23 de marzo de 2017
Aquí, se muestra cómo analizar enrutamiento dendríticas de las neuronas medulares de Drosophila en columnas y capas. El flujo de trabajo incluye una visualización dual técnica de imagen para mejorar la calidad de imagen y herramientas computacionales para el seguimiento, el registro de los cenadores dendríticas en la matriz de la columna de referencia y para el análisis de las estructuras dendríticas en el espacio 3D.
El objetivo general de este protocolo es analizar el enrutamiento dendrico de las neuronas adultas de Drosophila medulla en columnas y capas para caracterizar patrones dendricos, determinar los tipos de células en función de la morfología e identificar mutantes. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la neurociencia, incluido el mapeo de los circuitos cerebrales y la comprensión del mecanismo de cableado de la dendrita. La principal ventaja de esta técnica es que transmite las propiedades dendríticas en el espacio tridimensional, mejorando así la comprensión de la lógica y las funciones del cableado dendrítico.
El objetivo de este procedimiento es adquirir dos pilas de imágenes de las neuronas de interés en dos orientaciones ortogonal, horizontal y frontal. Usando las técnicas estándar, se tiñeron cerebros de mosca disecados con anti-GFP de conejo y un anticuerpo que marca los axones fotorreceptores como anticuerpos primarios. A continuación, etiquete los anticuerpos primarios con anticuerpos secundarios fluorescentes y limpie el cerebro con glicerol al 70% y PBS 1X.
Para montar el cerebro en la orientación horizontal, transfiera un cerebro aclarado con glicerol a una gota de 20 microlitros de medio de montaje antidesvanecimiento depositado centralmente en el portaobjetos del microscopio. Luego, en un cubreobjetos, coloque pequeños parches de arcilla en las cuatro esquinas para evitar que el cubreobjetos aplaste el cerebro. Ahora, bajo un microscopio de disección, coloque los cerebros en la posición ventral hacia arriba.
Utilice la superficie dorsal convexa del cerebro como punto de referencia para identificar la orientación de la muestra de cerebro. Esto proporcionará una vista horizontal de la neurona. A continuación, coloque el cubreobjetos.
Utilizando un microscopio confocal, idealmente equipado con detectores GaAsP, obtenga la pila de imágenes de vista horizontal con un objetivo de alta apertura numérica y un zoom digital de 2,5. Adquiera al menos 180 secciones ópticas, tenga 512 píxeles cuadrados y un tamaño de paso de 2 micras. Después de tomar la primera pila de imágenes, retire el cubreobjetos del portaobjetos y vuelva a colocar el cerebro en la posición anterior hacia arriba, lo que proporciona una vista frontal.
Luego, usando la misma técnica, haga una nueva pila de imágenes de la vista frontal de las mismas neuronas fotografiadas en la vista horizontal. Asegúrese de registrar también la ubicación de la neurona de interés con respecto a la médula neuropal. La identificación de las mismas neuronas es factible con un aumento menor.
Sin embargo, si se pierde la señal porque el tejido es profundo, simplemente imagine la mitad ventral de su cerebro. Compruebe también si la muestra se movió mientras adquiría imágenes examinando las pilas de imágenes. La convolución de imágenes y la combinación de imágenes se detallan en el protocolo de texto.
El objetivo de este procedimiento es rastrear las neuritas y asignar puntos de referencia para su registro. Primero abra el archivo de imagen recombinado. A continuación, vaya a editar.
A continuación, muestre el ajuste de la pantalla y apague el canal fotorreceptor, que es rojo. A continuación, visualice la imagen en el modo de superación. Si el ordenador está equipado con un sistema de estereografía, encienda el estéreo y utilice el modo de búfer cuádruple para visualizar imágenes en 3D.
Agregue nuevos filamentos, vaya a superar, luego filamentos, y haga clic en la pestaña etiquetada omitir la creación automática, editar manualmente. A continuación, haga clic en la pestaña de dibujo y seleccione AutoDepth. A continuación, seleccione configuración.
Cambie la opción de línea e ingrese el número de píxel apropiado para una mejor visualización. Luego, alterne mostrar dendritas, punto de inicio y punto de ramificación, y establezca la calidad de renderizado en 100%Ahora seleccione la pestaña de dibujo y comience a trazar neuritas. Comience con el axón, luego pase a las dendritas.
El axón y las dendritas de las neuronas trans de la médula deben ser fáciles de diferenciar. Después de trazar las neuritas, vuelva a la configuración y desactive el punto de inicio y el punto de ramificación. A continuación, vaya a superar, luego a exportar.
Seleccione el objeto y guarde el filamento como un archivo de inventor. El siguiente paso es asignar puntos de referencia. Para comenzar, seleccione Mostrar ajuste de pantalla y active ambos canales de imagen.
Luego vaya a superar, luego a medir. Y en la pestaña de edición, alterne un canal específico y seleccione el canal fotorreceptor en este caso. Ahora asigne puntos de referencia para la capa superior.
Seleccione superar, luego puntos de medición y marque el comienzo de la capa m1 como capa superior. Utilice la función de plano de recorte para facilitar la asignación de puntos. El orden de los puntos es ecuatorial, ecuatorial anterior, anterior, ventral anterior, ventral, ventral posterior, posterior, ecuatorial posterior y centro.
Para encontrar el fotorreceptor central, es el que se asocia con la mayoría de los procesos dendríticos. A continuación, asigne los puntos de referencia para las capas R8 y R7 utilizando la misma técnica. Después de definir cada conjunto de puntos de referencia, exporte las coordenadas.
Seleccione estadísticas y, a continuación, valores detallados y específicos, y posición. A continuación, seleccione exportar estadísticas en la visualización de pestañas a archivo y guarde las coordenadas como un archivo CSV. A continuación, abra los tres archivos CSV en un editor de hojas de cálculo.
Copie y pegue las coordenadas de los 27 puntos de referencia en un nuevo archivo, siguiendo el orden de arriba, R8 y, a continuación, R7. Proceda siguiendo el protocolo de texto para la estandarización del registro no lineal de cuerpo rígido y TPS para la configuración ventral derecha en el cálculo de las frecuencias de ramificación y terminación dendríticas. En última instancia, los datos se utilizan para realizar diversas parcelas informativas. Utilizando el procedimiento de imagen de doble vista que se presenta aquí, se obtuvo una imagen de un cerebro de mosca que contenía neuronas tm 20 escasamente marcadas en dos direcciones ortogonales.
La recombinación de imágenes mejora la resolución axial. La imagen recombinada tiene una mejor resolución que las de las imágenes de vista horizontal y frontal. Después de consultar modelos 3D, se recogieron trazas dendríticas de 15 tm 20 neuronas y se compararon con trazas dendríticas de 15 tm 2 neuronas.
Se analizaron las probabilidades de ramificación y terminación de estas neuronas. Ambos tipos fueron similares para segmentos de menos de 4 micras. El análisis específico de la capa de la terminación dendrítica mostró que los dos tipos de neuronas se distribuyen de maneras distintas y específicas de la capa.
Las dendritas Tm 2 reciben entradas en m2 y en m5. Mientras que las dendritas tm 20 terminan en la capa m1 a m3. El análisis planar muestra que las dendritas tm 2 se proyectan hacia atrás, mientras que las dendritas tm 20 se proyectan hacia atrás.
Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo adquirir dos de sus imágenes confocales. Lea las marcas de estudio en los archivos de imágenes y extraiga las propiedades dendríticas de estas imágenes. Al intentar este procedimiento, es importante marcar la muestra correctamente antes de la obtención de imágenes confocal.
Ya que la combinación de imágenes fallará si la muestra se mueve durante la toma de imágenes.
Vea la transcripción completa y acceda a miles de videos científicos
Este protocolo describe un método para analizar la distribución dendrítica de neuronas de la médula de Drosophila adulta en columnas y capas. Utiliza técnicas de imagenología de doble vista y herramientas computacionales para mejorar la calidad de las imágenes y analizar las estructuras dendríticas en el espacio tridimensional.
Este protocolo permite un análisis tridimensional de alta resolución de la arquitectura dendrítica en circuitos neuronales definidos, lo que apoya la validación de objetivos en neurofarmacología al vincular fenotipos estructurales con perturbaciones genéticas. Al cuantificar la terminación específica por capas y la proyección planar de los arborizaciones dendríticas, proporciona una reducción mecanicista de riesgos para el descubrimiento de fármacos del sistema nervioso central mediante una mayor confianza predictiva en los modelos de circuitos neuronales. El flujo de trabajo facilita la identificación de defectos específicos del tipo celular, ayudando al alineamiento de biomarcadores traslacionales y al perfeccionamiento de modelos preclínicos para indicaciones neuropsiquiátricas.
El método se integra en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano al convertir datos de imágenes en características dendríticas cuantificables que informan las etapas de identificación del fármaco líder y validación preclínica.