Name: Intubación endotraqueal de conejos usando un catéter guía polipropileno (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 46 s
Description: Aprende a intubar conejos de forma segura usando un catéter guía de polipropileno y laringoscopio Miller. Esta técnica no invasiva permite visualizar directamente la laringe para asegurar la vía aérea durante la anestesia general en entornos clínicos y de investigación.

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Los autores desean reconocer los empleados y personal de investigación que ha participado en las sesiones de formación anestesia y manejo del conejo por sus comentarios mientras se aprende esta técnica de intubación.

el procedimiento de intubación se detallan a continuación fue aprobado por la Mayo Clinic institucional Animal cuidado y uso.
 1. preparación ( figura 1) <ol><li>obtener un catéter de polipropileno 5 French y cortar el extremo no-redondeadas por lo que la longitud total es de 8-10 pulgadas. Marcar el extremo cortado de la tubería para indicar claramente que el extremo debe no se inserta en la tráquea (flecha, figura 1).</li>
	<li>Poner una hoja de laringoscopio Miller tamaño 0 o 1 en el laringoscopio y comprobar que la luz funciona.</li>
	<li>Dibujar 0,25 mL de lidocaína al 2% en una jeringa de 1 mL.</li>
	<li>Aplique lubricante estéril al final de un tubo endotraqueal tamaño adecuado (típicamente 2.5-4.0 mm ID).</li>
	<li>Preparar suministros para fijación del tubo endotraqueal en su lugar una vez que inserta (por ejemplo, cinta umbilical).</li>
	<li>Obtener un dispositivo para detectar el flujo de aire al final del procedimiento para confirmar la intubación exitosa (#5, figura 1). Esto es opcional.</li>
</ol> 2. Anestesia <ol><li>administrar anestesia inyectable, como 35 mg/kg ketamina y 5 mg/kg xilacina intramuscular utilizando una jeringa de 3 mL con una aguja de 25 calibre en el músculo cuadriceps de la pierna trasera de 3.0-3.5 aproximadamente 4 meses, kg, blanco de Nueva Zelanda conejo. 
	Nota: Este régimen anestésico es una combinación inyectable utilizada en conejos jóvenes, saludables, específicos investigación libre de patógeno, pero basado en condiciones clínicas o experimentales objetivos, un protocolo diferente puede ser más apropiado.</li>
	<li>Después de que el conejo está anestesiado, aplicar lubricante oftálmico estéril en los ojos para preservar el tejido córneo.</li>
</ol> 3. Intubación <ol><li>medida el tubo endotraqueal desde los incisivos a la torácica de entrada para determinar la longitud adecuada para la inserción del tubo endotraqueal. Colocación del extremo del tubo a nivel de la entrada torácica asegura que la abertura del tubo es más allá de la laringe pero craneal a la bifurcación traqueal.</li>
	<li>Posición del conejo sternally en la mesa de preparación con la cabeza ligeramente extendida sobre el borde de la mesa ( figura 2). El conejo debe colocarse la plaza con la cabeza y la columna vertebral en alineación recta.</li>
	<li>Levantando la cabeza, utilice una gasa para tirar al conejo &#39; s lengüeta lateral a los conejos &#39; s derecho de los incisivos inferiores (en diastemas), teniendo cuidado de evitar el trauma de los incisivos.</li>
	<li>Sujete el laringoscopio y la cuchilla con la mano derecha y lo coloca en la boca detrás de los incisivos, entrando por el conejo &#39; s hacia la izquierda.</li>
	<li>Seguir el techo de la boca con la punta de la cuchilla en dirección caudal hasta el paladar blando es visible.</li>
	<li>Con la mano derecha, punta el laringoscopio hacia adelante (doblar la muñeca, manteniendo el laringoscopio hacia abajo) mientras que el conejo se extiende &#39; cabeza hacia atrás y el cuello hacia delante para mantener una vía aérea abierta y ve la laringe ( figura 3 A). como respiradores nasales obligados, la epiglotis es a menudo por encima del velo del paladar, y uso de este método comprime la base de la lengua para desplazar la epiglotis y exponer la glotis. Para evitar la desaturación de oxígeno, es importante mantener el cuello extendido como se describe para mantener una vía aérea abierta durante la intubación.</li>
	<li>Soltar la lengua y cambiar la pala del laringoscopio en la mano izquierda para liberar la mano derecha para la colocación del catéter guía.</li>
	<li>Mientras que sostiene el laringoscopio y mantener la visión de la glotis ( figura 3 B), haga avanzar la punta redondeada del catéter guía a través de la abertura más allá de la laringe ( figura 4 ). El catéter va a venir a una parada natural en la bifurcación traqueal.</li>
	<li>Manteniendo pulsado del catéter guía, sujete el tubo endotraqueal y enrosque sobre el catéter, cuidando de no para aplicar fuerza al catéter por la captura en el conector del tubo endotraqueal. Avanzar el tubo hasta que haya resistencia de las cuerdas vocales ( figura 5).</li>
	<li>Gotas 0,25 mL de lidocaína al 2% en la apertura del tubo endotraqueal. La lidocaína viajará por el tubo endotraqueal para anestesiar localmente las cuerdas vocales, prevenir Laringoespasmo 22 ( figura 6).</li>
	<li>Espere aproximadamente dos minutos para la anestesia tópica tomar efecto y seguir girando suavemente el tubo endotraqueal, avanzando a través de las cuerdas vocales ( figura 7). Una vez que el tubo ha pasado las cuerdas vocales, quite la hoja del laringoscopio y el catéter, cuidando de no para desplazar el tubo de.</li>
	<li>Verificar la colocación del tubo endotraqueal mediante la observación de flujo de aire. Hay múltiples maneras de lograr esto, incluyendo la colocación de un tejido o de piel en el extremo del tubo para detectar flujo de aire, en busca de empañamiento del tubo o empañamiento de un espejo de cristal/el final del tubo y escuchar para flujo de aire. Dispositivos diseñados para detectar flujo de aire 23 o respiraciones pueden también ser utilizado ( figura 8) para determinar si la intubación fue exitosa (véase Tabla de materiales para las opciones). Fije el tubo endotraqueal mediante un método preferido, como cinta umbilical atado alrededor del tubo y la cabeza. Conecte el circuito de anestesia y auscult ambos lados del tórax dando respiros para asegurar la ventilación a ambos lados del pulmón.</li>
</ol>

<ol><li>Quesenberry, K. E., Carpenter, J. W. <a target="_blank" href="https://www.amazon.com/Ferrets-Rabbits-Rodents-Clinical-Medicine/dp/1416066217">Ferrets, rabbits, and rodents : clinical medicine and surgery. 3rd edn </a>. , Elsevier/Saunders. (2012).</li>
<li>Dugdale, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDugdale%2C+A+%22Veterinary+Anaesthesia%3A+Principles+to+Practice%22">Veterinary Anaesthesia: Principles to Practice</a>. , Wiley-Blackwell. (2010).</li>
<li>Yamamoto, Y., Inoue, S., Abe, R., Kawaguchi, M., Furuya, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Airway+management+with+the+laryngeal+tube+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+animal%22%5BJournal%5D)">Airway management with the laryngeal tube in rabbits.</a> Lab animal. 36 (5), 33-35 (2007).</li>
<li>Belena, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laryngeal+mask%2C+laryngeal+tube%2C+and+Frova+introducer+in+simulated+difficult+airway%5BTitle%5D)+AND+%22J+Emerg+Med%22%5BJournal%5D)">Laryngeal mask, laryngeal tube, and Frova introducer in simulated difficult airway.</a> J Emerg Med. 48 (2), 254-259 (2015).</li>
<li>Smith, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+tubes+versus+laryngeal+mask+airways+in+rabbit+inhalation+anesthesia%3A+ease+of+use+and+waste+gas+emissions%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp+Top+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease of use and waste gas emissions.</a> Contemp Top Lab Anim Sci. 43 (4), 22-25 (2004).</li>
<li>Kazakos, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+the+laryngeal+mask+airway+in+rabbits%3A+placement+and+efficacy%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Use of the laryngeal mask airway in rabbits: placement and efficacy.</a> Lab Anim (NY). 36 (4), 29-34 (2007).</li>
<li>Crotaz, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initial+feasibility+investigation+of+the+v-gel+airway%3A+an+anatomically+designed+supraglottic+airway+device+for+use+in+companion+animal+veterinary+anaesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Vet+Anaesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Initial feasibility investigation of the v-gel airway: an anatomically designed supraglottic airway device for use in companion animal veterinary anaesthesia.</a> Vet Anaesth Analg. 37 (6), 579-580 (2010).</li>
<li>Bateman, L., Ludders, J. W., Gleed, R. D., Erb, H. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+between+facemask+and+laryngeal+mask+airway+in+rabbits+during+isoflurane+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Anaesthesia+and+Analgesia%22%5BJournal%5D)">Comparison between facemask and laryngeal mask airway in rabbits during isoflurane anesthesia.</a> Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 280-288 (2005).</li>
<li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22The+veterinary+clinics+of+North+America.+Exotic+animal+practice%22%5BJournal%5D)">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The veterinary clinics of North America. Exotic animal practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li>
<li>Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A., Lumb, W. V. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTranquilli%2C+WJ+%22Lumb+%26+Jones%27+veterinary+anesthesia+and+analgesia.+4th+edn%22">Lumb & Jones' veterinary anesthesia and analgesia. 4th edn</a>. , Blackwell Pub. (2007).</li>
<li>Worthley, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+oral+endotracheal+intubation+with+a+fibre-optic+scope+in+rabbits%3A+a+simple+and+reliable+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Rapid oral endotracheal intubation with a fibre-optic scope in rabbits: a simple and reliable technique.</a> Laboratory Animals. 34 (2), 199-201 (2000).</li>
<li>Miranda, A., Pego, J. M., Correia-Pinto, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+facility+videoendoscopic+intubation+station%3A+tips+and+tricks+from+mice+to+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+animals%22%5BJournal%5D)">Animal facility videoendoscopic intubation station: tips and tricks from mice to rabbits.</a> Laboratory animals. , (2016).</li>
<li>Irazuzta, J., Hopkins, J., Gunnoe, P., Brittain, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+method+of+multipurpose+airway+access+through+percutaneous+tracheostomy+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Simple method of multipurpose airway access through percutaneous tracheostomy in rabbits (Oryctolagus cuniculus).</a> Lab Anim Sci. 47 (4), 411-413 (1997).</li>
<li>Bertolet, R. D., Hughes, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation%3A+an+easy+way+to+establish+a+patent+airway+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation: an easy way to establish a patent airway in rabbits.</a> Lab Anim Sci. 30 (2), Pt 1 227-230 (1980).</li>
<li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Vet+Med+Assoc%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> J Am Vet Med Assoc. 179 (11), 1295(1981).</li>
<li>Morgan, T. J., Glowaski, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Teaching+a+new+method+of+rabbit+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Teaching a new method of rabbit intubation.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (3), 32-36 (2007).</li>
<li>Inglis, S., Strunk, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Rabbit anesthesia.</a> Lab Anim (NY). 38 (3), 84-85 (2009).</li>
<li>Falcao, S. C., Pereira Junior, J. R., Coelho, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculi%29+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cir+Bras%22%5BJournal%5D)">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cir Bras. 26 (5), 352-356 (2011).</li>
<li>Su, H. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+miniature+lighted+stylet+for+fast+oral+endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Vet+J%22%5BJournal%5D)">A miniature lighted stylet for fast oral endotracheal intubation in rabbits.</a> Vet J. 195 (2), 254-256 (2013).</li>
<li>Weinstein, C. H., Fujimoto, J. L., Wishner, R. E., Newton, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+of+six-week-old+New+Zealand+White+rabbits+for+thoracotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp+Top+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Anesthesia of six-week-old New Zealand White rabbits for thoracotomy.</a> Contemp Top Lab Anim Sci. 39 (3), 19-22 (2000).</li>
<li>Stephens DeValle, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+Management+of+Rabbit+Anesthesia+Through+the+Use+of+Nasotracheal+Intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Successful Management of Rabbit Anesthesia Through the Use of Nasotracheal Intubation.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48, 166-170 (2009).</li>
<li>A Guidance on the Use of Topical Anesthetics for Naso/Oropharyngeal and Laryngotracheal Procedures. , U.S. Department of Veterans Affairs. (2006).</li>
<li>Cook, R. T., Stene, J. K., Marcolina, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+Beck+Airway+Airflow+Monitor+and+controllable-tip+endotracheal+tube+in+two+cases+of+nonlaryngoscopic+oral+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Emerg+Med%22%5BJournal%5D)">Use of a Beck Airway Airflow Monitor and controllable-tip endotracheal tube in two cases of nonlaryngoscopic oral intubation.</a> Am J Emerg Med. 13 (2), 180-183 (1995).</li>
<li>Fish, R. E., Brown, M. J., Danneman, P. J., Karas, A. Z. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFish%2C+RE+%22Anesthesia+and+Analgesia+in+Laboratory+Animals%22">Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals</a>. , Elsevier. (2008).</li>
<li>Gografe, S. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+management+of+long-term+general+anesthesia+in+rabbits+used+as+an+animal+model+of+human+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp+Top+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Successful management of long-term general anesthesia in rabbits used as an animal model of human disease.</a> Contemp Top Lab Anim Sci. 42 (2), 16-19 (2003).</li>
<li>Nordin, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+trachea+and+cuff-induced+tracheal+injury.+An+experimental+study+on+causative+factors+and+prevention%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Otolaryngol+Suppl%22%5BJournal%5D)">The trachea and cuff-induced tracheal injury. An experimental study on causative factors and prevention.</a> Acta Otolaryngol Suppl. 345, 1-71 (1977).</li>
<li>Phaneuf, L. R., Barker, S., Groleau, M. A., Turner, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 45 (6), 67-72 (2006).</li>
<li>Grint, N. J., Sayers, I. R., Cecchi, R., Harley, R., Day, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postanaesthetic+tracheal+strictures+in+three+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Postanaesthetic tracheal strictures in three rabbits.</a> Lab Anim. 40 (3), 301-308 (2006).</li>
<li>Squire, R., Siddiqui, S. Q., DiNunizio, G., Brodsky, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+study+of+the+tracheotomy+and+endotracheal+intubation+on+the+rabbit+tracheobronchial+tree%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Otol+Rhinol%22%5BJournal%5D)">Quantitative study of the tracheotomy and endotracheal intubation on the rabbit tracheobronchial tree.</a> Ann Otol Rhinol. , (1990).</li>
<li>Kumar, R. A., Boyer, M. I., Bowen, C. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+reliable+method+of+anesthesia+for+extensive+surgery+in+small+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">A reliable method of anesthesia for extensive surgery in small rabbits.</a> Lab Anim Sci. 43 (3), 265-266 (1993).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Aquí ofrecemos una descripción detallada de un conejo de técnica de intubación que puede dominarse fácilmente en cualquier entorno clínico. Esta técnica es similar a la visualización directa previamente publicado técnicas10,15,20,25 con algunos otros refinamientos, incluyendo el uso de un tubo endotraqueal sin manguito de 3,5 mm y un 5 francés catéter urinario como la guía de nuestro elegido, que ha sido cortado y marcado con un rotulador permanente en el extremo cortado. La tráquea de conejos es fácilmente propensa a lesiones y por lo tanto el uso de tubos endotraqueales recomienda generalmente cuando intubación conejos para evitar daños a la mucosa traqueal por la presión del manguito. 26 el catéter urinario francés 5 elegimos como guía es lo suficientemente pequeño como para pasar fácilmente a través de las cuerdas vocales sin obstruir la vista durante la visualización directa de la laringe. Aunque pequeños, este catéter es lo suficientemente rígido para permanecer en lugar como una guía para el tubo endotraqueal. Se redondea la punta distal del catéter para ayudar a reducir el trauma cuando se llega a la bifurcación. Se corta el extremo proximal del catéter para que el catéter esté en una longitud realizable (no excesivamente larga) y retire el extremo que se ensancha para el accesorio a una jeringa. El extremo cortado se marca con rotulador permanente como un indicador visual que no introduzca este extremo en la tráquea, que puede causar daño a la mucosa traqueal.
La principal limitación de esta técnica es que, porque requiere el uso de una hoja de laringoscopio, puede no ser factible para los conejos muy jóvenes o de razas muy pequeñas debido al pequeño tamaño de la boca. Además, algunas instalaciones no tengan este tamaño de hoja del laringoscopio fácilmente disponible. En la institución del autor, este método se utiliza para el Nueva Zelanda blanco (≥ 6 semanas) y conejos adultos con cinturón holandés, pero no hemos intentado este método en animales más jóvenes o de razas pequeñas. En situaciones donde el paciente conejo es pequeño, o si un laringoscopio con una hoja pequeña de Miller no está disponible, una alternativa es utilizar un otoscopio portátil, en lugar de laringoscopio. 15 , 20 utilizando un otoscopio con un espéculo de oído #5, se visualiza la laringe, se coloca el catéter guía por visualización directa, y se retira el espéculo antes de proceder siguiendo los mismos pasos señalados anteriormente.
Es importante que tenga mucho cuidado cuando se coloca el catéter guía para evitar la posibilidad de causar trauma o broncoespasmo como el extremo del catéter se pasa a la tráquea y toca la bifurcación traqueal. El riesgo de estas complicaciones puede reducirse o evitar alimentar la sonda con movimientos muy suaves, parando en cuanto resistencia y evitando el movimiento de la cabeza y cuello una vez que el catéter está en su lugar. Además, al avanzar el tubo endotraqueal sobre el catéter, existe la posibilidad de que el catéter coger en el conector del tubo endotraqueal. Por lo tanto, es importante asegurarse de que el catéter se desliza a través del conector sin coger; Alternativamente, el conector se puede quitar y reemplazar al asegurar la endotraqueal tubo o conexión al circuito anestésico.
Con cualquier método de intubación, existe la posibilidad de complicaciones y efectos adversos. El método de visualización directa con un laringoscopio, inserción incorrecta de la pala del laringoscopio o agresiva colocación del tubo endotraqueal puede en laringe, lengua, o lesiones del diente. Colocación correcta de los animales es el primer paso crítico para minimizar el trauma durante la visualización de la laringe. La columna vertebral debe estar recta, con la cabeza en alineación directa con la columna vertebral; Si el animal no es recto, o si el cuello se tuerce a la izquierda o la derecha, esto hará más difícil la visualización de la laringe y puede resultar en trauma excesivo con la pala del laringoscopio. Otra clave fundamental para el éxito cuando se utiliza esta técnica es seguir el techo de la boca hacia la laringe y una vez que se visualiza el paladar blando, cambiar la cuchilla en una posición adecuada por flexión en la muñeca. Esto mantiene la cabeza en su lugar, mientras se mueve la punta de la hoja en la posición de visualización óptima de las cuerdas vocales, que se encuentran bastante ventral en el conejo20,24.
Porque la visualización directa de la laringe puede ser complicada si no se siguen las técnicas precisas que describimos arriba, el uso de estrategias de intubación alternativo que no requieren la visualización de la laringe puede ser atractivo. Por ejemplo, la técnica del ciega es una opción que no requiere el uso de un laringoscopio16,17,18,19,20. Sin embargo, esta técnica se basa en la capacidad para detectar flujo de aire a través del tubo endotraqueal para dirigir la colocación de la sonda y si respiraciones del animal son muy poco profundas o arrestado, el uso de este método no es confiable. Supraglótica dispositivos también pueden ser considerados, ya que la colocación de estos dispositivos no requiere visualización de la laringe y son generalmente muy fáciles de colocar. Estos dispositivos no entrarán directamente en la tráquea, sin embargo y por lo tanto existe la posibilidad por falta de flujo directo a la vía aérea, incapacidad para ventilar si se presenta Laringoespasmo, falta de un sello lo suficientemente apretado como para ventilación durante procedimientos de pecho abierto o emergencia reanimación y el desarrollo de tympany gástrico3,4,8. Más nuevos dispositivos específicamente diseñados para conejos pueden ofrecer una alternativa prometedora, pero se necesitan más estudios para evaluar estos dispositivos, y siguen las preocupaciones sobre la falta de entrada en la tráquea. Tympany gástrica también puede ser una complicación potencial en un animal intubado si accidentalmente se coloca el tubo endotraqueal en el esófago; sin embargo, el uso de una técnica de visualización directa minimiza el riesgo de esta complicación al verificar la colocación correcta del catéter guía en la laringe.
Trauma a la mucosa aritenoidea o traqueal es otra preocupación potencial cuando se inserta un tubo endotraqueal, sobre todo cuando uso inflable esposadas tubos26,27,28. La tráquea de conejos puede ser fácilmente lesionada, que puede llevar a complicaciones como enfisema subcutáneo, neumotórax y hasta la muerte10,27,28,29. Al realizar la técnica que Describimos aquí, debe tenerse cuidado para evitar lesiones traqueales por el uso de tubos endotraqueales, asegurando que la punta redondeada del catéter guía se inserta en la tráquea y no forzar el catéter guía en la glotis. Además, la selección de un tubo endotraqueal de tamaño adecuado es de vital importancia. Tamaño del tubo endotraqueal debe ser considerado con el tamaño del animal, así como en comparación con la apertura de la entrada de la laringe ya que es más pequeño en diámetro que la tráquea. Un tubo endotraqueal demasiado grande de diámetro puede causar trauma a la mucosa aritenoidea o cartílago. Por el contrario, utilizar un tubo endotraqueal más pequeño resulta en resistencia de vía aérea mayor y aumenta las posibilidades de obstrucción por moco o una torcedura. Por esta razón, la monitorización respiratoria es muy importante en conejos intubados. Además de la oximetría de pulso, medición de flujo de aire debe ser monitored con capnografía; Si no está disponible un capnógrafo, monitores de las vías respiratorias son una alternativa que puede utilizarse para detectar flujo de aire (pero no proporcionan mediciones de dióxido de carbono espirado). Además, provisión de asistencia respiratoria puede ser valiosa, particularmente en casos en los que son de tubos de diámetro más pequeño usado24,30.
Además de los ya mencionados beneficios de la utilización de esta técnica, otra gran ventaja de este método es que puede ser realizada por una sola persona sin necesidad de un asistente, que puede ser importante en un ajuste clínico ocupado. En esta situación, es importante recopilar todos los suministros necesarios y tenerlos dentro de fácil alcance durante el proceso de la intubación, particularmente cuando el catéter guía está en su lugar y debe evitarse el movimiento de la cabeza.
La técnica que Describimos aquí es utilizada por el personal veterinario y de investigación en nuestra institución para todos intubaciones de conejo, que asciende a aproximadamente 200-400 intubaciones por año. Muy fácilmente se imparte en una sesión de entrenamiento típica conejo anestesia, que dura aproximadamente 30 minutos. Hemos encontrado que es relativamente fácil de aprender, con estudiantes dentro de los 3 primeros intentos y generalmente capaz de aprender a repetir el proceso con éxito en el próximo intento adicional. Para el futuro estudio, sería útil comparar tiempo de competencia y capacidad para mantener la competencia en el tiempo para este método en comparación con otras técnicas de intubación. Mientras que esto se ha estudiado las variaciones de técnicas ciegas16, una evaluación integral de la curva de aprendizaje para una gran variedad de técnicas de intubación sin embargo se han realizado. Otra posible dirección futura de estudio podría incluir comparar intubación endotraqueal directa a los más nuevos dispositivos de vía aérea supraglótica propios de cada especie, particularmente con respecto a la función durante la ventilación con presión positiva.
En conclusión, la técnica para la intubación de conejos que Describimos aquí es no invasivo, confiable, no requiere el uso de equipo especializado, es fácil de dominar y puede realizarse por una sola persona sin necesidad de un asistente. Todas las técnicas de acceso presentan algún nivel de riesgo, pero utilizando una técnica de visualización directa y siguiendo los pasos que describimos anteriormente para minimizar las complicaciones, los riesgos ahora son superados por los beneficios de tener una adecuada vía aérea durante la anestesia.

Los conejos tienen una cavidad estrecha, profunda oral que restringe la visibilidad de la laringe para la intubación endotraqueal. También tienen una lengua carnosa muy grande y los dientes de la mejilla que, cuando se combina con la cavidad bucal estrecha, puede causar problemas al insertar un laringoscopio y visualización de la glotis para insertar un tubo endotraqueal1. Debe tener gran cuidado para evitar causar daños a la cavidad oral y vía aérea al intentar la intubación. Los tejidos laríngeos son muy friables y trauma excesivo de repetidos intentos de intubación puede causar inflamación significativa, haciendo que la intubación más difícil2.
Por estas razones, se han descrito una variedad de técnicas alternativas, en particular dispositivos de vía aérea supraglótica incluyendo la laríngea tubo3,4, la máscara laríngea (LMA) de la vía aérea4,5, 6 y vía aérea supraglótica específicos dispositivo7. Un tubo laríngeo consiste en un tubo con dos globos que dirija el aire en la tráquea: un globo más grande en el centro el tubo forma un sello en la faringe superior y un pequeño globo en el extremo distal sella la entrada del esófago3. El LMA consiste en un tubo con una máscara elíptica en el extremo distal que se hincha para formar un sello hermético sobre la glotis4,5,6. El dispositivo específicos es el primer dispositivo de vía aérea supraglótica específicos veterinarios, disponible actualmente para los gatos y conejos, diseñados para adaptarse a las estructuras anatómicas de cada especie crear una presión del sello en la faringe7. Sin embargo, porque estos dispositivos no entrar directamente en la tráquea, que pueden presentar riesgos para complicaciones como tympany gástrico. La falta de un sello adecuado dentro de la tráquea presenta una preocupación por la adecuación para el uso de estos dispositivos para ventilación de presión positiva para asistencia respiratoria, situaciones de emergencia o cirugía torácica3,8. Además, falta de directa intubación de la tráquea puede resultar en la exposición personal a residuos de gases anestésicos5.
Han sido muchos los métodos para la intubación endotraqueal directa descrito9,10,11,12,13,14,15. Un método popular es la técnica ciega, que puede disminuir la posibilidad de lesiones en la cavidad orofaríngea, ya que la inserción de un laringoscopio no es necesario16,17,18,19 , 20. como una técnica visual ciega, este método requiere control de flujo de aire a través del tubo endotraqueal y la manipulación cuidadosa a la colocación de la guía. Aunque este método es utilizado en la investigación y práctica clínica veterinaria, en la experiencia de los autores, esta técnica puede ser desperdiciador de tiempo y no siempre exitoso y así es más difícil enseñar y puede requerir de dosis adicionales de los agentes anestésicos 9 , 10. Además, porque el control de la respiración se utiliza para guiar la colocación correcta del tubo, este método sería más difícil y menos confiable durante paro respiratorio. Otro método popular es usar una técnica de laringoscopio tradicional para intubar como se hace con especies más grandes. Sin embargo, la técnica de laringoscopio tradicional en conejos es difícil en que se obstruye la visión de las cuerdas vocales cuando el tubo endotraqueal se inserta en la boca. Por lo tanto, la utilización de este método puede resultar en intentos repetidos de intubación, aumento de dosificación anestésica y lesiones en la cavidad y la vía aérea oral10.
También existen opciones más costosas y técnicamente desafiantes para la intubación. El laringoscopio de fibra óptica permite la fácil inserción del tubo endotraqueal por insertar el laringoscopio en el tubo y visualizar la inserción dentro de la tráquea en una pantalla. Del mismo modo, endoscopios pueden utilizarse para visualizar la zona laríngea y guía de colocación de la sonda. Sin embargo, estos métodos requieren el uso de equipos costosos que no pueden ser fácilmente disponible en ajustes clínicos típico9,11,12. Intubación a través de la cavidad nasal es un método alternativo que se ha descrito, aunque esto presenta un riesgo de introducir patógenos oportunistas de la cavidad nasal hacia los pulmones, especialmente en los conejos que no están libres de patógenos específicos21. Por último, métodos más invasivos de la intubación también han sido publicados, incluyendo inserción retrógrada de un catéter guía a través de una aguja colocada por vía percutánea en la tráquea, así como el uso de una cricothyroidotomy aguja seguido por la colocación de un alambre guía, vaso dilatador y vaina introductora13,14. Como técnicas invasivas, estos métodos tienen potenciales complicaciones como infección y dolor posterior al procedimiento. La técnica que Describimos aquí, usando un laringoscopio y el catéter guía, se les puede enseñar con una formación mínima con un tiempo corto para competencia, es no invasiva, puede realizarse por una sola persona sin necesidad de un asistente y no requiere el uso de equipo especializado.

<table><tbody><tr><td>Ketalar Ketamina HCl Inj.</td><td>JHP Pharmaceuticals</td><td>NDC 42023-113-10</td><td>35 mg/kg IM en músculos epaxiales o músculo cuádriceps (preferido)</td></tr><tr><td>Anased Xilacina (100 mg/ml)</td><td>Lloyd Labs</td><td>NADA #139-236</td><td>5 mg/kg IM en músculos epaxiales o músculo cuádriceps (preferido)</td></tr><tr><td>Welch Allyn Mango de laringoscopio</td><td>Welch Allyn</td><td>60300</td><td>Requiere 2 pilas alcalinas de tamaño</td></tr><tr><td>C Tamaño 0 o 1 Hoja de laringoscopio Miller</td><td>Welch Allyn</td><td>68040</td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotraqueal sin manguito de 2,5 mm de diámetro interior de 4,0 mm</td><td>Jorgenson</td><td>J0149V</td><td>Adecuado para conejos de 2,5-5 kg Catéter de polipropileno Sovereign de 3,5 mm más utilizado,</td></tr><tr><td>5 Fr x 22"</td><td>Medtronic</td><td>8890703310</td><td>Cortado a 8-10 pulgadas Marque el extremo cortado con marcador permanente para indicar qué extremo no insertar</td></tr><tr><td>Lidocaína 2% HCL Inj</td><td>VetOne</td><td>L-2000-04</td><td></td></tr><tr><td>4 capas no estériles, empaquetadas a granel Esponjas Versalon (almohadillas de gasa)</td><td>Covidien</td><td>KC9024A</td><td></td></tr><tr><td>Tape, Sarga, Blanqueada & frac12; &rdquo; x 72 yardas</td><td>Encompass Textiles</td><td>48210-025</td><td>Se utiliza para asegurar el tubo endotraqueal</td></tr><tr><td>HR Glucen lubricante</td><td>HR Pharmaceuticals</td><td>201</td><td>Para lubricar la punta del tubo endotraqueal</td></tr><tr><td>Great Plains Ballistics: BAAM (Monitor de flujo de aire de las vías respiratorias Beck) 22</td><td>BoundTree Medical</td><td>21410</td><td>Para confirmar el éxito de la intubación</td></tr><tr><td>Detector pediátrico de Co2 Ambu</td><td>AMBU INC</td><td>172713</td><td>Para confirmar el éxito de la intubación</td></tr></tbody></table>

intubación endotraqueal de conejos usando un catéter guía polipropileno

Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter

Intubación endotraqueal en los conejos puede ser difícil debido a su inusual anatomía. Lograr una vía aérea patente durante la anestesia es fundamental para evitar la obstrucción de vía aérea, prevención de tympany gástrico y permitir la ayuda ventilatoria. Debido a la dificultad de la intubación, se han explorado métodos alternativos como el uso de máscara laríngea o tubos laríngeos. Sin embargo, estos métodos no resultan en acceso directo a la tráquea y por lo tanto pueden presentar un riesgo para el desarrollo de complicaciones. Además, falta de directa intubación de la tráquea puede resultar en la exposición personal a gases anestésicos residuales. Se han descrito numerosos métodos para la intubación endotraqueal, incluyendo colocación de ciega, el uso de un laringoscopio o endoscopio y cricoides la colocación de la fibra óptica. A pesar de estas numerosas publicaciones, muchas aún luchan por alcanzar el éxito. Aquí ofrecemos una descripción detallada de una técnica de intubación que se le puede enseñar con una formación mínima con un tiempo corto para competencia. Brevemente, después de la administración de anestesia inyectable y la colocación apropiada del conejo, se coloca un catéter de polipropileno en la tráquea por visualización directa con un laringoscopio. El catéter se utiliza como guía para dirigir el tubo endotraqueal en la tráquea. Este método permite la intubación sin necesidad de equipo costoso y puede realizarse por una sola persona sin necesidad de un asistente. En conclusión, esta técnica puede ser fácilmente enseñada y realizada con muy poco costo en cualquiera clínico o de investigación de ajuste.

En institución el authors', esta técnica se enseña típicamente a personal de laboratorio y veterinarios durante sesiones de entrenamiento en técnicas de anestesia y manejo del conejo. Sesiones de enseñanza se realizan con animales dedicado entrenamiento. El formador demuestra la técnica una vez y luego los alumnos realizan la técnica bajo la dirección del entrenador. Los alumnos normalmente alcanzan éxito dentro de 1-3 intentos. Después de que exitosamente han intubado el conejo una vez, individuos están obligados a realizar la intubación una segunda vez y son típicamente capaces de intubar exitosamente el conejo otra vez en el primer intento adicional. Retroalimentación durante estas sesiones de formación, particularmente de los individuos que han sido previamente entrenados con técnicas alternativas, incluye constantemente comentarios sobre lo fácil que es esta técnica aprender y completar con éxito.
<img alt="Herramientas de manejo de las vías respiratorias para la intubación, incluye laringoscopio, jeringa, guía, tubo endotraqueal." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig1.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> 
Figura 1. Suministros para intubación endotraqueal: 1) laringoscopio con tamaño 0 o 1 Miller hoja de laringoscopio, cinta 2) umbilical (u otras fuentes para asegurar el tubo endotraqueal), 3) 0.25 mL de lidocaína al 2%, 4) 5-francés catéter de polipropileno cortado a 8-10 pulgadas con el extremo redondeado no marcado con un marcador permanente para indicar claramente que el extremo no debe ser introducido en la tráquea (flecha), 5) dispositivo de detección de flujo de aire, 6) lubricante estéril para ser aplicado en el extremo distal del tubo, 7) sin Manguito tubo endotraqueal. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig1large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Preparación de anestesia de conejo con máscara antigás; procedimiento veterinario; configuración clínica y equipo." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> 
Figura 2 : Posición esternal para intubación endotraqueal. El conejo se coloca sternally con los miembros anteriores extendidos hasta el final de la tabla. Los miembros posteriores se extiende hacia atrás y la cabeza del conejo está alineada con la columna vertebral. La mano izquierda se utiliza para elevar la cabeza en extensión en preparación para la inserción del laringoscopio. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Anestesia de conejo y proceso de intubación; procedimiento veterinario con configuración de herramientas médicas." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig3.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> 
Figura 3 : Inserción del laringoscopio. A) el laringoscopio se introduce en el diastema izquierdo con la mano derecha, después el techo de la boca con la punta de la hoja hasta el paladar blando es visible. Una vez que el paladar blando es visible, el laringoscopio se inclina hacia adelante al extender la cabeza hacia atrás y el cuello hacia adelante el conejo para visualizar la laringe. B) visualización de la laringe. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Examen oral de conejo, procedimiento veterinario, uso de espéculo dental, inspección de cerca." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig4.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 4"> 
Figura 4 : Avance del catéter guía. A) después de cambiar la hoja del laringoscopio en la mano izquierda, la derecha avanza con la punta redondeada del catéter guía a través de la abertura más allá de la laringe. B) el catéter guía atraviesa las cuerdas vocales con la visualización directa. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig4large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Procedimiento de intubación de conejos; configuración veterinaria; inducción de anestesia; cuidado de animales de laboratorio." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig5.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 5"> 
Figura 5 : Adelanto del tubo traqueal de. El tubo endotraqueal se rosca sobre el catéter guía y se avanza hasta que no haya resistencia de las cuerdas vocales. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig5large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Procedimiento de dosificación oral en animales, conejo, jeringa, experimento de laboratorio, veterinario, configuración de investigación clínica." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig6.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 6"> 
Figura 6 : instilación lidocaína. Lidocaína (2%, 0,25 mL) es inculcada en la abertura del tubo endotraqueal. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig6large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Examen oral de conejos; procedimiento veterinario; control zoosanitario; entorno clínico." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig7.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 7"> 
Figura 7 : Avance del tubo endotraqueal. Dos minutos después de la instilación de lidocaína, el tubo endotraqueal se avanza girando suavemente para pasar a través de las cuerdas vocales. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig7large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Procedimiento de experimentación con animales; análisis de laboratorio; ética de la investigación; Técnica de manipulación de muestras." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig8.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 8"> 
Figura 8 : Verificación del flujo de aire a través del tubo endotraqueal. Un dispositivo de detección de flujo de aire puede usarse para verificar el flujo de aire a través del tubo endotraqueal, o un espejo dental puede también usarse para detectar la condensación de respiraciones que indica intubación exitosa. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig8large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

Intubación endotraqueal en los conejos es desafiante debido a su inusual anatomía. Aquí presentamos una técnica para la intubación de la tráquea con un catéter de polipropileno como guía directa. Este método utiliza materiales relativamente baratos, requiere una formación mínima y puede realizarse fácilmente en cualquier entorno clínico.

Intubación endotraqueal de conejos usando un catéter guía polipropileno

Endotracheal intubation in rabbits can be challenging due to their unusual anatomy. Achieving a patent airway during anesthesia is critical for the ...

El objetivo general de este procedimiento es intubar conejos de manera segura y efectiva para asegurar una vía aérea permeable durante la anestesia general. Este método se puede utilizar para proyectos de investigación que requieren anestesia general en conejos, pero también tiene una amplia aplicación para una variedad de entornos clínicos. Las principales ventajas de esta técnica son que es no invasiva, relativamente económica, fácil de aprender y da como resultado la intubación directa de la tráquea.La intubación endotraqueal en conejos puede ser un desafío debido a su anatomía inusual. Sin embargo, este enfoque es un procedimiento simple y repetible que utiliza suministros económicos y puntos de referencia fácilmente identificables. Antes de comenzar el procedimiento, corte el extremo no redondeado de un catéter de polipropileno de cinco franceses a una longitud total de ocho a 10 pulgadas y marque claramente el extremo cortado del tubo para indicar el extremo que no debe insertarse en la tráquea.Cargue una hoja de laringoscopio Miller de tamaño cero o una hoja de laringoscopio en el laringoscopio y verifique que la luz del laringoscopio funcione. Mida un tubo endotraqueal sin manguito de tamaño adecuado desde los incisivos hasta la entrada torácica para determinar la longitud adecuada para la inserción del tubo endotraqueal y aplique lubricante estéril en el extremo del tubo. Después de confirmar el nivel apropiado de sedación mediante un pellizco en los dedos de los pies, aplique ungüento en los ojos de un conejo blanco de Nueva Zelanda de tres a 3,3 kilogramos de cuatro meses de edad.Coloque al conejo en posición de popa en la mesa de preparación con la cabeza ligeramente extendida sobre el borde de la mesa y con la cabeza y la columna vertebral alineadas en línea recta. Levantando la cabeza, use una gasa para tirar de la lengua lateralmente hacia los incisivos inferiores derechos en el diastema. Y entrando por el lado izquierdo del animal, use la mano derecha para colocar el laringoscopio y la hoja en la boca detrás de los incisivos.Siga el paladar caudalmente con la punta de la hoja hasta que se vea la paleta suave. Luego, doblando la muñeca y sosteniendo el instrumento hacia abajo, incline el laringoscopio hacia adelante mientras extiende la cabeza del animal hacia atrás y el cuello hacia adelante para mantener las vías respiratorias abiertas y ver la laringe. Es fundamental obtener una visualización clara de la laringe para garantizar que el catéter guía se dirija a la vía aérea.Manteniendo la vista de la glotis, suelte la lengua y cambie la hoja del laringoscopio a la mano izquierda. Avance la punta redondeada del catéter guía a través de la abertura más allá de la laringe, visualizando el paso entre las cuerdas vocales hasta que el catéter se detenga naturalmente en la bifurcación traqueal. Pase el tubo endotraqueal sobre el catéter y avance el tubo hasta que haya resistencia de las cuerdas vocales.La parte más riesgosa del procedimiento es el enhebrado del tubo endotraqueal sobre el catéter guía. Si el conector del tubo endotraqueal se engancha en el catéter guía, puede forzar el catéter más adentro de las vías respiratorias, lo que puede causar un traumatismo. Cuando el tubo esté en su lugar, use una jeringa de un mililitro para instilar 0,25 mililitros de lidocaína al 2% en la abertura del tubo para anestesiar localmente las cuerdas vocales y prevenir el laringoespasmo.Después de dos minutos, gire suavemente el tubo endotraqueal mientras lo hace avanzar a través de las cuerdas vocales. Una vez que el tubo haya pasado por las cuerdas vocales, retire la hoja del laringoscopio y el catéter teniendo cuidado de no desalojar el tubo. Verifique la colocación correcta del tubo endotraqueal observando el flujo de aire y asegure el tubo con cinta umbilical atada alrededor del tubo y la cabeza.Luego, conecte el circuito de anestesia y ausculte ambos lados del tórax mientras da respiraciones para asegurar la ventilación a ambos lados del pulmón. Después de una demostración por parte de un entrenador experimentado, los aprendices nuevos en la técnica de intubación, que es fácil de aprender y realizar, generalmente logran el éxito en uno a tres intentos. Al igual que con cualquier método de intubación, es importante vigilar de cerca al animal durante los períodos de anestesia y recuperación para detectar cualquier posible complicación u obstrucción de las vías respiratorias.Una vez dominada, esta técnica puede ser realizada de forma rápida y fiable por una sola persona en cualquier entorno clínico y puede enseñarse fácilmente al personal técnico con poco tiempo de competencia. Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo intubar conejos de manera segura para mantener una vía respiratoria permeable bajo anestesia general.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

Mediciones repetidas de la fisiología respiratoria y el muestreo de roedores de las células de las vías respiratorias inflamatorias son deseables, pero en general no es factible. A continuación se describe un método reproducible para la intubación por vía oral ratones que permite mediciones repetidas de la hiperreactividad de las vías respiratorias y el muestreo de las células de las vías respiratorias inflamatorias.

A reversible, método no invasivo para las mediciones de resistencia de las vías y Toma de Muestras Líquido del Lavado broncoalveolar en ratones

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Aprende a intubar conejos de forma segura usando un catéter guía de polipropileno y laringoscopio Miller. Esta técnica no invasiva permite visualizar directamente la laringe para asegurar la vía aérea durante la anestesia general en entornos clínicos y de investigación.

Intubación endotraqueal de conejos usando un catéter guía polipropileno

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