inmune humano, los DC se puede dividir en varios subconjuntos, con Distinct pero superpuestas funciones: CD1c + y CD141 + DC mieloides (PMD) y CD123 + plasmacytoid países en desarrollo (PDC) 4, 5. Mientras que la mayoría conocimiento detallado en países en desarrollo humano se deriva de estudios en la sangre, es ahora evidente que los pulmones humanos también albergan poblaciones raras de subconjuntos de DC con las células T capacidad estimuladora 6, 7, 8, 9. Sin embargo, la acumulación de datos muestran que las células inmunes, incluyendo países en desarrollo, difieren en su frecuencia, fenotipo y función dependiendo de su ubicación anatómica 10. Por lo tanto, es importante para estudiar las células inmunes del tejido relevante para entender su contribución a la inmunidad local y la tolerancia. En conjunto, esto pone de relieve la necesidad de estudiar las CD pulmonares residente hora de abordar las enfermedades pulmonares, a pesar de ser más fácilmente disponible y accesible sangre países en desarrollo<html> en humanos. Los primeros estudios que investigaron las CD pulmonares residente en el ser humano se basó principalmente en la morfología y la expresión de marcadores individuales, tales como HLA-DR y CD11c, en secciones de tejido mediante inmunohistoquímica 11, 12, 13. Por el contrario, los estudios más recientes se han basado generalmente en los análisis de citometría de flujo para estudiar diferentes subconjuntos de células inmunes. Sin embargo, ya que es difícil encontrar un solo marcador de la superficie celular que identifica de forma única un subconjunto específico de CC, la limitación potencial de los estudios aplicando citometría de flujo de cuatro colores solamente es el riesgo de incluir poblaciones de células con marcadores fenotípicos similares a los de los países en desarrollo. Por ejemplo, CD11c se expresa en todos los DC mieloides y la gran mayoría de los monocitos. Por otro lado, en los estudios de la aplicación de los paneles de citometría de flujo más avanzados, el tejido pulmonar no canceroso de resecciones quirúrgicas de los pacientes se usa típicamentexref &quot;&gt; 10, 14, 15, 16, aunque no está claro si estas poblaciones raras son verdaderamente representativa de los DC presente en los sujetos sanos. En general, los estudios se limitan en gran parte debido al hecho de que quirúrgicamente eliminado o tejido pulmonar humano completo es escasa. Para superar algunas de estas limitaciones, este trabajo describe cómo realizar un análisis detallado de la distribución espacial y una identificación fenotípica de los países en desarrollo en las biopsias de mucosa de la mucosa obtenidas de voluntarios sanos que se someten a una broncoscopia. Varios biopsias pequeñas se pueden recoger de cada individuo y, posteriormente, se pueden incorporar para seccionar y el análisis mediante inmunohistoquímica o enzimáticamente digerido para el análisis avanzado de citometría de flujo. El uso de tejido pulmonar en la forma de la biopsia endobronquial obtenidos de broncoscopias confiere la ventaja de hacer posible la realización de la study en voluntarios sanos, a diferencia de la cirugía abierta de los pulmones que, por razones obvias, se limita a los pacientes que requieren cirugía torácica. Además, el tejido que se muestrea durante una broncoscopia de voluntarios sanos es fisiológicamente normal, en contraste con un área no afectada del tejido pulmonar en pacientes con una enfermedad pulmonar. Por otro lado, las biopsias son pequeñas y el número de células recuperadas, incluso cuando la agrupación de varias biopsias, limita el tipo de análisis que se pueden realizar. Mientras que el presente trabajo se centra en los países en desarrollo, los métodos descritos se puede ampliar directamente a incluyen otras células (inmunes) de interés que residen en el tejido de la mucosa de pulmón humano. Además, los protocolos son también directamente aplicables a muestras obtenidas de pacientes que padecen enfermedades pulmonares donde broncoscopia es parte de establecer el diagnóstico, tales como la enfermedad pulmonar obstructiva crónica (EPOC), sarcoidosis, o cáncer de pulmón.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Bronchoscopy</td></tr><tr><td>Bronchoscope BF1T160</td><td>Olympus BF1T160</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fuente de luz&nbsp;</td><td>Olympus</td><td>Exera CV-160</td><td></td></tr><tr><td>Pinza fenestrada</td><td>Olympus</td><td>FB21C</td><td>Se utiliza para tomar biopsias</td></tr><tr><td>Bite Block</td><td>Conmed</td><td>1429</td><td>20 mm x 27 mm</td></tr><tr><td>Glucosa 25%&nbsp;</td><td></td><td></td><td>500 ml</td></tr> de <tr><td>bromuro de glicopirronio intravenoso 0,2 mg/ml</td><td></td><td></td><td>Intravenoso. Previene la secreción de moco/saliva</td></tr><tr><td>Mixt. Midazolam 1 mg/ml p.o</td><td></td><td></td><td>Se puede utilizar para una relajación adicional</td></tr><tr><td>Lidocaína, 40 mg/ml</td><td></td><td></td><td>Administración por boca y garganta / Gárgaras</td></tr><tr><td>Lidocaína 100 mg/ml spray</td><td></td><td></td><td>Se administra en la parte posterior de la garganta</td></tr><tr><td>Lidocaína 20 mg/ml</td><td></td><td></td><td>spray Se administra a través de un broncoscopio a las vías respiratorias</td></tr><tr><td colspan="4">GMA procesamiento e incrustación</fuerte> </td></tr><tr><td>Viales de</td><td></td><td></td> vidrio <td>5 ml</td></tr><tr><td>Acetona</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>32201-1L</td><td></td></tr><tr><td>Tamices moleculares, 4 &#197;</td><td>Alfa Aesar</td><td>88120</td><td>pellets de 3-4 mm</td></tr><tr><td>de diámetro Fluoruro de fenilmetilsulfonilo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-7626</td><td>0,035 g/100 ml acetona</td></tr><tr><td>Yodoacetamida</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I-6125</td><td>0,37 g/100 ml acetona</td></tr><tr><td>Polietileno-plano&nbsp; Cápsulas de inclusión TAAB Laboratorios</td><td>TAAB</td><td>C094</td><td>500 x 8 mm de diámetro, polietileno, cápsulas de fondo plano</td></tr><tr><td>Soporte para cápsulas</td><td>TAAB laboratories</td><td>C054</td><td>Capacidad para 25 cápsulas de 8 mm</td></tr><tr><td>JB-4 GMA kit de inclusión</td><td>Polysciences</td><td>00226</td><td>Contiene JB-4 solución A (0026A-800), JB-4 solución B (0026B-3.8), peróxido de benzoilo (02618-12)</td></tr><tr><td>benzoato de metilo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>27614-1L</td><td></td></tr><tr><td>Gel de sílice con indicador de humedad</td><td>Scharlau</td><td>GE0043</td><td>2,5-6 mm&nbsp;</td></tr><tr><td colspan="4"><fuerte>GMA de seccionamiento</fuerte></td></tr><tr><td>Portaobjetos de microscopio de vidrio</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10143562CEF</td><td>Bordes cortados, extremo esmerilado</td></tr><tr><td>Solución de Poly-L-Lisina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8920-500mL</td><td>1:10 para solución de trabajo</td></tr><tr><td>Tiras de vidrio laminado para ultramicrotomía</td><td>Alkar</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2287</td><td>Wash solución (0.1% Tween20)</td></tr><tr><td>LKB 7800B Fabricante de cuchillos</td><td>LKB</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Divisor de cápsulas</td><td>Laboratorios TAAB</td><td>C065</td><td></td></tr><tr><td>Cuchillas de acero al carbono de un solo filo</td><td>Laboratorios TAAB</td><td>B054</td><td></td></tr><tr><td>Tornillo de banco</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amoníaco, 25%</td><td>VWR</td><td>1133.1000</td><td>2 ml en 1 L, 1:500 (0.05%)</td></tr><tr><td>Microtomo</td><td>Leica</td><td></td><td>Leica RM 2165</td></tr><tr><td>Fuente de luz</td><td>Microscopio Leica</td><td></td><td>Leica CLS 150 XE</td></tr><tr><td>con soporte de brazo oscilante</td><td>Leica</td><td></td><td>Leica MZ6</td></tr><tr><td colspan="4">GMA Immunohistochemistry</td></tr><tr><td>Diamond bolígrafo con punta</td><td>Histolab</td><td>5218</td><td></td></tr><tr><td>Peróxido de hidrógeno solución al 30%</td><td>AnalaR Normapur</td><td>23619.264</td><td></td></tr><tr><td>Azida sódica</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8032</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>Roche</td><td>10708976001</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro de sodio</td><td>Productos químicos VWR</td><td>27810.295</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina</td><td>Millipore</td><td>82-045-2</td><td>Probumina BSA grado diagnóstico</td></tr><tr><td>Medio de águila modificado de Dulbecco (DMEM)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5546</td><td></td></tr><tr><td>Anticuerpo CD45 humano</td><td>BioLegend</td><td>304002</td><td>Monoclonal de ratón, clon HI30, isotipo IgG1k. Concentración de trabajo de 500 ng/ml</td></tr><tr><td>Anticuerpo CD1a humano</td><td>AbD Serotech</td><td>MCA80GA</td><td>monoclonal de ratón, clon NA1/34-HLK, isotipo IgG2a. Concentración de trabajo de 10 &micro; g/ml</td></tr><tr><td>Control de isotipo de IgG1 monoclonal de ratón</td><td>Abcam</td><td>ab27479</td><td></td></tr><tr><td>Control de isotipo de IgG2a monoclonal de ratón</td><td>Dako</td><td>X094301-2</td><td></td></tr><tr><td>Kit estándar Vectastain ABC Elite</td><td>Vector Labs</td><td>PK-6100</td><td></td></tr><tr><td>AEC (3-amino-9-etilcarbazol) cometa de sustrato de peroxidasa</td><td>Vector Labs</td><td>SK-4200</td><td></td></tr><tr><td>Mayers hematoxilina</td><td>HistoLab</td><td>01820</td><td></td></tr><tr><td>Medio de montaje acuoso permanente</td><td>AbD Serotech</td><td>BUF058C</td><td></td></tr><tr><td>Horno</td><td></td><td></td><td></td>de</tr><tr><td>secado DPX solución de montaje permanente&nbsp;</td><td>Microscopio óptico VWR</td><td>360292F</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Leica</td><td></td><td>Cámara microscópica Leica DMLB</td></tr><tr><td></td><td>Leica Leica</td><td></td><td>DFC 320</td></tr><tr><td>Software de análisis</td><td>Leica Leica</td><td></td><td>Qwin V3</td></tr><tr><td colspan="4"><digestión enzimática fuerte></solución salina equilibrada ></td></tr> <tr><td>Hank (HBSS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>55021C</td><td></td></tr><tr><td>Ditiotreitol (DTT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DTT-RO</td><td></td></tr><tr><td>Colagenasa II</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C6885</td><td></td></tr><tr><td>DNasa</td><td>Sigma-Aldrich 10104159001</td><td>&nbsp; ROCHE</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R8758</td><td></td></tr><tr><td>Pinza</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>de plataforma Balancín</td><td>Grant instruments</td><td>PMR-30</td><td></td></tr><tr><td>50 ml tubos cónicos Falcon</td><td></td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>40 &micro; m filtro de células</td><td>Falcon</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td colspan="4"><fuerte>Citometría de flujo</solución</td></tr> <tr><td>salina tamponada >fosfato fuerte (PBS)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>LIVE/DEAD Aqua kit de tinción de células muertas fijables</td><td>Life Technologies</td><td>L34957</td><td></td></tr><tr><td>CD45</td><td>BD</td><td>555485</td><td></td></tr><tr><td>CD3</td><td>BD</td><td>557757</td><td></td></tr><tr><td>CD20</td><td>BD</td><td></td><td></td>335829</tr><tr><td>CD56</td><td>Biolegend</td><td>318332</td><td></td></tr><tr><td>CD66abce</td><td>Miltenyi</td><td>130-101-132</td><td></td></tr><tr><td>HLA-DR</td><td>BD</td><td></td><td></td></tr> 555813 <tr><td>CD14</td><td>BD</td><td>557831</td><td></td></tr><tr><td>CD16</td><td>Biolegend</td><td>302026</td><td></td></tr><tr><td>CD11c</td><td>BD</td><td>560369</td><td></td></tr><tr><td>CD1c</td><td>Miltenyi</td><td>130-098-009</td><td></td></tr><tr><td>CD141</td><td>Miltenyi</td><td>130-090-514</td><td></td></tr><tr><td>CD103</td><td>Biolegend</td><td>350212</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehído</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F8775</td><td></td></tr><tr><td>LSR II Citómetro de flujo</td><td>BD</td><td></td><td>Citómetro</td></tr><tr><td>de flujo FlowJo</td><td>FlowJo</td><td></td><td>Software para análisis</td></tr></tbody></table>

las células dendríticas humanas de pulmón: distribución espacial y fenotípica de identificación en endobronquial biopsias mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo

Human Lung Dendritic Cells: Spatial Distribution and Phenotypic Identification in Endobronchial Biopsies Using Immunohistochemistry and Flow Cytometry

Los pulmones están constantemente expuestos al entorno externo, que además de partículas inofensivas, también contiene patógenos, alérgenos y toxinas. Con el fin de mantener la tolerancia o inducir una respuesta inmunitaria, el sistema inmunitario debe manejar adecuadamente los antígenos inhalados. Las células dendríticas pulmonares (CD) son esenciales para mantener un delicado equilibrio e iniciar la inmunidad cuando sea necesario sin causar daños colaterales a los pulmones debido a una respuesta inflamatoria exagerada. Si bien existe una comprensión detallada del fenotipo y la función de las células inmunitarias como las CD en la sangre humana, el conocimiento de estas células en tejidos menos accesibles, como los pulmones, es mucho más limitado, ya que los estudios de muestras de tejido pulmonar humano, especialmente de individuos sanos, son escasos. En este trabajo se presenta una estrategia para generar una caracterización espacial y fenotípica detallada de las CD residentes en tejido pulmonar en humanos sanos que se someten a una broncoscopia para la toma de muestras de biopsias endobronquiales. Se pueden recolectar varias biopsias pequeñas de cada individuo y posteriormente se pueden incrustar para un corte ultrafino o digerir enzimáticamente para un análisis de citometría de flujo avanzado. Los protocolos descritos se han optimizado para obtener la máxima información de pequeñas muestras de tejido que, en condiciones de estado estacionario, contienen solo una baja frecuencia de CD. Si bien el presente trabajo se centra en las CD, los métodos descritos pueden ampliarse directamente para incluir otras células (inmunitarias) de interés que se encuentran en el tejido pulmonar de la mucosa. Además, los protocolos también son directamente aplicables a muestras obtenidas de pacientes con enfermedades pulmonares en las que la broncoscopia forma parte del establecimiento del diagnóstico, como la enfermedad pulmonar obstructiva crónica (EPOC), la sarcoidosis o el cáncer de pulmón.

Los estudios que caracterizan las células del tejido residente respiratorias humanas inmunes, incluyendo países en desarrollo, es limitado, debido en gran parte al hecho de que quirúrgicamente eliminado o tejido pulmonar humano completo es escasa. Aquí, un método menos invasivo para obtener tejido pulmonar a partir de biopsias endobronquiales (EBB) de voluntarios sanos y protocolos desarrollados para estudiar las células inmunes en los tejidos mediante inmunohistoquímica o citometría de ...

Las células inmunitarias residentes en los pulmones, incluidas las células dendríticas (CD) en los seres humanos, son fundamentales para la defensa contra patógenos y alérgenos inhalados. Sin embargo, debido a la escasez de tejido pulmonar humano, los estudios son limitados. En este trabajo se presentan protocolos para el procesamiento de biopsias endobronquiales de mucosa humana para el estudio de CDs pulmonares mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo.

Las células dendríticas humanas de pulmón: distribución espacial y fenotípica de identificación en endobronquial biopsias mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo

The lungs are constantly exposed to the external environment, which in addition to harmless particles, also contains pathogens, allergens, and toxins. In ...

La principal ventaja de esta técnica es que se puede generar mucha información a partir de pequeños tejidos obtenidos durante la broncoscopia. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en inmunología mucosal, donde la broncoscopia forma parte del establecimiento del diagnóstico, como en la EPOC, la sarcoidosis o el cáncer de pulmón. La demostración visual de este procedimiento permitirá que personas nuevas en este método reconozcan cuándo la digestión enzimática ha finalizado. Realizará esta demostración, junto con Faezzah Baharom, Greg Rankin, un posdoctorado del laboratorio de nuestro colaborador en Ume

human-lung-dendritic-cells-spatial-distribution-phenotypic

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Una preparación altamente purificada de células dendríticas del pulmón del ratón se describe. Especial énfasis se da al aislamiento de subgrupo de células dendríticas convencionales.

Aislamiento de células dendríticas del pulmón de ratón

Se describe una estrategia para controlar la maduración y la migración de las células dendríticas pulmonares en respuesta a la ovoalbúmina en la configuración de las vías respiratorias inflamación inducida por ovalbúmina alérgica. Esta estrategia se puede modificar para evaluar la migración de las células dendríticas pulmonares en la configuración de la infección.

El análisis de la maduración pulmonar de células dendríticas y migración durante la inflamación de las vías alérgica

Este video describe la técnica de tinción inmunohistoquímica para identificar células dendríticas a partir de biopsias endobronquiales.

Tinción inmunohistoquímica: un método para obtener información espacial a partir de secciones delgadas de tejido

Este video demuestra el uso de la citometría de flujo para identificar y contar varias células inmunitarias en el líquido de lavado broncoalveolar. Inicialmente, las células inmunitarias individuales se identifican utilizando un colorante de viabilidad, seguido de la tinción diferencial de las proteínas marcadoras de superficie, lo que permite la enumeración precisa de cada tipo de célula.

Identificación y enumeración de células inmunitarias en líquido de lavado broncoalveolar mediante citometría de flujo

Se describe un método para generar la precisión de corte de pulmón rebanadas (PCLS) y la inmunotinción ellos para visualizar la localización de diversos tipos de células inmunes en el pulmón. Nuestro protocolo se puede extender a visualizar la ubicación y la función de muchos tipos celulares diferentes bajo una variedad de condiciones.

Precisión de corte pulmón de ratón Rebanadas para visualizar las células en vivo pulmonar dendríticas

Describimos un método para procesar el líquido de lavado broncoalveolar y la sangre periférica emparejada de individuos infectados crónicamente por el VIH en terapia antirretroviral para evaluar los reservorios pulmonares del VIH. Estos métodos dan lugar a la adquisición de células T CD4 altamente puras y macrófagos alveolares que posteriormente pueden utilizarse para inmunofenotipado y cuantificaciones de ADN/ARN de VIH por reacción en cadena de polimerasa ultrasensible.

Procesamiento de líquido de lavado broncoalveolar y sangre emparejada para macrófago alveolar y CD4+ inmunofenotipado de células T y evaluación del embalse de VIH

Este artículo proporciona una metodología detallada para los enfoques de disociación tisular y fraccionamiento celular que permiten el enriquecimiento de células epiteliales viables de las regiones proximal y distal del pulmón humano. En este caso, estos enfoques se aplican para el análisis funcional de células progenitoras epiteliales pulmonares mediante el uso de modelos de cultivo de organoides 3D.

Aislamiento y enriquecimiento de células progenitoras epiteliales pulmonares humanas para cultivo de organoides

Haemophilus influenzae induce inflamación en el tracto respiratorio. Este artículo se centrará en el uso de la citometría de flujo y la microscopía confocal para definir las respuestas inmunes de fagocitos y linfocitos en respuesta a esta bacteria.

Evaluación de las respuestas inmunitarias respiratorias a Haemophilus influenzae

En este estudio, presentamos un protocolo eficaz y reproducible para aislar las poblaciones inmunes del sistema respiratorio murino. También proporcionamos un método para la identificación de todas las células inmunes innatas y adaptativas que residen en los pulmones de ratones sanos, utilizando un panel de citometría de flujo basado en 9 colores.

Análisis citométrico de flujo para la identificación de las células inmunes innatas y adaptativas del pulmón murino

Tregs son supresores potentes del sistema inmune. Hay una falta de marcadores de superficie única para definir, por lo tanto, las definiciones de células T reguladoras son principalmente funcionales. A continuación se describe un...

Humano In Vitro Supresión como herramienta de cribado para el reconocimiento de un estado inicial de desequilibrio inmunológico

Aprenda a procesar biopsias endobronquiales para estudiar células dendríticas pulmonares mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo. Este protocolo permite analizar la respuesta inmune en tejido humano.

Las células dendríticas humanas de pulmón: distribución espacial y fenotípica de identificación en endobronquial biopsias mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo (Video) | JoVE Journal

Las células dendríticas humanas de pulmón: distribución espacial y fenotípica de identificación en endobronquial biopsias mediante inmunohistoquímica y citometría de flujo

Explorar más videos