Name: Tirando de nanotubos de membrana de las vesículas unilaminar gigante (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-07T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 26 s
Description: Aprende a extraer nanotubos de membrana de vesículas unilaminares gigantes para estudiar interacciones proteína-membrana curvada. Este método cuantifica el efecto de proteínas como endofilina A2 en propiedades mecánicas y endocitosis.

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Los autores agradecen a Benoit Sorre, Damien Cuvelier, Pierre Nassoy, François Quemeneur y Gil Toombes por sus contribuciones esenciales para establecer el método de nanotubos en el grupo. El grupo de P.B. pertenece al consorcio CNRS CellTiss, el Labex CelTisPhyBio (ANR-11-LABX0038) y a las Ciencias de París et Lettres (ANR-10-IDEX-0001-02). C. F. Tsai fue financiado por los EMBO compañerismo a largo plazo (ALTF 1527-2014) y las acciones Marie Curie (H2020-MSCA-IF-2014, proyecto membrana-ezrin-actina). M.S. es un Junior Fellow de la sociedad de becarios de Simons.

Los autores no tienen nada que revelar.

El método de tirar tubos de 2.fino proporciona rica información sobre el sistema de la proteína de la membrana, no sólo los medios para medir las propiedades mecánicas fundamentales de la membrana, pero ayuda a arrojar luz sobre el acoplamiento entre las proteínas y membrana curvatura. Como comentamos en la introducción, existen otras técnicas para medir los efectos de las proteínas de membrana curva, incubando las proteínas con liposomas de sub-micron anclados a una superficie pasivada18,</s...

Muchos procesos celulares, tales como endocitosis, trata de personas, la formación de filopodios, infección, etc., se acompañan de un cambio drástico en la forma de las membranas celulares1,2. En la célula, una serie de proteínas participa en estos procesos por Unión a la membrana y alterar su forma. Los ejemplos más notables son los miembros de la familia de proteínas Amphiphysin/Bin/Rvs (BAR), que contiene una característica intrínsecamente curvada barra dominio3,4,5,6,7. Por lo general, interactúan con la membrana adhiriendo el dominio de la barra a la superficie y, en muchos casos, también con insertar anfipáticos hélices en la bicapa. La forma, tamaño y carga del dominio de barra con el número de hélices anfipáticos determina: (1) la dirección de la curvatura de la membrana (es decir, si inducen invaginaciones o salientes) y (2) la magnitud de la membrana curvatura de5,8. De la nota, aquí curvatura positiva se define como el lado convexo de la membrana curvada, es decir, el bombeo hacia las partículas interactuantes y negativo lo contrario. Por otra parte, los estudios cuantitativos de barra proteínas revelaron que su efecto sobre la membrana depende de un conjunto de parámetros físicos: densidad de proteínas, la tensión de la membrana y forma de membrana (plano versus tubular versus esférica de la superficie forma)7. Dependiendo de estos parámetros de la barra las proteínas puede: (1) actuar como sensores de la curvatura de la membrana (2) las membranas de la curva y (3) induzca de la escisión de la membrana7.
Debido al número de componentes implicados en la remodelación de la membrana en la célula, estudia los aspectos cuantitativos de los fenómenos, tales como endocitosis, en vivo es extremadamente difícil. In vitro de la reconstitución de componentes mínimos que mímico el curvado de las membranas en la célula proporciona medios para lograr una comprensión mecanicista de proteínas de membrana-curvar como operar. Este artículo describe un protocolo para la reconstitución de una membrana nanotubos en vitro con micromanipulación, microscopía confocal y pinzas ópticas. El enfoque puede utilizarse para estudiar, en forma cuantitativa, como proteínas, lípidos o pequeñas moléculas interactuan con membranas curvadas. 2.fino de lípidos se utiliza como modelos de una membrana celular, cuya curvatura es despreciable en comparación con el tamaño de moléculas de membrana curva interacción. Son preparados utilizando el método de electroformation9 en que las vesículas se forman por hidratante una película lipídica y la hinchazón en 2.fino debajo de una corriente alterna (CA)10. Sustratos más comunes que se cultiva 2.fino son ambos semi-conductivas placas recubiertas con óxido de estaño indio (ITO) o cables de platino (Pt-cables)11. En este trabajo, 2.fino crecen en alambres de Pt como este método se ha demostrado que funciona mucho mejor que la alternativa en la fabricación de 2.fino en presencia de sales en el buffer12. Aunque el protocolo electroformation se describe aquí en detalle suficiente para reproducirlo, nos referimos al lector a los artículos anteriores en el que se han descrito similares y otros métodos de hacer 2.fino en detalle13,14. En nuestras manos, electroformation en alambres de Pt ha con éxito dado a 2.fino de una mezcla de lípidos sintéticos o de lípidos naturales extractos en un tampón que contiene ~ 100 mM NaCl. Además, también era posible encapsular proteínas dentro 2.fino durante el crecimiento. Una cámara de electroformation de ejemplo se muestra en la figura 1A; se compone de dos Pt-cables ~ 10 cm de largo insertados en un soporte de politetrafluoroetileno (PTFE) que se puede sellar por ambos lados con vidrio cubreobjetos cm ~ 1-2 apart (figura 1A).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56086/56086fig1.jpg"> Figura 1: montaje Experimental. (A) la electroformation GUV cámara con conectores eléctricos conectados a los cables de la pinta. Izquierda (B): el sistema experimental que muestra el microscopio, la cámara experimental sobre el objetivo y dos Micropipetas (izquierdos y derecho) conectado a los micromanipuladores e introduce en la cámara experimental para tirar del tubo y la proteína inyección. Derecha: una vista cercana de la cámara experimental montado sobre el objetivo que muestra los extremos de la aspiración y las Micropipetas de inyección insertados. (C) A la jeringa equipada con un distribuidor delgado insertado en una micropipeta en su extremo posterior. El fondo es una vista cercana de la cubeta dentro de la micropipeta con la línea de puntos azul que la micropipeta. Este sistema se utiliza para llenar la micropipeta con caseína a apaciguar la superficie de vidrio y también para llenar con aceite mineral cuando sea necesario. (D) A sistema usado para aspirar cantidades μl de la solución de proteína. La aguja está conectada a una jeringa y tubo que está conectado con la micropipeta de inyección. La punta de la micropipeta es inmerso en la solución de proteína y aspira así para llenar la punta de la micropipeta. La micropipeta es entonces volver llenos de aceite mineral con el sistema se muestra en el panel C. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56086/56086fig1large.jpg" target="_blank">haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
Un nanotubo de membrana, que se extienden en un radio de 7 nm a varios cientos nm, se puede tirar de un GUV por una fuerza externa. Este método fue inicialmente diseñado para medir las propiedades elásticas de las membranas celulares y de las vesículas, como la flexión rigidez15,16. En obras más recientes, el método se amplió para estudiar la interacción de proteínas con membranas curvadas por microinjecting las proteínas cerca el nanotubo tirado7,17. Otros métodos han sido desarrollados para el estudio de las proteínas de membrana curva. En uno de los métodos, las proteínas se incuban con liposomas de diferentes tamaños anclados a una superficie pasivada. La microscopia confocal se utiliza para medir la Unión a proteínas en función del diámetro de liposomas, que puede indicar curvatura inducida clasificación18,19. En otro método, se inyectan proteínas cerca un GUV micro aspirado para medir su capacidad de inducir espontáneamente túbulos20,21. El método descrito en el presente Protocolo está especialmente preparado para estudiar la curvatura de la membrana proteínas implicadas en la endocitosis, donde la mayoría de las proteínas normalmente con nanotubos de membrana preformada conectando la invaginación de la membrana que contiene la carga con el membrana de plasma plana subyacente. Además, en este método, a diferencia de en el ensayo con liposomas pequeño atados, los nanotubos de membrana está continuamente conectado a la membrana; por lo tanto, está en equilibrio mecánico con el GUV, una situación esperada en vivo. Por lo tanto, se aplica la física de la membrana fundamental y podemos inferir una plétora de propiedades mecánicas de nuestras medidas22,23,24.
Para una plena aplicación de este método, el equipo necesario incluye un microscopio confocal, pinzas ópticas y una o dos Micropipetas conectadas a un tanque de agua (figura 1B). Combinando los tres, es posible medir la tensión de la membrana, membrana curvatura, densidad superficial de las proteínas, y simultáneamente tubo fuerza de25. Aspiración de la micropipeta es esencial y fácilmente se construye insertando una micropipeta de vidrio en un soporte conectado a un tanque de agua, que, a través de la presión hidrostática, controla la presión de aspiración26. La micropipeta y el soporte son controlados por un micromanipulador e, idealmente, en una dirección por un actuador piezoeléctrico para el movimiento de precisión. Para tirar un nanotubo, en microaspirated GUV brevemente se pega a un micrón de tamaño grano entonces tiró lejos creando un nanotubo. En esta implementación, el grano se lleva a cabo por pinzas ópticas, que pueden construirse siguiendo un protocolo publicado27. Es posible obtener de las pinzas ópticas y nanotubos de tirar de diferentes formas, aunque a costa de medidas de fuerza precisa. Si es demasiado difícil para construir una trampa óptica o si las medidas de fuerza son no esenciales, tales como si uno simplemente quiere ver la preferencia de las proteínas de membranas curvadas, se puede tirar un tubo usando un grano aspirado en la punta de una segunda micropipeta28. También es posible tirar los tubos utilizando fuerza gravitacional29 o30,31de flujo. Además, la microscopia confocal no es esencial sin embargo, es preferido por lo tanto para medir la densidad superficial de las proteínas. También permite medir el radio de nanotubo de intensidad de fluorescencia de los lípidos en el tubo, por lo tanto independientemente de la fuerza de la membrana y la tensión. Inferencia radio tubo de fluorescencia es particularmente importante si la relación entre estas cantidades se desvía de las ecuaciones bien establecidas debido a la presencia de proteínas de membrana adherida25. Lo importante, uno no puede dispensar de la trampa óptica y microscopia confocal, ya que no será posible medir la curvatura del tubo.
El método descripto en este protocolo se ha utilizado para estudiar la curvatura inducida por clasificación de diversas proteínas de membrana periférica en nanotubos, sobre todo los de la barra familiar25,32,33,34 . También fue demostrado que el canal de potasio transmembrana formados cónicamente en que kvap se enriquece curva nanotubos de la misma manera como la barra de proteínas35. Optimizando el método para encapsular proteínas dentro 2.fino, la interacción de proteínas con curvatura negativa ha sido recientemente investigada bien36. Además, este método ha sido utilizado para dilucidar la formación de proteína andamios25,37 y estudiar el mecanismo de la escisión de la membrana por cada línea tensión38, proteína Dinamina39, o por la barra de proteínas40,41. Además de proteínas, moléculas pequeñas o iones también pueden inducir la curvatura. Usando este método, los iones de calcio mostraron inducen curvatura positiva bajo condiciones libres de sal42. Curiosamente, también se ha demostrado que los lípidos pueden sufrir curvatura clasificación, aunque sólo para las composiciones que están cerca de un punto demixing43,44. En suma, el método puede ser utilizado por investigadores interesados en la investigación de cómo cualquiera de los dos componentes de la membrana integral (por ejemplo, los lípidos o las proteínas transmembranales) o periféricamente vinculante moléculas (ya sea dentro o fuera de 2.fino) interactuar con membranas cilíndrico curvadas, desde el punto de vista mecánico y cuantitativo. También está diseñado para aquellos interesados en la medición de las propiedades mecánicas de la membrana sí mismo22,23,45.

<table><tbody><tr><td>1,2-dioleoil-sn-glicero-3-fosfatidilcolina (DOPC)</td><td>Avanti</td><td>850375</td><td>Ejemplo de lípido utilizado en los datos de la Figura 3</td></tr><tr><td>1,2-distearoyl-sn-glicero-3-fosfoetanolamina-N-[biotinil(polietilenglicol)-2000] [DSPE-PEG(2000)-biotina]</td><td>Avanti</td><td>880129</td><td>lípido biotinilado</td></tr><tr><td>BODIPY-TR-C5-ceramida</td><td>Sondas moleculares (ThermoFisher)</td><td>D7540</td><td>lípido fluorescente</td></tr><tr><td>BODIPY- FLC5-hexadecanoyl fosfatidilcolina (HPC*)</td><td>Sondas moleculares (ThermoFisher)</td><td></td><td>Lípido fluorescente para la calibración</td></tr> de la densidad <tr><td>de proteínas huevo L-&alfa;-fosfatidilcolina (eggPC)</td><td>Avanti</td><td>840051</td><td>utiliza para calibrar la constante de radio del tubo</td></tr><tr><td>&beta;-caseína de la leche bovina (>99%)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C6905</td><td>utilizado para pasivar la micropipeta y el cámara experimental</td></tr><tr><td>Sacarosa</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7903</td><td></td></tr><tr><td>D(+) glucosa</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>Sigma Aldrich</td><td></td> Osmómetro 10708976001 <td></td></tr><tr><td></td><td>Loser</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Pt-hilos, 0,5 mm de diámetro, 99,99% puro</td><td>Goodfellow USA</td><td>PT005139</td><td>utiliza para</td></tr> el <tr><td>generador</td><td></td> de función de electroformación GUV <td>n/a</td><td>utilizado para crear corriente para</td></tr><tr>el<td>sellador de masilla de electroformación</td> GUV <td>Vitrex (de CML Francia)</td><td>CRIT 140013</td><td>utiliza para sellar la cámara de electroformación</td></tr><tr><td>baño sonicador</td><td></td><td>n/a</td><td>útil para limpiar la cámara de electroformación, pero no crucial</td></tr><tr><td>Microscopio invertido Nikon TE2000, sistema confocal eC1 (Nikon), con dos líneas láser (&lambda; = 488 nm y 543 nm); pinzas ópticas inducidas por un láser de onda continua de fibra de iterbio de 5 W (&lambda; > 1070 nm; IPG GmBH Alemania)</td><td></td><td></td><td>un ejemplo de un sistema de microscopía confocal equipado con pinzas ópticas</td></tr><tr><td>micromanipuladores</td><td></td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>capilares de borosilicato (con radios internos y externos de 0,78 mm y 1 mm, respectivamente)</td><td>Harvard apparatus</td><td>30-0036</td><td></td></tr><tr><td>extractor de micropipetas</td><td>Sutter Instrument</td><td>P-2100</td><td></td></tr><tr><td>microforge</td><td>Narishige</td> Actuador piezoeléctrico <td>MF-800</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Physik Instrumente</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>perlas recubiertas de poliestireno estreptavidina (diámetro 3,2 y micro; m)</td> <td>Spherotech</td><td>SVP-30-5</td><td></td></tr></tbody></table>

tirando de nanotubos de membrana de las vesículas unilaminar gigante

Pulling Membrane Nanotubes from Giant Unilamellar Vesicles

La remodelación de la membrana celular es una parte integral de muchos fenómenos celulares, como la endocitosis, trata de personas, la formación de filopodios, etcetera. Muchas proteínas diferentes se asocian con membranas curvadas debido a su capacidad para sentir o inducir la curvatura de la membrana. Por lo general, estos procesos implican una multitud de proteínas haciéndolos demasiado complejo para estudiar cuantitativamente en la célula. Se describe un protocolo para la reconstitución de una membrana curvada en vitro, imitando una estructura celular curva, como el cuello endocítico. Una vesícula unilaminar gigante (GUV) se utiliza como un modelo de una membrana celular, cuya presión interna y tensión superficial son controlado con la aspiración de la micropipeta. Aplicación de una fuerza de tracción de punto en el GUV usando pinzas ópticas crea un nanotubo de alta curvatura conectado a una membrana plana. Este método se ha utilizado tradicionalmente para medir las propiedades mecánicas fundamentales de las membranas de lípidos, como la rigidez de flexión. En los últimos años se ha ampliado para estudiar cómo las proteínas interactúan con la curvatura de la membrana y la forma en que afectan la forma y la mecánica de las membranas. Un sistema que combina la micromanipulación, microinyección, pinza óptica y microscopía confocal permite medición de la curvatura de la membrana, membrana tensión y la densidad superficial de las proteínas, al mismo tiempo. De estas mediciones, se pueden deducir muchas propiedades mecánicas y morfológicas importantes sistema de proteínas de la membrana. Además, nos pone a un protocolo de creación 2.fino en presencia de concentraciones fisiológicas de sal y un método de cuantificación de la densidad superficial de las proteínas en la membrana de intensidades de fluorescencia de etiquetado proteínas y lípidos.

El experimento de tirar tubo puede dar información vital mecánica sobre la membrana. En la ausencia de proteínas u otras moléculas que la fuerza de la pareja con la curvatura de la membrana, la membrana y radio del tubo puede tener relación con la tensión de membrana aplicando el hamiltoniano Canham-Helfrich ecuación a un tubo tiró de un GUV50,51 
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Muchas proteínas en la célula de sensación e inducen curvatura de la membrana. Se describe un método para nanotubos de membrana de las vesículas de lípidos para el estudio de la interacción de proteínas o cualquier molécula activa de curvatura con membranas curvo in vitro.

Tirando de nanotubos de membrana de las vesículas unilaminar gigante

The reshaping of the cell membrane is an integral part of many cellular phenomena, such as endocytosis, trafficking, the formation of filopodia, etc. Many ...

El objetivo general de esta metodología de extracción de nanotubos es estudiar cuantitativamente las interacciones entre proteínas específicas de interés y membranas altamente curvadas. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en la biología de las membranas celulares, como la endocitosis y el tráfico intracelular. Esta técnica nos permite cuantificar directamente cómo las proteínas se unen a las membranas curvas y las deforman recíprocamente.Inicialmente, este método se utilizó para medir las propiedades mecánicas básicas de las membranas lipídicas. Recientemente, se ha aplicado para dilucidar mecanismos importantes en las interacciones entre las membranas de las proteínas, en particular las membranas formadoras de proteínas. Comience recogiendo las vesículas unilaminares gigantes directamente de los cables de platino de la cámara de electroformación.Para construir la cámara experimental, coloque dos cubiertas de vidrio rectangulares separadas por un milímetro sobre una base metálica, dejando aberturas a lo largo de los bordes largos lo suficientemente grandes como para permitir que una punta de micropipeta de vidrio llegue al menos al centro de la cámara. Llene tanto

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Investigación

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Biology

Biología

De chorro de microfluidos contra una bicapa lipídica interfaz de gotita ofrece una manera fiable para generar vesículas con el control de la asimetría de la membrana, la incorporación de proteínas de transmembrana, y la encapsulación de material. Esta técnica se puede aplicar para estudiar una variedad de sistemas biológicos en los que se desean biomoléculas compartimentadas.

Lípidos bicapa vesículas Generación Usando Microfluidic Jetting

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Reconstitución de una proteína transmembrana, el canal iónico dependiente de voltaje, KvAP, en Gigante vesículas unilamelares para Microscopía y Patch Clamp Estudios

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