16 de octubre de 2017
Presentamos un protocolo para demostrar un sistema de transferencia génica somática novela utilizando RIP-Tag; RIP-tva modelo de ratón para estudiar la función de genes en la metástasis. El retrovirus aviares se entregan intracardiacally para asegurar la transferencia de genes en las lesiones premalignas, no invasivas de las células β pancreáticas en ratones adultos.
El objetivo general de este procedimiento es identificar y caracterizar los factores metastásicos mediante la transferencia de genes al nuevo RIP-Tag; Modelo de ratón RIP-tva. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la metástasis del cáncer, como la identificación de los impulsores y las nuevas dianas terapéuticas. La principal ventaja de este modelo murino de cáncer es la identificación de factores metastásicos mediante la transferencia de genes somáticos a legiones de precursores de células beta pancreáticas.
Comience cosechando un plato de 15 centímetros de células DF1 productoras de virus por ratón que se infecte. Primero, recoja el medio de los platos confluentes de 15 centímetros. A continuación, elimine los restos de la célula mediante centrifugación a baja velocidad en una centrífuga preenfriada durante 10 minutos a 1650 veces G y cuatro grados centígrados.
A continuación, transfiera el sobrenadante viral a tubos de ultracentrífuga de polialómero. Centrifugar en una ultracentrífuga durante 1,5 horas a 9540 veces G y cuatro grados centígrados. Retire la mayor cantidad posible de sobrenadante de los tubos de ultracentrífuga.
Luego agregue PBS al tubo de ultracentrífuga para hacer la suspensión viral final de 100 microlitros por plato de 15 centímetros. Cubra los tubos con una película de laboratorio y vuelva a suspender la bolita viral invisible mediante vórtice durante dos minutos a velocidad media. A continuación, agite los tubos de ultracentrífuga a cuatro grados centígrados durante una hora o toda la noche.
Después de la incubación, transfiera la suspensión viral a un tubo de microcentrífuga y proceda a titular el virus. Comience el procedimiento de titulación asegurándose de que las células DF1 asentadas en placas de cultivo de tejidos de 12 pocillos hayan alcanzado el 30 % de confluencia. Se necesita una placa de doce pocillos para cada determinación de título viral.
Comience una dilución en serie de diez veces de los sobrenadantes virales mezclando primero cinco microlitros de sobrenadante viral con 495 microlitros de medio de crecimiento en un tubo de microcentrífuga para hacer una dilución de diez a dos. Vórtice brevemente durante unos segundos. Luego transfiera 40 microlitros de la décima a la segunda dilución a 360 microlitros de medio de crecimiento en un tubo de microcentrífuga para la diez a la tercera dilución.
Vórtice brevemente durante unos segundos. Continúe este proceso para diluir a diez a la cuarta y de diez a la quinta. A continuación, alícuota 2,25 mililitros de medio de crecimiento en cada uno de los cinco tubos de poliestireno de seis mililitros.
Y etiquétalos de diez a diez, de diez a siete, de diez a octavo, de diez a noveno y de diez a diez, respectivamente. Mezcle 0,25 mililitros de la dilución de diez a la quinta con 2,25 mililitros de medio de crecimiento en el tubo de poliestireno de seis mililitros para la dilución de diez a la sexta. Vórtice brevemente durante unos segundos.
Repita el procedimiento para las diluciones de diez a la séptima, de diez a la octava, de diez a la novena y de diez a la décima. A continuación, retire el medio de cultivo original de las celdas DF1 en las placas de 12 pocillos. Y agregue un mililitro de virus diluido en cada pocillo por duplicado.
Permita que las células crezcan a 37 grados centígrados y 5 CO2 durante al menos siete días. Comience el procedimiento de infección anestesiando primero a un ratón RIP-Tag RIP-tva de siete semanas de edad. Aplique lubricante ocular en ambos ojos para prevenir la sequedad de la córnea.
Afeita el pelo de la cavidad torácica del ratón RIP-Tag RIP-tva, coloca el ratón boca arriba con el pecho hacia arriba sobre un papel absorbente de laboratorio encima de un calentador seguro para acurrucarse. Realice un pellizco en el dedo del pie para verificar si el animal no responde y para confirmar el efecto de la anestesia completa. Extienda las extremidades delanteras y asegúrelas con cinta adhesiva.
Marque el pecho del ratón para la inyección. Marque la ubicación a medio camino entre la escotadura esternal y la parte superior de la apófisis xifoides, y ligeramente a la izquierda anatómicamente del esternón. A continuación, frote la pared torácica anterior con un exfoliante de povidona yodada o un exfoliante de clorhexidina, seguido de una esponja de gasa empapada en alcohol isopropílico al 70% o al 70%.
Extraiga 50 microlitros de aire en una jeringa estéril de insulina de calibre 28.5 para crear espacio entre el émbolo y el menisco de una jeringa de 500 microlitros. Extrae 100 microlitros de virus. El espacio aéreo sin líquido en la pared es crucial para ver el pulso cardíaco.
Mantenga la aguja en posición vertical, sostenga la piel del ratón tensa con una mano e inserte la aguja en el lugar marcado. Cuando aparezca un pulso de sangre de color rojo brillante en la jeringa, deje de avanzar la aguja y fije la profundidad de la aguja en el ratón con una mano. Use la otra mano para empujar cuidadosa y lentamente el émbolo para administrar la suspensión viral durante un período de aproximadamente 60 segundos.
Administre de 10 a 20 microlitros cada vez que aparezca un pulso de sangre de color rojo brillante en la jeringa. La entrada continua de sangre roja oxigenada en el centro transparente de la aguja indica la posición correcta de la aguja en el ventrículo izquierdo. Después del último empujón del saqueo para liberar la suspensión viral y antes de ver el próximo pulso rojo de sangre, retraiga rápidamente la aguja fuera de la cavidad torácica.
Aplique una presión suave sobre el sitio de la inyección durante al menos un minuto para reducir el sangrado. Luego, mueva con cuidado el mouse sobre una almohadilla térmica o debajo de una lámpara de calor hasta que esté completamente consciente. Los ratones RIP-Tag RIP-tva se infectaron con el retrovirus RCASBP-Bcl-xL indicado a las siete semanas de edad y se les practicó la eutanasia a las 16 semanas de edad.
Esta fotografía muestra la tinción representativa de sinaptofisina de tumores neuroendocrinos pancreáticos metastásicos en ganglios linfáticos pancreáticos. Aquí, los ratones RIP-Tag RIP-tva se infectaron con el indicado RCASBP-RHAM B. Esta fotografía muestra la tinción representativa de sinaptofisina de tumores neuroendocrinos pancreáticos metastásicos en ganglios linfáticos pancreáticos. En este caso, la tinción de sinaptofisina se observa en el hígado después de la inyección del virus RCASBP-RHAMM B.
Es importante recordar que el título de más de diez a ocho unidades infecciosas por mililitro se requiere para la infección in vivo de células TVA en proliferación en ratones RIP-Tag, RIP-tva y el rector retroviral RCASBP puede entregar CDNA de hasta 2,5 kilobases. Después del desarrollo de este modelo de ratón, allanó el camino para un cambio de paradigma que descubrió que BCL-xL en realidad promueve la metástasis del cáncer independientemente de su función antiapoptótica.
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Este artículo presenta un protocolo para un nuevo sistema de transferencia génica somática que utiliza el modelo de ratón RIP-Tag; RIP-tva para investigar las funciones génicas en metástasis. El método implica la administración intracardiaca de retrovirus aviarios para dirigirse a lesiones pancreáticas pre-malignas en células β en ratones adultos.
Este protocolo permite la identificación sistemática de genes que impulsan la metástasis en un modelo bien definido de tumor neuroendocrino pancreático, abordando una brecha crítica en la validación preclínica de dianas terapéuticas. Al permitir la transferencia génica somática a lesiones premalignas, facilita la desactivación mecanicista de dianas terapéuticas candidatas antes de realizar estudios costosos in vivo. La penetrancia tumoral del 100 % y las etapas definidas de progresión del modelo proporcionan una plataforma reproducible para evaluar la función génica en la metástasis, informando directamente las decisiones de confianza en dianas y de selección de carteras en el descubrimiento de fármacos oncológicos.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la generación de hipótesis sobre dianas hasta la validación preclínica, permitiendo específicamente la validación funcional de genes asociados a metástasis identificados mediante estudios ómicos o campañas de cribado.