1 de septiembre de 2017
Este trabajo presenta un protocolo paso a paso para la estimación imparcial estereológicos del número de células neuronales dopaminérgicas en la sustancia negra de ratón utilizando equipo de microscopía estándar (es decir, un microscopio de luz, una tabla de objeto motorizado (x, y, z plano) y software de dominio público para el análisis de imagen digital.
El objetivo general de este protocolo es describir la estimación estereológica basada en el diseño del número de células dopaminérgicas en el SN de ratón utilizando un equipo de microscopía estándar. Este método es útil para estimar el número de neuronas dopaminérgicas en la sustancia negra del ratón para la investigación preclínica de la enfermedad de Parkinson utilizando la estereología no sesgada basada en el diseño. La principal ventaja de esta técnica es que se puede lograr con un equipo de microscopía estándar sin necesidad de una configuración de estereología completa disponible en el mercado.
Louisa Friez, una técnica de mi laboratorio, demostrará el procedimiento. Comience colocando un cerebro de ratón fijado en paraformaldehído en una matriz cerebral y haciendo un corte más 0,74 milímetros de bregma. Transfiera la parte caudal del cerebro, incluida la SN, al 4% de PFA en 0,1 molar y fije durante la noche a cuatro grados centígrados.
Al día siguiente, cambie el PFA por sacarosa al 30% en PBS de 0,1 molares e incube durante otros dos días a cuatro grados centígrados para crioproteger la muestra. Después de dos días, cuando el cerebro se haya hundido en la sacarosa, coloque el tejido en un Cryomold lleno de compuesto de temperatura de corte óptima y congele lentamente el tejido en hielo seco líquido enfriado con isopentano. Utilice un criostato para cortar en serie secciones criogénicas de 30 micras en el plano coronal.
Marque el hemisferio derecho perforando un pequeño agujero en la región superior del tronco encefálico. Recoge cuatro series de secciones que comienzan en menos 2,46 milímetros de bregma y terminan en 4,04 milímetros de bregma. Transfiera cada serie de secciones a un tubo lleno de crioprotector y guárdelo a menos 20 grados centígrados.
Capture imágenes digitales de secciones de SN teñidas inmunohistoquímicamente con tirosina hidroxilasa utilizando un software de imágenes acoplado a un microscopio. Comience por determinar el montaje real y el grosor de las secciones en tres sitios de conteo seleccionados al azar por sección. Primero haga clic en ver desplazamiento superior para definir la parte superior de la sección.
A continuación, haga clic en detener la vista superior. A partir de entonces, haga clic en ver desplazamiento inferior y luego haga clic en detener vista inferior. Anota el grosor de la sección.
Calcule la zona de protección restando tres micras del desplazamiento superior y escriba el resultado en el cuadro de desplazamiento superior. A continuación, reste la altura de 13 micras del disector óptico del número de desplazamiento superior y escriba el resultado en el cuadro de desplazamiento inferior. Seleccione los siguientes parámetros, pasos 14, tamaño 1,00.
Seleccione el directorio para guardar el archivo. Haga clic en secuencia para iniciar la adquisición. Una vez adquiridas las imágenes, haga clic en procesamiento y seleccione los siguientes parámetros, todos los planos de secuencia, montaje y las cajas rápidas y de costura con una superposición de imágenes del 10%Comience a unir las imágenes haciendo clic en inicio.
Esto generará imágenes de pila para el análisis. Para comenzar, abra la imagen haciendo clic en archivo y abrir. Defina la escala de la imagen mediante el comando analizar y establecer escala.
A partir de este paso, cambie el tamaño definido de píxeles a micras. Seleccione los complementos, luego la cuadrícula y luego el comando de líneas de tipo de cuadrícula para insertar aleatoriamente una cuadrícula. Marque la casilla de desplazamiento aleatorio.
Defina el tamaño de un cuadrado dentro de la cuadrícula como 130 micras por 130 micras para que sea igual a 16.900 micras cuadradas. Cambie el tipo de imagen de 16 bits a color RGB haciendo clic en la imagen, luego escriba y luego color RGB. Localiza la sustancia negra pars compacta.
Rodea la región con la herramienta Pincel con un ancho de pincel de 11. Deshaga el comando establecer escala haciendo clic en analizar, luego establecer escala y luego haga clic para eliminar la escala y calcular en píxeles en lugar de micras. Tome una captura de pantalla, guarde el archivo de imagen y abra el nuevo archivo con ImageJ.
Seleccione el pincel y un ancho de pincel de 25. Marque cada cuadrado de la cuadrícula que entra en contacto con el SN para la colocación de un disector óptico. Seleccione un cuadrado de cuadrícula que incluya partes del SN. Mida la esquina superior izquierda del cuadrado con el cursor en ImageJ para definir las coordenadas x e y iniciales.
Seleccione la plantilla de hoja de cálculo titulada posición del disector óptico y calcule la posición del disector óptico. A continuación, estime el número de células utilizando la hoja de cálculo del recuento de células como se describe en la parte escrita del protocolo. Esta imagen de baja potencia muestra una sección del cerebro de ratón después de la tinción de TH para las neuronas dopaminérgicas.
Un aumento más alto representa las neuronas dopaminérgicas TH positivas. El recuadro muestra la región en caja con mayor aumento. Esta imagen muestra una serie de secciones de SN teñidas con TH que cubren todo el SN del ratón, desde el rostral hasta el caudal.
Cada sección está separada de la sección consecutiva por 120 micras. El número de neuronas TH positivas en el SN de ratón derecho e izquierdo se estimó utilizando el método que se muestra en este video y utilizando un sistema de estereología disponible comercialmente. Como se ve aquí, ambos métodos dieron como resultado recuentos de células comparables y no hubo diferencias significativas entre los conjuntos de datos.
No olvide que trabajar con paraformaldehído puede ser extremadamente peligroso y siempre se deben tomar precauciones como el uso de equipo de protección personal como guantes protectores mientras se realiza este procedimiento. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo realizar una estimación estereológica insesgada del número de neuronas dopaminérgicas en la sustancia negra del ratón utilizando el método de fracción óptica y el equipo de microscopía estándar.
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Este artículo describe un protocolo para la estimación estereológica imparcial del conteo de células neuronales dopaminérgicas en la sustancia negra del ratón, utilizando herramientas microscópicas convencionales. El método tiene como objetivo facilitar la investigación preclínica en la enfermedad de Parkinson al proporcionar un enfoque confiable para la cuantificación celular sin necesidad de sistemas estereológicos especializados.
La cuantificación precisa de la pérdida de neuronas dopaminérgicas en la sustancia negra es un punto final crítico en la investigación preclínica de la enfermedad de Parkinson, que informa directamente la validación de objetivos y la reducción del riesgo mecanicista de estrategias neuroprotectoras. Este protocolo permite una estimación estereológica fiable e imparcial utilizando equipos microscópicos estándar, reduciendo la dependencia de sistemas especializados de estereología y aumentando la accesibilidad para flujos de trabajo de biología de descubrimiento. Al proporcionar datos cuantitativos y reproducibles de conteo celular, el método respalda la confianza predictiva en las pruebas de hipótesis de objetivos en etapas iniciales y en las decisiones de priorización de carteras.
El método se integra en el continuo de descubrimiento, desde la prueba de hipótesis sobre un blanco hasta la identificación de compuestos activos y la evaluación de la eficacia preclínica, ofreciendo una lectura de histología cuantitativa que aporta información para comprender el mecanismo de acción y la confianza en el blanco.