Name: La maduración de madre humanas cardiomiocitos derivado de células en Biowires uso de la estimulación eléctrica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 11 s
Description: Aprende a madurar cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes humanas mediante cultivos tridimensionales y estimulación eléctrica controlada. Este método mejora la funcionalidad cardíaca para pruebas de fármacos.

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Este trabajo fue apoyado por una subvención-en-Ayudas de la Heart and Stroke Foundation de Canadá (G-14-0.006.265), las subvenciones de funcionamiento de los Institutos Canadienses de Investigación en Salud (137352 y 143066), y una beca de la Fundación JP Bickell (1013821 ) al SSN.

1. Diseño principal y Fabricación NOTA: El uso de litografía blanda para la fabricación del dispositivo. Hacer una de dos capas SU-8 maestro para polidimetilsiloxano de moldeo (PDMS). <ol><li> Diseñar el dispositivo mediante un diseño y elaboración de software (Figura 1A, izquierda). Dibuje cada capa del maestro por separado. Imprimir el diseño del dispositivo en dos fotomáscaras en 20.000 dpi, correspondiente a las dos capas del maestro 15. Ajuste el modelo dispositivo como transparente y sus alrededores como oscuro; las máscaras servirán como plantilla para transferir ópticamente el patrón dispositivo sobre SU-8 mediante litografía (como se describe por otros 15). </li><li> Dispense aproximadamente 4 ml de SU-8 50 sobre el centro de una oblea de silicio de 4 pulgadas. Escudo la SU-8 50 uniformemente sobre la oblea usando un revestidor de giro haciendo girar a 2.000 revoluciones por minuto (RPM) durante 30 s. Hornear la oblea en un 95 ° C placa de cocción durante 10 min. Exponer la oblea a los rayos ultravioleta li (UV)lucha a 200 mJ / cm2. </li><li> Verter sobre 4 ml de SU-8 2050 en el centro de la oblea y centrifugado a 2500 rpm durante 30 s. Hornear en el 95 ° C placa de cocción durante 15 min. Enfriar a temperatura ambiente (TA). </li><li> Repita el paso 1.3 dos veces más. </li><li> Cubrir la oblea recubierta con la fotomáscara transparencia de primera capa. Exponer la oblea a la luz UV a 270 mJ / cm 2 para hacer que la primera capa. Hornear en el 95 ° C placa de cocción durante 15 min. </li><li> Hacer la segunda capa de SU-8 2050 repitiendo el paso 1.3 dos veces. </li><li> Alinear la máscara de segunda capa a las características de la primera capa utilizando un alineador de máscara. A continuación, se exponen a la luz UV a 240 mJ / cm2. Hornear a 95 ° C durante 15 min. NOTA: El tiempo de exposición se determina por la dosis de UV total requerida y la intensidad de salida de luz UV medido en el día antes de su uso. </li><li> Desarrollar la oblea sumergiéndolo en acetato de propilenglicol monometil éter (PGMEA) y agitación a 200 rpm durante 30 min en un agitador orbital. </li><li> Lugarel maestro en una placa de Petri y cuidadosamente vierte la mezcla (base de agente de reticulación en una proporción de 10: 1 en peso) PDMS en el centro de la oblea. Cubrir todas las características y evitar burbujas de aire. </li><li> El calor en un horno a 70 ° C durante 2 h. Utilice una cuchilla afilada para cortar alrededor del borde de la plantilla biowire PDMS (Figura 1A, derecha). Pelar el PDMS del maestro. Recorte el dispositivo con la hoja. Ponga la plantilla biowire PDMS en una bolsa de esterilización y vapor de agua en autoclave a 121 ° C durante 20 min. </li><li> En una cabina de bioseguridad (BSC), colocar el PDMS biowire plantilla en una placa de Petri. Use pinzas para sostener y montar una pieza de sutura estéril quirúrgico de seda (6-0) en el centro del canal de los pocillos PDMS por asientos en las ranuras en ambos extremos del canal (Figura 1B-I). </li></ol> 2. Creación de la Cámara de estimulación eléctrica <ol><li> Hacer un par de piezas de policarbonato rectangulares (longitud x anchura x grosor: 2 cm x0,85 cm x 0,35 cm) y utilizarlos como el bastidor de la cámara de estimulación eléctrica (Figura 2). </li><li> Perforar dos 3 mm de ancho agujeros 2 cm de distancia a lo largo de la línea central de cada pieza de soporte de policarbonato. </li><li> Cortar dos piezas de 1,5 cm varillas larga de carbono. Perforar un agujero de 1 mm de ancho a través de la varilla de carbono de aproximadamente 3 mm del extremo. Pase un alambre de platino a través del agujero de la varilla de carbono y apriete el cable envolviéndolo alrededor de la varilla de carbono. Adjuntar un clip al otro extremo del alambre de platino para la conexión posterior con el estimulador eléctrico. </li><li> Introduzca las varillas de carbono en las piezas del marco de policarbonato. Coloque el marco ensamblada con las varillas de carbono en un pocillo de una placa de seis pocillos. </li><li> Verter 2 ml de PDMS en el pozo. Sumergir la parte inferior de los marcos de policarbonato en PDMS mientras se mantiene el nivel de la superficie PDMS cerca pero no llegar a la parte inferior de las varillas de carbono. El calor en un horno a 70 ° C durante 2 h. </li><li> Tomar la cámara de la estimulación eléctrica de los seisplaca -bien y puso en una bolsa de esterilización para esterilización con vapor a 121 ° C durante 20 min. </li></ol> 3. enzimática La disociación de HPSC-CM <ol><li> Inducir HPSC de diferenciarse en cardiomiocitos utilizando un protocolo establecido 4. NOTA: En pocas palabras, generar cardiomiocitos a través de cuerpo embrioide establecido protocolos (EB) en el tallo pro medio a través de la suplementación secuencial con proteína morfogenética ósea 4, factor de crecimiento de fibroblastos básico, activina A, factor de crecimiento endotelial vascular, y Dickkopf homólogo 1 4. Utilice EBS desde el día 20-34 de diferenciación para hacer biowires. </li><li> Recoge los EBs de la placa de bajo adjunto con una punta de pipeta P1,000 y transferir a un tubo cónico. Se precipitan por centrifugación durante 5 min a 125 xg y RT. Eliminar el sobrenadante y resuspender el pellet con pre-calentado, 37 ° C colagenasa de tipo I que contiene 1% desoxirribonucleasa I (ADNasa I). Incubar a 37 ° C durante 2 hpara la digestión. </li><li> Añadir 5 ml de pre-calentado, 37 ° C el medio de lavado y centrifugar durante 5 min a 125 xg y RT. Descartar el sobrenadante. Resuspender el sedimento con 2 ml de solución de tripsina / ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) y se incuba a 37 ° C durante 5 min. </li><li> Añadir 1 ml de medio de parada que contiene 3% (v / v) DNasa I. </li><li> Adjuntar una aguja 20 G (0,9 mm) a una jeringa de 5 ml y pasar la suspensión a través de él EB 3-5 veces. </li><li> Añadir 7 ml de medio de lavado y centrifugar a 280 xg durante 5 min. Descartar el sobrenadante. Resuspender el precipitado en un medio (IMDM) de Dulbecco modificado por Iscove y almacenar en hielo. Determinar el número de células con un hemocitómetro. Tomar 0,5 x 10 6 células y sedimento por centrifugación a 280 xg durante 5 min. Eliminar el sobrenadante. </li><li> Pre-fresco todos los componentes del gel en hielo antes de mezclarlos en un tubo estéril. Mezclar los siguientes componentes del gel de colágeno (concentración final): 2,1 mg ml / tipo de colágeno de cola de rata I, glucosa 24,9 mM, NaH 23,8 mMCO 3, NaOH mM 14,3, HEPES 10 mM, y 10% de matriz extracelular en medio 1x M199. Añadir el colágeno y matriz extracelular pasado. Mezclar pipeteando arriba y abajo. </li><li> Resuspender 0,5 x 10 6 células con 3,5 l de gel de colágeno y mezclar bien. </li><li> Utilice una punta de pipeta P10 añadir 4 l de la suspensión celular en el 0,5 cm de longitud de canal (Figura 1B-II). Ajustar la posición de la sutura con pinzas estériles si es necesario. </li><li> Cubrir el fondo de la placa de Petri con solución salina tamponada con fosfato estéril (PBS), asegurándose de no tocar el gel. Incubar a 37 ° C durante 30 min. </li><li> Sustituir el PBS con 12 ml de medio de cultivo (por ejemplo, tallo pro o medio recomendado por el fabricante de células), lo suficiente para cubrir las células (Figura 1B-III). Cultura en una incubadora a 37 ° C durante 1 semana. Cambiar el medio cada dos días. </li></ol> 4. Estimulación eléctrica para Biowire Cultivo <ol><li> Enel BSC, añadir 2 ml de PBS a cada pocillo de una placa de seis pocillos que albergará una cámara de estimulador eléctrico. Use pinzas estériles para colocar suavemente el dispositivo de estimulación eléctrica en autoclave en el pozo. Desechar el PBS del pozo. </li><li> Cubrir las varillas de carbono con 5 ml de medio de cultivo pre-calentado. Use pinzas estériles para montar los biowires en la cámara de estimulación eléctrica y orientarlos perpendicular a las varillas de carbono (Figura 2). </li><li> Coloque la tapa en la parte superior de la placa de seis pocillos, pero dejar suficientes hilos de platino que llegan fuera de la placa para conectar con el estimulador eléctrico. Colocar la placa de seis pocillos en un incubador de cultivo celular a 37 ° C y conectar el alambre de platino al estimulador eléctrico. </li><li> Estimular el biowires usando un estimulador eléctrico con la siguiente configuración: pulso repitiendo bifásica, duración del pulso de 1 ms, 3 V / cm, y 1 pulso por segundo (PPS). Elevar el PPS cada 24 h para los siguientes valores: 1,83, 2,66, 3,49, 40,82, 5,15, y 6. Cambiar el medio cada dos días. </li><li> Observe la contractilidad de los cardiomiocitos en respuesta a la estimulación eléctrica bajo un microscopio a un aumento de 10X. NOTA: Después de una semana de la estimulación, las biowires llega a la madurez (véase la sección de resultados). </li></ol>

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</ol>

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Este manuscrito describe la configuración e implementación de la plataforma de ingeniería, biowire, para mejorar la maduración de HPSC-CM. El dispositivo se puede realizar en instalaciones de microfabricación estándar, y biowires puede ser producido con técnicas de cultivo celular comunes y un estimulador eléctrico. Hasta donde sabemos, no existe un método similar al reportado biowires. Esta estrategia revela que la mejora de las propiedades de maduración eran dependientes de la pauta de est...

terapia basada en células es una de las estrategias más prometedoras e investigados para lograr la reparación cardíaca / regeneración. Se ha ayudado por la ingeniería de tejidos cardíaco y el co-suministro de biomateriales 1, 2. La mayoría de las fuentes de células disponibles se han estudiado en modelos animales por sus efectos potencialmente beneficiosos sobre dañadas o envejecidas corazones enfermos 3. En particular, se han hecho esfuerzos significativos para utilizar células madre pluripotentes humana (HPSC) derivada de los cardiomiocitos (HPSC-CM), una fuente de células autólogas potencialmente ilimitado para la ingeniería de tejido cardíaco. HPSC-CM puede producirse usando varios protocolos establecidos 4, 5, 6. Sin embargo, las células obtenidas muestran fenotipos fetales similar, con una gama de características inmaduras en comparación con los cardiomiocitos ventriculares adultos 7, </sup&gt; 8. Esto puede ser un obstáculo para la aplicación de HPSC-CM como modelos de tejido cardiaco de adultos en la investigación y el descubrimiento de fármacos en el desarrollo de modelos de enfermedades cardiacas adultas 9. Con el fin de superar esta limitación de inmadurez fenotípica, nuevos enfoques se han investigado activamente para promover la maduración de los cardiomiocitos. Los primeros estudios revelaron propiedades pro-maduración eficaces en cardiomiocitos de rata neonatal a través cíclico mecánico 10 o la estimulación eléctrica 11. Compactación Gel y la estimulación mecánica cíclica también se mostró a mejorar algunos aspectos de la maduración HPSC-CM 12, 13, con la mejora mínima de las propiedades de manipulación electrofisiológicos y de calcio. Por lo tanto, un sistema de plataforma llamada &quot;alambre biológica&quot; (biowire) fue ideado por proporcionar ambas claves estructurales y estimulación del campo eléctricon para mejorar la maduración de HPSC-CM 14. Este sistema utiliza una plataforma microfabricado para crear tejido cardíaco alineados que es susceptible a la estimulación de campo eléctrico. Esto se puede utilizar para mejorar la madurez estructural y electrofisiológica de HPSC-CM. A continuación, describimos los detalles de fabricación de tales biowires.

<table><tbody><tr><td>Ácido L-ascórbico</td><td>Sigma</td><td>A-4544</td><td>hPSC-CM compuesto de medios de cultivo</td></tr><tr><td>AutoCAD</td><td>Autodesk, Inc</td><td></td><td>Software para diseñar</td></tr><tr><td>dispositivo Varillas de carbono, &Oslash; 3 mm</td><td></td><td></td><td>Componente de la cámara del estimulador eléctrico</td></tr><tr><td>Colágeno, tipo 1, cola de rata</td><td>BD Biosciences</td><td>354249</td><td>Gel de colágeno: 2,1 mg/mL de colágeno de cola de rata tipo I en 24,9 mM de glucosa, 23,8 mM de NaHCO3, 14,3 mM de NaOH, 10 mM de HEPES, en 1x M199 con 10 % de Matrigel reducido en factor de crecimiento.</td></tr><tr><td>Colagenasa tipo I&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>C0130</td><td>0,2% colagenasa tipo I (p/v) y 20% FBS (v/v) en PBS con Ca2+ y Mg2+. Esterilizar con 0.22 &mu; m filtrar y hacer alícuotas de 12 mL. Almacenar a -20 &deg;C.</td></tr><tr><td>Desoxirribonucleasa I (DNasa I)</td><td>EMD Millipore</td><td>260913-25MU</td><td>Prepare una solución madre de DNasa I de 1 mg/mL en agua. Filtre el estéril y almacene alícuotas de 0,5 mL a &menos; 20 &deg; C</td></tr><tr><td>Taladro y brocas (&Oslash; 1 mm y 2 mm)</td><td>Dremel</td><td></td><td>Taladro agujeros en marcos de policarbonato</td></tr><tr><td>Estimulador eléctrico</td><td>Grass</td><td>s88x</td><td></td></tr><tr><td>Suero fetal bovino (FBS)</td><td>WISENT Inc.</td><td>080-450</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Glucosa&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>G5767</td><td>Componente de gel</td></tr><tr><td>de colágeno L-Glutamina</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>H2O</td><td>MilliQ</td><td></td><td>18.2 M&Omega; &punto medio; cm a 25 &deg; C, ultrapuro, para hacer todas las soluciones</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H4034</td><td>Componente de gel de colágeno</td></tr><tr><td>Placa caliente</td><td>Torrey Pines</td><td>HS40</td><td></td></tr><tr><td>Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12440053</td><td></td></tr><tr><td>alineador de mascarillas</td><td>EVG&nbsp;</td><td>EVG 620</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel, factor de crecimiento reducido&nbsp;</td><td>Corning</td><td>354230</td><td>Componente de gel de colágeno</td></tr><tr><td>Medio 199 (M199)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11825015</td><td>Componente de gel de colágeno</td></tr><tr><td>Monotioglicerol (MTG)</td><td>Sigma</td><td>M-6145</td><td>hPSC-CM compuesto de medios de cultivo</td></tr><tr><td>Agitador orbital</td><td>VWR</td><td>89032-088</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/estreptomicina (P/S)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15070063</td><td></td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato (PBS) con Ca2+ y Mg2+&nbsp;</td>Placa de <td>14040133</td><td></td> <td>Thermo Fisher Scientific</td></tr><tr><td>(6 pocillos)</td>Placa de <td>353046</td><td></td> <td>Corning</td></tr><tr><td>(6 pocillos), fijación baja</td><td>Alambres de platino Corning</td><td>3471</td><td></td></tr>, <tr><td>0,2 mm</td><td></td><td></td><td>Componente de la cámara del estimulador eléctrico</td></tr><tr><td>Polidimetilsiloxano (PDMS)</td><td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>Éter monometílico de propilenglicol acetato (PGMEA)</td><td>Doe & Ingalls Inc.</td><td></td><td>Para desarrollar la bolsa de oblea</td></tr><tr><td>, Convertidores de apertura despegable</td><td></td><td>92308</td><td>Para esterilización por vapor</td></tr><tr><td>Oblea de silicona, 4 pulgadas</td><td>UniversityWafer Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato de sodio (NaHCO3)</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td>Componente de gel</td></tr><tr><td>de colágeno Hidróxido de sodio</td><td>Sigma</td><td>S8045</td><td>Componente de gel de colágeno</td></tr><tr><td>Recubridor Sprin</td><td>Sistemas de recubrimiento especiales</td><td>G3P-8</td><td></td></tr><tr><td>Medio de cultivo StemPro-34</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10639011</td><td>Medio de cultivo hPSC-CM. Para hacer 50 mL, agregue 1.3 mL de suplemento, 500 &mu; L de 100 veces; L-Glutamina, 250 &mu; L de 30 mg/mL de transferrina, 500 &mu; l de 5 mg/mL de ácido ascórbico, 150 &mu; L de 26 &mu; l /2 mL de monotioglicerol (MTG) y 500 &mu; L (1 %) penicilina/estreptomicina.</td></tr><tr><td>Medios</td><td></td><td></td><td>de parada Medio de lavado: FBS (1:1)</td></tr><tr><td>SU-8 50&nbsp;</td><td>MicroChem Corp.</td><td></td><td>fotorresistente, componente maestro</td></tr><tr><td>SU-8 2050&nbsp;</td><td>MicroChem Corp.</td><td></td><td>fotorresistente, componente maestro</td></tr><tr><td>Transferrin</td><td>Roche</td><td>10-652-202</td><td>hPSC-CM compuesto de medios de cultivo</td></tr><tr><td>Tripsina/EDTA, 0,25%</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>25200056</td><td>hPSC-CM compuesto de medios de cultivo</td></tr><tr><td>Medio de lavado</td><td></td><td></td><td>IMDM que contiene 1% de penicilina/estreptomicina</td></tr></tbody></table>

la maduración de madre humanas cardiomiocitos derivado de células en biowires uso de la estimulación eléctrica

Maturation of Human Stem Cell-derived Cardiomyocytes in Biowires Using Electrical Stimulation

Los cardiomocitos derivados de células madre pluripotenciales humanas (hPSC-CMs) han sido una fuente prometedora de células y por lo tanto han fomentado la investigación de sus aplicaciones potenciales en la investigación cardíaca, incluyendo el descubrimiento de fármacos, modelación de enfermedades, ingeniería de tejidos y medicina regenerativa. Sin embargo, las células producidas por los protocolos existentes muestran un rango de inmadurez en comparación con los cardiomiocitos ventriculares adultos nativos. Se han hecho muchos esfuerzos para madurar hPSC-CMs, con sólo maduración moderada alcanzada hasta el momento. Por lo tanto, se ha ideado un sistema de ingeniería, llamado biowire, proporcionando señales tanto físicas como eléctricas para conducir los hPSC-CM a un estado más maduro in vitro . El sistema utiliza una plataforma microfabricada para sembrar hPSC-CMs en gel de colágeno tipo I a lo largo de una sutura moldeada rígida para ensamblar en tejido cardiaco alineado (biowire), que es sometido a estimulación de campo eléctrico con una frecuencia progresivamente creciente. En comparación con los controles no estimulados,estimularon biowired cardiomiocitos exhiben un grado mejorado de maduración estructural y electrofisiológico. Tales cambios son dependientes de la velocidad de estimulación. Este manuscrito describe en detalle el diseño y creación de biowires.

El racional para el uso de una sutura en las biowires es servir como una plantilla para la formación de constructos 3D que se alinean en un eje y imitan la forma de fibras cardíacas. Se demuestra que después de siete días de cultivo en el biowire, las células remodelado el gel alrededor de la sutura (Figura 3A). Las células montadas a lo largo del eje de la sutura para formar alineados tejido cardíaco (Figura 3). Después de 7 días de precultivo, las biow...

La plataforma biowire cardiaca es un método in vitro utilizado para madurar embrionario humano y los cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidas (HPSC-CM) combinando el cultivo de células en tres dimensiones con la estimulación eléctrica. Este manuscrito presenta la configuración detallada de la plataforma biowire cardíaco.

La maduración de madre humanas cardiomiocitos derivado de células en Biowires uso de la estimulación eléctrica

Human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes (hPSC-CMs) have been a promising cell source and have thus encouraged the investigation of their ...

El objetivo general de este procedimiento es utilizar métodos controlados de cultivo celular tridimensional con estimulación eléctrica para promover la maduración de cardiomiocitos derivados de células madre embrionarias humanas e inducidas pluripotentes. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la ingeniería de tejidos cardíacos, como la forma en que diferentes parámetros de estimulación eléctrica o la duración del tiempo afectan la función y el estado de maduración de las células cardíacas. Los resultados finales son tejidos cardíacos humanos ingenierizados con una madurez mejorada.Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia aplicaciones de diagnóstico, como la evaluación de la seguridad y eficacia de nuevos fármacos, ya que los cardiomiocitos con características maduras, tales como la propagación eléctrica, probablemente sirvan como modelos más precisos de las células cardíacas humanas en estudios de cribado farmacológico. Combine el monómero de PDMS y el agente de curado en una proporción de 10:1 y mezcle bien. Deje reposar durante cinco minutos para desgasificar.Luego, cargue una placa de Petri que contiene el molde maestro para la plantilla

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

Hemos establecido un protocolo para la inducción de cardioblastos directa de pluripotentes células madre embrionarias humanas mantenidas en condiciones definidas con pequeñas moléculas, lo que permite la derivación de una gran cantidad de células progenitoras cardiacas humanas y funcionales cardiovasculares cardiomiocitos para su reparación.

Derivación eficiente de los Derechos Humanos precursores cardiacos y cardiomiocitos de pluripotentes células madre embrionarias humanas mediante la inducción de moléculas pequeñas

Aquí, presentamos un protocolo de diferenciación de cardiomiocitos robusto, rápido y escalable para células madre pluripotentes humanas (hPSCs). Los cardiomiocitos obtenidos mediante este método a gran escala pueden proporcionar un número de células suficiente para su uso eficaz en el modelado de enfermedades cardiovasculares humanas, el cribado de fármacos de alto rendimiento y las posibles aplicaciones clínicas.

La producción a gran escala de los cardiomiocitos de células madre pluripotentes utilizando un pequeño protocolo de diferenciación basada en la molécula altamente reproducible

La caracterización electrofisiológica de los cardiomiocitos derivados de las células madre pluripotentes humanas (hPSC-CMs) es crucial para el modelado de la enfermedad cardiaca y para la determinación de las respuestas de los fármacos. Este protocolo proporciona la información necesaria para disociar y planificar hPSC-CM en arrays de múltiples electrodos, medir su potencial de campo, y un método para analizar intervalos QT y RR.

Análisis Electrofisiológico de Cardiomiocitos Pluripotentes Humanos Pluripotentes (hPSC-CMs) Usando Matrices Multi-Electrodo (MEAs)

Aquí, presentamos un método para aprovechar eficientemente el potencial de diferenciación cardiaca de jóvenes fuentes de células madre mesenquimales humanas con el fin de generar las células funcionales, contratantes, cardiomiocitos-como en vitro.

In Vitro Diferenciación de células madre mesenquimales humanas en células funcionales en cardiomiocitos

Aquí presentamos un protocolo para la formación de una población celular mediante estímulos eléctricos y mecánicos, emulando la fisiología cardiaca. Esta estimulación electromecánica realza el potencial cardiomiogenético de las células tratadas y es una estrategia prometedora para la terapia celular más, modelado de la enfermedad y drogas.

Simultánea estimulación eléctrica y mecánica para mejorar el potencial de las células cardiomiogenético

Este artículo contiene un conjunto de protocolos para el desarrollo de redes de cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidas por el hombre (hiPSC-CM) cultivadas en placas MEA multipocillos para electroportar la membrana celular de forma reversible para mediciones potenciales de acción. Las grabaciones de alto rendimiento se obtienen de los mismos sitios de celda repetidamente durante días.

Redes de cardiomiocitos derivados de iPSC humanos en matrices de microelectrodos multipolos para grabaciones potenciales de acción recurrente

Este protocolo describe el procedimiento para secimiento y cultivo de rebanadas cardíacas humanas para pruebas de fármacos preclínicos y detalla el uso de mapeo óptico para registrar el voltaje transmembrano y las señales de calcio intracelular simultáneamente a partir de estas rebanadas.

Evaluación de electrofisiología cardíaca preclínica por doble voltaje y mapeo óptico de calcio de cortes cardíacos organotípicos humanos

Los cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidos por humanos (hiPSC-CM) ofrecen una alternativa al uso de animales para la detección preclínica de cardiotoxicidad. Una limitación para la adopción generalizada de hiPSC-CM en la detección de toxicidad preclínica es el fenotipo inmaduro de las células. Aquí se presentan protocolos para la maduración robusta y rápida de hiPSC-CM.

Detección de cardiotoxicidad de alto rendimiento utilizando monocapas maduras de cardiomiocitos derivadas de células madre pluripotentes inducidas por humanos

Aquí, demostramos un método no invasivo de evaluación de contractilidad de dispositivos médicos cardíacos utilizando monocapas 2D de cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidas por humanos (hiPSC-CM), chapadas en un sustrato flexible, junto con microscopía basada en video. Esta herramienta será útil para la evaluación in vitro de las propiedades contráctiles de los dispositivos de electrofisiología cardíaca.

Evaluación de la terapia de modulación de la contractilidad cardíaca en cardiomiocitos derivados de células madre humanas 2D

Aquí, se describe un método establecido para realizar mediciones de contractilidad y calcio en cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidas humanas utilizando una plataforma basada en óptica. Esta plataforma permite a los investigadores estudiar el efecto de las mutaciones y la respuesta a diversos estímulos de forma rápida y reproducible.

Mediciones en tiempo real de parámetros de calcio y contractilidad en cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidas humanas

Se presenta un método reproducible para generar tejidos miocárdicos en 3D combinando andamios de escritura por electrohilatura por fusión (MEW), policaprolactona (PCL) e hidrogeles de fibrina con cardiomiocitos y fibroblastos derivados de hiPSC. Esta técnica ofrece un control preciso sobre la arquitectura del andamio y se puede aplicar en pruebas preclínicas de medicamentos y modelado de enfermedades cardíacas.

Generación de tejido miocárdico humano en 3D mediante escritura por electrohilado de fusión de andamios de policaprolactona y células cardíacas derivadas de hiPSC

Aprende a madurar cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes humanas mediante cultivos tridimensionales y estimulación eléctrica controlada. Este método mejora la funcionalidad cardíaca para pruebas de fármacos.

La maduración de madre humanas cardiomiocitos derivado de células en Biowires uso de la estimulación eléctrica

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